Extraplacental trophoblast structures: Study, structure, functions, properties, diagnostic and therapeutic value

Prokopyuk V.Yu.

Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine, National Academy of Sciences of Ukraine, Kharkov 61015, Pereyaslavskaya str. 23, Ukraine
Objective. To make a systematic analysis of the data available in the current literature on extraplacental trophoblast elements in the maternal body, the history of their study, properties, and the possibilities of therapeutic and diagnostic use.
Material and methods. The review included the data of foreign and Russian articles published in the past 50 years and found in the retrieval systems Pubmed and Google scholar on this topic. Citation preference was given to the papers published in the past 10 years.
Results. Current views on the morphology, classification, functions, and properties of extraplacental trophoblast structures are considered. There are data of in vitro and in vivo experimental studies. Attention is given to the specific features of the therapeutic and diagnostic potential of trophoblast and placental cells, which is determined by their properties (invasion, hormonal function, low immunogenicity, and a capability for immunosuppression and tolerance induction); and views on cancer risk are described.
Conclusion. The study of extraplacental trophoblast functions offers prospects for the clinical diagnosis of genetic disorders and the placental status, for the understanding of tolerance forming processes during pregnancy, oncogenesis, and implantation. Mesenchymal stem cells, placental explants, and placental factors may be effectively used in cellular and tissue therapy and, on the strength of their natural trophicity for reproductive organs, are particularly effective in treating gynecological diseases: infertility, endocrine disorders, and autoimmune responses.

Keywords

placenta
trophoblast deportation
mesenchymal stem cells
diagnosis
preeclampsia
cellular therapy

Беременность – сложный и многогранный процесс, обеспечивающий как рост и развитие эмбриона, плода, так и взаимное сосуществование двух организмов [1]. Развитие вспомогательных репродуктивных технологий с донацией яйцеклеток показало, что эти организмы могут быть и полностью генетически чужеродны [2]. Изменения материнского организма обеспечивается плацентарными структурами [3]. Давно известное явление депортации трофобласта, и существование внеплацентарного трофобласта в последнее время привлекает большое внимание исследователей, как биологов так и врачей [4]. С одной стороны, развитие современных технических средств позволяет использовать это явление в диагностическом процессе, выделяя трофобластические элементы из крови матери [5]. С другой стороны депортация трофобласта является своего рода естественной моделью взаимного существования двух генетически различных систем, позволяющей исследовать функции не только трофобласта и плаценты, но и открывать новые горизонты в трансплантологии, иммунологии, онкологии и клеточной терапии [6].

Естественные свободные трофобластические структуры

Впервые способность трофобласта существовать за пределами плаценты описана G. Schmorl в 1893 году, который нашел фрагменты трофобласта (plazentarzellen) в легких 14 из 17 женщин, умерших от эклампсии, что автор считал одним из проявлений эклампсии. Это были многоядерные синцитиальные фрагменты, овальной формы, эмболизировавшие сосуды, содержавшие 5-15 ядер [7]. Позже тем же автором были получены данные о присутствии подобных структур в аутопсийном материале, полученном от женщин, умерших от случайных причин [8]. Впоследствии подобные результаты были получены другими исследователями [9–11].

Было выяснено, что явление депортации трофобласта наблюдается при нормальной беременности, при этом элементы трофобласта обнаруживаются в маточных венах, начиная с 6–18 недель беременности [12, 13]. Впервые трофобластические структуры были выделены из периферической крови матери в 1982 году [14], их характеризовали как многоядерные фрагменты размером 12–14 мкм, диплоидные – 7 мкм и фрагменты клеток менее 5 мкм [15]. Количество трофобластических элементов в маточных венах после 6 недель беременности колеблется от 0,15 до 51,5 мл. В сутки в кровоток матери попадает около 105 трофобластов [11]; по мнению других исследователей это число может достигать 107 клеток в час [16]. Усиление депортации при преэклампсии остается дискутабельным [12].

Количество выделенных трофобластических структур, во многом определялось методами, которые использовали исследователи. Первые исследователи использовали гистологические методы, при этом удавалось обнаружить элементы трофобласта в большинстве случаев преэклампсий и менее половины случаев при случайных смертях [16–18]. При исследовании мазков крови в большинстве случаев удавалось обнаружить крупные фрагменты трофобласта в маточных венах и в не более трети случаев – в периферической или пуповинной крови [10]. При использовании современных методов исследования: проточной цитометрии, FISH-гибридизации, магнитного сортинга с различными антителами (P1, anti-H315, anti-H317, anti-18B/A5, anti-JMB2, FDO46B, FDO161G, FDO101X, CD16, anti-JMB2, anti-F71.1, anti-4H84, anti-A45-B/B3) трофобласты были обнаружены во всех источниках в большинстве случаев [19].

Количество клеток трофобласта максимально в крови, полученной из маточных вен, значительно меньше в пуповинной крови, еще меньше – в периферической крови матери [10, 15, 18].

Размеры и характер частиц трофобласта, попадающие в материнский кровоток различны. Их разделяют на фрагменты клеточного размера (cell-sized) и фрагменты размера нуклеиновых кислот (nucleid acid-sized) [12]. К первым относят синцитиальные агрегаты размером 20–200 мкм, которые содержат 2–50 ядер, могут быть как симпластом, так и отдельными клетками, часто оседают в сосудах легких и находятся в маточной вене; мононуклеарные цитотрофобласты, размером около 25 мкм; безъядерные цитоплазматические элементы, размером 2–10 мкм. Ко второй группе относят микрочастицы трофобласта, размером около 100 нм, экзосомы, размером менее 100 нм, фрагменты цитокератина и свободные фрагменты нуклеиновых кислот [12, 20].

Многоядерные фрагменты трофобласта по мнению ряда авторов могут быть конечным этапом жизненного цикла синцитиотрофобласта, результатом апоптотических изменений [21], эта гипотеза подтверждается тем, что при преэклампсии повышается как уровень апоптоза, так и количество депортированного трофобласта [18, 22]. Мононуклеарные клетки попадают в материнский кровоток как в результате апоптотического отшнуровывания, так и при процессах ремоделирования сприальных артерий, большая их часть имеет ворсинчатое происхождение [23]. Экзосомы и отдельные трофобластические молекулы ДНК, цитокератина или рецепторы являются результатом разрушения плацентарных структур и апоптоза, происходящего в плаценте и в уже депортированных структурах [8, 20].

Трофобластические структуры, отделившись от плаценты, попадают в маточные вены, нижнюю полую вену и легкие, где оседают в легочных капиллярах; большая их часть элиминируется в течение 3 дней, изредка – до 2 недель [9]. Элиминация трофобласта из организма, в первую очередь из легких, осуществляется за счет фагоцитов, «литического агента» и механизмов апоптоза, что предотвращает эмболизацию легких [23].

Срок пребывания производных трофобласта в организме вне беременности установлен отдельно разными группами исследователей и составляет до 49-65 суток для человека, кролика, крысы и мыши [24–26].

Функция депортированного трофобласта во время беременности окончательно не определена и связана с его свойствами. Выдвинуты гипотезы о низкой иммуногенности трофобласта, физиологической иммуносупрессии, толерантности [23]. Показано, что трофобласт способствует переходу иммунного ответа с Th1 типа, при котором синтезируются провоспалительные цитокины к Th2, при котором синтезируются противовоспалительные факторы, уменьшается количество натуральных киллеров, изменяется функция дендритных клеток и макрофагов [3]. Кроме того, ряд трофобластических факторов (хорионический гонадотропин, альфафетопротеин, половые гормоны) также влияют на Т, В, дендритные, тучные клетки и систему макрофагов [27]. Считается, что депортированый трофобласт играет роль в формировании физиологической иммуносупрессии при беременности и толерантности по отношению к плоду [23, 28]. Известно, что введение клеток донора перед трансплантацией увеличивает сроки выживания аллографта [24]. Показана способность депортированного трофобласта усиливать в макрофагах синтез противовоспалительных цитокинов и индоламиндиоксигеназы [29]. Подобными свойствами обладают и плацентарные экзосомы, оказывая иммуносупрессивное действие [30]. Внеплацентарный трофобласт имеет общие черты с плацентарным, не экспрессирует на своей поверхности антигены HLA I и II класса, но он иногда способен экспрессировать HLA – С и HLA – G, который участвует в развитии беременности [3]. Взаимодействие многоклеточных фрагментов с макрофагами приводит к усилению секреции противовоспалительного интерлейкина (IL) -10 и угнетению провоспалительных IL-1β [23]. Описана связь апоптотического плацентарного детрита с эндотелиальной дисфункцией при эклампсии, которая проявляется продукцией CAM-1 , IL-1β , 12, 16 , трофобластического фактора роста (TGF)-1β и формированием «нейтрофильных внеклеточных ловушек» [17].

Искусственные свободные трофобластические структуры

Свободные трофобластические структуры неоднократно создавались исследователями. Целью их воспроизводства были эксперименты по исследованию явлений депортации трофобласта, имплантации, межклеточных взаимодействий в плаценте, создание модели для тестирования лекарственных средств. Разработаны методы получения клеток из всех частей последа, клетки фенотипированы, характеризованы [6, 31]. Для эксплантов плаценты человека описаны морфологические, физиологические, биохимические характеристики [25]. При этом более активны экспланты, полученные из трофобласта первого триместра беременности. Сфероиды из трофобласта человека более близки к естественным, что позволяет с их помощью изучать процессы имплантации. При этом способы получения сфероидов весьма различны: культивирование на неадгезивной поверхности, роллерное культивирование, получение из эксплантов [12].

Микрочастицы трофобласта, размером от 200 до 600 нм были получены измельчением, перфузией культуры эксплантов и плаценты [17]. При этом частицы после измельчения индуцировали апоптоз в слое эндотелиальных клеток, а микрочастицы, полученные другими методами – нет. Наиболее распространенный метод выделения наночастиц трофобласта и экзосом – ультрацентрифугирование субстрата (например, сыворотки) в градиенте плотности, или иммуномагнитная сепарация. Получены наночастицы трофобласта, размером около 50 нм путем перфузии материнской поверхности плаценты [12, 23].

В ряде работ показано, что трофобласт может существовать в организме до 65 дней, при этом элиминируясь неспецифическими макрофагами, и не вызывая типичных для трансплантата воспалительных изменений [29, 32]. Отдельные исследователи отмечают повышение артериального давления после введения животным трофобластических клеток [33]. Отрицательное влияние на эндотелий и состояние животного более выражено при апоптотических или некротических изменениях в трофобласте [23]. Также показано, что при введении экспериментальным животным экстракта или сыворотки пуповинной крови концентрация в их крови альфафетопротеина и хорионического гонадотропина достигает максимума в первые сутки и определяется до 7-го дня, в то же время при введении эксплантов плаценты или культуры клеток плаценты их содержание достигает максимума на 3–4-й день, сохраняется до 28 суток, что соответствует гистологической структуре места трансплантации [1].

В последнее время структуры плаценты все больше привлекают внимание ученых и врачей, как источник стволовых клеток для лечения ряда заболеваний: инфаркт, инсульт, мышечная дистрофия, сахарный диабет, болезнь Крона и др. [34, 35]. Использование этого материала открывает широкие перспективы для клеточной терапии и аутобанкинга [6, 36, 37]. Ряд методов находятся уже на стадиях клинических исследований [35, 38, 39]. В то же время исследование трофобластических клеток позволяет глубже понять функцию плаценты и депортацию трофобласта. Мезинхимальные стволовые клетки плацентарного происхождения имеют ряд особенностей, делающих их удобным объектом для клеточной терапии. Это низкая иммуногенность, способность вызывать иммуносупрессию, высокая пролиферативная активность. Плацентарные клетки, экспрессирующие CD90, CD73 CD105, и CD 200 в системе in vitro обладают способностью к направленной дифференцировке, угнетают антиген- специфическую пролиферацию Т-клеток, реакцию гиперчувствительности замедленного типа, в системе in vitro улучшают течение экспериментального энцефаломиелита, индуцируют толерогенный иммунный ответ за счет дифференцировки дендритных клеток и угнетений Th1 иммунного ответа в пользу Th2 [40]. Показана клиническая эффективность применения эксплантов плаценты, экстракта плаценты и сыворотки плацентарной крови во вспомогательных репродуктивных технологиях, при бесплодии иммунного и эндокринного генеза, антифосфолипидном синдроме, климактерическом синдроме, сахарном диабете, стенокардии, пародонтозе, подагре [34, 41].

Учитывая тот факт, что инвазия и депортация являются естественными свойствами трофобласта, особое внимание уделяется онкологической настороженности при трансплантации как клеток, так и органов. Известно, что прогноз онкозаболеваний при беременности резко ухудшается [42]. Трофобластическая модель рака, сформулированная в 1902 году не потеряла своей актуальности и сегодня [43]. В соответствии с ней клетки трофобласта мигрируют в разные части эмбриона, ускользая из-под генетического контроля и могут давать начало опухолям. Хорионкарцинома в анамнезе у донора является абсолютным противопоказанием к трансплантации, риск ее последующего проявления у реципиента составляет более 90% со смертностью более 60%, что обусловлено необходимой послеоперационной иммуносупрессией [44]. Однако малигнизация и развитие трофобластической болезни предполагает генетические нарушения в клетках трофобласта или эмбриона в целом, наличие патологии беременности [45]. В доступной литературе не описано случаев онкопатологии при использовании клеток плаценты или экспериментах по депортации трофобласта. Было отмечено, что мезенхимальные клетки плаценты угнетают пролиферацию раковых клеток и могут быть даже использованы для лечения онкопатологии [46].

Диагностическое значение свободных трофобластических структур

Циркуляция в материнской крови трофобласта открывает широкие перспективы для неинвазивной пренатальной диагностики: с одной стороны, это генетическое исследование, с другой – исследование состояния плаценты и вероятности развития преэклампсии. Содержание плодовой ДНК в крови матери по данным различных авторов колеблется в широких пределах и составляет в среднем 7,7% общего содержания внеклеточной ДНК [47]. Метод неинвазивной пренатальной диагностики с использованием внеклеточной ДНК основан на выделении из периферической венозной крови матери плодовой ДНК центрифугированием в градиенте плотности с последующим использованием для полимеразной цепной реакции [48]. Метод применим с 10 недель беременности и позволяет проводить тест на отцовство, определять пол плода, наличие генетических аномалий, является высокоинформативным, точным и в ряде стран экономически выгодным по сравнению с существующими биохимическими и ультразвуковыми методами пренатального скрининга [5, 49, 50]. Информативность подобных методик для диагностики и установления степени тяжести преэклампсии не однозначно оценивается разными группами исследователей [19, 22], однако увеличение депортации некротических элементов трофобласта связывают с ухудшением прогноза, являясь одним из факторов повреждения эндотелия при данной патологии [17].

Заключение

Плацентарные структуры человека обладают рядом уникальных, характеризующих их особенностей: инвазия, гормональная функция, низкая иммуногенность, способность к иммуносупрессии, индукции толерантности и депортации. При этом депортированный трофобласт не является онкогенным, являясь естественной моделью трансплантации. Изучение его функции открывает перспективы в клинической диагностике генетических расстройств и состояния плаценты, в понимании процессов формирования толерантности при беременности, онкогенеза и имплантации. Мезенхимальные стволовые клетки, экспланты плаценты, плацентарные факторы могут эффективно применяться в клеточной и тканевой терапии, и в силу своей естественной тропности к органам репродуктивной системы особенно эффективны в лечении гинекологической патологии: бесплодия, эндокринных расстройств, аутоиммунных реакций.

References

1. Grischenko V.I., Yurchenko T.N., ed. Placenta: cryopreservation, structure, properties, prospects for clinical application. Kharkiv: SPD FL Brovin A.V.; 2011. 292p. (in Russian)

2. Martínez-Varea A., Pellicer B., Perales-Marín A., Pellicer A. Relationship between maternal immunological response during pregnancy and onset of preeclampsia. J. Immunol. Res. 2014; 2014: 210241.

3. Veenstra van Nieuwenhoven A.L., Heineman M.J., Faas M.M. The immunology of successful pregnancy. Hum. Reprod. Update. 2003; 9(4): 347-57.

4. Khan A., Bulmer J.N., Chantraine F., Chen C.P., Chen Q., Collins S. et al. IFPA Meeting 2012. Workshop Report III: trophoblast deportation, gestational trophoblastic disease, placental insufficiency and fetal growth restriction, trophoblast over-invasion and accreta-related pathologies, placental thrombosis and fibrinolysis. Placenta. 2013; 34(Suppl.): S11-6.

5. Sukhikh G.T., Karetnikova N.A., Baranova E.E., Shubina E.S., Korostin D.O., Ekimov A.N., Parsadanyan N.G., Gus A.I., Bakharev V.A., Trofimov D.Yu., Voevodin S.M., Tetruashvili N.K. Noninvasive prenatal diagnosis of aneuploidies by next-generation sequencing (NGS) in a group of high-risk women. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2015; 4: 5-10. (in Russian)

6. Parolini O., Alviano F., Bagnara G.P., Bilic G., Bühring H.J., Evangelista M. et al. Concise review: isolation and characterization of cells from human term placenta: outcome of the first international Workshop on Placenta Derived Stem Cells. Stem Cells. 2008; 26(2): 300-11.

7. Schmorl G. Pathologisch-anatomische Untersuchungen ueber Puerperal- Eklampsie. Leipzig: Verlag von F.C.W. Vogel; 1893. 104S.

8. Redman C.W., Sargent I.L. Circulating microparticles in normal pregnancy and pre-eclampsia. Placenta. 2008; 29(1): 73-7.

9. Attwood H.D., Park W.W. Embolism to the lungs by trophoblast. J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1961; 68: 611-7.

10. Douglas G.W., Thomas L., Carr M., Cullen N.M., Morris R. Trophoblast in thecirculating blood during pregnancy. Am. J. Obstet. Gynecol. 1959; 78: 960-73.

11. Kozma R., Spring J., Johnson P.M., Adinolfi M. Detection of syncytiotrophoblast in maternal peripheral and uterine veins using a monoclonal antibody and flow cytometry. Hum. Reprod. 1986; 1(5): 335-6.

12. Askelund K.J., Chamley L.W. Trophoblast deportation part I: Review of the evidence demonstrating trophoblast shedding and deportation during human pregnancy. Placenta. 2011; 32(10): 716-23.

13. Covone A.E., Mutton D., Johnson P.M., Adinolfi M. Trophoblast cells in peripheral blood from pregnant women. Lancet. 1984; 2(8407): 841-3.

14. Goodfellow C.F., Taylor P.V. Extraction and identification of trophoblast cells circulating in peripheral blood during pregnancy. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1982; 89(1): 65-8.

15. O’Sullivan M.J., McIntyre J.A., Prior M., Warriner G., Faulk W.P. Identification of human trophoblast membrane antigens in maternal blood during pregnancy. Clin. Exp. Immunol. 1982; 48(1): 279-87.

16. Chua S., Wilkins T., Sargent I., Redman C. Trophoblast deportation in preeclamptic pregnancy. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1991; 98(10): 973-9.

17. Gupta A., Hasler P., Gebhardt S., Holzgreve W., Hahn S. Occurrence of neutrophil extracellular DNA traps (NETs) in pre-eclampsia: a link with elevated levels of cell-free DNA? Ann. N. Y. Acad. Sci. 2006; 1075: 118-22.

18. Johansen M., Redman C.W., Wilkins T., Sargent I.L. Trophoblast deportation in human pregnancy – its relevance for pre-eclampsia. Placenta. 1999; 20(7): 531-9.

19. Hawes C.S., Suskin H.A., Petropoulos A., Latham S.E., Mueller U.W. A morphologic study of trophoblast isolated from peripheral blood of pregnant women. Am. J. Obstet. Gynecol. 1994; 170(5, Pt 1): 1297-300.

20. Lo Y.M., Leung T.N., Tein M.S., Sargent I.L., Zhang J., Lau T.K. et al. Quantitative abnormalities of fetal DNA in maternal serum in preeclampsia. Clin. Chem. 1999; 45(2): 184-8.

21. Huppertz B., Kadyrov M., Kingdom J.P. Apoptosis and its role in the trophoblast. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 195(1): 29-39.

22. Ishihara N., Matsuo H., Murakoshi H., Laoag-Fernandez J.B., Samoto T., Maruo T. Increased apoptosis in the syncytiotrophoblast in human term placentas complicated by either preeclampsia or intrauterine growth retardation. Am. J. Obstet. Gynecol. 2002; 186(1): 158-66.

23. Pantham P., Askelund K.J., Chamley L.W. Trophoblast deportation part II: a review of the maternal consequences of trophoblast deportation. Placenta. 2011; 32(10): 724-31.

24. Billingham R.E., Sparrow E.M. The effect of prior intravenous injections of dissociated epidermal cells and blood on the survival of skin homografts in rabbits. J. Embryol. Exp. Morphol. 1955; 3(3): 265-85.

25. Prokopyuk V.Yu., Prokopyuk O.S., Musatova I.B., Shevchenko N.A., Roenko A.A., Terehova E.A., Volina V.V. Evaluation of the safety of placental explants, umbilical cord and membranes after cryopreservation. 2015; 3(1): 34-8. (in Russian)

26. Tedeschi L.G., Tedeschi C.G. Experimental trophoblastic embolism and hyperplasminemia. Arch. Pathol. 1963; 76: 387-97.

27. Schumacher A., Costa S.D., Zenclussen A.C. Endocrine factors modulating immune responses in pregnancy. Front. Immunol. 2014; 5: 196.

28. Chamley L.W., Chen Q., Ding J., Stone P.R., Abumaree M. Trophoblast deportation: just a waste disposal system or antigen sharing? J. Reprod. Immunol. 2011; 88(2): 99-105.

29. Abumaree M.H., Stone P.R., Chamley L.W. The effects of apoptotic, deported human placental trophoblast on macrophages: possible consequences for pregnancy. J. Reprod. Immunol. 2006; 72(1-2): 33-45.

30. Mincheva-Nilsson L., Baranov V. Placenta-derived exosomes and syncytiotrophoblast microparticles and their role in human reproduction: immune modulation for pregnancy success. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(5): 440-57.

31. Prokopyuk O.S., Shevchenko N.O., Prokopyuk V.Yu., Chub O.V., Terehova O.O. The impact of cryopreserved biological objects placental origin in cell culture. Bulletin problems of biology and medicine. 2015; 122 (1): 160-4. (in Ukrainian)

32. Park W.W. Experimental trophoblastic embolism of the lungs. J. Pathol. Bacteriol. 1958; 75(2): 257-65.

33. Lau S., Guild S.J., Barrett C.J., Malpas S.C., Chamley L. Injection of necrotic trophoblastic cells increased blood pressure in the final third of gestation in rats. Placenta. 2010; 31(9): A137.

34. Goltsev A.N. Yurchenko T.N., ed. Placenta: cryopreservation, clinical application. Kharkiv: SPD FL Brovin A.V.; 2012. 318p. (in Russian)

35. Pipino C., Shangaris P., Resca E., Zia S., Deprest J., Sebire N.J. et al. Placenta as a reservoir of stem cells: an underutilized resource? Br. Med. Bull. 2013; 105: 43-68.

36. Thirumala S., Goebel W.S., Woods E.J. Clinical grade adult stem cell banking. Organogenesis. 2009; 5(3): 143-54.

37. Pogozhykh D., Prokopyuk V., Pogozhykh O., Mueller T., Prokopyuk O. Influence of factors of cryopreservation and hypothermic storage on survival and functional parameters of multipotent stromal cells of placental origin. PLoS One. 2015 Oct 2; 10 (10).

38. Astrelina T.A., Gomzyakov A.E., Kobzeeva I.V., Karpova E.E., Kruglova Ya.A., Skorobagatova E.V. et al. Evaluation of the quality and safety of cryopreserved human multipotent mesenchymal stromal cells of the placenta in clinical practice. Kletochnaya transplantologiya i tkanevaya inzheneriya. 2013; 8(4): 82-6. (in Russian)

39. Melmed G.Y., Pandak W.M., Casey K., Abraham B., Valentine J., Schwartz D. et al. Human placenta-derived cells (PDA-001) for the treatment of moderate-to-severe crohn's disease: a phase 1b/2a study. Inflamm. Bowel Dis. 2015; 21(8): 1809-16.

40. Liu W., Morschauser A., Zhang X., Lu X., Gleason J., He S. et al. Human placenta-derived adherent cells induce tolerogenic immune responses. Clin. Transl. Immunology. 2014; 3(5): e14.

41. Trifonov V.Yu., Prokopyuk V.Yu., Prokopyuk O.S., Lipina O.V., Volina V.V., Zub L.I., Falko O.V., Prokopyuk A.V. Experimental study opportunities pregravid prevention of antiphospholipid syndrome. Tavricheskiy mediko-biologicheskiy vestnik. 2010; 13(4): 188-92. (in Russian)

42. Pauker W.A., Shmakov R.G. Cancer and pregnancy. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2013; 11: 5-10. (in Russian)

43. Ross C.A. The trophoblast model of cancer. Nutr. Cancer. 2015; 67(1): 61-7.

44. Zhang S., Yuan J., Li W., Ye Q. Organ transplantation from donors (cadaveric or living) with a history of malignancy: review of the literature. Transplant. Rev. (Orlando). 2014; 28(4): 169-75.

45. Dhanda S., Ramani S., Thakur M. Gestational trophoblastic disease: a multimodality imaging approach with impact on diagnosis and management. Radiol. Res. Pract. 2014; 2014: 842751.

46. Zhang D., Zheng L., Shi H., Chen X., Wan Y., Zhang H. et al. Suppression of peritoneal tumorigenesis by placenta-derived mesenchymal stem cells expressing endostatin on colorectal cancer. Int. J. Med. Sci. 2014; 11(9): 870-9.

47. Dhallan R., Au W.C., Mattagajasingh S., Emche S., Bayliss P., Damewood M. et al. Methods to increase the percentage of free fetal DNA recovered from the maternal circulation. JAMA. 2004; 291(9): 1114-9.

48. Legler T.J., Liu Z., Mavrou A., Finning K., Hromadnikova I., Galbiati S. et al. Workshop report on the extraction of foetal DNA from maternal plasma. Prenat. Diagn. 2007; 27(9): 824-9.

49. Benn P., Curnow K.J., Chapman S., Michalopoulos S.N., Hornberger J., Rabinowitz M. An economic analysis of cell-free DNA non-invasive prenatal testing in the US general pregnancy population. PLoS One. 2015; 10(7): 0132313.

50. Walker B.S., Nelson R.E., Jackson B.R., Grenache D.G., Ashwood E.R., Schmidt R.L. A cost-effectiveness analysis of first trimester non-invasive prenatal screening for fetal trisomies in the United States. PLoS One. 2015; 10(7): 0131402.

Received 24.08.2015
Accepted 02.10.2015

About the Authors

Prokopiuk Volodimir Yurievich, PhD, senior researcher, Institute for Problems of Cryobiology and Cryomedicine of the National Academy of Sciences of Ukraine, Department of Low Temperature Bank of Biological Objects. 61015, Ukraine, Kharkov, Pereyaslavskaya str. 23. Tel.: +380506159027, +380573735953. E-mail: prokopyuk@mail.ru, cryo@online.kharkov.ua

For citations: Prokopyuk V.Yu. Extraplacental trophoblast structures: Study, structure, functions, properties, diagnostic and therapeutic value. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2016; (2): 49-54. (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.2.49-54

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.