ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

The problem of differential diagnosis of leiomyosarcoma in patients planning surgical treatment for uterine fibroids

Tskhay V.B., Pashov A.I., Rachkovskaya V.V.

1) Professor V.F. Voino-Yasenetsky Krasnoyarsk State Medical University, Ministry of Health of Russia, Krasnoyarsk, Russia; 2) Immanuel Kant Baltic Federal University, Kaliningrad, Russia

Uterine leiomyosarcoma is known to have no clear diagnostic criteria due to its similarity to uterine fibroids. Therefore, clinicians tend to make the wrong diagnosis and/or administer the wrong treatment. This can lead to rapid progression of tumor growth and an increased tendency to metastasis. The article presents the main definitions, classifications, and statistical data on the prevalence of these diseases. A review of literature data on current methods of preoperative diagnosis of tumors was carried out, and special attention was paid to the differential diagnosis of these pathologies. The review covers the general principles of surgical treatment of pathology, as well as the possible extent of surgical intervention. Due to the active introduction and application of uterine artery embolization and intra-abdominal tumor morcellation in gynecological practice, there is a growing interest in preoperative differential diagnosis between leiomyosarcoma and uterine fibroids. These methods of treatment are inadequate if the diagnosis of uterine sarcoma is made in the postoperative period.
Conclusion: Preoperative differential diagnosis between uterine fibroids and sarcomas is extremely important in modern gynecological practice. It is associated not only with the progression of the disease, but also with a deterioration in the prognosis of the disease for the patient after surgical organ-preserving treatment.

Authors’ contributions: Tskhay V.B., Pashov A.I. – developing the idea and design of the study; Tskhay V.B., Pashov A.I., Rachkovskaya V.V. – collecting and processing the material; Pashov A.I. – editing the article.
Conflicts of interest: Authors declare lack of the possible conflicts of interests.
Funding: The study was conducted without sponsorship.
For citation: Tskhay V.B., Pashov A.I., Rachkovskaya V.V. The problem of differential diagnosis of leiomyosarcoma in patients planning surgical treatment for uterine fibroids.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2024; (1): 42-49 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.207

Keywords

leiomyosarcoma
uterine body cancer
tumor
uterine fibroids
organ-preserving treatment

Саркомы матки (СМ) составляют около 3% всех случаев злокачественных новообразований матки [1]. По оценкам, во всем мире частота возникновения СМ составляет от 0,5 до 3,3 на 100 000 женщин в год [2]. Частота случайно выявленной в ходе оперативного лечения СМ при гистерэктомии из-за подозрения на миому матки (ММ) составляет около 0,2%. При этом риск для женщин младше 40 лет практически отсутствует [3].

Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) в 2020 г. разделила эндометриальные стромальные опухоли матки на 4 группы: эндометриальный стромальный узел (8930/0), эндометриальные стромальные саркомы низкой степени злокачественности (8931/3), эндометриальные стромальные саркомы высокой степени злокачественности (8930/3) и недифференцированные саркомы матки (8805/3). Согласно последней классификации опухолей ВОЗ (2020), эндометриальные cтромальные саркомы относятся к общей категории стромальных и родственных опухолей эндометрия [4–6].

Лейомиосаркома (ЛМС) матки (8890/3) является наиболее распространенным типом злокачественных мезенхимальных опухолей матки, на долю которого приходится более 60% от всех случаев СМ, со средним возрастом начала заболевания 48 лет. ЛМС в основном представляет собой единичные крупные образования, похожие на разрезе на вареную рыбу, она расположена в основном в интрамуральном или субсерозном слое матки [5, 6].

СМ не имеют конкретных диагностических критериев из-за их сходства с ММ, вследствие чего клиницисты склонны ставить неправильный диагноз или применять неправильные методы лечения, что приводит к быстрому прогрессированию опухоли и повышенной склонности к метастазированию [6–9].

С развитием минимально инвазивных вариантов лечения ММ, таких как эмболизация маточных артерий или внутрибрюшная морцелляция, растет интерес к предоперационной дифференциальной диагностике между ЛМС и ММ, поскольку эти варианты лечения являются неадекватными для СМ и представляют риск диссеминации [7, 10–12]. Внедрение морцелляции в качестве хирургического метода лапароскопического удаления миоматозных узлов или самого тела матки сделало этот способ более проблематичным в применении, поскольку прогноз, по-видимому, ухудшается у женщин со случайно выявленной СМ во время оперативного лечения и морцеллированной маткой [13, 14]. В связи с этим предоперационная диагностика СМ продолжает оставаться предметом беспокойства многих клиницистов и хирургов, а вопросы дифференциальной диагностики ММ и СМ становятся крайне актуальными [15, 16].

По данным Wang L. et al. (2020), распространенность общих и неожиданных ЛМС по отношению к ММ в Соединенных Штатах Америки составила 0,25% (1 из 345 пациентов) и 0,07% (1 из 1429 пациентов) соответственно [17]. В другом исследовании частота неожиданных СМ составила 1/2269 среди женщин, которым были выполнены миомэктомии и гистерэктомии по поводу предполагаемой доброкачественной ММ [18].

В Нидерландах было проведено национальное когортное исследование, оценивающее все ЛМС, диагностированные в период с января 2000 г. по сентябрь 2015 г. Общая частота ЛМС составила 0,25%, или 1:400 пациенток. Частота неожиданных ЛМС составила 0,12%, или 1:865 пациенток. До операции злокачественное образование было неожиданным в 46% случаев и ожидаемым в 54%. Аномальное маточное кровотечение составляло большинство симптомов. Отмечено, что женщины в возрасте 40–50 лет с аномальным маточным кровотечением наиболее подвержены риску неожиданной ЛМС. Напротив, этот риск низок у женщин в постменопаузе [19].

В 2019 г. были представлены результаты многоцентрового популяционного исследования, проведенного в США и Италии. В общей сложности за период исследования было выполнено 4232 гистерэктомии. Всего выявили 16 СМ, из которых 11 (69%) были заподозрены до операции и 5 (31%) оказались неожиданными. Частота возникновения неожиданной ЛМС среди операций по поводу ММ составила 0,35% (1:283) у женщин в пременопаузе и 0,57% (1:174) у женщин в пери/постменопаузе. Частота возникновения неожиданной ЛМС прогрессивно возрастала с увеличением массы матки и составила 0,03% (1:2993) среди женщин с массой матки <250 г против 15,4% (2 из 13) с массой матки ≥2000 г. Факторами риска развития СМ были период пери/постменопаузы, большая матка и возраст женщин ≥45 лет [20].

По результатам ретроспективного общенационального когортного исследования, проведенного в Норвегии (данные из Регистра рака в Норвегии и данные Национального реестра медицинских записей), было установлено, что в 2000–2012 гг. у 212 женщин был диагностирована ЛМС. Средний возраст на момент постановки диагноза составил 58,1 года (±12,5). Наиболее частым симптомом у женщин, страдающих ЛМС, было аномальное маточное кровотечение (51,9%). У 54,2% женщин на момент операции не было подозрения на ЛМС, и они получали лечение в соответствии с протоколом лечения ММ [21].

Возможности ультразвуковой диагностики в дифференциальной диагностике лейомиосаркомы и миомы матки

Ультразвук является основным методом диагностики опухолей матки и оценки поражений миометрия. Совпадение клинических, лабораторных, а также ультразвуковых признаков между ММ и ЛМС затрудняет дифференциальную диагностику двух этих заболеваний [22]. Результаты многочисленных исследований показали, что ультразвуковые признаки ММ, такие как периферическая и внутриузловая васкуляризация, кистозные области и дегенеративные изменения, являются важными параметрами для дифференциальной диагностики ЛМС и ММ, особенно в сочетании с возрастом пациентки. Такие признаки могут быть полезны для различия типичных ММ от злокачественных новообразований в предоперационных условиях и для отбора пациентов перед оперативным вмешательством [23–25].

Самая большая на сегодняшний день серия исследований, в которой анализируются сонографические характеристики, наиболее часто встречающиеся при ЛМС, была опубликована Ludovisi М. et al. в 2019 г. В ретроспективной серии из 179 случаев эти авторы показали, что ЛМС проявлялись как гетерогенные образования в матке, которые часто содержали кистозные участки и не имели теней. Около трех четвертей ЛМС были умеренно или интенсивно васкуляризованы. По данным этих авторов, только в 6–8% случаев ЛМС было представлено изображение, которое можно считать характерным для ММ [26]. По данным Najibi S. et al. (2021), диагностическая точность ультразвуковой диагностики составляет всего 57,1%, чувствительность – 35,1%, а специфичность – 88,4%, что не позволяет рассматривать этот метод для дифференциальной диагностики ММ и ЛМС [27].

Kim J. et al. (2021) описали сонографические характеристики ЛМС, первоначально ошибочно диагностированной как ММ у 61 женщины в позднем репродуктивном возрасте. В большинстве случаев, если узловые образования имели кистозную дегенерацию, то стенки этих образований, как правило, были неравномерно утолщены (87,5%). При оценке затенения образований, что обычно отмечается при ММ, в 55,7% случаев не было обнаружено этих затенений. Менее половины пациенток (44,3%) имели образования с внутренним и веерообразным затенением [28]. Васкуляризация узловых образований была минимальной или умеренной у большинства пациенток, а случаи выраженной васкуляризации отсутствовали. По результатам допплерометрии индекс резистентности (ИР) был измерен у 15/15 пациенток, при этом среднее значение ИР составило 0,45±0,11, что было немного выше порогового значения – 0,4.

В 2019 г. были опубликованы результаты многоцентрового ретроспективного исследования, основанного на данных из 13 ультразвуковых центров Италии и Испании. Всего были проанализированы предоперационные ультразвуковые изображения 183 пациенток с подтвержденной СМ за 10 лет. Авторы пришли к выводу, что ультразвуковые характеристики ЛМС характеризовались большими размерами опухоли с неоднородной структурой, неоднородными эхо-сигналами, нерегулярными кистозными или некротическими участками и повышенной васкуляризацией. В то же время было отмечено, что несмотря на то, что ультразвук дешев, удобен и является лучшим методом скрининга, он не позволяет точно определить доброкачественность или злокачественность маточных образований [26]. К тому же вводящие в заблуждение ультразвуковые характеристики, такие как затенение и отсутствие или минимальная васкуляризация, также могут встречаться при ЛМС [22]. Чтобы избежать ошибок при предоперационном ультразвуковом исследовании всех опухолей миометрия, необходима комплексная оценка потенциально перекрывающихся ультразвуковых признаков.

В ряде исследований оценивалась диагностическая точность ультразвукового исследования для выявления ЛМС [29]. Li D. et al. (2020) провели многоцентровое ретроспективное исследование пациенток с ЛМС в Китае, включая проверку точности предоперационного диагноза. Диагностическая чувствительность ультразвука для злокачественных опухолей матки составила всего 11,0%, что означает, что только у 11 из 100 пациенток по результатам ультразвуковой диагностики, проведенной до операции, была обнаружена злокачественная опухоль. Еще у 33% было подозрение на ЛМС, что следует понимать как неоднозначный вывод. Оставшиеся 56% были ошибочно отнесены по результатам ультразвуковой диагностики к доброкачественным ММ [30].

Возможности метода допплерометрии в дифференциальной диагностике лейомиосаркомы и миомы матки

На основании заключения группы экспертов (Morphological Uteral Sonographic Assessment, MUSA) была предложена общая классификация для описания ультразвуковых характеристик кровотока при патологии миометрия [31]. Шкала MUSA интерпретируется следующим образом: 1 – кровотока нет; 2 – минимальный кровоток; 3 – умеренный кровоток; 4 – сильный кровоток.

Для отличия доброкачественных ММ от ЛМС было рекомендовано использовать импульсные допплеровские и велосиметрические показатели, такие как ИР и пульсационный индекс (ПИ). Еще в 1995 г. Kurjak А. et al. предложили пороговое значение ИР≤0,40 в качестве критерия диагностики СМ [32], однако серия случаев CМ в этом исследовании была небольшой (n=10). Ряд других исследователей с этим не согласны [6, 23]. В ряде последних исследований было продемонстрировано, что значения ИР являются неоптимальными для различия доброкачественных и злокачественных опухолей матки. В тех случаях, когда ЛМС имеет большую анэхогенную область, сигнал кровотока внутри опухоли не определяется, что легко ошибочно диагностируется как дегенерация ММ [6].

Недавнее исследование, в котором были представлены данные о 70 гиперваскуляризованных предполагаемых доброкачественных поражениях матки, показало, что в 93% случаев эти поражения на самом деле были доброкачественными (32 типичные лейомиомы, 29 вариантов лейомиомы и 4 аденомиомы) и только в 7% случаев – злокачественными (2 эндометриальные саркомы матки, 1 ЛМС, 1 нейроэндокринная опухоль и 1 опухоль гладкой мускулатуры матки неопределенного злокачественного потенциала) [23]. Эти данные показывают, что в случае гиперваскуляризованных поражений матки они, скорее всего, доброкачественные.

Следует отметить, что миоматозные узлы обычно слабо васкуляризованы. Цветная допплерометрия или силовая допплерометрия показывает миоматозные узлы, как структуры с обильной периферической васкуляризацией или с плохо видимым круговым рисунком васкуляризации, тогда как центральный кровоток наблюдается редко [33].

Структурные различия в сосудистой сети миом с редкой и обильной васкуляризацией, как правило, отсутствуют. По мнению большинства авторов, показатели ИР и ПИ в сосудах миомы бесполезны, поскольку может наблюдаться как низко-, так и высокорезистентный кровоток. Диапазоны значений ИР и ПИ в сосудах миом составляют: ИР=0,4–0,6 и ПИ=0,7–0,9 соответственно [34].

Форма волны допплеровского потока в сосудах ми­омы аналогична форме волны, наблюдаемой в маточных артериях. В большинстве случаев можно визуализировать диастолический кровоток. В подслизистых сосудах миометрия может наблюдаться высокая амплитуда систолической и диастолической скорости кровотока, в которых могут формироваться патологические сосуды, имитирующие сосуды, обнаруживаемые при злокачественных новообразованиях [35].

Литературные данные свидетельствуют о влиянии локализации и размера поражения на допплеровский профиль кровотока. Более крупные и расположенные периферически миоматозные узлы с признаками дегенеративных изменений характеризуются более высокой диастолической скоростью кровотока и более низким индексом сопротивления в сосудах опухоли. Некоторые авторы отмечают, что увеличение диаметра очага поражения у женщин как в пре-, так и в постменопаузе улучшает визуализацию кровотока, независимо от локализации опухоли, тогда как уменьшение ИР наблюдается только в сосудах подслизистых и субсерозных очагов поражения [34].

Таким образом, несмотря на противоречивые данные ряда исследователей, оценка параметров кровотока в маточных артериях и в сосудах миоматозных узлов, которые легче всего визуализировать благодаря достижениям в методах визуализации и чувствительности ультразвукового оборудования, чрезвычайно важна для попытки найти отличие от злокачественных поражений, возникающих в миометрии.

Возможности метода магнитно-резонансной томографии в дифференциальной диагностике лейомиосаркомы и миомы матки

Использование магнитно-резонансной томографии может быть чрезвычайно полезно для предоперационного выявления и постановки диагноза СМ, а, следовательно, для определения необходимой тактики лечения [29, 36]. В последнее время магнитно-резонансная томография играет существенную роль в диагностике злокачественных новообразований матки. Такие признаки, как локализация опухоли, неровные края, некроз, быстрый рост, интенсивное контрастное усиление и ограничение при диффузно-взвешенной визуализации, могут подсказать диагноз и помочь найти отличие более распространенной ММ от ЛМС [10, 36].

В ретроспективном исследовании Sumi А. et al. (2015) по данным магнитно-резонансной томографии СМ и ММ значительно различались по локализации опухоли, неровному контуру, кровоизлияниям, некротическим и кистозным компонентам. ЛМС были больше, чем карциносаркома или стромальная саркома эндометрия. Геморрагические, некротические или кистозные компоненты чаще обнаруживались в более крупных опухолях, хотя не было существенной разницы в их встречаемости между типами сарком. Все СМ показали высокую интенсивность на взвешенных изображениях. Значения коэффициента вариации были ниже при СМ, чем при ММ, хотя разница не была статистически значимой. Количественная оценка с использованием коэффициента контрастности при магнитно-резонансной томографии была полезна для дифференциальной диагностики доброкачественных и злокачественных опухолей матки, а также основных гистологических типов СМ [37].

Оценивая связь ошибочных диагнозов у пациенток с СМ по результатам магнитно-резонансной томографии и ультразвуковой диагностики, иранские специалисты приводят убедительные данные в пользу томографии. Так, диагностическая точность магнитно-резонансной томографии у пациенток с ЛМС составила – 93,7%, чувствительность – 94,6%, специфичность – 92,3% [27]. В связи с этим метод магнитно-резонансной томографии может быть использован для выявления ЛМС и ММ. В то же время метод магнитно-резонансной томографии, несмотря на высокую разрешающую способность визуализации мягких тканей, несет определенный риск ошибочного диагноза, поскольку при ММ часто отмечаются дегенеративные изменения, которые трудно отличить от СМ невооруженным глазом [38–41].

Диагностическая значимость биопсии эндометрия и пункционной биопсии в дифференциальной диагностике лейомиосаркомы и миомы матки

Учитывая, что ЛМС возникает из мышечного слоя тела матки, а не из внутреннего, легко доступного эндометрия, считается, что биопсия эндометрия имеет ограниченное клиническое значение. Чувствительность биопсии эндометрия для выявления ЛМС низкая, что свидетельствует о сложности диаг­­ностики ЛМС до операции [42].

По данным исследования Kho R. et al. (2022), рутинный забор эндометрия с последующим гистологическим исследованием позволил выявить ЛМС до операции только у 58,2% пациенток. При этом забор эндометрия под контролем гистероскопии в три раза повысил эффективность предоперационного выявления ЛМС [43].

Bansal N. et al. (2008) пришли к выводу, что забор эндометрия с последующим гистологическим исследованием имеет значительно меньшую прогностическую ценность для диагностики ЛМС по сравнению с эпителиальными злокачественными новообразованиями матки. При этом пайпель-биопсия и диагностическое выскабливание имеют одинаковую диагностическую точность [44].

С учетом того, что злокачественный процесс при ЛМС в основном локализуются в миометрии, биопсия подозрительных образований, выявленных при ультразвуковой диагностике с использованием тонкоигольной аспирации, может быть очень полезной для дифференциальной диагностики ЛМС и ММ [6].

Трансвагинальная биопсия стержневой иглой при опухолях малого таза является общепринятой практикой в гинекологической онкологии [45, 46]. Однако это не упоминается в качестве конкретной рекомендации при предоперационном обследовании пациенток с опухолями матки [15]. Различные общества по борьбе с СМ рекомендуют избегать трансабдоминальной пункционной биопсии [47, 48]. В то же время многие специалисты не без основания считают, что адекватная и безопасная пункционная биопсия перед проведением оперативного лечения опухолей матки, которые, как предполагается, являются саркомой, с помощью визуализации, важна и обязательна для надлежащего планирования объема оперативного вмешательства [41, 49].

Биопсия с использованием тонкой иглы под ультразвуковым контролем из полости узлового образования технически возможна и может подтвердить или исключить возможную ЛМС. Общая точность диагностики злокачественного образования матки описывается в диапазоне от 93 до 98%, хотя данные о пациентах с ЛМС встречаются очень редко [41]. Поскольку биопсия является инвазивной процедурой и требует наличия опытного исследователя, тонкоигольная биопсия в настоящее время не входит в рекомендации по предоперационному обследованию [29].

Некоторые специалисты не без основания считают, что можно ожидать позитивных результатов предоперационной патоморфологической диагностики атипичных опухолей миометрия матки с помощью вагинальной биопсии под контролем ультра­звука. При обнаружении образований в миометрии с высоким подозрением на злокачественность интраоперационное гистологическое исследование может помочь не только в диагностике, но и в определении объема операции. Пункционная биопсия может дополнять сонографическую визуализацию для получения материала для гистологического и молекулярного анализа [41].

Stukan M. et al. в 2022 г. представили методику пункционной биопсии поражений миометрия матки под ультразвуковым контролем через полость матки (UG-TUC) в качестве процедуры, дополняющей визуализацию для получения адекватных образцов для гистологического исследования перед оперативным лечением. Автоматическая система для биопсии (с закрытой иглой) вводится через цервикальный канал в полость матки. Положение иглы визуализируется с помощью ультразвукового исследования, и игла направлена в сторону опухоли матки, затем выполняется биопсия ядра патологического образования матки. Система извлекается из матки, а образец извлекается из иглы. Процедура повторяется три или более раз, каждый раз направляя и активируя иглу под другим углом к поражению, чтобы получить более представительный образец [41].

Таким образом, предоперационная пункционная биопсия опухолей матки должна использоваться более широко и быть доступной. Могут быть использованы как трансвагинальный, так и UG-TUC подходы, в зависимости от того, какой из них более применим к конкретной пациентке и локализации опухоли.

Значение показателей CA-125, HE4 и лактатдегидрогеназы в дифференциальной диагностике лейомиосаркомы и миомы матки

Онкомаркер СА-125 широко используется в клинической практике, особенно при диагностике рака яичников, хотя его уровень может повышаться и при других неонкологических заболеваниях и состояниях. Согласно российским клиническим рекомендациям, всем пациенткам с подозрением на злокачественные новообразования тела матки необходимо выполнять исследование уровня СА-125 в крови в целях дифференциальной диагностики новообразований, определения тактики и алгоритма лечения, оценки прогноза заболевания [5].

В исследовании Skorstad M. et al. (2016) повышенные уровни CA-125 (более 35 Ед/мл) были выявлены в 41,1% случаев у пациенток с ЛМС. Более того, они наблюдали, что более высокие уровни CA-125 коррелировали с более поздней стадией заболевания [50]. В более поздних исследованиях авторы оценили полезность CA-125 в качестве одного из диагностических маркеров ЛМС и сопоставили его уровни с уровнями лактатдегидрогеназы и эпидидимального белка человека 4 (HE4). Предоперационные концентрации CA-125 и НЕ4, а также лактатдегидрогеназы в сыворотке крови женщин с ЛМС были значительно выше, чем у женщин с дегенеративной ММ. Так у женщин с ЛМС предоперационные концентрации CA-125 составляли – 30,85 Ед/мл, HE4 – 50,50 пмоль/л и лактатдегидрогеназы – 186,50 Ед/л. В тех случаях, когда эти три параметра использовались комбинированно, диагностическая чувствительность составляла 68,4%, а специфичность – 95,1% [51].

В последние годы учеными разных стран проводились исследования по определению уровня лактатдегидрогеназы, как диагностического критерия при верификации ЛМС и ММ. Лактатдегидрогеназа представляет собой фермент, катализирующий превращение лактата в пируват в конце гликолитического пути [52]. Его более высокая экспрессия была обнаружена в раковых клетках, поскольку клетки, чтобы вырабатывать больше энергии, перепрограммируют митохондриальные процессы [53, 54].

В исследовании, представленном Goto А. et al. (2002), уровень лактатдегидрогеназы был повышен у всех 10 пациенток с ЛМС, а также у 32 из 130 пациенток с дегенеративной ММ [55]. По данным Nagai Т. et al. (2014), уровни лактатдегидрогеназы в сыворотке, превышающие 279 Ед/л, наблюдались у 7 из 15 пациенток (46,7%) с ЛМС и ни у одной из пациенток с доброкачественными поражениями матки [56]. По данным, представленным Kusunoki S. et al. (2017), уровни лактатдегидрогеназы в группе пациенток с ЛМС были выше (343±188 МЕ/л), чем в группе пациенток с ММ (183,1±44 МЕ/л) [57]. Однако следует отметить, что сывороточные маркеры, в частности такие, как лактатдегидрогеназа и изоформы лактатдегидрогеназы 3-го типа, могут быть повышены не только при ЛМС, но также при клеточной и дегенерированной ММ [55, 58].

Интегрированные модели предоперационной дифференциальной диагностики саркомы и миомы матки

В 2014 г. Nagai T. et al. представили интегрированную модель предоперационной диагностики СМ. Однофакторный анализ, проведенный авторами, показал, что возраст, уровни лактатдегидрогеназы, результаты магнитно-резонансной томографии и результаты цитологии эндометрия были значимыми факторами в предоперационном прогнозировании СМ. При этом предельные значения возраста составили 49 лет, предельные значения уровня лактатдегидрогеназы в сыворотке крови – 279 Ед/л; положительным результатом магнитно-резонансной томографии был «внутриопухолевый гиперинтенсивный сигнал на Т1-взвешенных изображениях и/или гетерогенный сигнал на Т2-взвешенных изображениях»; для цитологии эндометрия, классифицированной по Папаниколау, класс III или выше считался положительным результатом [59].

Zhang G. et al. (2020) на основе значений факторов риска разработали систему оценки предоперационных клинических характеристик ЛМС. Факторам, включающим размер опухоли ≥7 см, уровень лактатдегидрогеназы ≥193 Ед/л, было присвоено 2 балла, в то время как факторам, включающим возраст ≥40 лет, отношение нейтрофилов к лимфоцитам ≥2,8 и количество тромбоцитов ≥298×109/л – 1 балл. Все эти факторы были независимыми предикторами ЛМС. Система оценки предоперационных клинических характеристик ЛМС может быть полезна для предоперационной диагностики скрытых ЛМС [60].

По результатам широкомасштабного многоцентрового когортного исследования, выполненного под эгидой немецкого общества акушеров-гинекологов, были определены различия ММ от ЛМС по шкале предоперационного риска. Было установлено, что ключевыми признаками для распознавания ЛМС являются симптомы кровотечения: межменструальные кровотечения [ОР=2,71], гиперменорея [ОР=0,28,], дисменорея [ОР=0,22,], постменструальное кровотечение [ОР=2,08], а также подозрение при проведении ультразвуковой диагностики [ОР=1,21] и большой диаметр опухоли [61]. Представленная оценка базируется на основных клинических характеристиках и позволяет прогнозировать ЛМС до проведения запланированной операции по удалению опухоли матки. В случае, если оценка ЛМС составляет от -3 до +1, предлагается проводить дополнительные диагностические мероприятия: биопсия эндометрия, цветная допплерография, измерение активности лактатдегидрогеназы, магнитно-резонансная томография и трансцервикальная биопсия.

Заключение

Актуальность предоперационной дифференциальной диагностики между ММ и СМ в современной гинекологической практике обусловлена сразу несколькими вескими основаниями. В случае непреднамеренной морцелляции или эмболизации маточных артерий при недиагностированной СМ может произойти прогрессирование онкологического процесса и ухудшение прогноза для пациентки. В то же время беспокойство по поводу потенциального наличия злокачественной опухоли может снизить частоту лапароскопических и эндоваскулярных операций у пациенток с ММ из-за риска, связанного с СМ, что может негативно повлиять на клинические результаты. К тому же у многих пациенток, которым проводят гистерэктомию в связи с подозрением на СМ, в конечном итоге диагностируется доброкачественная опухоль – ММ.

Таким образом, предоперационная диагностика СМ по-прежнему представляет сложную задачу, несмотря на внедрение различных диагностических методов, включая биохимические и иммунологические маркеры, методы визуализации и биопсию с использованием иглы под контролем ультразвука. Все это требует проведения дальнейших исследований для разработки надежных методов отличия в предоперационной диагностике ММ и СМ.

References

  1. FIGO Commitee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for uterine sarcomas. Int. J. Gynecol. Obstet. 2009;104(3):179. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijgo.2008.12.009.
  2. Desai V.B., Wright J.D., Gross C.P., Lin H., Boscoe F.P., Hutchison L.M. et al. Prevalence, characteristics, and risk factors of occult uterine cancer in presumed benign hysterectomy. Am. J. Obstet. Gynecol. 2019;221(1):39.e1-39.e14. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2019.02.051.
  3. Valzacchi R.G.M., Rosas P., Uzal M., Gil S.J., Viglierchio V.T. Incidence of leiomyosarcoma at surgery for presumed uterine myomas in different age groups. J. Minim. Invasive Gynecol. 2019;27(4):926-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.jmig.2019.06.013.
  4. Kurman R.J., Carcangiu M.L., Herrington S., Young R.H., ed. WHO classification of tumours of female reproductive organs. WHO classification of tumours, 4th edition, volume 6. Lyon: IARC; 2014.
  5. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации «Рак тела матки и саркомы матки». 2021. [Ministry of Health of the Russian Federation. Clinical guidelines "Cancer of the uterine body and uterine sarcoma". 2021. (in Russian)].
  6. Цхай В.Б., Пашов А.И., Ашрафян Л.А., Рачковская В.В. Саркома матки и беременность: современный взгляд на проблему. Акушерство и гинекология. 2023;1:13-9. [Tskhai V.B., Pashov A.I., Ashrafyan L.A., Rachkovskaya V.V. Uterine sarcoma and pregnancy: a modern view of the problem. Obstetrics and gynecology. 2023;(1):13-9. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.231.
  7. Roberts M.E., Aynardi J.T., Chu C.S. Uterine leiomyosarcoma: a review of the literature and update on management options. Gynecol. Oncol. 2018;151(3): 562-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.ygyno.2018.09.010.
  8. Juhasz-Böss I., Gabriel L., Bohle R.M., Horn L.C., Solomayer E.F., Breitbach G.P. Uterine leiomyosarcoma. Oncol. Res. Treat. 2018;41(11):680-6.https://dx.doi.org/10.1159/000494299.
  9. Sparić R., Andjić M., Babović I., Nejković L., Mitrović M., Štulić J. et al. Molecular insights in uterine leiomyosarcoma: a systematic review. Int. J. Mol. Sci. 2022;23(17):9728. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23179728.
  10. Barral M., Placé V., Dautry R., Bendavid S., Cornelis F., Foucher R. et al. Magnetic resonance imaging features of uterine sarcoma and mimickers. Abdom. Imaging (NY). 2017;42(6):1762-72. https://dx.doi.org/10.1007/s00261-017-1076-9.
  11. Oh J., Bin Park S., Park H.J., Lee E.S. Ultrasound features of uterine sarcomas. Ultrasound Q. 2019; 35(4):376-84. https://dx.doi.org/10.1097/RUQ.0000000000000454.
  12. Sun S., Bonaffini P.A., Nougaret S., Fournier L., Dohan A., Chong J. et al. How to differentiate uterine leiomyosarcoma from leiomyoma with imaging. Diagn. Interv. Imaging. 2019;100(10):619-34. https://dx.doi.org/10.1016/j.diii.2019.07.007.
  13. Lieng M., Berner E., Busund B. Risk of morcellation of uterine leiomyosarcomas in laparoscopic supracervical hysterectomy and laparoscopic myomectomy, a retrospective trial including 4791 women. J. Minim. Invasive Gynecol. 2015;22(3):410-4. https://dx.doi.org/10.1016/j.jmig.2014.10.022.
  14. Raine-Bennett T., Tucker L.Y., Zaritsky E., Littell R.D., Palen T., Neugebauer R. et al. Occult uterine sarcoma and leiomyosarcoma: incidence of survival associated with morcellation. Obstet. Gynecol. 2016;127(1):29-39.https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000001187.
  15. Halaska M.J., Haidopoulos D., Guyon F., Morice P., Zapardiel I., Kesic V.; ESGO Council. European Society of Gynecological Oncology Statement on Fibroid and Uterine Morcellation. Int. J. Gynecol. Cancer. 2017;27:189-92.https://dx.doi.org/10.1097/IGC.0000000000000911.
  16. ACOG Committee Opinion No. 770. Summary: uterine morcellation for presumed leiomyomas. Obstet. Gynecol. 2019;133:604-5.https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000003127.
  17. Wang L., Li S., Zhang Z., Jia J., Shan B. Prevalence and occult rates of uterine leiomyosarcoma. Medicine (Baltimore). 2020;99(33):e21766.https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000021766.
  18. Mettler L., Maass N., Abdusattarova K., Dempfle A., Alkatout I. Frequency of uterine sarcomas in patients admitted for uterine fibroid surgery. J. Turk. Ger. Gynecol. Assoc. 2017;18(2):62-6. https://dx.doi.org/10.4274/jtgga.2016.0248.
  19. Van den Haak L., de Kroon C.D., Warmerdam M.I., Siebers A.G., Rhemrev J.P., Nieboer T.E., Jansen F.W. Incidence and groups at risk for unexpected uterine leiomyosarcoma: a Dutch nationwide cohort study. Arch. Gynecol. Obstet. 2019;299(1):159-65. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-018-4949-4.
  20. Multinu F., Casarin J., Tortorella L., Huang Y., Weaver A., Angioni S. et al. Incidence of sarcoma in patients undergoing hysterectomy for benign indications: a population-based study. Am. J. Obstet. Gynecol. 2019;220(2):179.e1-179.e10. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2018.11.1086.
  21. Skorstad M., Kent A., Lieng M. Uterine leiomyosarcoma - incidence, treatment, and the impact of morcellation. A nationwide cohort study. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2016; 95(9):984-90. https://dx.doi.org/10.1111/aogs.12930.
  22. Arezzo F., Cormio G., Putino C., Di Lillo N., Silvestris E., Kardhashi A. et al. Overlap of suspicious and non-suspicious features in the ultrasound evaluations of leiomyosarcoma: a single-center experience. Diagnostics (Basel). 2023;13(3):543. https://dx.doi.org/10.3390/diagnostics13030543.
  23. Russo C., Camilli S., Martire F.G., Di Giovanni A., Lazzeri L., Malzoni M. et al. Ultrasound features of highly vascularized uterine myomas (uterine smooth muscle tumors) and correlation with histopathology. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2022;60(2):269-76. https://dx.doi.org/10.1002/uog.24855.
  24. Cotrino I., Carosso A., Macchi C., Baima Poma C., Cosma S., Ribotta M. et al. Ultrasound and clinical characteristics of uterine smooth muscle tumors of uncertain malignant potential (STUMPs). Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2020;251: 167-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2020.05.040.
  25. Ambrosio M., Raimondo D., Savelli L., Salucci P., Arena A., Borghese G. et al. Transvaginal ultrasound and doppler features of intraligamental myomas. J. Ultrasound Med. 2020;39(7):1253-9. https://dx.doi.org/10.1002/jum.15213.
  26. Ludovisi M., Moro F., Pasciuto T., Di Noi S., Giunchi S., Savelli L. et al. Imaging in gynecological disease (15): clinical and ultrasound characteristics of uterine sarcoma. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2019;54(5):676-87.https://dx.doi.org/10.1002/uog.20270.
  27. Najibi S., Gilani N.M., Zamani F., Akhavan S., Zamani N. Comparison of the diagnostic accuracy of contrast-enhanced/DWI MRI and ultrasonography in the differentiation between benign and malignant myometrial tumors. Ann. Med. Surg (Lond). 2021;70:102813. https://dx.doi.org/10.1016/j.amsu.2021.102813.
  28. Kim J., Heo S.H., Shin S.S., Jeong Y.Y. MRI findings and differential diagnosis of benign and malignant tumors of the uterine corpus. Taehan Yongsang Uihakhoe Chi. 2021;82(5):1103-23. https://dx.doi.org/10.3348/jksr.2021.0116.
  29. Camponovo C., Neumann S., Zosso L., Mueller M.D., Raio L. Sonographic and magnetic resonance characteristics of gynecological sarcoma. Diagnostics (Basel). 2023;13(7):1223. https://dx.doi.org/10.3390/diagnostics13071223.
  30. Li D., Yin N., Du G., Wang S., Xiao Z., Chen J., Chen W. A real-world study on diagnosis and treatment of uterine sarcoma in Western China. Int. J. Biol. Sci. 2020;16: 388-95. https://dx.doi.org/10.7150/ijbs.39773.
  31. Van den Bosch T., Dueholm M., Leone F.P., Valentin L., Rasmussen C.K., Votino A. Terms, definitions and measurements to describe sonographic features of myometrium and uterine masses: a consensus opinion from the Morphological Uterus Sonographic Assessment (MUSA) group. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2015;46(3):284-98. https://dx.doi.org/10.1002/uog.14806.
  32. Kurjak A., Kupesic S., Shalan H., Jukic S., Kosuta D., Ilijas M. Uterine sarcoma: A report of 10 cases studied by transvaginal color and pulsed doppler sonography. Gynecol. Oncol. 1995;59(3):342-6. https://dx.doi.org/10.1006/gyno.1995.9965.
  33. Exacoustos C., Manganaro L., Zupi E. Imaging for the evaluation of endometriosis and adenomyosis. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2014;28(5):655-81. https://dx.doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2014.04.010.
  34. Wojtowicz K., Góra T., Guzik P., Harpula M., Chechliński P., Wolak E., Stryjkowska-Góra A. Uterine myomas and sarcomas - clinical and ultrasound characteristics and differential diagnosis using pulsed and color Doppler techniques. J. Ultrason. 2022;22(89):100-8. https://dx.doi.org/10.15557/JoU.2022.0017.
  35. Haugen G., Novakovic Z., Kirste U., Husby H., Dorenberg E. Uterine artery Doppler flow velocity waveform analysis following uterine fibroid embolisation. J. Obstet. Gynaecol. 2015;35(3):316-7. https://dx.doi.org/10.3109/01443615.2014.940298.
  36. Santos P., Cunha T.M. Uterine sarcomas: clinical presentation and MRI features. Diagn. Interv. Radiol. 2015;21(1):4-9. https://dx.doi.org/10.5152/dir.2014.14053.
  37. Sumi A., Terasaki H., Sanada S., Uchida M., Tomioka Y., Kamura T. et al. Assessment of MR imaging as a tool to differentiate between the major histological types of uterine sarcomas. Magn. Reson. Med. Sci. 2015;14(4):295-304. https://dx.doi.org/10.2463/mrms.2014-0023.
  38. Valdes-Devesa V., Jimenez M.D.M., Sanz-Rosa D., Espada Vaquero M., Alvarez Moreno E., Sainz de la Cuesta Abbad R. Preoperative diagnosis of atypical pelvic leiomyoma and sarcoma: the potential role of diffusion-weighted imaging. J. Obstet. Gynaecol. 2019;39(1):98-104. https://dx.doi.org/10.1080/01443615.2018.1466110.
  39. Lin Y., Wu R.-C., Huang Y.-L., Chen K., Tseng S.-C., Wang C.-J. et al. Uterine fibroid-like tumors: spectrum of MR imaging findings and their differential diagnosis. Abdom. Radiol. (NY). 2022;47(6):2197-208.https://dx.doi.org/10.1007/s00261-022-03431-6.
  40. Цхай В.Б., Каплунов В.А., Андреева А.А., Бадмаева С.Ж., Полстяная Г.Н.,Кузьмина С.В., Джунагова Э.Ш. Нарушение трофики и некроз миоматозного узла у беременных. Проблема сложного выбора для врача. Сибирское медицинское обозрение. 2021;4:110-6. [Tskhay V.B., Kaplunov V.A., Andreeva A.A., Badmaeva S.Zh., Polstyanaya G.N., Kuzmina S.V., Dzhunagova E.Sh. Trophicity decline and fi broid nodule necrosis in pregnant patients. The problem of physician’s difficult choice. Siberian Medical Review. 2021;(4):110-6. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.20333/25000136-2021-4-110-116.
  41. Stukan M., Rutkowski P., Smadja J., Bonvalot S. Ultrasound-guided trans-uterine cavity core needle biopsy of uterine myometrial tumors to differentiate sarcoma from a benign lesion - description of the method and review of the literature. Diagnostics (Basel). 2022;12(6):1348. https://dx.doi.org/10.3390/diagnostics12061348.
  42. Hinchcliff E., Esselen K.M., Watkins J.C., Oduyebo T., Rauh-Hain J.A., Del Carmen M.G. et al. The role of endometrial biopsy in the preoperative detection of uterine leiomyosarcoma. J. Minim. Invasive Gynecol. 2016;23(4):567-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.jmig.2016.01.022.
  43. Kho R.M., Desai V.B., Schwartz P.E., Wright J.D., Gross C.P., Hutchison L.M.et al. Endometrial sampling for preoperative diagnosis of uterine leiomyosarcoma. J. Minim. Invasive Gynecol. 2022;29(1):119-27. https://dx.doi.org/10.1016/j.jmig.2021.07.004.
  44. Bansal N., Herzog T.J., Burke W., Cohen C.J., Wright J.D. The utility of preoperative endometrial sampling for the detection of uterine sarcomas. Gynecol. Oncol. 2008;110(1):43-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.ygyno.2008.02.026.
  45. Epstein E., Van Calster B., Timmerman D., Nikman S. Subjective ultrasound assessment, the ADNEX model and ultrasound-guided tru-cut biopsy to differentiate disseminated primary ovarian cancer from metastatic non-ovarian cancer. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2016;47(1):110-6.https://dx.doi.org/10.1002/uog.14892.
  46. Park J.J., Kim C.K., Park B.K. Ultrasound-guided transvaginal core biopsy of pelvic masses: feasibility, safety, and short-term follow-up. Am. J. Roentgenol. 2016;206(4):877-82. https://dx.doi.org/10.2214/AJR.15.15702.
  47. Gronchi A., Miah A.B., Dei Tos A., Abecassis N., Bajpai J., Bauer S. et al. Soft tissue and visceral sarcomas: ESMO-EURACAN-GENTURIS Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann. Oncol. 2021;32:1348-65. https://dx.doi.org/10.1016/j.annonc.2021.07.006.
  48. Kubik-Huch R.A., Weston M., Nougaret S., Leonhardt H., Thomassin-Naggara I., Horta M. et al. European Society of Urogenital Radiology (ESUR) Guidelines: MR imaging of leiomyomas. Eur. Radiol. 2018;28(8):3125-37.https://dx.doi.org/10.1007/s00330-017-5157-5.
  49. Bonvalot S., Gronchi A., Hohenberger P., Litiere S., Pollock R.E, Raut Ch.P. et al. Management of primary retroperitoneal sarcoma (RPS) in the adult: a consensus approach from the Trans-Atlantic RPS Working Group. Ann. Surg. Oncol. 2015;22(1):256-63. https://dx.doi.org/10.1245/s10434-014-3965-2.
  50. Skorstad M., Kent A., Lieng M. Preoperative evaluation in women with uterine leiomyosarcoma. A nationwide cohort study. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2016;95(11):1228-34. https://dx.doi.org/10.1111/aogs.13008.
  51. Zhang F., Liu Y., Quan Q., Meng Y., Mu X. Diagnostic value of preoperative CA125, LDH and HE4 for leiomyosarcoma of the female reproductive system. Cancer Manag. Res. 2021;13:4657-64. https://dx.doi.org/10.2147/CMAR.S302223.
  52. Miao P., Sheng S., Sun X., Liu J., Huang G. Lactate dehydrogenase a in cancer: a promising target for diagnosis and therapy. IUBMB Life. 2013;65(11):904-10. https://dx.doi.org/10.1002/iub.1216.
  53. Sheng S.L., Liu J.J., Dai Y.H., Sun X.G., Xiong X.P., Huang G. Knockdown of lactate dehydrogenase a suppresses tumor growth and metastasis of human hepatocellular carcinoma. FEBS J. 2012;279(20):3898-910.https://dx.doi.org/10.1111/j.1742-4658.2012.08748.x.
  54. Wang Z.-Y., Loo T.Y., Shen J.-G., Wang N., Wang D.-M., Yang D.-P. et al. LDH-A silencing suppresses breast cancer tumorigenicity through induction of oxidative stress mediated mitochondrial pathway apoptosis. Breast Cancer Res. Treat. 2012;131(3):791-800. https://dx.doi.org/10.1007/s10549-011-1466-6.
  55. Goto A., Takeuchi S., Sugimura K., Maruo T. Usefulness of Gd-DTPA contrast-enhanced dynamic MRI and serum determination of LDH and its isozymes in the differential diagnosis of leiomyosarcoma from degenerated leiomyoma of the uterus. Int. J. Gynecol. Cancer. 2002;12(4):354-61. https://dx.doi.org/10.1046/j.1525-1438.2002.01086.x.
  56. Nagai T., Takai Y., Akahori T., Ishida H., Hanaoka T., Uotani T. et al. Novel uterine sarcoma preoperative diagnosis score predicts the need for surgery in patients presenting with a uterine mass. SpringerPlus. 2014;3:678.https://dx.doi.org/10.1186/2193-1801-3-678.
  57. Kusunoki S., Terao Y., Ujihira T., Fujino K., Kaneda H., Kimura M. et al. Efficacy of PET/CT to exclude leiomyoma in patients with lesions suspicious for uterine sarcoma on MRI. Taiwan J. Obstet. Gynecol. 2017;56(4):508-13.https://dx.doi.org/10.1016/j.tjog.2017.05.003.
  58. Nishigaya Y., Kobayashi Y., Matsuzawa Y., Hasegawa K., Fukasawa I., Watanabe Y. et al. Diagnostic value of combination serum assay of lactate dehydrogenase, D-dimer, and C-reactive protein for uterine leiomyosarcoma. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2019;45(1):189-94. https://dx.doi.org/10.1111/jog.13792.
  59. Nagai T., Takai Y., Akahori T., Ishida H., Hanaoka T., Uotani T. et al. Highly improved accuracy of the revised preoperative sarcoma score (rPRESS) in the decision of performing surgery for patients presenting with a uterine mass. Springerplus. 2015;4:520. https://dx.doi.org/10.1186/s40064-015-1318-7.
  60. Zhang G., Yu X., Zhu L., Fan Q., Shi H., Lang J. Preoperative clinical characteristics scoring system for differentiating uterine leiomyosarcoma from fibroid. BMC Cancer. 2020;20(1):514. https://dx.doi.org/10.1186/s12885-020-07003-z.
  61. Denschlag D., Ackermann S., Battista M.J., Cremer W., Egerer G., Fehr M. et al. Sarcoma of the uterus. Guideline of the DGGG, OEGGG and SGGG (S2k-Level, AWMF registry No. 015/074, April 2021). Geburtshilfe Frauenheilkd. 2022;82(12):1337-67. https://dx.doi.org/10.1055/a-1897-5124.

Received 28.08.2023

Accepted 20.12.2023

About the Authors

Vitaly B. Tskhay, Dr. Med. Sci., Professor, Head of the Department of Perinatology, Obstetrics and Gynecology of the Medical Faculty, Prof. V.F. Voino-Yasenetsky Krasnoyarsk State Medical University, Ministry of Health of Russia, +7(923)287-21-34, tchai@yandex.ru, 660022, Russia, Krasnoyarsk, P. Zheleznyak str., 1.
Alexander I. Pashov, Dr. Med. Sci., Professor, Head of the Department of Obstetrics and Gynecology of the Medical Institute, I. Kant Baltic Federal University,
+7(911)461-49-98, pachov@mail.ru, 236016, Russia, Kaliningrad, A. Nevsky str., 14.
Valeria V. Rachkovskaya, postgraduate student of the Department of Obstetrics and Gynecology of the Medical Institute, I. Kant Baltic Federal University, +7(952)117-48-18, losevavaleria2104@mail.ru, 236016, Russia, Kaliningrad, A. Nevsky str., 14.
Corresponding author: Valeria V. Rachkovskaya, losevavaleria2104@mail.ru

Similar Articles