The value of folates for child health and development

Narogan M.V., Lazareva V.V., Ryumina I.I., Vedikhina I.A.

1) Academician V. I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia
The literature review describes a modern view on the metabolism of folates and folic acid in the human body and their role in the development of a child. It presents studies used to diagnose folate deficiency. The authors discuss the sequelae of folate deficiency and folic acid excess in pregnant women and newborn infants. They analyze data on the folate status of premature babies. Existing studies show that there is no risk of folate deficiency in premature infants receiving the current feeding regimens, and uncontrolled additional prescription of folic acid can lead to its excessive intake and excessive blood concentrations in premature infants.

Keywords

folate
folic acid
fetus
premature infants

Соединения фолиевой кислоты (фолаты, витамин В9) являются незаменимыми микронутриентами как для развития плода и ребенка, так и для жизнедеятельности организма в целом. Название «фолаты» происходит от латинского folium (лист) по первому месту их обнаружения – в листьях шпината. К настоящему времени известно более 150 соединений фолатов, которые относятся к водорастворимым витаминам и могут поступать в организм в виде фолилполиглютаматов, фолиевой кислоты и ее дериватов, включая 5-метилтетрагидрофолат (5-МТГФ) – метафолин) [1–3].

Метаболизм природных фолатов

Фолилполиглютаматы представляют собой основную природную форму витамина В9. Они содержатся во многих продуктах питания. Наиболее высок уровень фолатов в бобовых, зеленых овощах, зелени, печени животных, орехах, семенах подсолнечника. Цельнозерновые продукты являются лучшим источником фолатов, в сравнении с рафинированной мукой. Концентрация фолатов увеличивается в процессе прорастания зерен, а также при ферментации за счет синтеза фолатов дрожжами или молочнокислыми бактериями. С другой стороны, многие условия приводят к потере фолатов в продуктах (нагревание, измельчение, длительное хранение, воздействие света). Таким образом, обеспеченность организма природными фолатами будет зависеть от многих факторов, включающих диетические, географические и социально-экономические [1, 2, 4]. Фолаты синтезируются некоторыми бактериями кишечника; однако их всасывание в дистальных отделах тонкой кишки и в толстой кишке замедлено и не может компенсировать дефицит их поступления. [5]

Недостаток фолатов может развиваться при диете, обедненной фолатсодержащими продуктами, синдроме мальабсорбции (в т.ч. после резекции желудка для коррекции массы тела), алкоголизме, курении, сахарном диабете, гипотиреозе, а также при приеме ряда лекарственных средств (антиконвульсанты, сульфаниламиды, метотрексат, комбинированные гормональные контрацептивы). Наибольшему риску недостаточности фолатов подвержены определенные группы населения: беременные женщины и маленькие дети, особенно родившиеся недоношенными [2, 4, 6, 7].

В настоящее время критерием для определения фолат-дефицита является концентрация фолатов в сыворотке крови или в эритроцитах, ниже которой имеется риск развития мегалобластной анемии или гипергомоцистеинемии. Однако для снижения риска пороков развития нервной трубки у плода, чтобы обеспечивать быстро делящиеся клетки во время эмбрионального развития, требуются значительно более высокие концентрации фолатов в крови. В связи с этим был принят термин «недостаточность фолатов», определяющийся по уровню фолатов в эритроцитах у женщин репродуктивного возраста, ниже которого увеличивается риск развития пороков нервной трубки у плода [7-9]. В настоящее время четкое представление о распространенности фолат-дефицита и фолат-недостаточности среди населения и его групп отсутствует в связи с ограниченным числом данных, использованием различных методов определения фолатов в сыворотке и эритроцитах и различной их интерпретацией. Некоторое общее представление о фолатном статусе женщин репродуктивного возраста дано в обзоре Rogers L. et al. [7]. Дефицит фолатов определен у более 20% женщин в странах с низким уровнем доходов и у менее 5% – в странах с высоким уровнем доходов; в то же время недостаточность фолатов имела место более чем у 40% женщин в большинстве стран.

Биодоступность природных фолатов вариабельна; в смешанном питании она в среднем составляет около 50%, по одним данным [3], или 30–98% от биодоступности синтетической фолиевой кислоты – по другим [4]. Чтобы абсорбироваться, фолилполиглютаматы пищи гидролизуются в проксимальных отделах тонкой кишки до моноглутаматов, а затем в энтероцитах образуется 5-МТГФ – основная циркулирующая форма витамина В9 [1, 2, 5, 10]. Из кровяного русла внутрь клеток 5-МТГФ проникает с помощью фолат-транспортеров и деметилируется там в тетрагидрофолат (ТГФ) при участии В12-зависимого фермента метионинсинтазы; при этом метильная группа включается в цикл преобразования гомоцистеина в метионин. ТГФ становится звеном в биосинтезе предшественников ДНК (пуринов и пиримидинов), а также метаболизируется обратно в 5-МТГФ с помощью метилентетрагидрофолатредуктазы (МТГФР) (рисунок).

Фолаты имеют важнейшее значение для удаления избытка гомоцистеина. Дефицит фолатов ведет к повышению в плазме гомоцистеина, который обладает цитотоксическими свойствами. Снижение его концентрации в клетках обеспечивается двумя способами: с помощью фолат-зависимого реметилирования до метионина и путем транссульфирования с образованием цистатионина и затем – цистеина. Образовавшийся с участием фолатов метионин вновь через ряд превращений преобразуется в гомоцистеин, а освободившаяся метильная группа вступает в реакции метилирования ДНК, ядерных белков – гистонов и других компонентов обмена (рисунок)

Метаболизм фолиевой кислоты и метафолина

Фолиевая кислота (птероилмоноглутаминовая кислота), синтетическая форма витамина В9, не встречается в природе, но ее широко используют для добавок и фортификации продуктов. Фолиевая кислота, в отличие от природных форм фолатов, не разрушается при нагревании и воздействии ультрафиолетового света и обладает гораздо большей биодоступностью. Однако ее метаболизм отличается от обмена природных фолатов. В отличие от природных фолатов, для включения в метаболические процессы фолиевая кислота должна сначала восстановиться до дигидрофолата, затем до ТГФ с помощью фермента дигидрофолатредуктазы (ДГФР); в последующем из ТГФ образуется 5,10-метилентетрагидрофолат (5,10-МТГФ), и далее он восстанавливается до 5-метилтетрагидрофолат (5-МТГФ) с участием фермента метилентетрагидрофолатредуктазы(МТГФР). Биотрансформация и всасывание фолиевой кислоты в форме 5-МТГФ – насыщаемый процесс, и выше определенных пороговых доз (200–400 мкг) фолиевая кислота начинает всасываться в неизмененном виде, что ведет к появлению неметаболизированной фолиевой кислоты в кровотоке, которая захватывается клетками и изменяет течение обменных процессов (рисунок) [11, 13]

Наличие неметаболизированной фолиевой кислоты в кровообращении почти повсеместно встречается в районах, где введена фортификация продуктов фолиевой кислотой [14]. Она поступает в клетки через взаимодействие с фолат-транспортерами мембраны, которые имеют более высокое сродство к синтетической фолиевой кислоте, чем к 5-МГТФ. Вследствие этого избыток фолиевой кислоты будет ингибировать транспорт в клетки 5-МГТФ и провоцировать его функциональный дефицит. Внутри клетки фолиевая кислота должна пройти два последовательных этапа восстановления до ТГФ с участием ДГФР (рисунок). Активность ДГФР у человека относительно низкая, что может вести к накоплению дигидрофолата. In vitro дигидрофолат способен подавлять активность МТГФР и еще одного фермента – тимидилатсинтазы, которая катализирует образование пиримидинов из 5,10-МТГФ. Таким образом, избыток фолиевой кислоты ведет к частичному блокированию метаболизма эндогенных фолатов в клетке [1, 2, 11, 14].

На цикл обмена фолатов в организме влияет степень активности ферментов фолатного цикла. Основным ферментом фолатного цикла, связывающим реакции синтеза нуклеотидов и цикл метилирования, является МТГФР. Между тем известна высокая распространенность генетического полиморфизма гена МТГФР среди населения: гомозиготный полиморфизм встречается в 15–20% случаев, гетерозиготный – в 40–60%. В результате генетического полиморфизма функция данного фермента снижается, при гомозиготной форме – на 70–75% исходной, при гетерозиготной – на 30–35%, что ведет к уменьшению образования 5-МГТФ, развитию дефицита фолатов, гипергомоцистеинемии, повышенному риску осложнений беременности, спонтанных абортов, пороков нервной трубки у плода. При этом эффективность от дотации фолиевой кислоты в этих группах будет более низкой [2, 3, 10].

Метафолин (кальциевая соль 5-МТГФ) — еще одно синтетическое производное витамина В9, которое все чаще используется для дотации в связи с рядом его преимуществ по сравнению с фолиевой кислотой. Метафолин в организме диссоциирует на ионы кальция и 5-МТГФ; 5-МТГФ всасывается в кровь без участия ферментативных систем кишечника, непосредственно захватывается клетками и используется в обменных процессах. С ним не связаны нарушения физиологического метаболизма фолатов в организме, поэтому именно эту форму в настоящее время рекомендуют для дотации. Кроме того, высокая распространенность генетического полиморфизма МТГФР среди населения, создает преимущество для применения этой формы фолата [2, 10, 15].

Физиологическая роль фолатов

Фолаты – необходимые компоненты для синтеза нуклеотидов, без них невозможны деление и нормальный рост всех клеток. Фолаты принимают участие в реакциях метилирования гормонов, липидов, нейромедиаторов и других компонентов обмена веществ. Одним из важнейших субстратов для метилирования является ДНК. Метилирование ДНК обеспечивает функционирование клеточного генома, регуляцию онтогенеза, клеточную дифференцировку, эпигенетические процессы. Дефицит фолатов в первую очередь отражается на быстро пролиферирующих клетках – кроветворных, эпителиальных, а также тканях зародыша, хориона и плода. Дефицит фолатов нарушает гемопоэз с развитием мегалобластного типа кроветворения, анемии, тромбоцитопении и лейкопении. Нарушение деления эпителиальных клеток приводит к ухудшению регенерации кожи и слизистых оболочек, повышению риска злокачественных заболеваний. Расстройство работы генома эмбриональных клеток ведет к дизэмбриогенезу и формированию пороков развития у плода [2, 4, 10].

Фолаты крайне необходимы для нейрогенеза. Хорошо известна профилактическая роль приема фолатов во время беременности для снижения риска пороков развития плода, особенно дефектов нервной трубки. Нарушение цикла метилирования в результате недостатка фолатов также способствует повреждению оболочки нервных окончаний и расстройству проведения нервных импульсов [1, 2, 16, 17].

Недостаточность фолатов нарушает пролиферацию ворсин хориона и формирование плаценты, что ведет к осложненному течению беременности: повышается риск невынашивания, плацентарной недостаточности, преэклампсии, задержки роста плода, отслойки плаценты. Риск данных осложнений еще более возрастает при высоком уровне гомоцистеина, обмен которого напрямую связан с обменом фолатов. Гипергомоцистеинемия усиливает тромбообразование в зоне плацентации, вследствие чего может нарушаться кровообращение в плаценте, формироваться ее отслойки, инфаркты и плацентарная недостаточность [1, 3, 10]. Также гипергомоцистеинемия является фактором риска сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ), так как вызывает повреждение эндотелия сосудов, что активирует тромбообразование и формирование атеросклеротических бляшек [2].

Фолатный статус матери во время беременности имеет важное значение для последующего развития ребенка. С низким потреблением фолатов во время беременности ассоциированы риски нарушений нервно-психического развития, когнитивных расстройств, аутизма и шизофрении [2, 10, 18].

К настоящему времени многие исследования подтвердили необходимость дополнительного приема фолатов во время беременности для предотвращения их недостаточности у матери и обеспечения нормального развития плода, причем отмечается необходимость начала профилактики за 2–3 месяца до зачатия [3, 17, 19]. В России прием 400 мкг фолиевой кислоты во время беременности регламентирован Приказом от 01.11.2012 № 572 «Об утверждении порядка оказания медицинской помощи по профилю “акушерство и гинекология (за исключением использования вспомогательных репродуктивных технологий)”».

Возможные неблагоприятные эффекты повышенных доз фолиевой кислоты

В литературе обсуждаются вопросы, связанные с эффективными и безопасными дозами дотации синтетической фолиевой кислоты. Возможные неблагопрятные эффекты избытка неметаболизированной фолиевой кислоты в настоящее время являются предметом исследований. Неметаболизированная фолиевая кислота, поступая в клетки, блокирует рецепторы и ферменты, с которыми взаимодействуют эндогенные восстановленные фолаты, и, несмотря на избыточный прием фолиевой кислоты, может возникнуть функциональный фолат-дефицит [1–3, 11]

Назначение высоких доз фолиевой кислоты опасно при недостаточности витамина В12, так как происходит маскировка симптомов анемии, но в то же время прогрессируют неврологические нарушения, развивается нарушение метилирования миелина и расстройство проводимости нервных импульсов. Данный эффект является следствием того, что с витамином В12 связана активность фермента метионинсинтазы, отвечающего за перенос метильной группы 5-МГТФ в цикле метилирования. [1, 10, 13, 18]

Существуют серьезные опасения в отношении возможности стимуляции опухолевых процессов при избыточном уровне фолиевой кислоты [11, 18, 20].

Фолаты поступают к плоду через плаценту. Плацента не является препятствием для прохождения неметаболизированной фолиевой кислоты, которая обнаруживается в пуповинной крови [18]. Избыток синтетической фолиевой кислоты может менять метилирование ДНК и экспрессию генов у плода и иметь неблагоприятные последствия для плода и ребенка. В экспериментальных работах показано, что высокие дозы фолиевой кислоты во время беременности приводят к повышенным эмбриональным потерям, задержке развития плода, а также изменяют экспрессию ряда генов в полушариях головного мозга плодов, в том числе генов, ответственных за регуляцию нервно-психического развития. Дискутируется вопрос о вовлечении генов, возможно связанных с развитием аутизма и интеллектуальной недостаточности у потомства. Влияние высоких доз фолиевой кислоты приводило к формированию гипервозбудимых нейронных сетей, гиперактивности и повышенной тревожности у новорожденных, а также к возможному повышению риска эпилепсии [11, 19, 21–23]. Имеются экспериментальные данные неблагоприятного влияния избытка фолиевой кислоты на мужские половые клетки, что происходит в результате изменения паттерна метилирования ДНК и эпигенома сперматозоидов, причем эти изменения могут передаваться потомству [24].

В ряде клинических исследований обнаруживалась корреляция повышенного уровня фолатов во время беременности с уменьшением размеров эмбрионов, повышением риска атопического дерматита, инсулинорезистентности и ожирения у детей [2, 10, 11, 13, 21, 25-27]. Однако эти результаты противоречивы и требуют дальнейшего подтверждения [19, 20].

Кроме того, существует предположение, что раннее воздействие на плод избыточной синтетической фолиевой кислоты может способствовать генетическому отбору генотипа MTHFR 677T, который связан с развитием ряда дегенеративных состояний, включая ССЗ и болезнь Альцгеймера [18].

Фолаты активно транспортируются в грудное молоко, что создает минимальную зависимость их концентрации в молоке от фолат-статуса матери (за исключение случаев глубокого фолат-дефицита). Природные фолаты в грудном молоке представлены в большей степени 5-МТГФ и в меньшей – редуцированными фолилполиглютаматами. Дотация матери фолиевой кислоты приводит к небольшому, но достоверному повышению общего содержания фолатов в молоке [14]; однако при этом у большинства (96%) женщин в молоке обнаруживается неметаболизированная фолиевая кислота [14, 28]. В одном из исследований показано, что повышение уровня фолатов в молоке происходит диспропорционально, за счет увеличения неметаболизированной фолиевой кислоты и снижения содержания 5-МТГФ. Так, доля неметаболизированной фолиевой кислоты в молоке женщин, употреблявших до 400 мкг фолиевой кислоты в сутки, составила 26%, а у женщин с дозой 400–1000 мкг – 47%. Одним из объяснений данной диспропорции является существование большего сродства эпителиального рецептора молочной железы, а также фолат-связывающего белка молока к фолиевой кислоте, чем к 5-МТГФ. Хотя точные последствия этого для здоровья матери и ребенка неизвестны, однако можно предположить, что появление неметаболизированной фолиевой кислоты в грудном молоке является показателем ее избыточного поступления, которого следует избегать [14].

Неблагоприятное влияние высоких добавок

фолиевой кислоты может зависеть от индивидуальных генетических особенностей. Так, группы населения с гомозиготной делецией в 19 bp гена DHFR (составляют 20% в США) более чувствительны в неблагоприятному влиянию избытка неметаболизированной фолиевой кислоты [11].

Таким образом, для организма становится опасен не только недостаток фолатов, но и избыток синтетической фолиевой кислоты.

В настоящее время определены следующие профилактические дозы фолиевой кислоты: для взрослых – 400 мкг/сут, беременных и кормящих женщин – 400–800 мкг/сут, верхним допустимым уровнем считается 1000 мкг/сут [1, 28].

Ввиду того, что неметаболизированная фолиевая кислота может индуцировать неблагоприятные эф­фекты и потенциальное эпигенетическое воздейст­вие на геном плода и ребенка, необходимо избе­гать нерегулируемых добавок с высоким содер­жанием фолиевой кислоты.

Оценка обеспеченности фолатами организма

Определение достаточности и дефицита фолатов основывается на лабораторных методах оценки уровня фолатов в сыворотке крови и эритроцитах. Концентрация фолатов в сыворотке быстро реагирует на их поступление в организм и отражает краткосрочные и преходящие их колебания. Содержание фолатов в эритроцитах – показатель долгосрочного фолатного статуса за 3–4 месяца (120 дней жизни эритроцита), и он тесно коррелирует с уровнем запасов фолатов в печени. Уровень фолатов можно определять биохимическими, иммунологическими, хроматографическими, а также микробиологическими методами с использованием тест-организмов, для которых фолиевая кислота является незаменимым ростовым фактором [7–9]. Высокоэффективная жидкостная хроматография, особенно в сочетании с масс-спектрометрией, является высокоточным, но нечасто используемым методом в рутинной практике клинических лабораторий. В настоящее время наиболее распространены микробиологические и иммунохимические методы определения фолатов. Среди иммунохимических методов чаще применяются автоматизированные иммунохимические методы с хемилюминесцентной или с электрохемилюминесцентной детекцией. Различные иммунохимические тесты отличаются по их способам разделения свободной и связанной фракции фолатов, а также по выбору метода предварительной обработки образцов.

В связи с использованием различных методов определения содержания фолатов в организме, различных референсных значений, интерпретация и сравнение результатов исследований затруднены. Некоторые референсные значения в зависимости от использованных методов были представлены Pfeiffer C. et al. [9]. Так, фолат-дефицит, определенный микробиологическим методом со штаммом дикого типа Lactobacillus rhamnosus и калибратором по фолиевой кислоте, диагностируется, если концентрация фолатов в сыворотке менее 7 нмоль/л или в эритроцитах – менее 305 нмоль/л. С другой стороны, фолат-дефицит, основанный на росте гомоцистеина и применении микробиологического метода с хлорамфениколрезистентным штаммом и 5-МТГФ калибратором, определяется при уровне фолатов сыворотки менее 14 нмоль/л или в эритроцитах – менее 624 нмоль/л; недостаточность фолата (граница риска пороков нервной трубки у плода) этим же методом диагностируется при уровне фолатов в эритроцитах менее 748 нмоль/л. В то же время во многих работах по изучению фолат-статуса недоношенных детей используются иммунохимические методы, при этом нижним пределом содержания фолатов в сыворотке считается 7 нмоль/л, фолатов в эритроцитах – 317 нмоль/л, нормальным уровнем содержания фолатов в эритроцитах – 340–1360 нмоль/л [6, 29–33].

Обеспеченность фолатами недоношенных детей

В ряде работ, посвященных исследованию уровня фолатов у новорожденных детей, было показано, что у недоношенных детей отмечаются более низкие концентрации фолиевой кислоты в эритроцитах, чем у доношенных, вероятно, за счет более активной передачи фолиевой кислоты плоду в последние недели беременности. Однако как доношенные, так и недоношенные дети рождаются с более высокими концентрациями фолатов в сыворотке и эритроцитах, значительно превышающими таковые у их матерей и средние значения у взрослых [31, 32, 34].

В 1970–1980-х гг. вопросам профилактики и лечения анемии у недоношенных детей были посвящены различные исследования, в том числе было обнаружено, что в течение первых 2–3 месяцев жизни у недоношенных детей происходит снижение уровня сывороточных фолатов. В связи с этим распространились рекомендации о необходимости дотации фолиевой кислоты недоношенным детям в диапазоне 20–200 мкг в сутки [31, 34, 35]. Однако эти результаты были получены до наступления эры современных концепций вскармливания недоношенных детей. И, несмотря на изменение питания недоношенных детей: появление специализированных питательных формул, обогатителей грудного молока, витаминов для парентерального питания, которые содержат фолиевую кислоту, рутинное дополнительное назначение фолиевой кислоты сохраняется [30–32]. При этом необходимо отметить, что во многих странах, в том числе и в России, зарегистрированы только таблетированные формы фолиевой кислоты, которые по отношению к новорожденным и недоношенным относятся к группе «off label».

Суточная потребность в фолатах у недоношенных детей составляет 35–100 мкг/кг при энтеральном питании и 56 мкг/кг – при парентеральном. Если недоношенный ребенок получает эритропоэтин с целью профилактики анемии недоношенных, рекомендуется 100 мкг/кг фолиевой кислоты в сутки [36–38]. Содержание фолатов в грудном молоке, по данным разных авторов, значительно варьирует – от 0,4 до 28 мкг/100 мл, в среднем составляя 3,3–14 мкг/100 мл [6, 28, 32, 34, 37, 38], что может быть недостаточным для недоношенных детей. Однако обогащение грудного молока или вскармливание специализированной смесью для недоношенных обеспечит поступление 50–100 мкг/кг фолатов в сутки. С другой стороны, уровень фолатов на первом месяце жизни недоношенных зависит от потребления фолатов матерью во время беременности. Дотация фолиевой кислоты во время беременности обеспечивает более высокую концентрацию фолатов в крови матери, ее новорожденного ребенка, а также в грудном молоке [6, 30, 32].

В работах 2007–2016 гг. было показано, что нет риска дефицита фолатов у недоношенных детей, если их матери получали добавки фолиевой кислоты во время беременности, а дети получали оптимальное парентеральное и энтеральное питание [6, 30–32]. Ни у одного ребенка не выявлено снижения уровня фолатов в эритроцитах или сыворотке и не обнаружено повышения уровня гомоцистеина как маркера дефицита фолатов. Хотя не было точного учета уровня потребления матерью фолатов во время беременности, в данных работах показано, что содержание фолатов в крови недоношенных детей в первые недели жизни достаточно высокое; средняя концентрация в эритроцитах составила 1457–2691 нмоль/мл, в сыворотке – 48–75 нмоль/л. Уровень фолатов в возрасте 1–2 месяцев жизни у недоношенных зависел от типа питания и дотации фолиевой кислоты. При вскармливании фортифицированным грудным молоком или специализированной молочной смесью уровень фолатов оставался на высоком уровне: в эритроцитах, в среднем, 2152 нмоль/л [31], в сыворотке – 87–96 нмоль/л [30]. В одной работе отмечено, что даже вскармливание глубоконедоношенных детей необогащенным грудным молоком не привело к дефициту фолатов к 36-й неделе постконцептуального возраста, средний уровень фолатов в сыворотке составил 59 нмоль/л [30].

Между тем заслуживают внимания факты чрезмерно высоких концентраций фолатов в крови недоношенных детей. Так, при дополнительном назначении 75–100 мкг/сутки фолиевой кислоты средние уровни фолатов в эритроцитах составили 2690–3838 нмоль/л, в сыворотке – 80 нмоль/л; при этом максимальная концентрация достигала 12424 и 187 нмоль/л соответственно [6, 32]. В литературе описаны и отдельные случаи чрезмерно высоких концентраций фолатов в крови недоношенных детей с экстремально низкой массой тела при рождении, доходящих до уровня 12498 нмоль/л в эритроцитах, что, по предположению авторов, могло быть связано, в том числе, с гемотрансфузиями [29].

Заключение

Фолаты – незаменимые компоненты питания человека. Безусловно, дефицит и недостаточность фолатов имеют значительное неблагоприятное влияние на развитие плода и ребенка. Однако, учитывая особенности метаболизма синтетической фолиевой кислоты, необходимо иметь в виду, что ее избыточная дотация может иметь отрицательное воздействие на здоровье человека. В настоящее время на фоне применения современных схем вскармливания нет риска дефицита фолатов у недоношенных детей, а бесконтрольное дополнительное назначение фолиевой кислоты может приводить к ее избыточному поступлению и чрезмерным концентрациям в крови недоношенных детей.

References

  1. Керкешко Г.О., Арутюнян А.В., Аржанова О.Н., Милютина Ю.П. Оптимизация терапии фолатами при осложнениях беременности. Журнал акушерства и женских болезней. 2013; 62(6): 25-36. [Kerkeshko G.O., Arutyunyan A.V., Arzhanova O.N., Milyutina Yu.P. Optimization of folate therapy for pregnancy complications. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases, 2013; 6: 25-36. (In Russ.)]
  2. Пустотина О.А. Достижения и риски применения фолатов вне и во время беременности. Медицинский совет. 2015; 9: 92-9. [Pustotina O.A. Achievements and risks of using folates outside and during pregnancy. J.Medical Council, 2015; 9: 92-99. (InRuss.)]
  3. Thaler C.J. Folate metabolism and human reproduction. Geburtsh. Frauenheilkd. 2014; 74(9): 845-85.
  4. Saubade F., Hemery Y.M., Guyot J.-P., Humblot C. Lactic acid fermentation as a tool for increasing the folate content of foods. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2017; 57(18): 3894-910. https://doi.org/10.1080/10408398.2016.1192986.
  5. Visentin M., Diop-Bove N., Zhao R., Goldman I.D. The intestinal absorption of folates. Annu. Rev. Physiol. 2014; 76: 251-74. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-020911-153251.
  6. Revakova T., Revak O., Vasilenkova A., Behulova D., Brucknerova I. Amount of folic acid in different types of nutrition used in the neonatal period. Bratisl. Lek. Listy. 2015; 116(6): 349-53.
  7. Rogers L.M., Cordero A.M., Pfeiffer C.M., Hausman D.B., Tsang B.L., De-Regil L.M. et al. Global folate status in women of reproductive age: a systematic review with emphasis on methodological issues. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2018; 1431(1): 35-57. https://doi.org/10.1111/nyas.13963.
  8. Bailey L.B., Hausman D.B. Folate status in women of reproductive age as basis of neural tube defect risk assessment. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2018; 1414(1): 82-95. https://doi.org/10.1111/nyas.13511.
  9. Pfeiffer C.M., Sternberg M.R., Hamner H.C., Crider K.S., Lacher D.A., Rogers L.M. et al. Applying inappropriate cutoffs leads to misinterpretation of folate status in the US population. Am. J. Clin. Nutr. 2016; 104(6): 1607-15.
  10. Пустотина О.А., Ахмедова А.Э. Роль фолатов в развитии осложнений беременности. Эффективная терапия в акушерстве и гинекологии. 2014; 3: 66-74. [Pustotina O.A., Akhmedova A.E. The role of folate in the development of pregnancy complications. Effective therapy in obstetrics and gynecology. 2014; 3: 66-74. (InRuss.)]
  11. Patel K.R., Sobczyńska-Malefora A. The adverse effects of an excessive folic acid intake. Eur. J. Clin. Nutr. 2017; 71(2): 159-63. https://doi.org/10.1038/ejcn.2016.
  12. Bodnar L.M., Himes K.P., Venkataramanan R., Chen J.Y., Evans R.W., Meyer J.L., Simhan H.N. Maternal serum folate species in early pregnancy and risk of preterm birth. Am. J. Clin. Nutr. 2010; 92(4): 864-71. https://doi.org/10.3945/ajcn.2010.29675.
  13. Келли П., МакПартлин Дж., Гоггинз М., Вайр Д.Г., Скотт Дж.М.. Неметаболизированная фолиевая кислота в сыворотке: исследования непосредственных эффектов вещества у людей, употребляющих обогащенные продукты питания и добавки. Эффективная фармакотерапия. 2014; 1: 22-31. [Kelly P., McPartlin J., Goggins M., Weir D.G., Scott J.M. Non-metabolized folic acid in serum: studies of the direct effects of the substance in people who use fortified foods and supplements. Effective pharmacotherapy. Obstetrics and Gynecology, 2014; 1: 22-31. (In Russ.)]
  14. Page R., Robichaud A., Arbuckle T.E., Fraser W.D., MacFarlane A.J. Total folate and unmetabolized folic acid in the breast milk of a cross-section of Canadian women. Am. J. Clin. Nutr. 2017; 105(5): 1101-9. https://doi.org/10.3945/ajcn.116.137968.
  15. Громова О.А., Торшин И.Ю., Тетруашвили Н.К., Лиманова О.А. Активные формы фолатов в акушерстве. Акушерство и гинекология. 2013; 8: 97-102.[Gromova O.A., Torshin I.Yu., Tetruashvili N.K., Limanova O.A. Active folate forms in obstetrics. Obstetrics and Gynecology, 2013; 8: 97-102.(InRuss.)]
  16. Шеманаева Т.В., Воеводин С.М. Роль фолиевой кислоты в профилактике заболеваний нервной системы у плода. Российский вестник акушера-гинеколога. 2015; 15(5): 25-31.[Shemanaeva T.V., Voevodin S.M. The role of folic acid in the prevention of diseases of the nervous system in the fetus. Russian Bulletin of the obstetrician-gynecologist. 2015; 15 (5): 25-31. .(InRuss.)]. DOI: 10.17116/ rosakush201515425-31
  17. Цейцель Э.И. Первичная профилактика врожденных дефектов: поливитамины или фолиевая кислота? РМЖ. Мать и дитя. 2012; 20(21): 1122-32. [Zeitzel E.I.. Primary prevention of birth defects: multivitamins or folic acid? Breast cancer. 2012;21.(InRuss.)]
  18. Sweeney M.R., McPartlin J., Weir D.G., Daly S., Pentieva K., Daly L., Scott J.M.. Evidence of unmetabolised folic acid in cord blood of newborn and serum of 4-day-old infants. Br. J. Nutr. 2005; 94(5): 727-30. https://doi.org/10.1079/BJN20051572.
  19. McStay C.L., Prescott S.L., Bower C., Palmer D.J. Maternal folic acid supplementation during pregnancy and childhood allergic disease outcomes: a question of timing? Nutrients. 2017; 9(2). pii: E123. https://doi.org/10.3390/nu9020123.
  20. Colapinto C.K., O’Connor D.L., Sampson M., Williams B., Tremblay M.S. Systematic review of adverse health outcomes associated with high serum or red blood cell folate concentrations. J. Public Health (Oxf.). 2016; 38(2): e84-97. https://doi.org/10.1093/pubmed/fdv087.
  21. Barua S., Chadman K.K., Kuizon S., Buenaventura D., Stapley N.W., Ruocco F. et al. Increasing maternal or post-weaning folic acid alters gene expression and moderately changes behavior in the offspring. PLoS One. 2014; 9: e101674.
  22. Barua S., Kuizon S., Brown W.T., Junaid M.A. High gestational folic acid supplementation alters expression of imprinted and candidate autism susceptibility genes in a sex-specific manner in mouse offspring. J. Mol. Neurosci. 2016; 58(2): 277-86. https://doi.org/10.1007/s12031-015-0673-8.
  23. LyA. Maternal folic acid supplementation modulates DNA methylation and gene expression in the rat offspring in a gestation period-dependent and organ-specific manner. J. Nutr. Biochem. 2016l; 33: 103-10. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2016.03.018.
  24. Ly L., Chan D., Aarabi M., Landry M., Behan N.A., MacFarlane A.J., Trasler J. Intergenerational impact of paternal lifetime exposures to both folic acid deficiency and supplementation on reproductive outcomes and imprinted genemethylation. Mol. Hum. Reprod. 2017; 23(7): 461-77. https://doi.org/10.1093/molehr/gax029.
  25. Kiefte-de Jong J.C., Timmermans S., Jaddoe V.W., Hofman A., Tiemeier H., Steegers E.A. et al. High circulating folate and vitamin B-12 concentrations in women during pregnancy are associated with increased prevalence of atopic dermatitis in their offspring. J. Nutr. 2012; 142(4): 731-8.
  26. van Uitert E.M., van Ginkel S., Willemsen S.P., Lindemans J., Koning A.H., Eilers .PH. et al. An optimal periconception maternal folate status for embryonic size: the Rotterdam predict study. BJOG. 2014;121(7): 821-9.
  27. Krishnaveni G.V., Veena S.R., Karat S.C., Yajnik C.S., Fall C.H.D. Association between maternal folate concentrations during pregnancy and insulin resistance in Indian children. Diabetologia. 2014; 57(1): 110-21. https://doi.org/10.1007/s00125-013-3086-7.
  28. Houghton L.A., Yang J., O’Connor D.L. Unmetabolized folic acid and total folate concentrations in breast milk are unaffected by low-dose folate supplements. Am. J. Clin. Nutr. 2009; 89(1): 216-20. https://doi.org/10.3945/ajcn.2008.26564.
  29. Zikavska T., Brucknerova I. Extremely high concentration of folates in premature newborns. Bratisl. Lek. Listy. 2014; 115(2): 103-6.
  30. Oncel M.Y., Calisici E., Ozdemir R., Yurttutan S., Erdeve O., Karahan S., Dilmen U. Is folic acid supplementation really necessary in preterm infants ≤ 32 weeks of gestation? J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2014; 58(2): 188-92. https://doi.org/10.1097/MPG.0000000000000181.
  31. Jyothi S., Misra I., Morris G., Benton A., Griffin D., Allen S. Red cell folate and plasma homocysteine in preterm infants. Neonatology. 2007; 92(4): 264-8.
  32. Fatma Çakmak Çelik, Canan Aygün, Sedat Gülten, Abdulkerim Bedir, Erhan Çetinoğlu, Şükrü Küçüködük, Yüksel Bek. Assessment of different folic acid supplementation doses for low-birth-weight infants. Turk. Pediatri Ars. 2016; 51(4): 210-6. https://doi.org/10.5152/TurkPediatriArs.2016.4235.
  33. Glader B. Anemias of inadequate production. In: Kliegman R.M., ed. Nelson textbook of pediatrics. Philadelphia: Elsevier; 2007: 2006-17.
  34. Tamura T., Yoshimura Y., Arakawa T. Human milk folate and folate status in lactating mothers and their infants. Am. J. Clin. Nutr. 1980; 33(2): 193-7.
  35. Fuller N.J., Bates C.J., Cole T.J., Lucas A. Plasma folate levels in preterm infants, with and without a 1 mg daily folate supplement. Eur. J. Pediatr. 1992; 151: 48-50. https://doi.org/10.1007/BF02073891.
  36. Agostoni C., Buonocore G., Carnielli V.P., De Curtis M., Darmaun D., Decsi T. et al. Enteral nutrient supply forpreterm infants: commentary from the European Society of Paediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition Committee on Nutrition. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2013;50(1): 85-91.
  37. Gomella T.L., ed. Neonatology: management, procedures, on-call problems, diseases, and drugs. 7th ed. Medical Publishing Division; 2013. 1113 p.
  38. Uauy R., ed. Proceedings of the Global Neonatal Consensus Symposium: Feeding the preterm infant. October 13-15, 2010, Chicago, Illinois. J. Pediatr. 2013; 162(3, Suppl.): S1-116.

Reseived 25.02.2019

Accepted 19.04.2019

About the Authors

Narogan Marina Viktorovna, MD, Leading Researcher, Department of Pathology of Newborn and Premature Infants, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia; Professor, Department of Neonatology, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Ministry of Health of Russia; ORCID 0000-0002-3160-905X
E-mail: m_narogan@oparina4.ru. 4, Academician Oparin St., Moscow 117997, Russia; 8, Trubetskaya St., Build. 2, Moscow 119991
Lazareva Valentina Vladimirovna, Postgraduate Student, Department of Neonatology, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University),
Ministry of Health of Russia. E-mail: l_tifi@mail.ru 8, Trubetskaya St., Build. 2, Moscow 119991
Ryumina Irina Ivanovna, MD, Head, Department of Pathology of Newborn and Premature Infants, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. ORCID 0000-0003-1831-887X
E-mail: i_ryumina@oparina4.ru 4, Academician Oparin St., Moscow 117997, Russia
Vedikhina Irina Aleksandrovna, Biologist, Clinical Diagnostic Laboratory, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia E-mail: i_vedikhina@oparina4.ru 4, Academician Oparin St., Moscow 117997, Russia

For citation: Narogan M.V., Lazareva V.V., Ryumina I.I., Vedikhina I.A. The value of folates for child health and development.
Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and gynecology. 2019; 8:46-52 (in Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.8.46-52

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.