Initiation of labor activity as a multifactor mechanism of communication between maternal and fetal compartments

Gaidarova A.R., Gusar V.A., Baev O.R.

1) Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation, Moscow, Russia; 2) I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University), Moscow, Russia
The timely spontaneous onset of labor is a coordinated process of interaction between the maternal and fetal organisms. The initiation of this process is contributed by various mechanisms, including the secretion of proinflammatory cytokines and chemokines with subsequent activation of the nuclear transcription factor NF-kB, the decreased progesterone receptor function, mechanical uterine distension that promotes the expression of monocyte chemotactic protein-1. The participation of the fetus itself that secretes signaling molecules (SP-A and PAF, corticotropin-releasing hormone, and endothelin-1) from the maturing organs and systems into the amniotic fluid is unquestionable in the induction of labor. The physiological aging of fetal membranes is also one of the triggering stimuli for normal labor, as a result of which there is sterile inflammation that triggers a cascade of events that promote the initiation of labor. The role of small noncoding RNA molecules, microRNAs (miR-200, miR-199a-3p, miR-214, miR-181, miR-143, miR-34b/c, and miR-338) in the control of myometrial relaxation and contractility during pregnancy and childbirth through the regulation of the expression of certain genes and the function of the progesterone receptor has been discussed recently.
Conclusion: Thus, a complex multifactorial process that is finely tuned and coordinated by a multitude of signaling molecules secreted by the maternal and fetal organisms leads to the increased contractility of the myometrium and to the initiation of labor activity.

Keywords

labor induction
progesterone
fetal membrane aging
miRNA
exosomes

Процесс родовой деятельности инициируется созреванием органов и систем плода в промежутке между 37 и 40 неделями неосложненной беременности. В целом, самопроизвольное своевременное начало родов – это состояние физиологического воспаления, обусловленное взаимодействием гормональных и механических факторов и координируемое посредством фето-плацентарной коммуникации [1].

Традиционные теории передачи сигналов об инициации родов связаны с эндокринными и иммунологическими изменениями со стороны плода, которые коррелируют с его ростом и развитием [2]. Дисбаланс, вызванный этими изменениями, может привести к воспалительной нагрузке, которая нарушает поддержание беременности [3]. Помимо плода, плодные оболочки и плацента способствуют инициации сигналов, приводящих к началу родов. Рядом авторов было описано, что старение плаценты и плодных оболочек вызывает «стерильное воспаление», которое также может увеличивать воспалительную нагрузку в миометрии и служить триггером родов [4].

Коммуникация между плодом и матерью, осуществляемая с участием внеклеточных везикул, в частности, экзосом, имеет фундаментальное значение для беременности [5]. Экзосомы являются межклеточными медиаторами сигналов и несут определенный молекулярный груз, включая различные биоактивные молекулы (белки, липиды, РНК), которые доставляются в клетки-мишени для последующей регуляции биологических функций [6].

В составе экзосом находятся также малые некодирующие молекулы – микроРНК (мкРНК) – эпигенетические модуляторы значительного числа биологических процессов [7]. В ряде исследований было продемонстрировано, что изменения экспрессии тканевых и циркулирующих материнских мкРНК могут отражать метаболическое состояние матери и использоваться в качестве биомаркеров осложнений беременности, таких как преэклампсия, гестационный сахарный диабет, задержка роста плода [8–10]. Кроме того, определена роль мкРНК в регуляции сократимости миометрия во время родов [11].

Известно, что экзосомы преодолевают гематоэнцефалический барьер, проникая через несколько слоев клеток [12]. Данное открытие может указывать на их непосредственное перемещение во время беременности от матери к плоду, и наоборот, что может свидетельствовать о существовании пока не изученных механизмов фето-материнской коммуникации.

В данном обзоре будут рассмотрены механизмы инициации родовой деятельности, в частности, воспалительная реакция в миометрии, механическое растяжение матки, передача сигналов от плода, старение плодных оболочек, а также роль мкРНК в их реализации.

Воспалительная реакция в миометрии – триггер родовой деятельности

Воспалительная реакция обычно связана с инфильтрацией лейкоцитами и продукцией цитокинов, которые модулируют функцию клеток через изменение экспрессии генов. Это тщательно скоординированный процесс, предназначенный для защиты организма от инфекции [13]. Однако, воспаление может быть вызвано воздействием других агентов, включая химические вещества и поврежденные клетки.

Воспаление, развивающееся в миометрии на доношенном сроке беременности играет физиологическую роль, которая заключается в переводе рефрактерного миометрия в состояние сократимости [14], запускает цепочку молекулярных событий, ведущих к снижению функции рецепторов прогестерона [15].

Воспалительная реакция характеризуется увеличением уровня провоспалительных цитокинов в амниотической жидкости и инвазией макрофагами/нейтрофилами плодных оболочек, шейки матки и миометрия [16]. Секреция провоспалительных цитокинов и хемокинов инвазирующими иммунными клетками [17] вызывает активацию ядерного транскрипционного фактора NF-kB, а также других факторов транскрипции, связанных с воспалением, в частности, AP-1 (активирующий белок-1) [18,19]. NF-kB является универсальным фактором транскрипции, который контролирует экспрессию генов иммунного ответа, апоптоза и клеточного цикла. В свою очередь, активированные факторы транскрипции способствуют повышенной экспрессии в миометрии генов провоспалительных цитокинов, таких как интерлейкин (IL)-1β, IL-8, а также коннексина-43 (CX43/GJA1), рецептора окситоцина (OXTR) и циклооксигеназы 2 (COX-2/PTGS2), что в итоге приводит к родам. Кроме того, NF-kB, активируя провоспалительные гены, способствует снижению функции прогестеронового рецептора (PR), что также запускает каскад событий, инициирующих родовую деятельность [20].

Эстрогены вызывают приток макрофагов и нейтрофилов в матку, нейтрализуя противовоспалительное действие прогестерона, действующего через PR [21]. Снижение функции PR может быть связано со следующими факторами: 1) снижение коактиваторов PR [22]; 2) повышенная экспрессия ингибирующих и усеченных форм PR [19]; 3) антагонистическое взаимодействие PR с фактором транскрипции NF-κB [23]; 4) усиление местного метаболизма прогестерона до неактивных продуктов [23]. Важно отметить, что повышенные уровни циркулирующего эстрадиола-17β и повышенная активность рецептора эстрогена-α к доношенному сроку беременности также способствуют каскаду провоспалительных событий, снижающих функцию PR и инициирующих начало родовой деятельности [24].

Механическое растяжение матки – триггер провоспалительных сигналов, ведущих к родовой деятельности

Растяжение матки, вызванное растущим плодом, является важным стимулом для начала родовой деятельности [25, 26]. В экспериментах на животных моделях была обнаружена повышенная экспрессия β-хемокина, моноцитарного хемотаксического протеина-1 (MCP-1), активирующего макрофаги, индукцию которого связывают с механическим растяжением матки [25]. Кроме того, показано, что экспрессия MCP-1 и инфильтрация макрофагами значительно увеличены в матке при индукции родов антагонистом прогестерона мифепристоном и ингибированы обработкой прогестином с целью задержки родов [25]. У женщин, вступивших в роды, повышена экспрессия MCP-1 в миометрии, по сравнению с женщинами без родовой деятельности [14].

Передача сигналов от созревающих органов и систем плода

На доношенном сроке беременности сигналы от плода, в частности, повышенная секреция липопротеинов сурфактанта, кортизола и эстрогена, вызывают усиление инвазии иммунных клеток в плодные оболочки и миометрий.

Сурфактантный белок (SP-A) является одной из сигнальных молекул, секретируемых плодом в амниотическую жидкость, который накапливается в повышенных количествах на поздних сроках беременности [27]. Было продемонстрировано, что продуцирование легкими плода SP-A и фактора активации тромбоцитов (PAF) приводит к увеличению их концентрации в околоплодных водах, что способствует высвобождению простагландинов из плодных оболочек и активации NF-kB в миометрии матери [28]. В результате этих паракринных эффектов повышается локальная экспрессия материнских генов, связанных с сокращением миометрия. То есть сигнал, исходящий от плода, способен изменять эндокринную ось матери, вызывая подавление прогестеронового влияния по мере приближения доношенного срока беременности и инициировать родовую деятельность [29].

Помимо SP-A и PAF, продуцируемых легкими, в качестве сигналов -активаторов воспалительных каскадов рассматриваются молекулы, связанные с созреванием других органов и систем плода, в частности, кортикотропин рилизинг-гормон, эндотелин-1, эпидермальный фактор роста (EGF), трансформирующий фактор роста (TGF), коактиваторы стероидных рецепторов 1 и 2, которые высвобождаются в амниотическую жидкость [30].

Физиологическое старение плодных оболочек

Согласно данным Menon R., главным пусковым стимулом нормальных родов является физиологическое старение плодных оболочек, что на доношенном сроке беременности рассматривается, как физиологическая реакция на окислительный стресс, возникающий в результате повышенных метаболических потребностей созревающего плода [31].

Рост плодных оболочек во время беременности тесно связан с эмбриогенезом и ростом плода. Прогрессирующее по мере роста деление клеток плодных оболочек приводит к клеточному старению, зависимому от длины теломер – концевых участков хромосом и биологических маркеров старения [32]. С прогрессированием беременности уменьшение их длины в плодных оболочках обратно коррелирует с ростом плода и его созреванием [33]. Старение клетки часто ассоциируется со стерильным воспалением, которое относится к секреторному фенотипу, связанному со старением (Senescence-Associated Secretory Phenotype, SASP) [34]. Стареющие клетки оболочек плода выполняют свою конечную функцию, распространяя сигналы, активирующие децидуальный слой матки, что приводит к отмене влияния прогестерона и генерации воспалительных сигналов в миометрии, тем самым инициируя его сокращение и созревание шейки матки [35].

Помимо SASP, клеточное повреждение, связанное со старением, приводит к производству DAMP (Damage-Аssociated Molecular Patterns). DAMP являются производными эндогенных молекул, количество которых увеличивается после клеточного или окислительного стресса, повреждения тканей; DAMP стимулируют врожденный иммунитет и инициируют стерильное воспаление [36, 37]. DAMP в составе внеклеточных везикул, в частности, экзосом из стареющих плодных оболочек действуют, как сигналы, исходящие от созревающего плода, способствуя воспалению и увеличению воспалительной нагрузки в других внутриматочных компартментах, подготавливая их к родам. В число DAMP входят: белок из группы ядерных негистоновых белков HMGB1 (high-mobility group protein B1), мочевая кислота, белок S100 (семейство, состоящее из 25 членов), интерлейкин IL-33, гистон Н3, белок теплового шока (heat-shock protein, HSP 70), фрагменты теломер и внеклеточной ДНК плода из плодных оболочек [32]. Исследованиями Menon R. на плодных оболочках (клетки амниона и хориона) было показано, в частности, что HMGB1 и компоненты внеклеточной ДНК плода индуцируют старение фетальных клеток, опосредованное стресс-ассоциированной митоген-активированной киназой p38 (MAPK) для усиления воспалительной нагрузки в ткани плода, что, в свою очередь, может способствовать изменениям, связанным с родами [32]. Следует отметить, что в зависимости от модификаций и окислительно-восстановительного состояния, HMGB1, действуя через свои рецепторы, может, как активировать воспалительные каскады, так и оказывать влияние на секрецию противовоспалительных цитокинов [38]. p38 MAPK может вызывать функциональную отмену прогестерона в клетках миометрия, а DAMP, высвобождаемые из стареющих плодных оболочек, могут обеспечивать воспалительную среду, необходимую для активации p38 MAPK в миоцитах. Таким образом, стареющие оболочки плода высвобождают DAMP и SASP, которые в петле обратной связи могут увеличивать собственное повреждение, а также приводить к изменениям в миометрии, связанным с началом родовой деятельности [32] (рис. 1).

23-1.jpg (178 KB)

Экзосомальный сигналинг между матерью и плодом. Роль мкРНК в регуляции покоя и сократимости миометрия

Коммуникация между матерью и плодом осуществляется с участием внеклеточных везикул, в частности, экзосом. Последние содержат уникальный клеточно-специфический молекулярный груз донорской клетки, включая различные белки, РНК, липиды, а также мкРНК [39]. Последние являются малыми эндогенными некодирующими молекулами, длиной примерно 18–22 нуклеотида, которые регулируют экспрессию генов на посттранскрипционном уровне [7] и, что особенно важно, могут циркулировать во внеклеточных жидкостях в составе микровезикул, апоптотических телец, экзосом, выступая в роли медиаторов межклеточных взаимодействий и терапевтических мишеней при плаценто-ассоциированных осложнениях [40].

В последнее время активно изучается роль мкРНК в патогенезе осложнений, возникающих во время беременности, преждевременных и самопроизвольных родах. Кроме того, они рассматриваются в качестве важных регуляторов, принимающих участие в переходе миометрия из рефрактерного в состояние сократимости [11, 23, 41, 42]. В частности, во время инициации родовой деятельности в миометрии повышается экспрессия членов семейства miR-200 (miR-200b/200a/429, miR-141/200c), которые ингибируют соответствующие гены-мишени – транскрипционные факторы ZEB1 и ZEB2 [41]. При этом, высокие уровни прогестерона во время беременности поддерживают повышенную экспрессию ZEB1, что способствует подавлению экспрессии miR-200 [41]. Соответствующее снижение уровня прогестерона и функции PR к моменту наступления родов, а также увеличение активности циркулирующего эстрадиола и рецепторов эстрогенов-α вызывает подавление экспрессии ZEB1 и индукцию экспрессии семейства miR-200, дополнительно ингибирующего уровни ZEB1 и ZEB2, что приводит к активации генов, ответственных за сокращение миометрия, – OXTR и GJA1. Кроме того, miR-200a принимает участие в усилении местного метаболизма прогестерона до неактивных продуктов и в снижении функции PR в миометрии во время перехода к началу родовой деятельности [23].

Известно также, что miR-199a-3p и miR-214 принимают участие в поддержании состояния покоя миометрия путем подавления COX-2 и выработки сократительных простагландинов, поскольку COX-2 катализирует синтез простагландинов в амнионе, действуя как мощный активатор сократительной способности матки и последующего инициирования родовой деятельности [43]. Следует отметить, что ZEB1 способствует поддержанию покоя миометрия посредством подавления экспрессии семейства miR-200 [44] и усиления экспрессии miR-199a-3p/miR-214. Подавление экспрессии ZEB1 и снижение функции PR к доношенному сроку беременности вызвано повышенной активностью эстрогеновых рецепторов-α и усиленной воспалительной реакцией в миометрии. В свою очередь, это приводит к снижению экспрессии miR-199a/miR-214 и повышению COX-2, вызывая дальнейшее усиление воспалительной реакции и активацию родовой деятельности [11] (рис. 2).

24-1.jpg (140 KB)

Одним из ключевых семейств мкРНК, которому отводится важная роль в регуляции воспалительных реакций в различных типах клеток, является miR-181 (miR-181a, miR-181b, miR-181c и miR-181d) [45]. Предполагается, что повышенная продукция эстрогена может активировать ряд про­воспалительных механизмов в миометрии, частично опосредованных репрессией miR-181a. Снижение экспрессии miR-181a способствует повышению эстрогенового рецептора-α, который является ее непосредственной мишенью. На поздних сроках беременности, по мере увеличения уровня фактора некроза опухоли (TNF-α) и других провоспалительных цитокинов, активации генов раннего реагирования (c-Fos), которые, в свою очередь, также повышают экспрессию провоспалительных и сократительных генов, являющихся мишенями miR-181a, ее экспрессия значительно снижается [46] (рис. 3).

В исследованиях Li H. et al. была показана прямая зависимость между уровнем экспрессии эстрадиола, его ключевой мишени c-Fos, связанной с ним COX-2, и miR-144 в амнионе [47]. Низкий уровень эстрадиола до наступления доношенного срока бере­мен­ности приводит к подавлению экспрессии c-Fos, что, в свою очередь, способствует снижению экспрессии COX-2 и miR-144. Усиленный воспали­­­тель­ный ответ к сроку своевременных родов, вызванный сигналами как от плода, так и от матери, приводит к увеличению локального уровня эстрадиола, который индуцирует повышение экспрессии miR-144 и COX-2. При этом, с целью предотвращения преждевременных родов повышенная экспрессия miR-144 частично супрессирует COX-2, что способствует небольшому подавлению секреции простагландина E2 [47].

В ряде исследований, посвященных изучению молекулярных факторов инициации родовой деятельности, показана также роль других мкРНК, в частности, miR-143 [48], miR-34b/с, miR-338, что указывает на их потенциальное взаимодействие в гормональном контроле, регуляции покоя и сократимости миометрия во время беременности и родов [49].

Заключение

Таким образом, к повышению сократимости миометрия и инициации родовой деятельности ведет сложный многофакторный процесс, тонко настраиваемый и координируемый посредством множества сигнальных молекул, секретируемых организмами матери и плода.

References

  1. Shynlova O., Nadeem L., Zhang J., Dunk C., Lye S. Myometrial activation: Novel concepts underlying labor. Placenta. 2020; 92: 28-36. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2020.02.005.
  2. Mendelson C.R. Minireview: fetal-maternal hormonal signaling in pregnancy and labor. Mol. Endocrinol. 2009; 23(7): 947-54. https://dx.doi.org/10.1210/me.2009-0016.
  3. Challis J.R., Smith S.K. Fetal endocrine signals and preterm labor. Biol. Neonate. 2001; 79(3-4): 163-7. https://dx.doi.org/10.1159/000047085.
  4. Menon R., Debnath C., Lai A., Guanzon D., Bhatnagar S., Kshetrapal P.K. et al. Circulating exosomal miRNA profile during term and preterm birth pregnancies: A Longitudinal Study. Endocrinology. 2019; 160(2): 249-75. https://dx.doi.org/10.1210/en.2018-00836.
  5. Jin J., Menon R. Placental exosomes: A proxy to understand pregnancy complications. Am. J. Reprod. Immunol. 2018; 79(5): e12788. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12788.
  6. Cheng L., Sharples R.A., Scicluna B.J., Hill A.F. Exosomes provide a protective and enriched source of miRNA for biomarker profiling compared to intracellular and cell-free blood. J. Extracell. Vesicles. 2014 Mar 26; 3. https://dx.doi.org/10.3402/jev.v3.23743.
  7. Guarnieri D.J., DiLeone R.J. MicroRNAs: a new class of gene regulators. Ann. Med. 2008; 40(3): 197-208. https://dx.doi.org/10.1080/07853890701771823.
  8. Гусар В.А., Тимофеева А.В., Кан Н.Е.,Чаговец В.В., Ганичкина М.Б., Франкевич В.Е. Профиль экспрессии плацентарных микроРНК – регуляторов окислительного стресса при синдроме задержки роста плода. Акушерство и гинекология. 2019; 1: 74-80. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.1.74-80. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.1.74-80. [Gusar V.A., Timofeeva A.V., Kan N.E., Chagovets V.V., Ganichkina M.B., Frankevich V.E. The expression profile of placental microRNAs as regulators of oxidative stress in fetal growth restriction. Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and Gynecology. 2019; 1: 74-80. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.1.74-80.
  9. Gusar V., Ganichkina M., Chagovets V., Kan N., Sukhikh G. MiRNAs regulating oxidative stress: A correlation with Doppler sonography of uteroplacental complex and clinical state assessments of newborns in fetal growth restriction. J. Clin. Med. 2020; 9(10): 3227. https://dx.doi.org/10.3390/jcm9103227.
  10. Шелехин А.П., Баев О.Р., Красный А.М. Роль молекул клеточной адгезии в патогенезе преэклампсии. Акушерство и гинекология. 2021; 6: 22-8. [Shelekhin A.P., Baev O.R., Krasnyi A.M. The role of cell adhesion molecules in the pathogenesis of preeclampsia. Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and Gynecology. 2021; 6: 22-8. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.6.22-28.
  11. Williams K.C., Renthal N.E., Gerard R.D., Mendelson C.R.The microRNA (miR)-199a/214 cluster mediates opposing effects of progesterone and estrogen on uterine contractility during pregnancy and labor. Mol. Endocrinol. 2012; 26(11): 1857-67. https://dx.doi.org/10.1210/me.2012-1199.
  12. Alvarez-Erviti L., Seow Y, Yin H., Betts C., Lakhal S., Wood M.J. Delivery of siRNA to the mouse brain by systemic injection of targeted exosomes. Nat. Biotechnol. 2011; 29(4): 341-5. https://dx.doi.org/10.1038/nbt.1807.
  13. Martinon F., Mayor A., Tschopp J. The inflammasomes: guardians of the body. Annu. Rev. Immunol. 2009; 27: 229-65. https://dx.doi.org/10.1146/annurev.immunol.021908.132715.
  14. Sivarajasingam S.P., Imami N., Johnson M.R. Myometrial cytokines and their role in the onset of labour. J. Endocrinol. 2016; 231(3): R101-19. https://dx.doi.org/10.1530/JOE-16-0157.
  15. Renthal N.E., Williams K.C., Mendelson C.R. MicroRNAs--mediators of myometrial contractility during pregnancy and labour. Nat. Rev. Endocrinol. 2013; 9(7): 391-401. https://dx.doi.org/10.1038/nrendo.2013.96.
  16. Тысячный О.В., Павлова О.А., Вторушина В.В., Кречетова Л.В., Баев О.Р. Содержание цитокинов в периферической крови женщин в зависимости от фазы первого периода родов. Акушерство и гинекология. 2019; 2: 86-92. [Tysyachnyy O.V., Pavlova O.A., Vtorushina V.V., Krechetova L.V., Baev O.R. Peripheral blood cytokine levels in women according to the phase of the first period of labor. Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and Gynecology. 2019; 2: 86-92. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.2.86-92.
  17. Romero R., Espinoza J., Gonçalves L.F., Kusanovic J.P., Friel L., Hassan S. The role of inflammation and infection in preterm birth. Semin. Reprod. Med. 2007; 25(1): 21-39. https://dx.doi.org/10.1055/s-2006-956773.
  18. Montalbano A.P., Hawgood S., Mendelson C.R. Mice deficient in surfactant protein A (SP-A) and SP-D or in TLR2 manifest delayed parturition and decreased expression of inflammatory and contractile genes. Endocrinology. 2013; 154(1): 483-98. https://dx.doi.org/10.1210/en.2012-1797.
  19. Condon J.C., Hardy D.B., Kovaric K., Mendelson C.R. Up-regulation of the progesterone receptor (PR)-C isoform in laboring myometrium by activation of nuclear factor-kappaB may contribute to the onset of labor through inhibition of PR function. Mol. Endocrinol. 2006; 20(4): 764-75. https://dx.doi.org/10.1210/me.2005-0242.
  20. Mendelson C.R., Montalbano A.P., Gao L. Fetal-to-maternal signaling in the timing of birth. J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2017; 170: 19-27. https://dx.doi.org/10.1016/j.jsbmb.2016.09.006.
  21. Mesiano S., Chan E.C., Fitter J.T., Kwek K., Yeo G., Smith R. Progesterone withdrawal and estrogen activation in human parturition are coordinated by progesterone receptor A expression in the myometrium. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2002; 87(6): 2924-30. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.87.6.8609.
  22. Condon J.C., Jeyasuria P., Faust J.M., Wilson J.W., Mendelson C.R. A decline in the levels of progesterone receptor coactivators in the pregnant uterus at term may antagonize progesterone receptor function and contribute to the initiation of parturition. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003; 100(16): 9518-23. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1633616100.
  23. Williams K.C., Renthal N.E., Condon J.C., Gerard R.D., Mendelson C.R. MicroRNA-200a serves a key role in the decline of progesterone receptor function leading to term and preterm labor. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012; 109(19): 7529-34. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1200650109.
  24. Welsh T., Johnson M., Yi L, Tan H., Rahman R., Merlino A. et al. Estrogen receptor (ER) expression and function in the pregnant human myometrium: estradiol via ERα activates ERK1/2 signaling in term myometrium. J. Endocrinol. 2012; 212(2): 227-38. https://dx.doi.org/10.1530/JOE-11-0358.
  25. Shynlova O., Tsui P., Dorogin A., Lye S.J. Monocyte chemoattractant protein-1 (CCL-2) integrates mechanical and endocrine signals that mediate term and preterm labor. J. Immunol. 2008; 181(2): 1470-9. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.181.2.1470.
  26. Goldenberg R.L., Iams J.D., Miodovnik M., Van Dorsten J.P., Thurnau G., Bottoms S. et al. The preterm prediction study: risk factors in twin gestations. National Institute of Child Health and Human Development Maternal-Fetal Medicine Units Network. Am. J. Obstet. Gynecol. 1996; 175(4, Pt. 1): 1047-53. https://dx.doi.org/10.1016/s0002-9378(96)80051-2.
  27. Reinl E.L., England S.K. Fetal-to-maternal signaling to initiate parturition. J. Clin. Invest. 2015; 125(7): 2569-71. https://dx.doi.org/10.1172/JCI82576.
  28. Myatt L., Sun K. Role of fetal membranes in signaling of fetal maturation and parturition. Int. J. Dev. Biol. 2010; 54(2-3): 545-53. https://dx.doi.org/10.1387/ijdb.082771lm.
  29. Gao L., Rabbitt E.H., Condon J.C., Renthal N.E., Johnston J.M., Mitsche M.A. et al. Steroid receptor coactivators 1 and 2 mediate fetal-to-maternal signaling that initiates parturition. J. Clin. Invest. 2015; 125(7): 2808-24. https://dx.doi.org/10.1172/JCI78544.
  30. Vannuccini S., Bocchi C., Severi F.M., Challis J.R., Petraglia F. Endocrinology of human parturition. Ann. Endocrinol. (Paris). 2016; 77(2): 105-13. https://dx.doi.org/10.1016/j.ando.2016.04.025.
  31. Menon R., Bonney E.A., Condon J., Mesiano S., Taylor R.N. Novel concepts on pregnancy clocks and alarms: redundancy and synergy in human parturition. Hum. Reprod. Update. 2016; 22(5): 535-60. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmw022.
  32. Menon R. Human fetal membranes at term: Dead tissue or signalers of parturition? Placenta. 2016; 44: 1-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2016.05.013.
  33. Menon R. Initiation of human parturition: signaling from senescent fetal tissues via extracellular vesicle mediated paracrine mechanism. Obstet. Gynecol. Sci. 2019; 62(4): 199-211. https://dx.doi.org/10.5468/ogs.2019.62.4.199.
  34. Polettini J., Richardson L.S., Menon R. Oxidative stress induces senescence and sterile inflammation in murine amniotic cavity. Placenta. 2018; 63: 26-31. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2018.01.009.
  35. Menon R., Behnia F., Polettini J., Saade G.R., Campisi J., Velarde M. Placental membrane aging and HMGB1 signaling associated with human parturition. Aging (Albany. NY). 2016; 8(2): 216-30. https://dx.doi.org/10.18632/aging.100891.
  36. Davalos A.R., Kawahara M., Malhotra G.K., Schaum N., Huang J., Ved U. et al. p53-dependent release of Alarmin HMGB1 is a central mediator of senescent phenotypes. J. Cell Biol. 2013; 201(4): 613-29. https://dx.doi.org/10.1083/jcb.201206006.
  37. Fleshner M., Crane C.R. Exosomes, DAMPs and miRNA: features of stress physiology and immune homeostasis. Trends Immunol. 2017; 38(10): 768-76. https://dx.doi.org/10.1016/j.it.2017.08.002.
  38. Chikhirzhina E, Starkova T., Beljajev A., Polyanichko A., Tomilin A. Functional diversity of non-histone chromosomal protein HmgB1. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(21): 7948. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21217948.
  39. Salomon C., Nuzhat Z., Dixon C.L., Menon R. Placental exosomes during gestation: liquid biopsies carrying signals for the regulation of human parturition. Curr. Pharm. Des. 2018; 24(9): 974-82. https://dx.doi.org/10.2174/1381612824666180125164429.
  40. Tang Y., Ji H., Liu H., Gu W., Li X., Peng T. Identification and functional analysis of microRNA in myometrium tissue from spontaneous preterm labor. Int. J. Clin. Exp. Pathol. 2015; 8(10): 12811-9.
  41. Renthal N.E., Chen C.C., Williams K.C., Gerard R.D., Prange-Kiel J., Mendelson C.R. miR-200 family and targets, ZEB1 and ZEB2, modulate uterine quiescence and contractility during pregnancy and labor. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107(48): 20828-33. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1008301107.
  42. Sanders A.P., Burris H.H., Just A.C., Motta V., Svensson K., Mercado-Garcia A. et al. microRNA expression in the cervix during pregnancy is associated with length of gestation. Epigenetics. 2015; 10(3): 221-8.https://dx.doi.org/10.1080/15592294.2015.1006498.
  43. Weaver-Mikaere L., Gunn A.J., Mitchell M.D., Bennet L., Fraser M. LPS and TNF alpha modulate AMPA/NMDA receptor subunit expression and induce PGE2 and glutamate release in preterm fetal ovine mixed glial cultures. J. Neuroinflammation. 2013; 10: 153. https://dx.doi.org/10.1186/1742-2094-10-153.
  44. Bracken C.P., Gregory P.A., Kolesnikoff N., Bert A.G., Wang J., Shannon M.F., Goodall G.J. A double-negative feedback loop between ZEB1-SIP1 and the microRNA-200 family regulates epithelial-mesenchymal transition. Cancer Res. 2008; 68(19): 7846-54. https://dx.doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-08-1942.
  45. Sun X., Sit A., Feinberg M.W. Role of miR-181 family in regulating vascular inflammation and immunity. Trends Cardiovasc. Med. 2014; 24(3): 105-12. https://dx.doi.org/10.1016/j.tcm.2013.09.002.
  46. Gao L., Wang G., Liu W.N., Kinser H., Franco H.L., Mendelson C.R. Reciprocal feedback between miR-181a and E2/ERα in myometrium enhances inflammation leading to labor. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2016; 101(10):3646-56. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2016-2078.
  47. Li H., Zhou J., Wei X., Chen R., Geng J., Zheng R. et al. miR-144 and targets, c-fos and cyclooxygenase-2 (COX-2), modulate synthesis of PGE2 in the amnion during pregnancy and labor. Sci. Rep. 2016; 6: 27914. https://dx.doi.org/1038/srep27914.
  48. Kim S.Y., Romero R., Tarca A.L., Bhatti G., Lee J., Chaiworapongsa T. et al. miR-143 regulation of prostaglandin-endoperoxidase synthase 2 in the amnion: implications for human parturition at term. PLoS One. 2011; 6(9): e24131. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0024131.
  49. Montenegro D., Romero R., Kim S.S., Tarca A.L., Draghici S., Kusanovic J.P. et al. Expression patterns of microRNAs in the chorioamniotic membranes: a role for microRNAs in human pregnancy and parturition. J. Pathol. 2009; 217(1): 113-21. https://dx.doi.org/10.1002/path.2463.

Received 15.11.2021

Accepted 23.12.2021

About the Authors

Asiyat R. Gaidarova, PhD Student, Academician V.I. Kulakov NMRC for OG&P, Ministry of Health of Russia, +7(985)553-76-70, a_gadzhieva@oparina4.ru,
https://orcid.org/0000-0003-1415-3318, 117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str., 4.
Vladislava A. Gusar, PhD, Senior Researcher at the Laboratory of Applied Transcriptomics, Department of Systems Biology in Reproduction, Academician V.I. Kulakov NMRC for OG&P, Ministry of Health of Russia, +7(916)283-72-10, v_gusar@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0003-3990-6224, 117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str., 4.
Oleg R. Baev, Dr. Med. Sci., Professor, Head of the 1st Maternity Ward, Academician V.I. Kulakov NMRC for OG&P, Ministry of Health of Russia, o_baev@oparina4.ru, 117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str., 4; Professor of the Department of Obstetrics, Gynecology, Perinatology and Reproductology, I.M. Sechenov First MSMU, Ministry of Health of Russia, 119991, Russia, Moscow, Trubetskaya str., 8-2, https://orcid.org/0000-0001-8572-1971
Corresponding author: Asiyat R. Gaidarova, a_gadzhieva@oparina4.ru

Authors' contributions: Gaidarova A.R., Gusar V.A., Baev O.R. – information collection, text writing and editing.
Conflicts of interest: The authors declare that there are no conflicts of interest.
Funding: The investigation has not been sponsored.
For citation: Gaidarova A.R., Gusar V.A., Baev O.R. Initiation of labor activity as a multifactor mechanism of communication between maternal and fetal compartments.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2022; 2: 20-26 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.2.20-26

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.