Urogenital mycoplasmosis and pregnancy

Põder A., Haldre M.

Tartu Univerisity Clinics Foundation
Urogenital mycoplasmas – Ureaplasma urealyticum, Ureaplasma parvum and Mycoplasma hominis have long been considered commensals of human urogenital microflora.
Objective. To clarify whether these bacteria could cause or be associated with various obstetric complications.
Materials and methods. Data from epidemiological studies published on this topic were included.
Results. Epidemiologic studies have found high prevalence of Ureaplasma spp. and M. hominis among otherwise healthy population. On the other hand, U.urealyticum, U. parvum and M. hominis have increasingly been linked to adverse pregnancy outcomes such as spontaneous pre-term labor, pre-term premature rupture of fetal membranes, miscarriage, stillbirth and low birth weight. However, no convincing causal relationship has been shown. Studies have shown that antibiotics resistance is on the rise and differs considerably by regions.
Conclusion. Screening of asymptomatic patients for M. hominis, U. urealyticum and U. parvum is currently still not indicated.

Keywords

urogenital mycoplasmosys
Ureaplasma urealyticum
Ureaplasma parvum
Mycoplasma hominis
pregnancy

Название «микоплазмы» применяется как общее название класса бактерий Mollicutes – мельчайших свободноживущих микроорганизмов. В урогенитальном тракте рассматриваемые бактерии Mollicutes называются Mycoplasma genitalium и Mycoplasma hominis, а две разновидности микоплазм – Ureaplasma urealyticum и Ureaplasma parvum.

Цель данной статьи: дать краткий обзор взаимосвязи вышеуказанных микоплазм и различных акушерских осложнений. Краткий обзор основан на новейших тенденциях в лечении микоплазмоза.

Эпидемиология

Уреаплазмы и микроорганизмы M. hominis считаются оппортунистическими патогенами, так как их можно выделить из нижнего отдела урогенитального тракта как здоровых, так и больных женщин. В доступной литературе сообщается, что распространенность U. urealyticum у женщин составляет 12–53% в образцах от различных популяций [1–4].

Распространенность M. hominis у женщин составляет 1,3–40% в образцах от различных популяций. Большое исследование 2480 пациенток, имевших симптомы инфекции, выявило M. hominis у 3,3% [5]. Некоторые исследования обнаружили микоплазмы M. hominis только в качестве сочетанной инфекции с уреаплазмами [6–8].

Распространенность M. genitalium составила 0,3–1,2% [7, 9], что оказалось ниже, чем распространенность Chlamydia trachomatis, но выше, чем Neisseria gonorrhoeae.

В табл. 1 кратко представлены данные различных исследований о распространенности урогенитальных микоплазм.

Как видно из табл. 1, распространенность значительно различается в разных исследованиях. Некоторые исследователи отдельно оценивали частоту выявления U. urealyticum и U. parvum. В этих исследованиях количество U. parvum составило 80% всех обнаруженных Ureaplasma spp.

Роль в акушерских осложнениях

Уреаплазмы и микоплазмы M. hominis считаются микроорганизмами-комменсалами микрофлоры организма человека, хотя во все большем количестве исследований обнаруживаются связи между неблагоприятными исходами беременности и колонизацией уреаплазмами и микоплазмами M. hominis. Тем не менее, до сих пор нет определенного консенсуса об их причинно-следственных взаимоотношениях. В следующем разделе кратко изложены последние полученные данные.

Ureaplasma spp.

Колонизация уреаплазмами генитального тракта связана с неблагоприятными исходами беременности, такими как: самопроизвольный выкидыш [10], преждевременный разрыв плодных оболочек (ПРПО) [4], преждевременные роды [11], неонатальная заболеваемость и перинатальная смертность [12]. Применяемая методология и образцы значительно отличаются в разных исследованиях, что затрудняет комбинирование и синтез результатов. В связи с этим данные представлены в табл. 2 в таком виде, как они были заявлены в исследованиях.

Witt и соавт. [13] обнаружили, что амниотическая полость была колонизована уреаплазмой U. urealyticum у 44% пациенток с ПРПО и преждевременными родами по сравнению с 2,7% беременных женщин в конт-рольной группе. Исследования Mitsunari и соавт. [11] поддерживают мнение о связи между присутствием уреаплазмы U. urealyticum в цервикальном канале и преждевременными родами (колонизация наблюдалась у 46% пациенток группы контроля по сравнению с 87% пациенток с преждевременными родами).

В незначительном количестве исследований проводится анализ отдельно для уреаплазм U. urealyticum и U. parvum и описывается влияние присутствия сразу двух типов уреаплазм Ureaplasma spp. Даже если в статье заявлено, что исследована U. ureaplasma, последующее тщательное изучение раздела «методы» обнаруживает, что применяемые методы не позволяет дифференциировать биовары. Тем не менее, некоторые исследователи провели разграничение. Kataoka и соавт. [14] обнаружили, что U. parvum (но не U. urealyticum) ассоциировали с поздним выкидышем или ранними преждевременными родами. Kasprzykowska и соавт. [15] пришли к заключению, что колонизация нижнего отдела урогенитального тракта уреаплазмами U. parvum может вызывать бессимптомную инфекцию верхнего отдела репродуктивной системы. Kasper и соавт. [16] установили, что увеличение количества уреаплазмы U. parvum в значительной степени было связано с гистологически подтвержденным хориоамнионитом, ПРПО, наряду с преждевременными родами, ранним сепсисом и бронхолегочной дисплазией. К этому можно добавить, что не наблюдалось значительного влияния бактериальной нагрузки U. urealyticum на исходы в неонатальном периоде [16]. Abele-Horn и соавт. [17] обнаружили значимость бактериальной нагрузки. В ходе исследования было выявлено, что высокий уровень колонизации (>105 КОЕ/мл) уреаплазмами U. urealyticum был связан со значительным увеличением частоты клинически значимого хориоамнионита, ПРПО и преждевременных родов. Колонизация низкой плотности не влияла на клинические признаки хориоамнионита и преждевременные роды [17].

Greenow и соавт. [18] провели исследование о возможности воздействия лечения эритромицином беременной женщины с высокой колонизацией уреаплазмы на массу тела ребенка при рождении, и не обнаружили статистически значимой разницы [18]. Однако в данном исследовании лечение антибиотиками было начато только в период между 22-й и 32-й неделями гестации, при том что такие неблагоприятные акушерские исходы, как выкидыш, могут возникнуть гораздо раньше.

M. hominis

Собраны доказательства, подтверждающие, что микоплазма хоминис (M. hominis) играет основную роль при заболевании бактериальным вагинозом (БВ). В свою очередь, последствием БВ может быть внутриутробная смерть плода [19]. Donders и соавт. [19] исследовали БВ и обнаружили, что наличие микоплазмы M. hominis и уреаплазмы U. urealyticum связаны с большим риском выкидыша на ранних сроках беременности. M. hominis может действовать симбиотически с другими бактериями, ассоциируемыми с БВ, или быть одиночным патогеном. Этот вывод сделан на основе наблюдения, что эта микоплазма может быть обнаружена в большом количестве во влагалище у большинства женщин с БВ, и реже – у здоровых женщин [20].

Микоплазма гениталиум (M. genitalium)

Mycoplasma genitalium является главным патогенным микроорганизмом, передающимся половым путем и вызывающим уретрит [21]. Однако не существует неопровержимых доказательств, поддерживающих его значимость в акушерских исходах и трубном бесплодии. Данные предполагают связь между цервицитом и микоплазмой M. genitalium. Подтверждающие доказательства причинно-следственной связи между воспалением тазовых органов и M. genitalium варьируют от умеренных до сильных. Тем не менее, до сих пор еще имеются противоречивые результаты [21]. Существующие данные в некоторой степени поддерживают гипотезу, что M. genitalium может вызывать женское бесплодие, но не позволяют сделать окончательный вывод [22]. Несколько исследований обнаружили независимую связь между наличием микоплазмы M. genitalium и преждевременными родами [23, 24]. Однако причинно-следственная связь наличия M. genitalium с неблагоприятными акушерскими исходами остается неустановленной [25].

Диагностика

Уреаплазмы и микоплазмы M. hominis считаются частью естественной микрофлоры здоровых женщин и мужчин. Следовательно, обнаружение этих бактерий имеет низкую положительную прогностическую значимость в отношении заболеваний. По этой причине в настоящее время в большинстве обзоров не рекомендуется включение этих патогенов в клинические протоколы рутинного скрининга инфекций, передаваемых половым путем, и заявляется, что к бессимптомным индивидуумам не следует применять метод скрининга культур или метод амплификации нуклеиновых кислот (МАНК).

Как обсуждалось ранее, обнаружение микоплазмы M. genitalium в высокой степени связано с заболеваниями. Так как она обнаруживается только в очень редких случаях у здоровых индивидуумов, положительная прогностическая значимость теста на микоплазму M. genitalium является высокой. Предполагается, что M. genitalium может оказаться среди микробов, выявленных рутинным скринигом, таких как хламидия трахоматис (C. Trachomatis) и гонококк (N. Gonorrhoeae).

Лабораторные методы исследования

Микроскопия культур

В прошлом культура считалась золотым стандартом в определении уреаплазм, но этот метод является трудным, поскольку эти микроорганизмы со сложными питательными потребностями требуют наличия сыворотки крови, метаболического субстрата и ростового фактора [26]. Кроме того, некоторые коммерческие наборы, доступные для диагностики урогенитальных инфекций, относящихся к классу молликутов, продемонстрировали недостаточную диагностическую чувствительность [27]. Отсутствие плотной клеточной стенки делает почти невозможной прямую визуализацию уреаплазмы с применением световой микроскопии. Лабораторное тестирование микоплазмы M. genitalium представляется особенно трудным, так как рост каждого изолята происходит в течение нескольких недель или даже месяцев, что делает невозможным использовать культуру для диагностики в рутинной клинической практике [28]. Поэтому из-за слабого и чрезвычайно медленного роста бактерии в культуре диагностика инфицирования микоплазмой M. genitalium выполняется исключительно МАНК [28].

Полимеразная цепная реакция (ПЦР)

Метод ПЦР был внедрен в практику благодаря возможности использовать различные клинические материалы, быстро получать результаты тестирования и возможности обнаруживать различные патогены в мазке [7]. ПЦР имеет большую чувствительность, чем исследования культур (<100 копий генома) для выявления нежизнеспособных, а также жизнеспособных уреаплазм. Результаты ПЦР можно получить в течение одного дня, в то время как культуры – от 2 до 5 дней. Наиболее широко используемые протоколы традиционно применяемой ПЦР на основе геля и ПЦР в реальном времени нацелены на антигены (mba) с множественными связями, уреазу или гены 16s РНК. В настоящее время разрабатываются новые чувствительные и малозатратные мультиплексные методы ПЦР с целью сделать диагностику МАНК [29] более экономически эффективной. Однако на сегодняшний день не существует золотого стандарта теста ПЦР, который можно было бы сравнить с другими новыми тестами. При выборе теста ПЦР следует учитывать, что ПЦР некоторых оперонов MgPa с родственной последовательностью может оказаться неспособной обнаружить некоторые штаммы M. genitalium по причине антигенной вариабельности [25, 28].

Количественная ПЦР (кПЦР)

Традиционная ПЦР ограничена в точности количественного учета микроорганизмов. В отличие от этого, количественная ПЦР в реальном времени (кПЦР) с использованием флуоресцентных красителей или зондов упрощает количественный учет амплифицированных вирусных, бактериальных или паразитарных продуктов. Как было указано выше, при некоторых акушерских осложнениях количество бактерий гораздо важнее, чем сам факт их присутствия.

Метод ПЦР является прекрасной альтернативой методу выращивания культур, но культуры дают возможность проводить тесты на чувствительность к антибиотикам. Однако ПЦР позволяет осуществить молекулярное тестирование на мутационную резистентность к макролидам и метокси-фторхинолонам.

Сбор образцов

До сих пор не существует консенсуса в отношении того, какие образцы имеют наибольшую чувствительность для выявления уреаплазм и микоплазм M. genitalium. Для M. genitalium использование более одного образца может значительно улучшить чувствительность диагностического теста. Lillis и соавт. [30] обнаружили, что наилучшим одиночным образцом для выявления M. genitalium является вагинальный мазок, за которым в порядке уменьшения относительной чувствительности следуют эндоцервикальный мазок (74,3%), образцы мочи (61,4%) и ректальный мазок (24,3%). Вагинальный мазок в сочетании с эндоцервикальным обеспечивает чувствительность, составляющую 95,7% [30]. Также исследование показало, что для диагностики C. trachomatis и N. gonorrhoeae самостоятельно собранные вагинальные мазки имеют равную ценность с мазками, собранными клиницистами, и нет причины сомневаться, что таким же образом будет правильно диагностирована M. genitalium [30].

Общее лечение

У микоплазм и уреаплазм отсутствуют клеточные стенки – мишени для антибиотиков β-лактамного ряда и ванкомицина, что делает их устойчивыми к воздействию этих антибиотиков. Кроме того, образцы уреаплазмы имеют природную устойчивость к линкозамидам (например, к клиндамицину), а микоплазма M. hominis обладает наследственной устойчивостью к макролидам, за исключением джозамицина [31].

Тетрациклины, макролиды и хинолоны традиционно применялись в качестве основных антибиотиков при лечении урогенитальных инфекций, вызываемых микоплазмами. Однако их терапевтическая эффективность может оказаться непредсказуемой из-за растущей устойчивости. Степень устойчивости варьирует в различных регионах в соответствии с различными антимикробными лечебными тактиками и динамикой противомикробного воздействия в разных популяциях. За последнее время в нескольких статьях было опубликованы данные исследований устойчивости микоплазмы M. hominis и уреаплазмы к антибиотикам. В табл. 3 обобщены результаты этих исследований.

De Francesco и соавт. [32] исследовали образцы, взятые у 9956 пациентов в Италии. Как M. hominis, так и Ureaplasma spp. (без дифференцировки между уреаплазмами U. parvum и U. urealyticum) были наиболее чувствительными к доксициклину и тетрациклину, а также к джозамицину. Кларитромицин и джозамицин оказались наиболее сильнодействующими макролидами против уреаплазм. Единственным макролидом, эффективным против M. hominis, был джозамицин. Другим антибиотиком, эффективным от обоих микробов, был пристинамицин. Эффективность двух других исследованных макролидов – азитромицина и эритромицина оказалась умеренной [32]. В дополнение к этому данные об устойчивости к эритромицину приводятся в исследованиях Ponyai и соавт. [31] и Krausse и соавт. [33], которые определили, что устойчивость уреаплазм к эритормицину составляет 81 и 21% соответственно.

Pignanelly и соавт. [5] исследовали M. hominis и пришли к выводу, что изоляты были чувствительны к тетрациклину и доксициклину, но устойчивы к фторхинолонам и макролидам за исключением джозамицина. Krausse и соавт. [33] обнаружили, что доксициклин был наиболее активным антибиотиком из группы тетрациклинов по отношению к уреаплазмам и микоплазмам M. hominis. Однако 10–13% микоплазм M. hominis были усточивыми к тетрациклиновым антибиотикам [33]. Несмотря на это, доксициклин до сих пор является препаратом первой линии для лечения урогенитальных микоплазменных инфекций, а также может применяться при коинфицировании M. Hominis [33]. Тем не менее, устойчивые штаммы становятся все более распространенными.

В соответствии с действующими директивами Международный Союз по борьбе с инфекциями, передаваемыми половым путем (IUSTI), рекомендует применение антибиотиков группы макролидов в случаях неосложненной инфекции, вызванной микоплазмами M. genitalium при отсутствии мутационной резистентности к макролиду: азитромицин 500 мг 1 раз в первый день, затем 250 мг 1 раз в день в течение 2–5 дней орально, или джозамицин по 500 мг 3 раза в день в течение 10 дней. При резистентности к макролидам рекомендуется терапия моксифлоксацином по 400 мг один раз в день в течение 7–10 дней, что можно рассматривать в качестве одного из вариантов лечения, однако он противопоказан во время беременности [25, 34]. Джозамицин оказался эффективным против микоплазмы M. genitalium in vitro [35]. Этот 16-членный макролид широко применяется в Италии, России, Франции, Испании и др. В недавно опубликованном исследовании лечение джозамицином связывалось с 93,5% уровнем устранения инфекции M. genitalium путем применения 500 мг препарата три раза в день в течение 10 дней [36]. В странах, где джозамицин доступен, его следует рассматривать для лечения инфекции M. genitalium.

Лечение во время беременности

Список антибиотиков, которые не противопоказаны во время беременности и эффективны при урогенитальных микоплазмах, гораздо короче. Макролиды и клиндамицин разрешены к применению. Эритримицин – антибиотик, наиболее широко применяемый при лечении беременных женщин, проявил умеренную активность. Единственный макролид, проявивший сходную эффективность в отношении уреаплазм и микоплазм, – это джозамицин, который также может применяться во время беременности [32, 37, 38]. Различные конфигурации молекул джозамицина делают его устойчивым к эффлюксному насосу – важному механизму резистентности, которым может обладать бактерия [39, 40]. Инфекции M. genitalium также можно лечить азитромицином и джозамицином, однако резистентность может быть проблемой.

Заключение

Микоплазма M. hominis и уреаплазма U. urealyticum могут быть частью нормальной влагалищной флоры, но оба микроорганизма связаны с акушерскими осложнениями. В настоящее время вопрос о том, кого следует обследовать на выявление урогенитальных микоплазм, и есть ли необходимость устранять колонизацию ими с целью профилактики акушерских осложнений, остается нерешенным. M. genitalium является четко установленным урогенитальным патогеном, и в отношении него надо проводить лечение. В соответствии с действующими директивами, джозамицин и азитромицин – это препараты выбора при отсутствии мутационной резистентности M. genitalium к макролидам. Джозамицин безопасен для применения при беременности в случае необходимости лечения урогенитального микоплазмоза.

Supplementary Materials

  1. Table 1. Prevalence of urogenital mycoplasmas
  2. Table 2. Results of studies on association of ureaplasmas with obstetric complications
  3. Table 3. Percentage of resistant strains, sample size in brackets

References

1. Tibaldi C., Cappello N., Latino M.A., Masuelli G., Marini S., Benedetto C. Vaginal and endocervical microorganisms in symptomatic and asymptomatic non-pregnant females: risk factors and rates of occurrence. Clin. Microbiol. Infect. 2009; 15(7): 670-9.

2. Verteramo R., Patella A., Calzolari E., Recine N., Marcone V., Osborn J. et al. An epidemiological survey of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum in gynaecological outpatients, Rome, Italy. Epidemiol. Infect. 2013; 141(12):2650-7.

3. Zdrodowska-Stefanow B., Kłosowska W.M., Ostaszewska-Puchalska I., Bułhak-Kozioł V., Kotowicz B. Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis infection in women with urogenital diseases. Adv. Med. Sci. 2006; 51: 250-3.

4. Kacerovský M., Pavlovský M., Tosner J. Preterm premature rupture of the membranes and genital mycoplasmas. Acta Med. (Hradec Kralove). 2009; 52(3): 117-20.

5. Pignanelli S., Pulcrano G., Schiavone P., Iula V.D., Catania M.R. In vitro antimicrobial susceptibility of Mycoplasma hominis genital isolates. Indian J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2015; 81(3): 286-8.

6. Redelinghuys M.J., Ehlers M.M., Dreyer A.W., Lombaard H.A., Kock M.M. Antimicrobial susceptibility patterns of Ureaplasma species and Mycoplasma hominis in pregnant women. BMC Infect. Dis. 2014; 14: 171.

7. Ouzounova-Raykova V.V., Markovska R., Mizgova G., Mitov I.G. Detection of the sexually transmissible genital mycoplasmas by polymerase chain reaction in women. Sex. Health. 2011; 8(3): 445-6.

8. Baka S., Kouskouni E., Antonopoulou S., Sioutis D., Papakonstantinou M., Hassiakos D. et al. Prevalence of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis in women with chronic urinary symptoms. Urology. 2009; 74(1): 62-6.

9. Naaber P., Ratnik K., Raud K., Sepp S., Põder A. Relevance of molecular complex diagnostics for genital tract infections. Eesti Arst. 2014;93(8): 450-5.

10. Ahmadi A., Khodabandehloo M., Ramazanzadeh R., Farhadifar F., Nikkhoo B., Soofizade N., Rezaii M. Association between Ureaplasma urealyticum endocervical infection and spontaneous abortion. Iran. J. Microbiol. 2014;6(6): 392-7.

11. Mitsunari M., Yoshida S., Deura I., Horie S., Tsukihara S., Harada T. et al. Cervical Ureaplasma urealyticum colonization might be associated with increased incidence of preterm delivery in pregnant women without prophlogistic microorganisms on routine examination. J. Obstet. Gynaecol. Res. 200; 31(1): 16-21.

12. Bayraktar M.R., Ozerol I.H., Gucluer N., Celik O. Prevalence and antibiotic susceptibility of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum in pregnant women. Int. J. Infect. Dis. 2010; 14(2): e90-5.

13. Witt A., Berger A., Gruber C.J., Petricevic L., Apfalter P., Worda C., Husslein P. Increased intrauterine frequency of Ureaplasma urealyticum in women with preterm labor and preterm premature rupture of the membranes and subsequent cesarean delivery. Am. J. Obstet. Gynecol. 2005; 193(5):1663-9.

14. Kataoka S., Yamada T., Chou K., Nishida R., Morikawa M., Minami M. et al. Association between preterm birth and vaginal colonization by mycoplasmas in early pregnancy. J. Clin. Microbiol. 2006; 44(1): 51-5.

15. Kasprzykowska U., Elias J., Elias M., Mączyńska B., Sobieszczańska B.M. Colonization of the lower urogenital tract with Ureaplasma parvum can cause asymptomatic infection of the upper reproductive system in women: a preliminary study. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(5): 1129-34.

16. 16. Kasper D.C., Mechtler T.P., Reischer G.H., Witt A., Langgartner M., Pollak A. et al. The bacterial load of Ureaplasma parvum in amniotic fluid is correlated with an increased intrauterine inflammatory response. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2010; 67(2): 117-21.

17. Abele-Horn M., Scholz M., Wolff C., Kolben M. High-density vaginal Ureaplasma urealyticum colonization as a risk factor for chorioamnionitis and preterm delivery. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2000; 79(11): 973-8.

18. Raynes Greenow C.H., Roberts C.L., Bell J.C., Peat B., Gilbert G.L., Parker S. Antibiotics for ureaplasma in the vagina in pregnancy. Cochrane Database Syst. Rev. 2011; (9): CD003767.

19. Donders G.G., Van Bulck B., Caudron J., Londers L., Vereecken A., Spitz B. Relationship of bacterial vaginosis and mycoplasmas to the risk of spontaneous abortion. Am. J. Obstet. Gynecol. 2000; 183(2): 431-7.

20. Leli C., Meucci M., Vento S., D’Alò F., Farinelli S., Perito S. et al. Microbial and vaginal determinants influencing Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum genital colonization in a population of female patients. Infez. Med. 2013; 21(3): 201-6.

21. Manhart L.E. Mycoplasma genitalium: An emergent sexually transmitted disease? Infect. Dis. Clin. North Am. 2013; 27(4): 779-92.

22. Manhart L.E., Broad J.M., Golden M.R. Mycoplasma genitalium: Should we treat and how? Clin. Infect. Dis. 2011; 53(Suppl. 3): S129-42.

23. Hitti J., Garcia P., Totten P., Paul K., Astete S., Holmes K.K. Correlates of cervical Mycoplasma genitalium and risk of preterm birth among Peruvian women. Sex. Transm. Dis. 2010; 37(2): 81-5.

24. Edwards R.K., Ferguson R.J., Reyes L., Brown M., Theriaque D.W., Duff P. Assessing the relationship between preterm delivery and various microorganisms recovered from the lower genital tract. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2006; 19(6): 357-63.

25. Weinstein S.A., Stiles B.G. Recent perspectives in the diagnosis and evidence-based treatment of Mycoplasma genitalium. Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2012; 10(4): 487-99.

26. Kokkayil P., Dhawan B. Ureaplasma: Current perspectives. Indian J. Med. Microbiol. 2015; 33(2): 205-14.

27. Machado Ldel P., Molinari M.A., dos Santos L., de Cordova C.M. Performance of four commercial kits for laboratory diagnosis of urogenital mollicute infection. Can. J. Microbiol. 2014; 60(9): 613-7.

28. Shipitsyna E., Savicheva A., Solokovskiy E., Ballard R.C., Domeika M., Unemo M., Jensen J.S.; EE SRH Network. Guidelines for the laboratory diagnosis of mycoplasma genitalium infections in East European countries. Acta Derm. Venereol. 2010; 90(5): 461-7.

29. Aguilera-Arreola M.G., González-Cardel A.M., Tenorio A.M., Curiel-Quesada E., Castro-Escarpulli G. Highly specific and efficient primers for in-house multiplex PCR detection of Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum. BMC Res. Notes. 2014; 7: 433.

30. Lillis R.A., Nsuami M.J., Myers L., Martin D.H. Utility of urine, vaginal, cervical, and rectal specimens for detection of Mycoplasma genitalium in women. J. Clin. Microbiol. 2011; 49(5): 1990-2.

31. Pónyai K., Mihalik N., Ostorházi E., Farkas B., Párducz L., Marschalkó M. et al. Incidence and antibiotic susceptibility of genital mycoplasmas in sexually active individuals in Hungary. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2013; 32(11): 1423-6.

32. De Francesco M.A., Caracciolo S., Bonfanti C., Manca N. Incidence and antibiotic susceptibility of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum isolated in Brescia, Italy, over 7 years. J. Infect. Chemother. 2013; 19(4): 621-7.

33. Krausse R., Schubert S. In-vitro activities of tetracyclines, macrolides, fluoroquinolones and clindamycin against Mycoplasma hominis and Ureaplasma ssp. isolated in Germany over 20 years. Clin. Microbiol. Infect. 2010; 16(11):1649-55.

34. Jensen J.S., Cusini M., Gomberg M., Moi H. 2016 European guideline on Mycoplasma genitalium infections. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2016; 30(10): 1650-6. Available at: http://www.iusti.org/regions/Europe/pdf/2016/IUSTI_mycoplasma_guidelines2016.pdf Accessed on 29 July 2016.

35. Renaudin H., Tully J.G., Bebear C. In vitro susceptibilities of Mycoplasma genitalium to antibiotics. Antimicrob. Agents Chemother. 1992; 36(4): 870-2.

36. Guschin A., Ryzhikh P., Rumyantseva T., Gomberg M., Unemo M. Treatment efficacy, treatment failures and selection of macrolide resistance in patients with high load of Mycoplasma genitalium during treatment of male urethritis with josamycin. BMC Infect. Dis. 2015; 15: 40.

37. Ye G., Jiang Z., Wang M., Huang J., Jin G., Lu S. The resistance analysis of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis in female reproductive tract specimens. Cell Biochem. Biophys. 2014; 68(1): 207-10.

38. Koh E., Kim S., Kim I.S., Maeng K.Y., Lee S.A. Antimicrobial susceptibilities of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis in pregnant women. Korean J. Clin. Microbiol. 2009; 12(4): 159-62.

39. Zhanel G.G., Dueck M., Hoban D.J., Vercaigne L.M., Embil J.M., Gin A.S., Karlowsky J.A. Review of macrolides and ketolides: focus on respiratory tract infections. Drugs. 2001; 61(4): 443-98.

40. Leclercq R. Mechanisms of resistance to macrolides and lincosamides: nature of the resistance elements and their clinical implications. Clin. Infect. Dis. 2002; 34(4): 482-92.

Received 15.05.2017

Accepted 23.06.2017

About the Authors

Airi Põder, MD, Dermatologist-Venerologist, Tartu University Hospital, Dermatology Clinic. Raja 31, Tartu 50417, Estonia. Tel.: +372 50 58 949. E-mail: Airi.Poder@std.ee
Madli Haldre, MD, Physician, Tartu Univerisity Clinics Foundation. Puusepa 8, Tartu, Estonia. Tel.: +372 52 29 543. E-mail: Madli.Haldre@gmail.ee

For citations: Põder A., Haldre M. Urogenital mycoplasmosis and pregnancy. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2017; (12): 5-15. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.12.5-15

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.