ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Vaginal microbiota transplantation

Kira E.F., Priputnevich T.V., Muravieva V.V., Khalturina Yu.V.

1) MEDSI Group JSC, Moscow, Russia; 2) Academician V.I. Kulakov National Medical Research Centre for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 3) Pirogov National Medical and Surgical Center, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia

This review presents the data of the recent studies on the structure and role of the vaginal microbiota in providing colonization resistance and maintaining female reproductive health. New therapeutic options in the treatment of infectious diseases in gynecology are covered. The review shows the significance of preserving the specific functioning of the vaginal microecosystem, searching for new effective therapeutic opportunities in the treatment of infectious and inflammatory diseases and correction of dysbiotic disorders of the vaginal microbiota, its ability to resist pathogenic microorganisms. The unique local immune status directly correlates with the specific microbial composition of the vagina. Recent studies have shown the high efficiency of intestinal microbiota transplantation in gastroenterology. To date, there is a promising concept of introducing selective microbiota transplantation into clinical practice. According to this concept, it is possible to obtain autoprobiotics that can simultaneously solve the problem of safety during transplantation and provide personalized treatment. It is necessary to carry out further studies on the characteristics of pharmacological properties, on degree of stability and safety, on the ability of microorganisms to multiply in the vagina, and on the determination of dosage and frequency of use. The effectiveness of vaginal microbiota transplantation should be determined and proven in subsequent randomized placebo-controlled clinical trials. Conclusion: Autoprobiotics originating from the vagina can become the basis for the development of personalized medicines using a person’s own microbiota as it is safe and accessible and can help in the treatment of diseases with complex etiology and pathogenesis. Preliminary clinical results in a number of experimental studies have demonstrated a good therapeutic effect and great prospects for vaginal microbiota transplantation in comparison with other methods of treatment.

Authors’ contributions: Kira E.F., Priputnevich T.V., Muravieva V.V. – planning, developing the design of the work, editing the text; Khalturina Yu.V. – search and analysis of literature data, writing the text.

Conflicts of interest: The authors declare no possible conflicts of interest.

Funding: The study was conducted without sponsorship.

For citation: Kira E.F., Priputnevich T.V., Muravieva V.V., Khalturina Yu.V. Vaginal microbiota transplantation. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2023; (10): 39-46 (in Russian) https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.142

Keywords

vaginal microbiota
microbiome
colonization resistance
bacterial vaginosis
vaginal microbiota transplantation
personalized probiotic
autoprobiotic

Современные научные открытия все больше демонстрируют значимость микроорганизмов в жизни человека. Множество исследований, проведенных международными консорциумами ученых США и Европы в рамках проекта «Микробиом», продемонстрировали, что организм человека является местом обитания безмерного множества микроорганизмов, которые содружественно эволюционировали с человеком [1]. Каждому индивидууму свойственен только ему присущий микроэкологический гомеостаз, и сохранность этого микробиологического равновесия определяет способность организма человека отвечать на воздействия внешней среды, адаптироваться к различным условиям обитания, проявлять инфекционную резистентность.

Понимание значимости микробиоты для человека в современном мире чрезвычайно велико и вышло далеко за пределы этиологической и патогенетической роли микроорганизмов в возникновении инфекционных болезней. Знание особенностей микробиоты различных локализаций, оценка ее изменений расширяют и совершенствуют понимание патофизиологии, лежащей в основе многих заболеваний – от бактериального вагиноза до цервикального рака [1, 2].

Микробиота влагалища разнообразна и представляет собой пример сложного мутуалистического симбиоза, регуляция которого полностью не изучена до сегодняшнего дня. Это динамическая биосистема, находящаяся в сбалансированных отношениях с макроорганизмом и подвергающаяся изменениям под влиянием эндогенных и экзогенных факторов [3]. В последние годы опубликовано большое количество исследований о применении пробиотиков для коррекции вагинального дисбиоза [4].

Вагинальные бактериальные сообщества у женщин индивидуальны; они богаты разными видами и включают бактерии, которые не обнаруживаются традиционными культуральными методами [3]. В то же время вагинальная микробиота, в отличие от других экосистем, в норме характеризуется доминированием одной группы микроорганизмов – лактобацилл, ответственных за ее стабильность и колонизационную резистентность. Главным механизмом, обеспечивающим колонизационную резистентность вагинального биотопа, является способность лактобацилл к кислотообразованию [2, 5]. Прослеживается выраженная корреляция между распространенностью Lactobacillus spp. и уровнем рН. Кислая среда влагалища (рН<4,5), присутствие антимикробных пептидов, бактериоцинов препятствуют физико-химическим изменениям биотопа [6], распространению транзиторных и некоторых патогенных видов микроорганизмов, таких как Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae [7], вирус папилломы человека (ВПЧ), вирус простого герпеса (ВПГ), вирус иммунодефицита человека [8–10], обеспечивают поддержку метаболической функции эпителия генитального тракта [11]. Следует отметить, что особенности строения женских половых органов формируют уникальность микробного сообщества на каждом уровне. Слизистая пробка цервикального канала служит блокирующим буфером, который может ограничивать свободное перемещение микроорганизмов между влагалищем и полостью матки [12]. Тем не менее в ряде исследований уже установлено, что полость матки, фаллопиевы трубы и яичники нестерильны [12–17]. У здоровых женщин эндометрий содержит микробиоту с низкой биомассой, в которой преобладают несколько видов бактерий, включая Bacteroidota (Flavobacterium spp.) и Firmicutes (Lactobacillus spp.) [18, 19]. В литературе имеются сообщения о возможной взаимосвязи изменений в составе микробиоты матки с возникновением ряда гинекологических заболеваний, таких как эндометриоз, полипы и рак эндометрия, а также с восприимчивостью эндометрия к бластоцисте, что может быть причиной бесплодия [17, 20, 21].

Значимость колонизационной резистентности и микробиологического постоянства для жизни и здоровья индивидуума не подвергается сомнениям, что стимулирует ученых искать новые способы коррекции и лечения заболеваний, ассоциированных с нарушением микробиоты и/или инфекционными агентами. Главными критериями нового терапевтического воздействия являются персонифицированный подход, его эффективность и безопасность. По данному направлению внедрены инновации и достигнуты большие успехи в лечении заболеваний кишечника с использованием трансплантации фекальной микробиоты (ТФМ). Подобный путь, вероятно, принесет успех и в лечении дисбиотических состояний вагинальной микробиоты.

ТФМ представляет собой введение микробного сообщества, выделенного из подготовленного донорского биоматериала, для восстановления общего микробного разнообразия и стабильности в кишечнике реципиента. Во многих публикациях продемонстрировано, что ТФМ является надежным и эффективным методом селективного лечения различных желудочно-кишечных заболеваний и на сегодняшний день активно используется для лечения диареи, ассоциированной с Clostridioides difficile, синдрома раздраженного кишечника, воспалительных заболеваний кишечника, псевдомембранозного колита [22–24]. Клинический успех ТФМ привел к исследованиям, позволяющим использовать ТФМ для лечения не только заболеваний кишечника, но и ожирения, заболеваний печени, депрессии, пищевых аллергий, рассеянного склероза, расстройств аутического спектра, нейроиммунных заболеваний, таких как тяжелая миастения, рассеянный склероз, расстройства спектра оптиконейромиелита и других нозологий [25–29]. Этот широкомасштабный пул инноваций в фекальной трансплантологии может быть ориентиром для развития подобного направления в гинекологической практике.

С учетом некоторых сходств в строении слизистой оболочки кишечника и влагалища, в особенностях модуляции иммунной системы человека и поддержании гомеостаза, в патогенезе возникновения некоторых инфекционных заболеваний, обусловленных избыточным ростом определенных возбудителей, логическим продолжением может быть возможность применения трансплантации вагинальной микробиоты (ТВМ), которая может послужить эффективным методом лечения бактериального вагиноза (БВ) и других вагинальных инфекций [22, 30].

Трансплантация вагинального микробного сообщества может произвести революцию и полностью изменить представление о терапевтическом подходе при различного рода заболеваниях [30]. На данный момент опубликованы результаты ряда экспериментальных работ, демонстрирующие большие перспективы развития ТВМ, несмотря на небольшое количество проведенных исследований, в сравнении с ТФМ.

В исследовании Chen T. et al. (2015) разработана модель БВ у крыс, в которой изучалось отдельно влияние ТВМ и комбинации пробиотиков на исход БВ. Результаты продемонстрировали, что ТВМ благоприятно влияет на регуляцию провоспалительных цитокинов во влагалище и нормализует их соотношение до оптимального, способствует увеличению количества Lactobacillus, что предотвращает рецидивы БВ [6]. В 2018 г. исследования по данному направлению продолжились и продемонстрировали, что при проведении ТВМ здоровых женщин во влагалище крыс модельной группы с БВ удалось восстановить здоровое микробиологическое разнообразие слизистой оболочки влагалища, снизить экспрессию факторов апоптоза, тем самым получая выраженный терапевтический эффект [23, 31].

По заключению некоторых групп исследователей, штаммы Lactobacillus, полученные из вагинальной микрофлоры человека, могут колонизировать половые пути быстрее и эффективнее оказывать защиту от различного рода патогенов по сравнению с искусственно культивированными штаммами иного происхождения [22, 23]. В данном вопросе важны высокая жизнеспособность микроорганизмов в соответствующей экологической нише, способность к активному росту in vivo, обладание генетической стабильностью, чтобы максимально сохранять свои свойства во время обработки, лиофилизации и хранения.

В 2019 г. в Израиле Lev-Sagie A. et al. впервые сообщили об удачном опыте ТВМ от здоровых доноров пациенткам с рецидивирующим БВ от здоровых доноров. У 4 из 5 женщин, неоднократно получавших антибиотики в ходе лечения БВ, была достигнута стойкая ремиссия после введения небольшого количества свежих вагинальных выделений на протяжении всего периода наблюдения и даже спустя 2 года после проведенной трансплантации. Авторы не сообщили о побочных эффектах и серьезных нежелательных явлениях [32].

Несмотря на обнаруженную эффективность ТВМ в лечении БВ, оценка проводилась с малой выборкой пациенток. Для достоверного подтверждения эффективности ТВМ и получения надежных клинических результатов необходимы более качественные рандомизированные плацебо-контролируемые клинические испытания с большой выборкой. Подобные клинические работы проводятся в США с 2021 г. [23].

Особенности и механизмы сложного взаимодействия всех компонентов вагинальной жидкости остаются предметом активного изучения [30, 32, 33].

Wei K. и Chen T. (2021) в своем исследовании эффективности ТВМ выдвинули теорию, что гораздо эффективнее проводить терапию БВ с помощью вагинальной микробиоты здоровых женщин без дополнительных вмешательств в биологический материал, не реконструировать микробиоту из отдельных микроорганизмов самих пациенток искусственно для достижения нового баланса [23]. Эта гипотеза была выдвинута на основании исследования Gardner H.L. и Dukes C.D. (1955), в котором было установлено, что при трансплантации вагинальных выделений больных неспецифическим вагинитом во влагалище здоровых добровольцев клинические симптомы заболевания констатированы у 73% [34]. Продукты жизнедеятельности бактерий, молочная кислота, биологически активные вещества, муцины или другие компоненты вагинальной жидкости могут быть не менее важным условием стабильности и эффективности полученного материала и играть важную роль в потенциальном успехе процесса трансплантации [30].

В то же время на сегодняшний день существует очень перспективная гипотеза о внедрении в клиническую практику селективной трансплантации микробиоты [35]. В соответствии с данной концепцией, после проведения секвенирования генома образцов доноров и реципиентов, можно приготовить препараты микрофлоры in vitro, которые могут полностью имитировать здоровый вагинальный микробиом, тем самым достигая еще более успешного терапевтического результата [22, 36]. Таким образом, будет получен препарат микробной флоры, способный имитировать здоровый организм человека, одновременно решая проблему безопасности в процессе трансплантации и обеспечивая индивидуализированное лечение, регулируя относительную численность каждого из микроорганизмов с более высокой специфичностью и управляемостью [37].

Таким образом, предварительные клинические результаты в ряде экспериментальных исследований по теме ТВМ продемонстрировали хороший терапевтический эффект и большие перспективы применения по сравнению с другими методами лечения. При терапии рецидивирующего БВ ТВМ показывает превосходство перед медикаментозным лечением и в то же время решает вопрос, связанный с развитием резистентных бактерий и высокой частотой рецидивов при использовании антибиотиков [23].

Такие перспективы способствуют развитию концепции о новом классе биотерапевтических препаратов [6]. Более того, Humphries C. (2017) утверждает, что необходимо идентифицировать наиболее значимые таксономические единицы влагалищной микробиоты здоровых женщин, на основании которых можно производить промышленный продукт [38].

Можно предположить, что препараты микробиоты, которые представляют собой живые биотерапевтические продукты, могут быть основой для разработки персонифицированных лекарственных средств на основе собственной микробиоты человека, что логично с точки зрения безопасности и доступности и может помочь в лечении заболеваний со сложным патогенезом и этиологией. При этом теоретически допускается несколько стратегий разработки препаратов, а именно:

  • полное сохранение в препарате исходного микробиологического консорциума донорского биоматериала;
  • частичное сохранение микробного сообщества донорского биоматериала с использованием специальных методов обработки для удаления определенных биологических компонентов;
  • создание консорциума микроорганизмов с использованием выделенных у донора и экзогенных штаммов, культивируемых in vitro;
  • использование сконструированного штамма с модификацией микробного генома для конкретной терапевтической задачи.

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (Food and Drug Administration, FDA) рассматривает трансплантацию микроорганизмов, в частности ТФМ, как лекарство и живой биотерапевтический продукт (Live biotherapy product, LBP), так как накоплен достаточно значимый опыт практического применения методики [23].

На сегодняшний день нет единых регламентирующих мер и документов для ТВМ, но с увеличением количества исследований высока перспектива разработки комплексной системы и всего процесса ТВМ, включая отбор и скрининг доноров и реципиентов, транспортировку и хранение образцов, тщательное исследование полученного биологического материала перед использованием [39]. Характеристика фармако­кинетических свойств, определение стабильности и безопасности, возможности микроорганизмов размножаться во влагалище, определение дозировки и кратности применения остаются предметом разработки и изучения [40].

Перспективы развития ТВМ весьма обнадеживающие. Однако в связи с отсутствием стандартизации сохраняются опасения по поводу безопасности трансплантации микробиоты от доноров [41]. Необходимо строго концептуализировать процесс скрининга доноров, сформулировать четкие критерии включения и исключения в соответствии с действующими рекомендациями, касающимися трансплантации, которые позволят получить представление о составе вагинальной микробиоты, наличии возбудителей инфекций, передаваемых половым путем (ИППП), вероятном иммунологическом отторжении в ходе трансплантации и иных микробиом-опосредованных факторах риска [23, 30, 42, 43]. Разработка оптимизированных методов сбора и хранения донорского материала, организация биобанка играют не менее важную роль [44]. При этом защита интересов пациентов и безопасность общественного здоровья должны оставаться приоритетом [45].

Следует учитывать анамнез доноров, количество половых партнеров, статус и частоту половой жизни, применение препаратов, влияющих на вагинальную микробиоту, состояние репродуктивной системы, результаты обследований, наличие беременности. Кроме того, любые перенесенные ранее или имеющиеся ИППП должны быть критерием для исключения [22]. В дополнение к интенсивному и тщательному скринингу потенциальных участников-доноров на трансплантацию важно проводить обследование реципиентов для понимания их исходного инфекционного статуса. Данные меры позволят иметь объективные представления о состоянии пациентов в каждой группе и избежать ряда сложных юридических и правовых вопросов. Некоторые контролируемые инфекции, сопутствующие основному заболеванию реципиента, например ВПЧ, ВПГ, скорее, не будут являться критериями исключения [30]. Определение состава вагинальной микробиоты донора и реципиента, собранных во время последующего обследования, может помочь в понимании, приведет ли данная процедура к восстановлению полезной микробиоты влагалища реципиента.

Необходимо проводить динамическое наблюдение за состоянием пациентов с БВ вместе с оценкой микробного состава вагинальной микробиоты, оценкой межвидовых взаимодействий, которые могут влиять как на вероятность обострения БВ, так и на разрешение симптомов [22].

В крупномасштабных исследованиях крайне затруднительно сразу осуществить обработку полученных образцов. Условия хранения, фактор времени могут способствовать значительному перекосу таксономической численности в сторону бактерий, более устойчивых к лизису. А любое влияние на репрезентативность образцов потенциально может влиять на ход исследования и на возможность применения образцов микробиоты человека для терапии [46]. Для минимизации подобных явлений необходимо выбрать оптимальный набор расходных медицинских изделий для забора биоматериалов, адаптировать протокол исследования к ожидаемому микробному сообществу, применять один и тот же протокол на протяжении всего исследования [47].

На примере изучения кишечной микробиоты были созданы практические руководства для осуществления высококачественных и экономически эффективных исследований. При этом достоверных данных о влиянии условий хранения, методов выделения и культивирования микроорганизмов, микробной экстракции, используемых для исследования образцов микробиоты влагалища, существует крайне ограниченное количество, включающее в себя единичные исследования с небольшим количеством пациентов [46]. Надлежащие условия хранения биоматериала позволяют избежать систематической ошибки в составе микробного сообщества после сбора образцов. Быстрая заморозка до -80°C считается наилучшим вариантом для сохранения образцов микробиоты [48].

В научном исследовании Yockey L.J. et al. (2022) представлены протокол обширного скрининга для доноров, оценка безопасности и оценка условий хранения препаратов для трансплантации. Обследование участников проводится до, во время и после периода донорства, чтобы убедиться в отсутствии инфицированности различными патогенами и исключить наличие инкубационного периода заболевания в момент забора материалов. В отношении сохранения жизнеспособности микроорганизмов при температуре минус 80°C до 3 месяцев более стабильную и высокую жизнеспособность показали образцы с доминированием L. crispatus, в отличие от других видов лактобацилл. У исследователей есть версия, что разные штаммы Lactobacillus выживают при замораживании по-разному. Возможно, это связано с индивидуальными особенностями вагинальной жидкости, которые влияют на жизнеспособность микроорганизмов в долгосрочной перспективе. Авторы целенаправленно ограничили любые манипуляции с вагинальной жидкостью и не использовали криопротектор для более точной оценки свойств и особенностей полученного материала. Исходя из полученных результатов, сделаны выводы об отсутствии необходимости использования криопротекторов, если минимальная концентрация L. crispatus составляла 1×106 КОЕ/мг [44].

Важным и сложным аспектом остается расчет дозировки пробиотических продуктов, в которых концентрация (КОЕ/доза) может быть стандартизирована во время селективной процедуры.

При этом можно обнаружить широкий диапазон концентраций (КОЕ/мг) между участниками консорциума в составе микробиоты, что говорит о более выраженных функциональных отличиях у доминирующих микроорганизмов [30].

Немаловажным аспектом является используемый расходный материал, тампоны и инструменты при получении образцов для микробиологического исследования, поскольку качество забора биоматериала является критическим моментом и предопределяет достоверность исполнения последующих аналитических тестов. В настоящее время активно используются тампоны, обернутые нетоксичными синтетическими материалами, такими как дакрон, вискоза, пенополиуретан, флокированный нейлон. Не выявлено достоверной разницы влияния различных буферов, используемых для смывания образцов с тампонов, при выделении ДНК [49].

В другом исследовании Ahannach S. et al. (2021) оценивали тампоны, содержащие лизирующий буфер разной силы стабилизации материала, а также влияние температуры хранения (-80°C, -20°C, 4°C и комнатная температура) на микробный профиль вагинальных образцов. Согласно результатам данного исследования, наблюдался таксономический сдвиг в микробном составе вагинальных образцов с течением времени при использовании тампона с более слабым буфером. В то же время не проводилось изучение влияния на образцы хранения при различных условиях в течение длительного времени (месяцы, годы) [46]. Данные результаты указывают на необходимость дальнейшего изучения возможностей сохранения образцов в долгосрочной перспективе с минимальными изменениями в составе препарата, поиска материалов, сред и оборудования, подходящего для выполнения этих задач.

Главенствующую роль в исследовательских проектах, связанных с микробиотой человека, играют биобанки, которые являются одними из самых инновационных организаций в области биомедицинских технологий. Они позволяют проводить широкомасштабные исследования; в то же время их деятельность лежит в основе индивидуализации диагностических и лечебных процессов посредством полученных биоматериалов, что демонстрирует особую роль биобанков в развитии персонализированной медицины. Биобанки представляют собой учреждения, осуществляющие хранение биологических материалов и клинических данных по образцам, обработку и детальный анализ полученной информации [50].

Процесс получения образца начинается с получения информированного согласия пациента. Забор образца осуществляется во время медицинских процедур персоналом, прошедшим необходимую подготовку для проведения данной манипуляции, в специальные среды или буферы. Транспортировка проводится в строго определенных и контролируемых условиях. В биобанке образец анонимизируется, маркируется и направляется в отделение анализа или хранения.

Заключение

Базируясь на полученных данных, формируется концепция создания препаратов микробиоты, которые могут стать идеальным инструментом для эффективной терапии, сочетая в себе безопасность и широкую представленность микробного сообщества. Традиционные пробиотики на основе лактобацилл кишечного происхождения имеют субоптимальную формулу, в которой жизнеспособность микроорганизмов в вагинальном биотопе возможна не в полной мере, из-за чего присутствует риск не достичь уровня критически важной здоровой микробиоты.

ТВМ лежит в основе абсолютно новой терапевтической стратегии в гинекологической практике. Разработка и производство стандартизированных биотерапевтических продуктов с высокой эффективностью являются приоритетными направлениями при ТФМ, также это возможно и при ТВМ.

Эффективность ТВМ должна быть дополнительно определена и доказана в рандомизированных плацебо-контролируемых клинических исследованиях. Следовательно, у современной науки есть шанс внедрить в технологический процесс и использовать в клинической медицине значительный потенциал нового и уникального класса биологических препаратов, оптимизируя терапию ряда заболеваний, сложно поддающихся лечению.

References

  1. Anton L., Sierra L.-J., DeVine A., Barila G., Heiser L., Brown A.G., Elovitz M.A. Common cervicovaginal microbial supernatants alter cervical epithelial func-tion: mechanisms by which Lactobacillus crispatus contributes to cervical health. Front. Microbiol. 2018; 9: 2181. https://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2018.02181.
  2. Audirac-Chalifour A., Torres-Poveda K., Bahena-Román M., Téllez-Sosa J., Martínez-Barnetche J., Cortina-Ceballos B. et al. Microbiome and cytokine profile at various stages of cervical cancer: A pilot study. PLoS One. 2016; 11(4): e0153274. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0153274.
  3. Al-Nasiry S., Ambrosino E., Schlaepfer M., Morré S.A., Wieten L., Voncken J.W. et al. The interplay between reproductive tract microbiota and immunological system in human reproduction. Front. Immunol. 2020; 11: 378. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2020.00378.
  4. Кира Е.Ф., Расторгуева Л.И., Халтурина Ю.В., Пушкина В.В. Инфекции влагалища. Двухэтапный метод лечения. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 201-8. [Кira E.F., Rastorgueva L.I., Khalturina Yu.V., Pushkina V.V. Vaginal infections. Two-step treatment. Obstetrics and Gynecology. 2020; (4): 201-8. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.4.201-208.
  5. Миханошина Н.В., Припутневич Т.В., Байрамова Г.Р. Роль Lactobacillus iners и ассоциированных с бактериальным вагинозом микроорганизмов в формировании микробиоты влагалища. Акушерство и гинекология. 2023; 1: 20-6. [Mikhanoshina N.V., Priputnevich T.V., Bairamova G.R. The role of Lactobacillus iners and bacterial vaginosis-associated microorganisms in making up the vaginal microbiota. Obstetrics and Gynecology. 2023; (1): 20-6. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.246.
  6. Chen T., Xia C., Hu H., Wang H., Tan B., Tian P. et al. Dysbiosis of the rat vagina is efficiently rescued by vaginal microbiota transplantation or probiotic combination. Int. J. Antimicrob. Agents. 2021; 57(3): 106277. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2021.106277.
  7. Coudray M.S., Madhivanan P. Bacterial vaginosis - a brief synopsis of the liter-ature. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2020; 245: 143-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2019.12.035.
  8. Martins B.C.T., Guimarгes R.A., Alves R.R.F., Saddi V.A. Bacterial vaginosis and cervical human papillomavirus infection in young and adult women: a systematic review and meta-analysis. Rev. Saude Publica. 2022; 56: 113. https://dx.doi.org/10.11606/s1518-8787.2022056004412.
  9. Lin W., Zhang Q., Chen Y., Chen L., Dong B., Sun P. The prevalence of human papillomavirus and bacterial vaginosis among young women in China: a cross sectional study. BMC Womens Health. 2021; 21(1): 409. https://dx.doi.org/10.1186/s12905-021-01504-0.
  10. Mehta S.D., Nandi D., Agingu W., Green S.J., Bhaumik D.K., Bailey R.C., Otieno F. Vaginal and penile microbiome associations with herpes simplex virus type 2 in women and their male sex partners. J. Infect. Dis. 2022; 226(4): 644-54. https://dx.doi.org/10.1093/infdis/jiaa529.
  11. Tachedjian G., O’Hanlon D.E., Ravel J. The implausible “in vivo” role of hydrogen peroxide as an antimicrobial factor produced by vaginal microbiota. Micro-biome. 2018; 6: 29.
  12. Wang J., Li Z., Ma X., Du L., Jia Z., Cui X. et al. Translocation of vaginal microbiota is involved in impairment and protection of uterine health. Nat. Commun. 2021; 12(1): 4191. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-021-24516-8.
  13. Łaniewski P., Ilhan Z.E., Herbst-Kralovetz M.M. The microbiome and gynae-cological cancer development, prevention and therapy. Nat. Rev. Urol. 2020; 17(4): 232-50. https://dx.doi.org/10.1038/s41585-020-0286-z.
  14. Baker J.M., Chase D.M., Herbst-Kralovetz M.M. Uterine microbiota: residents, tourists, or invaders? Front. Immunol. 2018 ;9: 208. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2018.00208.
  15. Chen C., Song X., Wei W., Zhong H., Dai J., Lan Z. et al. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nat. Commun. 2017; 8(1): 875. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-017-00901-0.
  16. Lu F., Wei J., Zhong Y., Feng Y., Ma B., Xiong Y. et al. Antibiotic therapy and vaginal microbiota transplantation reduce endometriosis disease progression in fe-male mice via NF-κB signaling pathway. Front. Med. (Lausanne). 2022; 9: 831115. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2022.831115.
  17. Punzón-Jiménez P., Labarta E. The impact of the female genital tract microbiome in women health and reproduction: a review. J. Assist. Reprod. Genet. 2021;38(10):2519-41. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-021-02247-5.
  18. Younes J.A., Lievens E., Hummelen R., van der Westen R., Reid G., Petrova M.I. Women and their microbes: the unexpected friendship. Trends Microbiol. 2018; 26(1): 16-32. https://dx.doi.org/10.1016/j.tim.2017.07.008.
  19. Koedooder R., Mackens S., Budding A., Fares D., Blockeel C., Laven J. et al. Identification and evaluation of the microbiome in the female and male reproductive tracts. Hum. Reprod. Update. 2019; 25(3): 298-325. https://dx.doi.org/10.1093/ humupd/dmy048.
  20. Benner M., Ferwerda G., Joosten I., Van der Molen R.G. How uterine microbiota might be responsible for a receptive, fertile endometrium. Hum. Reprod. Up-date. 2018; 24(4): 393-415. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmy012.
  21. Walther-Antonio M.R.S., Chen J., Multinu F., Hokenstad A., Distad T.J., Cheek E.H. et al. Potential contribution of the uterine microbiome in the development of endometrial cancer. Genome Med. 2016; 8(1): 122. https://dx.doi.org/10.1186/s13073-016-0368-y.
  22. Ma D., Chen Y., Chen T. Vaginal microbiota transplantation for the treatment of bacterial vaginosis: a conceptual analysis. FEMS Microbiol. Lett. 2019; 366(4): fnz025. https://dx.doi.org/10.1093/femsle/fnz025.
  23. Wei K., Chen T. Vaginal microbiota transplantation for treatment of bacterial vaginosis: a review. Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. 2021; 37(11): 3820-7. https://dx.doi.org/10.13345/j.cjb.210163.
  24. Голощапов О.В., Чуракина Д.В., Кучер М.А., Клементьева Р.В., Сидоренко С.В., Гостев В.В., Карев В.Е., Суворова М.А., Шлык И.В., Чухловин А.Б., Зубаровская Л.С., Афанасьев Б.В. Трансплантация фекальной микрофлоры при критическом состоянии пациентов в онкогематологической практике. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2019; 16(3): 63-73. [Goloshchapov O.V., Churakina D.V., Kucher M.A., Klementeva R.V., Sidorenko S.V., Gostev V.V., Karev V.E., Suvorova M.A., Shlyk I.V., Chukhlovin A.B., Zubarovskaya L.S., Afanasyev B.V. Fecal microbiota transplantation in critical condition patients in hematological practice. Messenger of Anesthesiology and Resuscitation. 2019; 16(3): 63-73. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.21292/2078-5658-2019-16-3-63-73.
  25. Aroniadis O.C., Brandt L.J., Oneto C., Feuerstadt P., Sherman A., Wolkoff A.W. et al. Faecal microbiota transplantation for diarrhoea-predominant irritable bowel syndrome: a double-blind, randomised, placebo-controlled trial. Lancet Gastroenterol. Hepatol. 2019; 4(9): 675-85. https://dx.doi.org/10.1016/S2468-1253(19)30198-0.
  26. Bajaj J.S., Kassam Z., Fagan A., Gavis E.A., Liu E., Cox I.J. et al. Fecal microbiota transplant from a rational stool donor improves hepatic encephalopathy: a randomized clinical trial. Hepatology. 2017; 66(6): 1727-38. https://dx.doi.org/10.1002/hep.29306.
  27. Kang D.W., Adams J.B., Gregory A.C., Borody T., Chittick L., Fasano A. et al. Microbiota transfer therapy alters gut ecosystem and improves gastrointestinal and autism symptoms: an open-label study. Microbiome. 2017; 5(1): 10. https://dx.doi.org/10.1186/s40168-016-0225-7.
  28. El-Salhy M., Hatlebakk J.G., Gilja O.H., Brathen Kristoffersen A., Hausken T. Efficacy of faecal microbiota transplantation for patients with irritable bowel syndrome in a randomised, double-blind, placebo-controlled study. Gut. 2020; 69(5): 859-67. https://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2019-319630.
  29. Wu N., Li X., Ma H., Zhang X., Liu B., Wang Y. et al. The role of the gut microbiota and fecal microbiota transplantation in neuroimmune diseases. Front. Neurol. 2023; 14:1108738. https://dx.doi.org/10.3389/fneur.2023.1108738.
  30. DeLong K., Bensouda S., Zulfiqar F., Zierden H.C., Hoang T.M., Abraham Alison G. et al. Conceptual design of a universal donor screening approach for vaginal microbiota transplant. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2019; 9: 306. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2019.00306.
  31. Meng F.J. Therapy and mechanism of vaginal microbiota transplantation and combination of vaginal probiotics in the vaginal bacterial infections. Nanchang: Nanchang University; 2018. (in Chinese).
  32. Lev-Sagie A., Goldman-Wohl D., Cohen Y., Dori-Bachash M., Leshem A., Mor U. et al. Vaginal microbiome transplantation in women with intractable bacterial vaginosis. Nat. Med. 2019; 25(10):1500-4. https://dx.doi.org/10.1038/s41591-019-0600-6.
  33. Kim S., Seo H., Abdur Rahim M., Lee S., Kim Y.-S., Song H.-Y. Changes in the microbiome of vaginal fluid after menopause in Korean women. J. Microbiol. Biotechnol. 2021; 31(11): 1490-500. https://dx.doi.org/10.4014/jmb.2106.06022.
  34. Gardner H.L., Dukes C.D. Haemophilus vaginalis vaginitis: a newly defined specific infection previously classified "nonspecific" vaginitis. Am. J. Obstet. Gynecol. 1955; 69(5): 962-76. https://dx.doi.org/10.1016/0002-9378(55)9009-8.
  35. Zhang F., Cui B., He X., Nie Y., Wu K., Fan D.; FMT-standardization Study Group. Microbiota transplantation: concept, methodology and strategy for its modernization. Protein Cell. 2018, 9(5): 462-73. https://dx.doi.org/10.1007/s13238-018-0541-8.
  36. Javdan B., Lopez J.G., Chankhamjon P., Lee Y.-C.J., Hull R., Wu Q. et al. Personalized mapping of drug metabolism by the human gut microbiome. Cell. 2020; 181(7): 1661-79.e22. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2020.05.001.
  37. Hoffmann D.E., Palumbo F.B., Ravel J., Rowthorn V., von Rosenvinge E. A proposed definition of microbiota transplantation for regulatory purposes. Gut Microbes. 2017; 8(3): 208-13. https://dx.doi.org/10.1080/19490976.2017.1293223.
  38. Humphries C. Microbiome: detecting diversity. Nature. 2017; 550(7674): S12-4. https://dx.doi.org/10.1038/550S12a.
  39. Parenteral and Enteral Nutrition Branch of Chinese Medical Association, Enhanced Recovery After Surgery Branch of China International Health Care Promotion and Exchange Association, China Microecological Treatment Innovation Alliance; Microecology Committee of Shanghai Preventive Medicine Association. Chinese experts consensus on clinical practice of the selection and establishment of fecal microbiota transplantation delivery routes. Zhonghua Wei Chang Wai Ke Za Zhi. 2020; 23(Z1): 14-20. (in Chinese). https://dx.doi.org/10.3760/cma.j.cn.441530-20200420-00228.
  40. Gerardin Y., Timberlake S., Allegretti J.R., Smith M.B, Kassam Z. Beyond fecal microbiota transplantation: developing drugs from the microbiome. J. Infect. Dis. 2021; 223(12, Suppl. 2): S276-82. https://dx.doi.org/10.1093/infdis/jiaa700.
  41. Berus S.M., Adamczyk-Popławska M., Goździk K., Przedpełska G., Szymborski T.R., Stepanenko Y., Kamińska A. SERS-PLSR analysis of vaginal microflora: towards the spectral library of microorganisms. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(20): 12576. https://dx.doi.org/10.3390/ijms232012576.
  42. Cammarota G., Ianiro G., Kelly C.R., Mullish B.H., Allegretti J.R., Kassam Z. et al. International consensus conference on stool banking for faecal microbiota transplantation in clinical practice. Gut. 2019; 68(12): 2111-21. https://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2019-319548.
  43. Kassam Z., Dubois N., Ramakrishna B., Ling K., Qazi T., Smith M. et al. Donor screening for fecal microbiota transplantation. N. Engl. J. Med. 2019; 381(21): 2070-2. https://dx.doi.org/10.1056/NEJMc1913670.
  44. Yockey L.J., Hussain F.A., Bergerat A., Reissis A., Worrall D., Xu J., Gomez I. Screening and characterization of vaginal fluid donations for vaginal microbiota transplantation. Sci. Rep. 2022; 12(1): 17948. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-022-22873-y.
  45. Hoffmann D., Palumbo F., Ravel J., Roghmann M.C., Rowthorn V., von Rosenvinge E. Improving regulation of microbiota transplants. Science. 2017; 358(6369): 1390-1. https://dx.doi.org/10.1126/science.aaq0034.
  46. Ahannach S., Delanghe L., Spacova I., Wittouck S., Van Beeck W., De Boeck I., Lebeer S. Microbial enrichment and storage for metagenomics of vaginal, skin, and saliva samples. iScience. 2021; 24(11): 103306. https://dx.doi.org/10.1016/j.isci.2021.103306.
  47. Bokoliya S.C., Dorsett Y., Panier H., Zhou Y. Procedures for fecal microbiota transplantation in murine microbiome studies. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2021; 11: 711055. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2021.711055.
  48. Johnson S., Gerding D.N. Fecal fixation: fecal microbiota transplantation for Clostridium difficile infection. Clin. Infect. Dis. 2017; 64(3): 272-4. https://dx.doi.org/10.1093/cid/ciw735.
  49. Zasada A.A., Zacharczuk K., Woźnica K., Główka M., Ziółkowski R., Malinowska E. The influence of a swab type on the results of point-of-care tests. AMB Express. 2020; 10(1): 46. https://dx.doi.org/10.1186/s13568-020-00978-9.
  50. Fransson M.N., Rial-Sebbag E., Brochhausen M., Litton J.E. Toward a common language for biobanking. Eur. J. Hum. Genet. 2015; 23(1): 22-8. https://dx.doi.org/10.1038/ejhg.2014.45.

Received 07.06.2023

Accepted 15.09.2023

About the Authors

Evgeny F. Kira, Dr. Med. Sci., Professor, Honored Scientist of the Russian Federation, Honored Doctor of the Russian Federation, Academician of the Russian Academy of Natural Sciences, Head of the Department of Obstetrics and Gynecology, Medical Academy JSC «Group of Companies «MEDSI»», +7(985)188-87-86, profkira33@gmail.com, 123242, Russia, Moscow, Krasnaya Presnya str., 16.
Tatiana V. Priputnevich, Corresponding Member of the Russian Academy of Sciences, Dr. Med. Sci., Professor, Director of the Institute of Microbiology, Antimicrobial Therapy and Epidemiology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation, +7(495)438-25-10, priput1@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-4126-9730, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Vera V. Muravieva, PhD (Bio), Senior Researcher, Laboratory of Molecular Microbiology, Department of Molecular Microbiology and Bioinformatics, Institute of Microbiology, Antimicrobial Therapy and Epidemiology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation, +7(495)438-25-33, v_muravieva@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0003-0383-0731, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Yulija V. Khalturina, graduate student of the Institute for Advanced Medical Studies, N.I. Pirogov National Medical and Surgical Center, Ministry of Health of the Russian Federation, +7(499)464-53-87, julia.vladimirovna.103@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-6853-8518, 105203, Russia, Moscow, Nizhnyaya Pervomayskaya str., 65.

Similar Articles