The syncytiotrophoblast of the placental villi in health and in preeclampsia

Shchegolev A.I., Tumanova U.S., Lyapin V.M., Serov V.N.

Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia
The authors analyze the data available in the literature on the role of the syncytiotrophoblast in the normal placental development processes and its changes in preeclampsia. They note the features of interstitial, endoarterial, endovenous, and endolymphatic trophoblast invasion into the uterine wall, as well as the stages of cytotrophoblast cell differentiation into the syncytiotrophoblast. It is indicated that the latter that lines the placental villi and is in direct contact with maternal blood is a major structural element and regulator of the functions of the formed placenta. It is emphasized that the most recognized cause of preeclampsia is considered to be surface trophoblast invasion into the uterine wall and defective spiral artery remodeling, leading to placental ischemia. There are literature data on primary changes in the syncytiotrophoblast of the placental villi in preeclampsia, which include ultrastructural, proliferative, and apoptotic impairments, and formation of syncytial nodules and capillary syncytial membranes. The role of syncytin-1 as a regulator of syncytiotrophoblast development and function in health and in preeclampsia is reflected. It is emphasized that starting with the invasion processes, any impaired function of the cytotrophoblast and syncytiotrophoblast can cause subsequent pregnancy complications, fetal growth, and neonatal diseases.

Keywords

placenta
trophoblast
syncytiotrophoblast
syncytin-1
preeclampsia

Плацента является провизорным органом, который развивается и существует только во время беременности. Соединяясь со стенкой и сосудами матки, она обеспечивает обмен питательных веществ и газов, защиту от ксенобиотиков и синтез ряда белков, направленных на рост и развитие плода. В этой связи поражения плаценты закономерно могут приводить к различным нарушениям как плода, так и самой беременной [1]. Это касается как нарушений развития, так и гибели плода и новорожденного.

Действительно, согласно данным Росстата за 2010 г., поражения плаценты обусловили мертворождение и раннюю неонатальную смерть соответственно в 45,3% [2] и в 17,2% случаев [3]. При этом наиболее часто поражения плаценты и пуповины регистрируются в качестве причин развития антенатальной и интранатальной гипоксии [4, 5].

Ведущую роль в обеспечении обменных процессов между матерью и плодом отводят клеткам трофобласта, выстилающим поверхность ворсин плаценты и контактирующим с материнской кровью [6]. По мнению Aplin J.D. [7], следует выделять четыре типа клеток трофобласта, отличающихся фенотипически и функционально: цитотрофобласт, синцитиотрофобласт, вневорсинковый трофобласт и гигантские клетки трофобласта.

Примечательно, что уже во время имплантации бластоцисты (через 6–8 дней после оплодотворения) отмечается разрастание трофобласта в виде тяжей клеток, контактирующих со слизистой оболочкой матки, с дифференцировкой его на цитотрофобласт и синцитиотрофобласт [8]. Последний образуется в результате процессов синцитиализации, то есть путем дифференцировки и сплавления (объединения) клеток поверхностного трофобласта. В результате синцитиотрофобласт состоит из многоядерных или гигантских клеток различной величины и формы и формирует непрерывной наружный слой ворсин плаценты.

Вневорсинковый трофобласт характеризуется инвазивным потенциалом, то есть внедрением клеток интерстициального трофобласта в децидуальную оболочку и внутреннюю треть миометрия. Помимо этого, клетки интерстициального трофобласта дифференцируются в эндоваскулярный трофобласт и эндожелезистый (внутрижелезистый) трофобласт, которые внедряются соответственно в спиральные артерии и железы матки [9].

Следует отметить, что одним из механизмов, определяющих развитие трофобластной инвазии, считается наличие градиента напряжения кислорода [10]. Так, на момент имплантации внутриматочное напряжение кислорода составляет 3% [11], а в децидуальной ткани и миометрии – 8–12% [12]. Подобный градиент напряжения кислорода приводит к прямой инвазии клеток трофобласта в децидуальную ткань и миометрий [13]. В результате эндожелезистой инвазии вневорсинкового трофобласта происходит замещение эпителия маточных желез, обеспечивающее гистиотрофное питание эмбриона до формирования маточно-плацентарного кровотока [14].

Важно, что процессы внедрения вневорсинкового трофобласта сопровождаются ремоделированием тканей и кровеносных сосудов матки в виде замещения эндотелия клетками трофобласта и увеличения просвета спиральных артерий, что приводит к уменьшению сопротивления тока крови и, соответственно, к повышению маточно-плодового обмена. При этом ремоделирование сосудов проявляется не только замещением эндотелия клетками трофобласта, но и образованием специфического волокнистого внеклеточного матрикса, замещающего эластические волокна и гладкомышечные клетки сосудов. Более того, клетки трофобласта, выстилающие артерии матки, приобретают своеобразный псевдоэндотелиальный фенотип, способствующий повышению целостности стенки сосудов, а также препятствующий свертыванию крови и иммунной реактивности [15]. Результатом вышеописанных процессов является формирование эффективного маточно-плодового кровотока к концу I триместра.

Необходимо добавить, что, помимо интерстициальной и эндоартериальной (внутриартериальной), наблюдаются эндовенозная (внутривенозная) и эндолимфатическая (внутрилимфатическая) инвазии трофобласта. Так, по данным N. He et al. [16], уже на 5-й неделе гестации примерно в 10% всех маточных вен плацентарного ложа наблюдаются признаки эндовенозной инвазии трофобласта. В результате эндовенозной и эндолимфатической инвазии клетки трофобласта, несомненно, попадают в общий кровоток беременной и, соответственно, могут лежать в основе выявления фетальной ДНК и клеток в материнской крови, начиная с 6-й недели [17]. Биологический смысл подобного явления, видимо, связан с формированием материнской иммунологической толерантности и иммунитета к развивающемуся эмбриону.

Примечательно, что в результате агрегации и слияния клеток интерстициального вневорсинкового трофобласта образуются многоядерные гигантские клетки трофобласта, ограничивающие, тем самым, процессы инвазии последнего [18].

Основным структурным элементом и регулятором функций плаценты считается синцитиотрофобласт, выстилающий ворсины плаценты [15]. Именно синцитиотрофобласт образует своеобразный эпителиальный барьер, разделяющий кровь матери и плода и непосредственно контактирующий с материнской кровью.

При этом следует отметить, что клетки синцитиотрофобласта характеризуются ограниченным периодом жизни, вследствие чего на протяжении всей беременности непрерывно «сбрасываются» в материнскую кровь [15]. Восполнение слоя синцитиотрофобласта происходит путем дифференцировки и слияния клеток цитотрофобласта, расположенных в виде непрерывного монослоя под синцитиотрофобластом.

Дифференцировка клеток цитотрофобласта в синцитиотрофобласт происходит в виде трех взаимосвязанных процессов. Во-первых, для такой дифференцировки необходима репрессия генов, способствующих самообновлению цитотрофобласта и соединительных белков, в частности, Е-кадгерина. Во-вторых, происходит индукция генов, связанных с так называемой биохимической дифференцировкой синцитиотрофобласта, которая характеризуется индукцией синтеза целого ряда гормонов клетками синцитиотрофобласта, включая: хорионический гонадотропин (кодируемый генами CGA и CGB), плацентарный лактоген (кодируемый геном CSH1), ароматазу (кодируемую геном CYP19A1), кортикотропин-рилизинг-гормон (кодируемый геном CRH), плацентарный фактор роста (кодируемый геном PGF). И, в-третьих, клетки цитотрофобласта подвергаются своеобразной морфологической дифференцировке в виде их слияния в синцитиотрофобласт. Данный процесс включает индукцию генов синцитина, ERVW-1 и ERVFRD-1, которые экспрессируются в дифференцирующихся клетках трофобласта и кодируют белки, способствующие слиянию клеток друг с другом [19].

Образующийся таким образом и выстилающий ворсины синцитиотрофобласт осуществляет многие функции плаценты, включая газообмен, транспорт питательных веществ, секрецию ряда гормонов и защиту плода. При этом любые нарушения функционирования цитотрофобласта и синцитиотрофобласта, прежде всего процессов инвазии, могут явиться причиной последующих нарушений развития беременности, роста плода и заболеваний новорожденного [20, 21]. Именно недостаточность процессов глубокой плацентации и ремоделирования маточных артерий лежит, по мнению большинства исследователей [22, 23], в основе недостаточного кровоснабжения плаценты, приводящего к целому спектру осложнений беременности: самопроизвольному выкидышу, преэклампсии, задержке роста плода.

Одним из наиболее грозных осложнений беременности считается преэклампсия, проявляющаяся развитием у беременной артериальной гипертензии и протеинурии после 20-й недели. По данным литературы [24], преэклампсия развивается у 2–8% беременных и является основной причиной материнской заболеваемости и смертности.

Согласно данным A. Narasimah et al. [25], у беременных с преэклампсией плаценты, как правило, имеют меньшую массу и размеры по сравнению с таковыми при нормальной беременности. Основными макроскопическими характеристиками плацент в наблюдениях преэклампсии являются преимущественно малокровие, а также более частое выявление инфарктов, кровоизлияний и участков обызвествления. По мнению O.M.F. Petersen et al. [26], поражения плаценты выявляются примерно в половине наблюдений тяжелой преэклампсии. Однако следует учитывать, что инфаркты плаценты встречаются не только при преэклампсии, но и при других состояниях, в частности, в наблюдениях задержки роста плода [27].

При микроскопическом исследовании отмечаются признаки склероза и сужения просвета артерий и артериол. Кроме того, достаточно часто выявляются признаки поверхностной инвазии трофобласта в виде небольшого количества клеток инвазивного трофобласта и недостаточного ремоделирования спиральных артерий, в результате чего отсутствуют кровеносные сосуды крупного калибра с низким сопротивлением, необходимые для адекватной доставки кислорода и питательных веществ плоду [28].

Именно поэтому в большинстве наблюдений преэклампсии в плацентах определяются повреждения, обусловленные хронической ишемией – реваскуляризацией. Более того, состояние постоянной ишемии – реперфузии приводит к образованию свободных радикалов кислорода, обуславливающих выраженные повреждения и апоптоз клеток.

По данным литературы [28], при исследовании плацент в наблюдениях преэклампсии отмечаются более высокие, по сравнению с нормальной беременностью, уровни пролиферации и апоптоза клеток цитотрофобласта. R.M. Sheridan et al. [29] наблюдали разнонаправленные изменения количества цито- и синцитиотрофобласта в зависимости от вида преэклампсии: увеличение цитотрофобласта на 53,3% и снижение синцитиотрофобласта на 16,3% – при умеренной преэклампсии, а также уменьшение цитотрофобласта на 38,1% при отсутствии изменений синцитиотрофобласта – при тяжелой преэклампсии. Еще 30 лет назад в результате сравнительного гистологического исследования препаратов 20 нормальных плацент и 20 плацент при преэклампсии S. Sodhi et al. [30] установили линейную корреляцию между увеличением уровня пролиферации цитотрофобласта и утолщением базальной мембраны ворсинок и тяжестью преэклампсии.

Имеющиеся данные о нарушениях пролиферации и апоптоза клеток находят свое отражение и при морфометрическом анализе ворсин плаценты. Так, S. Daayna et al. [31] выявили более низкие средние значения удельной площади ядер (на 28,7%) и цитоплазмы цитотрофобласта (на 50,8%) от общей площади ворсины в наблюдениях преэклампсии, по сравнению с соответствующими показателями контрольной группы. Важным фактом, на наш взгляд, является уменьшение при преэклампсии площади поверхности терминальных и промежуточных ворсин на 15,9–25,5% и 12,5–33,3% соответственно, отражающее снижение поверхности обмена между ворсинами и материнской кровью периворсинкового пространства [32]. Согласно результатам ранее проведенного нами морфометрического анализа гистологических препаратов плаценты [33], средние размеры терминальных ворсин меньше нормальных показателей на 19,1% и 15,1% при умеренной и тяжелой преэклампсии соответственно. При этом значения площади синцитиотрофобласта имели меньшие значения при умеренной преэклампсии и бóльшие – при тяжелой форме.

Показано, что уменьшение размеров и атрофия ворсин плаценты сопровождаются увеличением ядер синцитиотрофобласта, повышением содержания коллагена и ламинина в строме ворсин, а также увеличением отложений фибрина [34]. Дегенерация синцития сопровождается его истончением и появлением широких участков, отделяющих синцитиотрофобласт от подлежащих структур. По данным H. Soma et al. [35], в плаценте беременных, страдающих преэклампсией, наблюдается уменьшение просвета капилляров ворсин, утолщение базальной мембраны трофобласта, а также уменьшение количества микроворсинок и очаговые некрозы в синцитии.

В результате электронно-микроскопического изучения образцов плаценты при преэклампсии выявлены особенности изменения ультраструктурных элементов. При анализе 23 плацент женщин, страдавших преэклампсией, C.J. Jones и H. Fox [36] отметили расширение цистерн гранулярной цитоплазматической сети, уменьшение числа пиноцитозных везикул и секреторных капель, а также признаки некроза синцития. В участках, где отмечался некроз синцития, в клетках, как правило, наблюдались набухшие митохондрии. Кроме того, в плазматической мембране отмечалось увеличение степени интердигитации, особенно в наблюдениях тяжелой преэклампсии.

Примечательно, что еще в 1972 г. A.H. MacLennan et al. [37] опубликовали серию статей, посвященных ультраструктурным изменениям клеток трофобласта при культивировании их в условиях гипоксии. При этом авторы провели сравнительный анализ культур клеток, полученных из нормальной плаценты и после гипоксии. В результате исследования авторы выявили достаточно быстрое развитие при гипоксии повреждений синцития в виде утолщения базальной пластинки и увеличения количества внутриворсинкового коллагена, а также уменьшения размеров и нарушения структуры митохондрий. Помимо этого, авторы наблюдали вакуолизацию синцитиотрофобласта, увеличение складчатости его базальной мембраны и булавовидную трансформацию микроворсинок. Итогом наблюдающихся изменений ультраструктур являлся некроз клеток, наблюдающийся во всех плацентах, но более выраженный и быстрее развивающийся в наблюдениях преэклампсии.

Необходимо добавить, что еще 80 лет назад B. Tenney и F. Parker [38], исследуя плаценты при преэклампсии, отметили признаки ускоренного созревания ворсинкового дерева, а также дегенеративные изменения синцития в большинстве терминальных ворсин. В некоторых наблюдениях такие дегенеративные изменения наблюдались во всех ворсинах. По мнению B. Tenney и F. Parker [38], первая стадия дегенерации синцития характеризуется агрегацией ядер с явлениями лизиса, а заключительная – исчезновением ядер синцития с оставлением микроворсинок, неравномерно окруженных тонким слоем гиалина. В более поздних исследованиях было показано, что при преэклампсии слой синцития более тонкий и прерывистый с шаровидными участками и наличием внутриклеточных вакуолей. По данным K.D. Sankar et al. [39], в плацентах при преэклампсии отмечается статистически значимое двукратное утолщение синцитиокапиллярной мембраны по сравнению с нормальными плацентами, а также увеличение количества и размеров синцитиальных узелков.

Справедливости ради следует отметить, что синцитиальные узелки обнаруживаются в 10–15% терминальных ворсин в наблюдениях нормальной беременности [40]. Истинные синцитиальные узлы состоят из плотно упакованных ядер синцитиотрофобласта. К сожалению, до настоящего времени нет четкого заключения о точном количестве ядер синцитиотрофобласта; по мнению ряда исследователей, их должно быть не менее 5.

Характерной особенностью таких ядер является преобладание крупных гранул гетерохроматина в отсутствие признаков кариорексиса, что не всегда возможно оценить при традиционной световой микроскопии. При электронно-микроскопическом исследовании между ядрами отмечаются пучки микрофиламентов, соединяющие их в узлы по типу кольцевых чешуек. Клеточная мембрана синцитиальных узелков имеет обычное строение, хотя в ряде случаев в ней могут отсутствовать микроворсинки, что может отражать начальные процессы формировании мостиков.

Выраженность синцитиальных узелков зависит от срока гестации; большее их число установлено при переношенной беременности. При этом их количество не зависит от возраста и паритета беременной. Однако увеличение их количества считается признаком нарушения кровоснабжения и ишемии плаценты. По данным G. Ogge et al. [41], именно синцитиальные узелки явились наиболее частым признаком повреждения ворсин плаценты при снижении маточно-плацентарного кровотока.

На основании проведенных исследований L. Devisme et al. [42] считают, что увеличение числа синцитиальных узелков, наряду с ускоренным созреванием ворсин, отражает развитие преэклампсии. В результате гистологического изучения ткани плацент нами установлено повышение частоты выявления синцитиальных узелков в ворсинах плаценты при преэклампсии [43], а также увеличение количества синцитиальных узелков, которое отличалось при ранней и поздней преэклампсии [44]. По данным S. Saldago et al. [45], наблюдается пропорциональное увеличение числа синцитиальных узелков с возрастанием степени тяжести преэклампсии.

Развитие синцитиотрофобласта ворсин неразрывно связано с формированием так называемых синцитиокапиллярных мембран, представленных синцитиотрофобластом, эндотелиоцитами капилляров ворсин и расположенной между ними базальной мембраной. Основной функцией синцитиокапиллярных мембран считается обеспечение необходимых условий для обмена между кровью матери и плода, зависящих, прежде всего, от ее толщины и площади поверхности. Толщина мембраны в нормальных терминальных ворсинах составляет 0,5–2,0 мкм.

На основании гистологических исследований препаратов плацент при преэклампсии было установлено статистическое значимое увеличение на 21,9% толщины синцитиокапиллярных мембран по сравнению с показателями нормальных плацент. Одновременно с этим отмечалось увеличение на 26,4% диаметра и на 60% – объемной плотности синцитиальных узелков [39]. В свою очередь, N. Dimitrovska [46] наблюдала уменьшение количества ворсин с синцитиокапиллярными мембранами в ткани плацент пациенток с преэклампсией. Нами также было выявлено уменьшение выраженности синцитиокапиллярных мембран в терминальных ворсинах плацент при ранней и поздней преэклампсии [47].

Согласно данным литературы [48], важная роль в развитии и функционировании синцитиотрофобласта принадлежит синцитину-1 (ERVWE1 – endogenous retroviral family W, Env(C7), member 1), представляющему собой гликопротеин слияния, кодируемый геном эндогенного ретровируса, расположенного на хромосоме 7. В физиологических условиях синцитин-1 экспрессируется исключительно в клетках трофобласта, как цитотрофболаста, так и, в большей степени, синцитиотрофобласта. Уровень экспрессии синцитина-1 в трофобласте ворсин увеличивается на ранних (с 6-й по 12-ю неделю) сроках беременности и существенным образом снижается на поздних сроках беременности. Кроме того, в I триместре беременности незначительная экспрессия синцитина-1 наблюдается и в клетках вневорсинкового цитотрофобласта [49].

Считается [48], что синцитин-1 выполняет две основные функции:

  • обеспечивает способность клеток трофобласта к агрегации и последующему слиянию с формированием синцитиотрофобласта;
  • участвует в иммунной защите плаценты и плода со стороны матери.

При этом регуляция пролиферации трофобласта ворсин и вневорсинкового цитотрофобласта синцитином-1 осуществляется совместно с трансформирующими факторами роста (TGF)-β1 и/или TGF-β3, а также через механизм угнетения апоптоза синцитиотрофобласта при помощи Bcl-2.

При преэклампсии отмечается усиление процессов регенерации клеток синцития, обусловленное необходимостью репарации поврежденных клеток в условиях ишемии. Подобные изменения в основном характерны для ранней стадии и легкой формы течения заболевания, когда еще не нарушен принцип работы обратной связи. При тяжелой форме преэклампсии отмечены признаки выраженной активации апоптоза.

По данным M. Langbein et al. [50], развитие преэклампсии сопровождается снижением уровня экспрессии синцитина-1 и, соответственно, угнетением процессов слияния клеток трофобласта. В наблюдениях преэклампсии в сочетании с задержкой роста плода уровень транскрипции копий синцитина-1 снижен в 8,1 раза по сравнению с показателями контрольной группы, а при HELLP-синдроме с задержкой роста плода – в 222,7 раза [50].

По мнению Q. Huang et al. [51], основной причиной снижения экспрессии синцитина-1 в клетках плаценты при преэклампсии является угнетение гена синцитина-1 вследствие развития гипоксии. В качестве возможного механизма такого снижении экспрессии синцитина-1 предполагается нарушение экспрессии метилтрансферазы ДНК – фермента, осуществляющего метилирование геномной ДНК.

Весьма убедительные данные были получены X. Lee et al. [52] в результате проведенного сравнительного анализа методом гибридизации in situ и иммуногистохимии уровня экспрессии и локализации синцитина-1 в структурах плаценты при нормальной беременности и преэклампсии. Авторы выявили, что в наблюдениях преэклампсии уровень экспрессии синцитина-1 был в 25 раз ниже по сравнению с нормальными плацентами. Примечательно, что при физиологическом течении беременности синцитин-1 локализовался в основном в базальных отделах цитоплазматической мембраны синцитиотрофобласта, а при преэклампсии наблюдался лишь в виде тонкой линии в микроворсинках апикальной мембраны синцитиотрофобласта. Результатом выявленного нарушения локализации синцитина-1 является, по мнению авторов [52], невозможность слияния клеток синцитиотрофобласта, что характерно для преэклампсии.

Снижение уровня экспрессии синцитина-1 сопровождается также активацией процессов апоптоза [53], что закономерно приводит к депортации как микрочастиц, так и более крупных участков синцитиотрофобласта в материнский кровоток. Выраженное усиление процессов апоптоза в синцитиотрофобласте ворсин плаценты при преэклампсии, по сравнению с нормальной беременностью, было подтверждено при помощи иммуногистохимических методов исследования. Такие апоптотические клетки определялись преимущественно в участках выбухания синцитиотрофобласта, где на серийных срезах также наблюдалась и более высокая экспрессия апоптоз-индуцирующего фактора и калпаина.

Возвращаясь к роли синцитина-1, следует добавить, что, по данным J.M. Tolosa et al. [54], наличие синцитина-1 способствует снижению продукции ряда цитокинов, включая фактор некроза опухоли альфа, интерферон-γ-индуцибельный протеин-10 (IP-10, или CXCL10), интерферон-γ. Соответственно, снижение уровня экспрессии синцитина-1 является одним из механизмов индукции синтеза провоспалительных цитокинов и развития признаков системной воспалительной реакции у беременных при преэклампсии [51].

Еще одним важным моментом, указывающим на значение синцитиотрофобласта в развитии и прогрессировании преэклампсии, является его участие в продукции проангиогенных факторов роста. Наибольшую роль в формировании ангиогенеза плаценты отводят сосудисто-эндотелиальному фактору роста (VEGF), плацентарному фактору роста и их рецепторам (VEGFR-1 и VEGFR-2). Сбалансированное взаимодействие этих факторов и их рецепторов определяет последовательность развития процессов васкуляризации ворсин с ранних сроков беременности до окончательного формирования их капиллярной сети.

В случае развития гипоксии плаценты отмечается повышение продукции VEGF и растворимой формы sVEGFR-1 клетками трофобласта с высвобождением их в межворсинковое пространство [55]. Так, в плазме крови беременных, страдающих преэклампсией, выявлены более высокие концентрации VEGF и sVEGFR-1, по сравнению с женщинами контрольной группы; более высокие их концентрации наблюдались при ранней преэклампсии по сравнению с поздней формой [55, 56].

По данным R. Tripathi et al. [57], у беременных, страдающих преэклампсией, наблюдается снижение уровня как растворимого VEGFR-2 в плазме крови, так и мембранного VEGFR-2 в структурах ворсин плаценты. В результате иммуногистохимического исследования препаратов плацент, полученных от женщин с преэклампсией, нами установлено повышение экспрессии VEGF и VEGFR-1 при одновременном снижении экспрессии VEGFR-2 в синцитиотрофобласте ворсин [58].

Не касаясь важной проблемы толерантности и «неотторжения» плода плацентой, заслуживающей отдельного обсуждения, следует указать, что нами были установлены изменения состава гликокаликса синцитиотрофобласта ворсин при тяжелой преэклампсии [59]. Данный факт, несомненно, указывает на важность нарушений состояния гликома синцитиотрофобласта при преэклампсии в формировании толерантности к фетальным антигенам при беременности.

Заключение

Таким образом, согласно проведенному анализу данных литературы, основным структурным элементом и регулятором функций плаценты считается синцитиотрофобласт, выстилающий ворсины плаценты. Благодаря непосредственному контакту с материнской кровью, синцитиотрофобласт осуществляет многие функции плаценты, включая газообмен, транспорт питательных веществ, секрецию ряда гормонов и защиту плода. При этом любые нарушения функционирования цитотрофобласта и синцитиотрофобласта, начиная с процессов инвазии, могут явиться причиной последующих осложнений развития беременности, роста плода и заболеваний новорожденного. Основным звеном патогенеза преэклампсии считается нарушение плацентации с недостаточной инвазией трофобласта в структуры матки и неполноценным преобразованием спиральных артерий матки, приводящее к снижению кровоснабжения и ишемии плаценты. К характерным морфологическим изменениям плаценты при преэклампсии относят повреждения ультраструктур, пролиферации и апоптоза клеток синцитиотрофобласта, а также нарушения формирования синцитиальных узелков и синцитиокапиллярных мембран. Важная роль в регуляции развития и функционирования синцитиотрофобласта в норме и при преэклампсии принадлежит синцитину-1. Важно, что любые нарушения функционирования цитотрофобласта и синцитиотрофобласта, начиная с процессов инвазии, могут явиться причиной последующих осложнений развития беременности, роста плода и заболеваний новорожденного.

References

  1. Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод. М.: Медицина; 1999. 272 с. [Milovanov A.P. Pathology of mother-placenta-fetus system. M.: Medicine; 1999. 272 p. (in Russian)].
  2. Щеголев А.И., Павлов К.А., Дубова Е.А., Фролова О.Г. Мертворождаемость в субъектах Российской Федерации в 2010 году. Архив патологии. 2013; 75(2): 20-4. [Shchegolev A.I., Pavlov K.A., Dubova E.A., Frolova O.G. Stillbirth rates in the subjects of the Russian Federation in 2010. Arhiv patologii. 2013; 2: 20-24. (in Russian)].
  3. Щеголев А.И., Павлов К.А., Дубова Е.А., Фролова О.Г. Ранняя неонатальная смертность в Российской Федерации в 2010 г. Архив патологии. 2013; 75(4): 15-9. [Shchegolev A.I., Pavlov K.A., Dubova E.A., Frolova O.G. Early neonatal mortality in the Russian Federation in 2010. Arhiv patologii. 2013; 4: 15-19. (in Russian)].
  4. Щеголев А.И., Туманова У.Н., Фролова О.Г. Региональные особенности мертворождаемости в Российской Федерации. В кн.: Актуальные вопросы судебно-медицинской экспертизы и экспертной практики в региональных бюро судебно-медицинской экспертизы на современном этапе. Рязань; 2013: 163-9. [Shchegolev A.I., Tumanova U.N., Frolova O.G. Regional features of stillbirth rates in the Russian Federation. Aktual’nye voprosy sudebno-medicinskoj ekspertizy i ekspertnoj praktiki v regional’nyh byuro sudebno-medicinskoj ekspertizy na sovremennom etape. Ryazan’, 2013: 163-169. (in Russian)].
  5. Щеголев А.И., Туманова У.Н., Шувалова М.П., Фролова О.Г. Гипоксия как причина мертворождаемости в Российской Федерации. Здоровье, демография, экология финно-угорских народов. 2014; 3: 96-8. [Shchegolev A.I., Tumanova U.N., Shuvalova M.P., Frolova O.G. Hypoxia as a cause of stillbirth in the Russian Federation. Zdorov’e, demografiya, ekologiya finno-ugorskih narodov. 2014; 3: 96-98. (in Russian)].
  6. Huppertz B. The anatomy of the normal placenta. J. Clin. Pathol. 2008; 61(12): 1296-302. https://dx.doi.org/10.1136/jcp.2008.055277.
  7. Aplin J.D. Implantation, trophoblast differentiation and haemochorial placentation: mechanistic evidence in vivo and in vitro. J. Cell Sci. 1991; 99(Pt. 4): 681-92.
  8. Genbacev O.D., Prakobphol A., Foulk R.A., Krtolica A.R., Ilic D., Singer M.S. et al. Trophoblast L-selectin-mediated adhesion at the maternal-fetal interface. Science. 2003; 299(5605): 405-8. https://dx.doi.org/10.1126/science.1079546.
  9. Huppertz B., Weiss G., Moser G. Trophoblast invasion and oxygenation of the placenta: measurements versus presumptions. J. Reprod. Immunol. 2014; 101-102: 74-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2013.04.003.
  10. Salomon C., Kobayashi M., Ashman K., Sobrevia L., Mitchell M.D., Rice G.E. Hypoxia-induced changes in the bioactivity of cytotrophoblast-derived exosomes. PLoS One. 2013; 8(11): e79636. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0079636.
  11. Rodesch F., Simon P., Donner C., Jauniaux E. Oxygen measurements in endometrial and trophoblastic tissues during early pregnancy. Obstet. Gynecol. 1992; 80(2): 283-5.
  12. Jauniaux E., Gulbis B., Burton G.J. Physiological implications of the materno-fetal oxygen gradient in human early pregnancy. Reprod. Biomed. Online. 2003; 7(2): 250-3. https://dx.doi.org/10.1016/s1472-6483(10)61760-9.
  13. Lyall F. Mechanisms regulating cytotrophoblast invasion in normal pregnancy and preeclampsia. Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2006; 46(4): 266-73. https://dx.doi.org/10.1111/j.1479-828X.2006.00589.x.
  14. Moser G., Orendi K., Gauster M., Siwetz M., Helige C., Huppertz B. The art of identification of extravillous trophoblast. Placenta. 2011; 32(2): 197-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2010.11.008.
  15. Baines K.J., Renaud S.J. Transcription factors that regulate trophoblast development and function. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 2017; 145: 39-88. https://dx.doi.org/10.1016/bs.pmbts.2016.12.003.
  16. He N., van Iperen L., de Jong D., Szuhai K., Helmerhorst F.M., van der Westerlaken L.A.J. et al. Human extravillous trophoblasts penetrate decidual veins and lymphatics before remodeling spiral arteries during early pregnancy. PLoS One. 2017; 12(1): e0169849. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0169849.
  17. Chamley L.W., Holland O.J., Chen Q., Viall C.A., Stone P.R., Abumaree M. Review: where is the maternofetal interface? Placenta. 2014; 35(Suppl.): S74-80. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2013.10.014.
  18. Lunghi L., Ferretti M.E., Medici S., Biondi C., Vesce F. Control of human trophoblast function. Reprod. Biol. Endocrinol. 2007; 5: 6. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-5-6.
  19. Blaise S., de Parseval N., Benit L., Heidmann T. Genomewide screening for fusogenic human endogenous retrovirus envelopes identifies syncytin 2, a gene conserved on primate evolution. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003; 100(22): 13013-8. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.2132646100.
  20. Khong T.Y., Mooney E.E., Nikkels P.G.J., Morgan T.K., Gordinjn S.J., eds. Pathology of the placenta. Springer: Nature Switzerland; 2019. 395p. https://dx.doi.org/10.1007/978-3-319-97214-5.
  21. Щеголев А.И. Современная морфологическая классификация повреждений плаценты. Акушерство и гинекология. 2016; 4: 16-23. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.4.16-23. [Shchegolev A.I. Current morphological classification of damages to the placenta. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and gynecology. 2016; 4: 14-23. (in Russian)].
  22. Fox H., Sebire N.J. Pathology of placenta. 3rd ed. Saunders Elsevier; 2007. 574 p.
  23. Щеголев А.И., Серов В.Н. Клиническая значимость поражений плаценты. Акушерство и гинекология. 2019; 3: 54-62. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.3.54-62. [Shchegolev A.I., Serov V.N. Clinical significance of placental lesions. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and gynecology. 2019; 3: 54-62. (in Russian)].
  24. Steegers E.A.P., von Dadelszen P., Duvekot J.J., Pijnenborg R. Pre-eclampsia. Lancet. 2010; 376(9741): 631-44. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(10)60279-6.
  25. Narasimah A., Vasudeva D.S. Spectrum of changes in placenta in toxemia of pregnancy. Indian J. Pathol. Microbiol. 2011; 54(1): 15-20. https://dx.doi.org/10.4103/0377-4929.77317.
  26. Petersen O.M.F., Heller D., Joshi V. Handbook of placental pathology. Oxford: Taylor & Francis; 2006.
  27. Guller S. Role of the syncytium in placenta-mediated complications of preeclampsia. Thromb. Res. 2009; 124(4): 389-92. https://dx.doi.org/10.1016/j.thromres.2009.05.016.
  28. Ji L., Brkic J., Liu M., Fu G., Peng C., Wang Y.L. Placental trophoblast cell differentiation: physiological regulation and pathological relevance to preeclampsia. Mol. Asp. Med. 2013; 34(5): 981-1023. https://dx.doi.org/10.1016/j.mam.2012.12.008.
  29. Sheridan R.M., Stanek J., Khoury J., Handwerger S. Abnormal expression of transcription factor activator protein-2alpha in pathologic placentas. Hum. Pathol. 2012; 43(11): 1866-74. https://dx.doi.org/10.1016/j.humpath.2012.01.011.
  30. Sodhi S., Mohan H., Jaiswal T.S., Mohan P.S., Rathee S. Placental pathology in preeclampsia eclampsia syndrome. Indian J. Pathol. Microbiol. 1990; 33(1): 11-6.
  31. Daayana S., Baker P., Crocker I. An image analysis technique for the investigation of variations in placental morphology in pregnancies complicated by preeclampsia with and without intrauterine growth restriction. J. Soc. Gynecol. Investig. 2004; 11(8): 545-52. https://dx.doi.org/10.1016/j.jsgi.2004.06.009.
  32. Odibo A.O., Zhong Y., Longtine M., Tuuli M., Odibo L., Cahill A.G. et al. First-trimester serum analytes, biophysical tests and the association with pathological morphometry in the placenta of pregnancies with preeclampsia and fetal growth restriction. Placenta. 2011; 32(4): 333-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2011.01.016.
  33. Shchyogolev A.I., Dubova E.A., Pavlov K.A., Lyapin V.M., Kulikova G.V., Shmakov R.G. Morphometric characteristics of terminal villi of the placenta in pre-eclampsia. Bull. Exp. Biol. Med. 2012; 154(1): 92-5. https://dx.doi.org/10.1007/s10517-012-1883-5.
  34. Ishihara N., Matsuo H., Murakoshi H., Laoag-Fernandez J.B., Samoto T., Mauruo T. Increased apoptosis in the syncytiotrophoblast in human term placentas complicated by either preeclampsia or intrauterine growth retardation. Am. J. Obstet. Gyneccol. 2002; 186(1): 158-66. https://dx.doi.org/10.1067/mob.2002.119176.
  35. Soma H., Yoshida K., Mukaida T., Tabuchi Y. Morphologic changes in the hypertensive placenta. Contrib. Gynecol. Obstet. 1982; 9: 58-75.
  36. Jones C.J., Fox H. An ultrastructural and ultrahistochemical study of the human placenta in maternal pre-eclampsia. Placenta. 1980; 1(1): 61-76. https://dx.doi.org/10.1016/s0143-4004(80)80016-6.
  37. MacLennan A.H., Sharp F., Shaw-Dunn J. The ultrastructure of human trophoblast in spontaneous and induced hypoxia using a system of organ culture. J. Obstet. Gynaecol. Br. Commonw. 1972; 79(2): 113-21.
  38. Tenney B., Parker F. The placenta in toxemia of pregnancy. Am. J. Obstet. Gynecol. 1940; 39(6): 1000-5.
  39. Sankar K.D., Bhanu P.S., Kiran S., Ramakrishna B.A., Shanthi V. Vasculosyncytial membrane in relation to syncytial knots complicates the placenta in preeclampsia: a histomorphometrical study. Anat. Cell. Biol. 2012; 45(2): 86-91. https://dx.doi.org/10.5115/acb.2012.45.2.86.
  40. Fogarty N.M., Ferguson-Smith A.C., Burton G.J. Syncytial knots (Tenney-Parker changes) in the human placenta: evidence of loss of transcriptional activity and oxidative damage. Am. J. Pathol. 2013; 183(1): 144-52. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2013.03.016.
  41. Ogge G., Chaiworapongsa T., Romero R., Hussein Y., Kusanovic J.P., Yeo L. et al. Placental lesions associated with maternal underperfusion are more frequent in early-onset than in late-onset preeclampsia. J. Perinat. Med. 2011; 39: 641-52. https://dx.doi.org/10.1515/JPM.2011.098.
  42. Devisme L., Merlot B., Ego A., Houfflin-Debarge V., Deruelle P., Subtil D. A case-control study of placental lesions associated with pre-eclampsia. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2013; 120(2): 165-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijgo.2012.08.023.
  43. Щеголев А.И., Ляпин В.М., Туманова У.Н., Воднева Д.Н., Шмаков Р.Г. Гистологические изменения плаценты и васкуляризация ее ворсин при ранней и поздней преэклампсии. Архив патологии. 2016; 78(1): 13-8. [Shchegolev A.I., Lyapin V.M., Tumanova U.N., Vodneva D.N., Shmakov R.G. Histological hanges in the placenta and vascularization of its villi in early- and late-onset preeclampsia. Архив патологии. 2016; 1: 13-18.(in Russian)].
  44. Ляпин В.М., Туманова У.Н., Щеголев А.И. Синцитальные узелки в ворсинах плаценты при преэклампсии. Современные проблемы науки и образования. 2015; 4: 499. [Lyapin V.M., Tumanova U.N., Schegolev A.I. Syncytial knots of placental villi at preeclampsia. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2015; 4: 499. (in Russian)].
  45. Salgado S., Salgado M. Structural changes in pre-eclamptic and eclamptic placentas – an ultrastructural study. J. Coll. Physicians Surg. Pak. 2011; 21(8): 482-6.
  46. Dimitrovska N. Characteristics of the vasculosyncytial membranes in human chorioplacental villi. Jugosl. Ginekol. Opstet. 1978; 18(3-4): 279-84.
  47. Ляпин В.М., Туманова У.Н., Щеголев А.И. Синцитио-капиллярные мембраны в ворсинах плаценты при ранней и поздней преэклампсии. Современные проблемы науки и образования. 2015; 5: 295. [Lyapin V.M., Tumanova U.N., Schegolev A.I. Vasculosyncytial membrane in placental villi at early and late preeclampsia. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2015; 5: 295. (in Russian)].
  48. Колобов А.В. Место ретровирусов в перинатальной патологии (обзор литературы). Журнал инфектологии. 2012; 4(4): 13-9. [Kolobov A.V. The place of retroviruses in perinatal pathology (review of literature). Zhurnal infektologii. 2012; 4: 13-19. (in Russian)].
  49. Noorali S., Rotar I.C., Lewis C., Pestaner J.P., Pace D.G., Sison A. Role of HERV-W syncytin-1 in placentation and maintenance of human pregnancy. Appl. Immunohistochem. Mol. Morphol. 2009; 17(4): 319-28. https://dx.doi.org/10.1097/PAI.0b013e31819640f9.
  50. Langbein M., Strick R., Strissel P.L., Vogt N., Parsch H., Beckman M.W. et al. Impaired cytotrophoblast cell–cell fusion is associated with reduced syncytin and increased apoptosis in patients with placental dysfunction. Mol. Reprod. Dev. 2008; 75(1): 175-83. https://dx.doi.org/10.1002/mrd.20729.
  51. Huang Q., Chen H., Li J., Oliver M., Ma X., Byck D. et al. Epigenetic and non-epigenetic regulation of syncytin-1 expression in human placenta and carrier tissues. Cell. Signal. 2013; 26(3): 648-56. https://dx.doi.org/10.1016/j.cellsig.2013.11.002.
  52. Lee X., Keith J.C. Jr., Stumm N., Moutsatsos I., McCoy J.M., Crum C.P. et al. Downregulation of placental syncytin expression and abnormal protein localization in pre-eclampsia. Placenta. 2001; 22(10): 808-12. https://dx.doi.org/10.1053/plac.2001.0722.
  53. Huang Q., Chen H., Wang F., Brost B.C., Li J., Gao Y. et al. Reduced syncytin-1 expression in choriocarcinoma BeWo cells activates the calpain1-AIF-mediated apoptosis, implication for preeclampsia. Cell. Mol. Life Sci. 2014; 71(16): 3151-65. https://dx.doi.org/10.1007/s00018-013-1533-8.
  54. Tolosa J.M., Schjenken J.E., Clifton V.L., Vargas A., Barbeau B., Lowry P. et al. The endogenous retroviral envelope protein syncytin-1 inhibits LPS/PHA-stimulated cytokine responses in human blood and is sorted into placental exosomes. Placenta. 2012; 33(11): 933-41. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2012.08.004.
  55. Chaiworapongsa T., Romero R., Yoshimatsu J., Espinoza J., Kim Y.M., Park K. et al. Soluble adhesion molecule profile in normal pregnancy and pre-eclampsia. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2002; 12: 19-27. https://dx.doi.org/10.1080/jmf.12.1.19.27.
  56. Koga K., Osuga Y., Yoshino O., Hirota Y., Ruimeng X., Hirata T. et al. Elevated serum soluble vascular endothelial growth factor receptor 1 (sVEGFR-1) levels in women with preeclampsia. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003; 88(5): 2348-51. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2002-021942.
  57. Tripathi R., Rath G., Ralhan R., Saxena S., Salhan S. Soluble and membranous vascular endothelial growth factor receptor-2 in pregnancies complicated by pre-eclampsia. Yonsei Med. J. 2009; 50(5): 656-66. https://dx.doi.org/10.3349/ymj.2009.50.5.656.
  58. Dubova E.A., Pavlov K.A., Lyapin V.M., Shchyogolev A.I., Sukhikh G.T. Vascular endothelial growth factor and its receptors in the placental villi of pregnant patients with pre-eclampsia. Bull. Exp. Biol. Med. 2013; 154(6): 792-5. https://dx.doi.org/10.1007/s10517-013-2058-8.
  59. Sukhikh G.T., Ziganshina M.M., Nizyaeva N.V., Kulikova G.V., Volkova J.S., Yarotskaya E.L., Kan N.E., Shchyogolev A.I., Tyutyunnik V.L. Differences of glycocalyx composition in the structural elements of placenta in preeclampsia. Placenta. 2016; 43: 69-76. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2016.05.002.

Received 15.01.2020

Accepted 07.02.2020

About the Authors

Aleksandr I. Shchegolev, Dokt. of Med. Sci., professor, Head of Morbid Anatomy, National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. Tel: +7(495)531-44-44. E-mail: ashegolev@oparina4.ru.
4 Oparina str., Moscow, 117997, Russian Federation.
Ulyana N. Tumanova, Ph.D., senior researcher of Department of Morbid Anatomy, National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. Tel: +7(495)531-44-44. E-mail: ashegolev@oparina4.ru.
4 Oparina str., Moscow, 117997, Russian Federation.
Vyacheslav M. Lyapin, pathologist of Department of Morbid Anatomy, National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. Tel: +7(495)531-44-44. E-mail: v_lyapin@oparina4.ru.
4 Oparina str., Moscow, 117997, Russian Federation.
Vladimir N. Serov, MD, professor, academician of the Russian Academy of Sciences, chief researcher, National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov, Ministry of Health of Russia. Тel.: +7(495)438-72-87. E-mail: v_serov@oparina4.ru.
4 Oparina str., Moscow, 117997, Russian Federation.

For reference: Shchegolev A.I., Tumanova U.S., Lyapin V.M., Serov V.N. The syncytiotrophoblast of the placental villi in health and in preeclampsia.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2020; 6: 21-28 (in Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.6.21-28

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.