The role of NOD1 and NOD2 receptors in recognizing pathogens in the female reproductive tract

Lebedeva O.P.

1) Belgorod State National Research University, Belgorod, Russia; 2) Voronezh State University, Voronezh, Russia
NOD1 and NOD2 receptors belong to the NOD-like receptor (NLR) family. They are cellular cytosolic innate immune receptors that recognize the components of bacterial peptidoglycan and viral RNA. NOD1 and NOD2 are expressed in all organs of the female reproductive tract, with their maximum expression observed in the fallopian tubes. The endometrial expression of NOD1 mRNA does not depend on the phase of the menstrual cycle, while the expression of NOD2 is maximal in the late secretory phase. NOD1 and NOD2 are able to recognize a number of opportunistic and pathogenic bacteria, viruses, and protozoa. Some microorganisms (Listeria monocytogenes, Neisseria gonorrhoeae) have mechanisms to avoid recognition, which ensures their long-term intracellular persistence.

Keywords

innate immunity
NOD-like receptors
NOD1
NOD2
estradiol
progesterone
sexually transmitted infections

Уникальность женского репродуктивного тракта заключается в его способности одновременно выполнять функцию защиты от патогенов и обеспечивать иммунологическую толерантность к сперматозоидам и наполовину чужеродному плоду [1].

Система врожденного иммунитета, которая является первой линией иммунной защиты, осуществляет распознавание патогенных микроорганизмов с помощью сигнальных рецепторов. Роль Толл-подобных рецепторов в патогенезе репродуктивных осложнений наиболее изучена [2]. Однако недавно были открыты и другие группы сигнальных рецепторов, среди которых наибольший интерес представляют NOD-подобные рецепторы.

NOD-подобные рецепторы (NOD-like receptors, NLRs) – это семейство рецепторов, состоящее из 23 структурно родственных белков [3], играющих важную роль в индукции иммунного ответа и апоптоза, а также в процессе развития зиготы [4].

NLRs разделяют на группы в зависимости от их структуры и биологических функций в организме человека.

К группе рецепторов, играющих роль в процессах репродукции, относят NLRP 2, 4, 5, 8, 9, 11, 13 и 14 [5]. Показана их важная роль в развитии зиготы на стадии морулы, в патогенезе трофобластической болезни и болезней геномного импринтинга (синдрома Беквита-Видемана и Сильвера-Рассела) [4, 5].

Большая группа NLRs индуцирует воспалительный ответ. NLRP1, NLRC4 и NLRP3 участвуют в образовании инфламмасом [6, 7]. Функции NLRP6, NLRP7 и NLRP12 изучены недостаточно хорошо, однако предполагают, что они способны играть роль в образовании инфламмасом, а также ингибировать NF-kB-зависимую продукцию цитокинов [8–10].

Рецепторы NOD1 и NOD2 не участвуют в образовании инфламмасом, но при связывании с пептидогликаном бактерий и вирусной РНК индуцируют выработку провоспалительных цитокинов, интерферонов, а также активируют процессы аутофагии [5]. Данные рецепторы представлены во всех отделах женского репродуктивного тракта.

Рецепторы NOD1 и NOD2. Рецепторы NOD1 (синонимы: NLRC1, CARD4) и NOD2 (синонимы: NLRC2, CARD15), как и остальные члены семейства NLRs, являются цитоплазменными рецепторами системы врожденного иммунитета [11]. Есть данные, что NOD1 и NOD2 могут перемещаться на клеточную мембрану, к месту бактериальной инвазии [12]. NOD1 экспрессируется, как гемопоэтическими, так и негемопоэтическими клетками, NOD2 – гемопоэтичскими и некоторыми эпителиальными клетками [13, 14].

Активация NOD1 происходит при связывании c диаминопимелиновой кислотой (iE-DAP), являющейся частью пептидогликана всех грамотрицательных и некоторых грамположительных бактерий. NOD2 связывается c мурамилпептидом, который является основной структурной единицей пептидогликана и входит в состав клеточной стенки, как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий [12].

Основные сигнальные пути рецепторов NOD1 и NOD2 представлены на рисунке.

Связывание NOD1 и NOD2 c компонентами пептидогликана приводит к выработке антимикробных пептидов, провоспалительных цитокинов и хемокинов [13].

NOD1 и NOD2 способны распознавать вирусную РНК, что приводит к стимуляции выработки интерферона (IFN)-β. Кроме того, NOD2 активирует РНКазу L, что приводит к деградации вирусной РНК [15].

NOD1 и NOD2 участвуют также в процессах аутофагии. Аутофагия представляет собой процесс элиминации из клетки поврежденных органелл и белков. Этот процесс заключается в формировании аутофагосомы вокруг элиминируемой структуры, ее слиянии c лизосомой и деградации содержимого с последующим высвобождением молекул в цитоплазму клетки. Аутофагия также критически важна для элиминации бактерий, вирусов и простейших [16].

Экспрессия NOD1 и NOD2 в женском репродуктивном тракте и ее гормональная регуляция. Экспрессия NOD1, NOD2 и белка их сигнального пути RIP-2 на уровне мРНК была выявлена в маточных трубах, эндометрии, эндо- и экзоцервиксе [17]. При этом максимальная экспрессия мРНК NOD1 и NOD2 определялась в маточных трубах [18]. Сниженная экспрессия NOD1 и NOD2 в нижних отделах репродуктивного тракта, по-видимому, призвана обеспечить толерантность к присутствующей там нормальной микрофлоре, в то время как основной функцией маточных труб является поддержание стерильности и обеспечение сохранности гамет, а затем – и зиготы.

Экспрессия NOD1 и NOD2 на уровне белка была выявлена методом иммуногистохимического анализа в железистом эпителии эндометрия, эндотелии и клетках стромы. Различий в локализации данных рецепторов в зависимости от фазы менструального цикла выявлено не было. Экспрессия NOD1 и NOD2 на уровне белка также была выявлена в I триместре беременности в децидуализированной строме и железистом эпителии [19], а также, наряду c RIP-2, в клетках цито- и синцитиотрофобласта [20].

Было также установлено, что NOD1 и NOD2 во всех отделах женской репродуктивной системы были функционально активны, а при стимуляции соответствующими компонентами пептидогликана (iE-DAP, мурамилпептидом) продуцировали провоспалительные цитокины [17, 19]. Активация NOD2 мурамилпептидом в клетках трофобласта в I триместре беременности также приводила к активации синтеза провоспалительных цитокинов [20].

Было выявлено, что в культуре клеток стимуляция эпителиоцитов полицитидиловой кислотой (poly (I:С)), являющейся аналогом двухцепочечной вирусной РНК, приводила к увеличению экспрессии мРНК NOD2 и в меньшей степени – NOD1, а также к увеличению синтеза интерлейкина (IL) -8 [18].

Влияние половых гормонов на экспрессию мРНК NOD1 и NOD2 было изучено in vitro и in vivo. Было установлено, что добавление эстрадиола в культуру эпителиальных клеток маточных труб, эндометрия и цервикального канала не влияло на экспрессию мРНК NOD1 и NOD2 [18]. У пациенток репродуктивного возраста экспрессия мРНК NOD1 в эндометрии не изменялась в течение всего менструального цикла и в первом триместре беременности, а также не имела достоверной корреляционной связи c уровнями эстрадиола и прогестерона в сыворотке крови. Экспрессия мРНК NOD2 была максимальной в позднюю секреторную фазу, по сравнению c другими фазами менструального цикла и I триместром беременности. Она имела отрицательную корреляционную связь c уровнем прогестерона в сыворотке крови, в то время как достоверной корреляции c уровнем сывороточного эстрадиола отмечено не было [19].

Роль NOD1 и NOD2 в распознавании патогенных микроорганизмов в женском репродуктивном тракте. Известно, что NOD1 и NOD2 вовлечены в распознавание целого ряда бактериальных и вирусных патогенов [21]. Так, в экспериментах in vivo была установлена их способность связываться c лигандами Clostridium difficile, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa и Citrobacter [22]. На модели мастита, вызванного Staphylococcus aureus, у крыс было выявлено увеличение экспрессии мРНК NOD2 [23].

В присутствии возбудителя листериоза Listeria monocytogenes происходит активация NOD2. При проникновении в клетку листерия также индуцирует NOD1-опосредованную аутофагию [24]. Однако листерия способна избегать связывания c NOD1, модифицируя структуру пептидогликана путем деацитилирования, что обусловливает ее длительную внутриклеточную персистенцию [25].

NOD1 и NOD2 способны распознавать компоненты пептидогликана Neisseria gonorrhoeae [26]. Известно, что пептидогликан гонококков способен вызывать гибель клеток реснитчатого эпителия маточных труб [27]. Однако гонококк c помощью собственных ферментов (литических транс-гликозилаз) способен расщеплять пептидогликан до небольших мономерных фрагментов, которые являются слабыми активаторами NOD2. Это позволяет Neisseria gonorrhoeae снижать интенсивность иммунного ответа [28]. Интересно, что в культуре эпителиальных клеток цервикального канала добавление убитого штамма Neisseria gonorrhoeae вызывает увеличение экспрессии NOD2 и индукцию выработки IL-8, в то время как в культуре эпителиальных клеток маточных труб увеличения экспрессии мРНК NOD2 и синтеза IL-8 не происходит. Авторы предполагают, что для активации NOD2 в эпителии маточных труб необходимо их связывание c компонентами пептидогликана живых гонококков [18]. Можно также предположить, что NOD2 в эпителиоцитах маточных труб имеет меньшее сродство к компонентам пептидогликана гонококков, по сравнению c эпителиоцитами цервикального канала.

Известно, что Mycoplasma spp. и Ureaplasma spp. не имеют клеточной стенки, содержащей пептидогликан и поэтому не распознаются NOD1 и NOD2 [29, 30]. Однако недавно было установлено, что хламидии способны синтезировать пептидогликан, в том числе его главный компонент – мурамилпептид [31].

Это позволило предположить, что NOD1 и NOD2 способны участвовать в их распознавании. В эпителиальных клетках и фибробластах in vitro рецептор NOD1 распознает Chlamydia trachomatis, что приводит к стимуляции продукции IL-6, IL-8, макрофагального воспалительного протеина (MIP)-2 и IFN-γ.

Однако in vivo на модели мышей было показано, что инфицирование Chlamydia trachomatis приводит к сниженной продукции провоспалительных цитокинов, по сравнению c Chlamydia pneumonia в легких. Возможно, это связано c недостаточным количеством пептидогликана в клеточной стенке Chlamydia trachomatis или различиями в связывании этих двух видов хламидий c NOD-подобными рецепторами [14, 32].

В большом клиническом исследовании, проведенном в Дании, было установлено, что пациентки c аллелем NOD1 +32656GG значительно реже страдали хламидийной инфекцией, чем пациентки, не имевшие данного аллеля. Для NOD2 аллеля c протективным действием выявлено не было. Однако в тех случаях, когда носительницы аллеля NOD1 +32656GG все-таки заражались хламидийной инфекцией, она сопровождалась выраженными симптомами и чаще приводила к спаечному процессу маточных труб. Авторы предполагают, что данный аллель приводит к функциональной неполноценности NOD1, что в конечном итоге способствует снижению NOD1-опосредованного синтеза IL-1β. Это, в свою очередь, приводит к стимуляции специфического CD4+ Т-клеточного ответа и элиминации Chlamydia trachomatis из репродуктивного тракта. Если же элиминировать патоген не удалось, то избыточный иммунный ответ будет способствовать развитию выраженной клинической симптоматики и увеличивает риск развития спаечного процесса [33].

В клетках трофобласта Chlamydia trachomatis способна стимулировать NOD1-опосредованный синтез провоспалительного цитокина IL-1β [34].

NOD1 и NOD2 не распознают вирус простого герпеса и папилломавирус, но способны распознавать двухцепочечную РНК цитомегаловируса [35, 36].

Так как женский репродуктивный тракт является входными воротами для вируса иммунодефицита человека (ВИЧ), была изучена роль NOD1 и NOD2 эпителиоцитов в его распознавании. В культуре эпителиальных клеток эндометрия добавление ВИЧ-1 IIIB (CXCR4/X4-тропный вирус) приводило к увеличению экспрессии мРНК NOD2, в то время как внесение в ту же культуру клеток CCR5/R5-тропного штамма ВИЧ-1 BAL не влияло на экспрессию мРНК NOD1 и NOD2. Так как CCR5/R5-тропный вирус ВИЧ-1 может проходить сквозь эпителиальные клетки путем трансцитоза, а CXCR4/X4-тропный вирус ВИЧ-1 способен реплицироваться в эпителиальных клетках, авторы предполагают, что эпителиоциты имеют механизмы для распознавания последнего и индукции иммунного ответа [18].

Известно, что NOD1 и NOD2 не распознают дрожжеподобные грибы рода Candida [37, 38]. Однако на модели мышей была показана роль NOD2 в распознавании возбудителя протозойной инфекции – Toxoplasma gondii, для которой характерна внутриклеточная персистенция. Было выявлено, что у нокаутированных по NOD2 мышей, зараженных токсоплазмой, происходит слабая дифференцировка CD4+ Т-лимфоцитов в Т-хелперы и снижение синтеза IL-2, что приводит к длительной персистенции патогена [39].

Заключение

Таким образом, NOD1 и NOD2 экспрессируются во всех органах женского репродуктивного тракта, при этом максимальная их экспрессия наблюдается в маточных трубах. Экспрессия мРНК NOD1 в эндометрии не зависит от фазы менструального цикла, в то время как экспрессия NOD2 максимальна в позднюю секреторную фазу.

NOD1 и NOD2 способны распознавать ряд условно-патогенных и патогенных бактерий, а также вирусов и простейших, персистирующих в женском репродуктивном тракте. Некоторые микроорганизмы (Listeria monocytogenes, Neisseria gonorrhoeae) имеют механизмы, позволяющие избежать распознавания, что обеспечивает их длительную внутриклеточную персистенцию.

Дальнейшие исследования сигнальных рецепторов врожденного иммунитета будут способствовать разработке мер профилактики и лечения инфекционно-воспалительных заболеваний женских половых путей.

References

1. Сухих Г.Т., Ванько Л.В. Иммунные факторы в этиологии и патогенезе осложнений беременности. Акушерство и гинекология. 2012; 1: 128-36. [Sukhikh G.T., Vanko L.V. Immune factors in the etiology and pathogenesis of pregnancy complications. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2012; 1: 128-136. (in Russian)]

2. Лебедева О.П., Кирко Р. Экспрессия Толл-подобных рецепторов в женском репродуктивном тракте и ее гормональная регуляция. Научные результаты биомедицинских исследований. 2018; 4(3): 50-65. [Lebedeva O.P., Qirko R. Expression of Toll-like receptors in the female reproductive tract and its hormone regulation. Research results in biomedicine. 2018; 3: 50-65 (in Russian)] https://dx.doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-3-0-1.

3. Гариб Ф.Ю., Ризопулу А.П. Инфламмасомы и воспаление. Российский иммунологический журнал. 2017; 11(4): 620-6. [Garib F.Yu., Rizopulu A.P. Inflammasomes and inflammation. Russian Journal of Immunology. 2017; 11(4): 620-626 (in Russian)]

4. Monk D., Sanchez-Delgado M., Fisher R. NLRPs, the subcortical maternal complex and genomic imprinting. Reproduction. 2017; 154(6): R161-70.

5. Van Gorp H., Kuchmiy A., Van Hauwermeiren F., Lamkanfi M. NOD‐like receptors interfacing the immune and reproductive systems. FEBS J. 2014; 281(20): 4568-82. https://dx.doi.org/10.1111/febs.13014.

6. Lamkanfi M., Dixit V.M. Inflammasomes and their roles in health and disease. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2012; 28: 137-61. https://dx.doi.org/10.1146/annurev-cellbio-101011-155745.

7. Lamkanfi M., Dixit V.M. Mechanisms and functions of inflammasomes. Cell. 2014; 157: 1013-22. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2014.04.007.

8. Elinav E., Strowig T., Kau A.L., Henao-Mejia J., Thaiss C.A., Booth C.J. et al. NLRP6 inflammasome regulates colonic microbial ecology and risk for colitis. Cell. 2011; 145(5): 745-57. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2011.04.022.

9. Vladimer G.I., Weng D., Paquette S.W., Vanaja S.K., Rathinam V.A., Aune M.H. et al. The NLRP12 inflammasome recognizes Yersinia pestis. Immunity. 2012; 37(1): 96-107. https://dx.doi.org/10.1016/j.immuni.2012.07.006.

10. Khare S., Dorfleutner A., Bryan N.B., Yun C., Radian A.D., de Almeida L. et al. An NLRP7-containing inflammasome mediates recognition of microbial lipopeptides in human macrophages. Immunity. 2012; 36(3): 464-76. https://dx.doi.org/10.1016/j.immuni.2012.02.001.

11. Hsu Y.M.S., Zhang Y., You Y., Wang D., Li H., Duramad O. et al. The adaptor protein CARD9 is required for innate immune responses to intracellular pathogens. Nat. Immunol. 2007; 8(2): 198-205. https://dx.doi.org/10.1038/ni1426.

12. Philpott D.J., Girardin S.E. Nod-like receptors: sentinels at host membranes. Curr. Opin. Immunol. 2010; 22(4): 428-34. https://dx.doi.org/10.1016/j.coi.2010.04.010.

13. Saxena M., Yeretssian G. NOD-like receptors: master regulators of inflammation and cancer. Front. Immunol. 2014: 5; 327. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2014.00327.

14. Zou Y., Lei W., He Z., Li Z. The role of NOD1 and NOD2 in host defense against chlamydial infection. FEMS Microbiol. Lett. 2016; 363(17): pii: fnw170. https://dx.doi.org/10.1093/femsle/fnw170.

15. Lupfer C., Kanneganti T.D. Unsolved mysteries in NLR biology. Front. Immunol. 2013; 4: 285. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2013.00285.

16. Deretic V., Levine B. Autophagy, immunity, and microbial adaptations. Cell Host Microbe. 2009; 5(6): 527-49. https://dx.doi.org/10.1016/j.chom.2009.05.016.

17. Hart K.M., Murphy A.J., Barrett K.T., Wira C.R., Guyre P.M., Pioli P.A. Functional expression of pattern recognition receptors in tissues of the human female reproductive tract. J. Reprod. Immunol. 2009; 80(1-2): 33-40. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2008.12.004.

18. Ghosh M., Shen Z., Fahey J.V., Crist S.G., Patel M., Smith J.M. et al. Pathogen recognition in the human female reproductive tract: expression of intracellular cytosolic sensors NOD1, NOD2, RIG-1, and MDA5 and response to HIV-1 and Neisseria gonorrhea. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 69: 41-51. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12019.

19. King A.E., Horne A.W., Hombach-Klonisch S., Mason J.I., Critchley H.O. Differential expression and regulation of nuclear oligomerization domain proteins NOD1 and NOD2 in human endometrium: a potential role in innate immune protection and menstruation. Mol. Hum. Reprod. 2009; 15: 311-9. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gap020.

20. Costello M.J., Joyce S.K., Abrahams V.M. NOD protein expression and function in first trimester trophoblast cells. Am. J. Reprod. Immunol. 2007; 57(1): 67-80. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2006.00447.x.

21. Domínguez-Martínez D.A., Núñez-Avellaneda D., Castañón-Sánchez C.A., Salazar M.I. NOD2: activation during bacterial and viral infections, polymorphisms and potential as therapeutic target. Rev. Invest. Clín. 2018; 70(1): 18-28. https://dx.doi.org/10.24875/RIC.17002327.

22. Moreira L., Zamboni D.S. NOD1 and NOD2 signaling in infection and inflammation. Front. Immunol. 2012; 3: 328. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2012.00328.

23. Wang H., Yu G., Yu H., Gu M., Zhang J., Meng X. et al. Characterization of TLR2, NOD2, and related cytokines in mammary glands infected by Staphylococcus aureus in a rat model. Acta Vet. Scand. 2015; 57: 25. https://dx.doi.org/10.1186/s13028-015-0116-0.

24. Ogawa M., Yoshikawa Y., Mimuro H., Hain T., Chakraborty T., Sasakawa C. Autophagy targeting of Listeria monocytogenes and the bacterial countermeasure. Autophagy. 2011; 7(3): 310-4.

25. Boneca I.G., Dussurget O., Cabanes D., Nahori M.A., Sousa S., Lecuit M. et al. A critical role for peptidoglycan N-deacetylation in Listeria evasion from the host innate immune system. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007; 104(3): 997-1002. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.0609672104.

26. Stevens J.S., Criss A.K. Pathogenesis of Neisseria gonorrhoeae in the female reproductive tract: neutrophilic host response, sustained infection, and clinical sequelae. Curr. Opin. Hematol. 2018; 25(1): 13-21. https://dx.doi.org/10.1097/MOH.0000000000000394.

27. Chan J.M., Dillard J.P. Attention seeker: production, modification, and release of inflammatory peptidoglycan fragments in Neisseria. J. Bacteriol. 2017; 199(20). pii: e00354-17. https://dx.doi.org/10.1128/JB.00354-17.

28. Knilans K.J., Hackett K.T., Anderson J.E., Weng C., Dillard J.P., Duncan J. A. Neisseria gonorrhoeae lytic transglycosylases LtgA and LtgD reduce host innate immune signaling through TLR2 and NOD2. ACS Infect. Dis. 2017; 3(9): 624-33. https://dx.doi.org/10.1021/acsinfecdis.6b00088.

29. Girardin S.E., Hugot J.P., Sansonetti P.J. Lessons from Nod2 studies: towards a link between Crohn's disease and bacterial sensing. Trends Immunol. 2003; 24(12): 652-8.

30. Kallapur S.G., Kramer B.W., Jobe A.H. Ureaplasma and BPD. Semin. Perinatol. 2013; 37(2): 94-101. https://dx.doi.org/10.1053/j.semperi.2013.01.005.

31. Packiam M., Weinrick B., Jacobs W.R. Jr., Maurelli A.T. Structural characterization of muropeptides from Chlamydia trachomatis peptidoglycan by mass spectrometry resolves “chlamydial anomaly”. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015; 112: 11660-5. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1514026112.

32. Welter-Stahl L., Ojcius D.M., Viala J., Girardin S., Liu W., Delarbre C. et al. Stimulation of the cytosolic receptor for peptidoglycan, Nod1, by infection with Chlamydia trachomatis or Chlamydia muridarum. Cell. Microbiol. 2006; 8(6): 1047-57. https://dx.doi.org/10.1111/j.1462-5822.2006.00686.x.

33. Brankovic I., van Ess E.F., Noz M.P., Wiericx W.A.J., Spaargaren J., Morre S.A. et al. NOD1 in contrast to NOD2 functional polymorphism influence Chlamydia trachomatis infection and the risk of tubal factor infertility. Pathog. Dis. 2015; 73: 1-9. https://dx.doi.org/10.1093/femspd/ftu028.

34. Kavathas P.B., Boeras C.M., Mulla M.J., Abrahams V.M. Nod1, but not the ASC inflammasome, contributes to induction of IL-1β secretion in human trophoblasts after sensing of Chlamydia trachomatis. Mucosal Immunol. 2013; 6(2): 235-43. https://dx.doi.org/10.1038/mi.2012.63.

35. Fan Y.H., Roy S., Mukhopadhyay R., Kapoor A., Duggal P., Wojcik G.L. et al. Role of nucleotide-binding oligomerization domain 1 (NOD1) and its variants in human cytomegalovirus control in vitro and in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. 2016; 113(48): E7818-27. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1611711113.

36. Kapoor A., Fan Y.H., Arav-Boger R. Bacterial muramyl dipeptide (MDP) restricts human cytomegalovirus replication via an IFN-β-dependent pathway. Sci. Rep. 2016; 6: 20295. https://dx.doi.org/10.1038/srep20295.

37. van der Graaf C.A., Netea M.G., Franke B., Girardin S.E., van der Meer J.W., Kullberg B.J. Nucleotide oligomerization domain 2 (Nod2) is not involved in the pattern recognition of Candida albicans. Clin. Vaccine Immunol. 2006; 13(3): 423-5. https://dx.doi.org/10.1128/CVI.13.3.423-425.2006.

38. Gow N.A.R., van de Veerdonk F.L., Brown A.J.P., Netea M.G. Candida albicans morphogenesis and host defence: discriminating invasion from colonization. Nat. Rev. Microbiol. 2011; 10(2): 112;22. https://dx.doi.org/10.1038/nrmicro2711.

39. Shaw M.H., Reimer T., Sánchez-Valdepeñas C., Warner N., Kim Y.G., Fresno M., Nuñez G. T cell–intrinsic role of Nod2 in promoting type 1 immunity to Toxoplasma gondii. Nat. Immunol. 2009; 10(12): 1267-74. https://dx.doi.org/10.1038/ni.1816.

Received 02.11.2018

Accepted 07.12.2018

About the Authors

Lebedeva, Olga P., MD, associate professor, professor of the Department of Obstetrics and Gynaecolgy of Belgorod State National Research University.
308015, Russia, Belgorod, Pobedi str., 85; senior researcher of the Department of Genetics, Cytology and Bioengineering of Voronezh State University.
394018, Russia, Voronezh, Universitetskaya pl., 1. Tel.: +74722268591. E-mail: safonova2@yandex.ru ORCID 0000-0002-7188-6780

For citations: Lebedeva O.P. The role of NOD1 and NOD2 receptors in recognizing pathogens in the female reproductive tract. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2019; (5): 25-9. (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.5.25-29

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.