The role of peripheral and endometrial natural killer cells in recurrent reproductive losses

Zagainova V.A., Kogan I.Yu., Bespalova O.N., Selkov S.A., Sokolov D.I.

D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology, and Reproductology, Saint Petersburg, Russia
Many infertile couples cannot achieve pregnancy after repeatedly implemented assisted reproductive technology (ART) programs, as well as its successful prolongation, even with the transfer of good-quality euploid embryos. In this connection, repeated implantation failures (RIFs) in the in vitro fertilization (IVF) protocols and recurrent miscarriage (RM) are important medical and social problems. The generally accepted methods
of examination do not explain the cause of repeated reproductive failures in 30-50% of cases. Among the causes
of idiopathic reproductive losses, the immunological factor, including both systemic and local changes in the immune status, plays a leading role. Innate immune cells have been established to play a central role in the processes of implantation, placentation, formation, and maintenance of immune tolerance towards a developing embryo. Of great scientific and practical interest are natural killer (NK) cells that are the largest population of endometrial lymphocytes, changes in the quantitative and qualitative profile of which in both peripheral blood and the endometrium are associated with conditions, such as RIF, RM, uterine fibroids, endometriosis, preeclampsia and others.
Conclusion. The conducted studies indicate the important role of both subpopulations of NK cells in a woman’s reproductive health. However, to date, there are insufficient data on the function and mechanisms of action of NK cells in reproductive losses, which requires further investigation.

Keywords

NK cells
natural killers
phenotype
activity
implantation
IVF failures
repeated implantation failures
recurrent miscarriage

Естественные киллеры (NK-клетки, natural killer cells) представляют собой гетерогенную популяцию лимфоцитов I группы врожденного иммунитета, обеспечивающих первую линию иммунной защиты против ряда патогенов. Клетки обладают естественной цитотоксической активностью, способны продуцировать цитокины и хемокины, осуществлять координацию взаимодействия врожденного и адаптивного звеньев иммунной системы; участвуют в противоинфекционном и противоопухолевом контроле, поддержании клеточного гомеостаза лимфоидной системы [1].

NK-клетки распространены в различных органах и системах организма, условно подразделяясь на NK-клетки периферической крови, где их численность составляет 5–20% лимфоцитов, и тканерезидентные NK-клетки (селезенка, печень, почки, костный мозг, тимус, лимфатические узлы, кожа и слизистые оболочки, слюнные железы, эндометрий) [2].

NK-клетки периферической крови проходят последовательные этапы дифференцировки из гематопоэтических стволовых клеток-предшественниц (ГСК) преимущественно в костном мозге, что координируется транскрипционными факторами (T-bet, Eomes и другие), стромальными элементами и цитокинами. По мере дифференцировки клетки приобретают зрелый фенотип и функциональную компетентность – способность к продукции литических молекул и цитокинов, после чего выходят из костного мозга в периферическую кровь [3].

Важнейшей функцией NK-клеток является их цитотоксическая активность по отношению к клеткам-мишеням. NK-клетки могут распознавать и атаковать опухолевые, инфицированные вирусами, бактериями, а также поврежденные в результате окислительного стресса клетки без предварительной сенсибилизации [4]. NK-клетки способны лизировать чужеродные или свои собственные измененные клетки в отсутствие молекул главного комплекса гистосовместимости I класса на мембране, независимо от антител и комплемента [4]. Уничтожение клеток-мишеней реализуется посредством нескольких механизмов. Контактный цитолиз происходит при высвобождении содержимого цитотоксических гранул NK-клеток, содержащих перфорин, гранзимы, сериновые протеазы, в область иммунологического синапса с клеткой-мишенью. Перфорин способствует проникновению в клетку цитолитических медиаторов, что запускает процессы апоптоза. Цитотоксический эффект натуральных киллеров также реализуется при связывании рецептора TRAIL- и Fas-активированных NK-клеток с их лигандами (TRAIL-R, Fas-R) на поверхности клеток-мишеней. При их взаимодействии в клетке-мишени происходит индукция каскада сигнальных реакций, активирующих каспазу-8 и каспазу-10, инициирующих ее апоптоз [5].

NK-клетки обладают иммунорегуляторной функцией, являясь одними из основных источников цитокинов и хемокинов, таких как интерферон гамма (IFNγ), фактор некроза опухоли альфа (TNFα), гранулоцитарный макрофагальный колониестимулирующий фактор роста, хемокин CCL5, регулируя активность макрофагов, нейтрофилов, дендритных клеток и Т-лимфоцитов, способствуя формированию врожденного и адаптивного иммунных ответов [6].

NK-клетки периферической крови

21-1.jpg (85 KB)NK-клетки периферической крови (peripheral blood NK-сells, pbNK-клетки) подразделяют на две основные субпопуляции согласно экспрессии поверхностных антигенов кластерной дифференцировки лейкоцитов – CD56 и CD16 [7]. Около 90% pbNK-клеток слабо экспрессируют СD56 (CD56dim) и интенсивно CD16 (CD16bright); представлены фенотипом CD3-CD56dimCD16bright; для них характерно большое количество лизосомальных гранул и высокая цитотоксическая активность. Другая субпопуляция NK-клеток интенсивно экспрес­си­рует CD56 (CD56bright) и средне/низко CD16 (CD16dim/neg) и имеет фенотип CD3­CD56brightCD16dim/neg, составляя менее 10% от общего количества натуральных киллеров крови. Данные клетки обладают регуляторными свойствами, продуцируют цитокины, хемокины, факторы роста [7]. CD56brightNK-клетки более распространены в периферических тканях организма, что указывает на их тканеспецифическую функцию [8]. Помимо CD56bright и CD56dim, выделяют также субпопуляцию NK-клеток CD56neg, отличающихся пониженной экспрессией цитотоксических рецепторов, низким уровнем перфорина и, как следствие, общей гипореактивностью (рис. 1).

Особенностью NK-клеток является контроль их функциональной активности за счет экспрессии широкого репертуара активирующих и ингибирующих рецепторов на поверхности. Основные группы рецепторов представлены лектиноподобными рецепторами NKG (natural killer group), семейством иммуноглобулиноподобных рецепторов (killer immunoglobulinlike receptor, KIR), цитотоксическими рецепторами NKp30, NKp44, NKp46 и другими [10]. Активность NK-клеток зависит от плотности распределения групп рецепторов, их взаимодействия с клетками-мишенями, клеточным микроокружением, растворимыми факторами.

Некоторыми исследованиями продемонстрировано изменение показателей количества и функциональной активности pbNK-клеток в течение менструального цикла и при наступлении беременности. В работе Lee S. et al. (2010) обнаружено выраженное увеличение субпопуляции CD3-CD56dimNK-клеток крови в лютеиновую фазу цикла при отсутствии изменений количества CD3-CD56brighNK-клеток [11]. Также отмечено снижение цитотоксической активности pbNK-клеток в лютеиновой фазе цикла и при физиологической беременности [12, 13], что, впрочем, не подтверждается другими авторами [14, 15].

Таким образом, субпопуляции pbNK-клеток различаются по экспрессии цитокиновых и хемокиновых рецепторов, регуляторной и цитотоксической функции.

NK-клетки эндометрия и децидуальной оболочки

Количество иммунокомпетентных клеток эндометрия может достигать 40% от общего числа стромальных клеток, при этом NK-клетки являются самой многочисленной популяцией лимфоцитов эндометрия. Эндометриальные NK-клетки (uterine NK cells, uNK-клетки) составляют минимум 30% от общего количества эндометриальных лимфоцитов, при этом в секреторную фазу менструального цикла их количество прогрессивно увеличивается и в случае наступления беременности на ранних сроках достигает 75% [16].

На сегодняшний день не существует единого мнения относительно происхождения uNK-клеток. Возможность их локальной дифференцировки подтверждается рядом исследований, обнаруживающих способность ГСК эндометрия к приобретению фенотипического маркера CD56+NK-клеток [17]. Вторая теория предполагает образование uNK-клеток преимущественно путем трансэндотелиальной миграции pbNK-клеток за счет хемотаксиса с последующим приобретением эндометриального или децидуального фенотипа. Эндометрий человека продуцирует факторы, влияющие на дифференцировку NK-клеток, включая интерлейкины IL-15, IL-25, IL-7, хемокины CXCL10 и CXCL11, трансформирующий фактор роста β1 (TGFβ1), секреция которых увеличивается в лютеиновой фазе менструального цикла и начале беременности [18]. Миграция pbNK-клеток в эндометрий также может быть реализована в ответ на секрецию хемокинов клетками трофобласта [19] (рис. 2).

22-4.jpg (311 KB)

Установлено, что децидуальные NK-клетки располагаются вдоль спиральных артерий матки и являются источниками цитокинов, проангиогенных факторов, участвуя в ремоделировании сосудов матки и децидуальном ангиогенезе при беременности. uNK-клетки экспрессируют ряд рецепторов, включая KIR и лейкоцитарные иммуноглобулиноподобные рецепторы (LIRs), которые распознают HLA-E, HLA-G и HLA-C, экспрессируемые вневорсинчатым трофобластом [20].

За счет связывания рецепторов KIR2DL4 NK-клеток с молекулами локуса HLA-G, экспрессируемыми клетками трофобласта, происходит подавление цитотоксической активности NK-клеток. Связывание KIR2DL4 и HLA-G стимулирует секрецию NK-клетками IFNγ, индуцирующего экспрессию генов различных хемокинов, цитокинов и транскрипционных факторов клетками децидуальной ткани, что способствует построению сосудистой сети плаценты [21]. IFNγ также способствует подавлению иммунной реакции материнского организма в отношении полуаллогенного плода, стимулирует экспрессию и секрецию неклассических молекул главного комплекса гистосовместимости HLA-G и HLA-E эндотелиальными клетками и клетками трофобласта [22], что способствует поддержанию состояния иммунологической толерантности в системе мать–плацента–плод.

Предложена двухволновая гипотеза накопления uNK-клеток в матке при беременности. Первая волна происходит в процессе децидуализации эндометрия и обусловлена локальной пролиферацией тканерезидентных uNK-клеток, при этом циркулирующие pbNK-клетки имеют минимальный вклад в растущий пул uNK-клеток на ранних сроках беременности. Во второй волне происходит рекрутирование pbNK-клеток в матку в ответ на инвазию трофобласта, процессы плацентации [24]. uNK-клетки продуцируют проангиогенные факторы, в том числе фактор роста эндотелия сосудов и плацентарный фактор роста, которые способствуют развитию и росту плаценты в decidua basalis. Исследования человеческих uNK-клеток показывают, что эти процессы могут быть обусловлены связыванием рецепторов NKp30 и NKp44 на uNK-клетках с лигандами вневорсинчатого трофобласта и материнских стромальных клеток.

Установлено воздействие половых стероидных гормонов, эстрогена и прогестерона, на иммунорегуляторную и ангиогенную функцию uNK-клеток [25]. In vitro под влиянием эстрогенов происходит усиление экспрессии галектина-1 uNK-клетками. Эстрогены увеличивают секрецию CCL2 uNK-клетками, что влияет на пролиферацию кровеносных сосудов эндометрия; в то время как прогестерон индуцирует экспрессию IFNγ. За счет опосредованного прогестероном воздействия на клетки микроокружения эндометрия (Т-лимфоциты, стромальные клетки эндометрия) происходит продукция транскрипционного фактора Hoxa-10, прогестерон-индуцированного блокирующего фактора и цитокинов Th2 типа (IL-18), что в совокупности влияет на снижение цитотоксичности uNK-клеток.

Таким образом, uNK-клетки участвуют в регуляции инвазии бластоцисты и клеток трофобласта в стенку матки, контролируют ремоделирование спиральных артерий матки, поддержание плодово-материнской иммунологической толерантности.

Изменения количественно-качественных показателей NK-клеток обеих популяций ассоциированы с репродуктивно значимыми заболеваниями, в том числе с повторными неудачами имплантации (ПНИ) и привычным невынашиванием беременности (ПНБ).

NK-клетки при повторных неудачах имплантации

На сегодняшний день термин ПНИ (Recurrent implantation failure, RIF) не имеет унифицированного определения и наиболее часто описывает клиническую ситуацию отсутствия наступления беременности после проведения 2 и более циклов ЭКО при переносе эмбрионов (не менее 4 для эмбрионов на стадии дробления; не менее 2 для бластоцист) хорошего качества женщинам моложе 40 лет [26].

Активно изучаются NK-клетки обеих субпопуляций при повторных неудачах имплантации. Так, Marron K. et al. (2019) в образцах эндометрия середины лютеиновой фазы цикла обнаружили повышение количества uNK-клеток в группе пациентов с ПНИ по сравнению с ПНБ, а также в группах пациенток с бесплодием без проведенных протоколов ЭКО. При этом продемонстрировано увеличение количества NK-клеток цитотоксического фенотипа CD16+CD56dim и их функциональной активности, снижение количества Т-регуляторных лимфоцитов (Treg) [27]. Похожие данные сообщены Tuckerman E. et al. (2010), обнаружившими изменение пропорций CD56brightCD16- (уменьшение) и CD56dimCD16+ (увеличение) uNK-клеток при ПНИ [28].

Предприняты попытки оценки диапазонов нормальных значений количества uNK-клеток и отклонений от них. Так, Chen X. et al. (2017) относят количество uNK-клеток в «окно имплантации» от 1,2 до 4,5% от общего количества стромальных клеток к нормальному, более 4,5% – к высокому, менее 1,2% – к низкому. В большинстве случаев при ПНИ авторы отмечали значительно более высокий процент uNK-клеток, однако в исследовании продемонстрировано и снижение процента uNK-клеток в группах пациентов с ПНБ и ПНИ [29].

Результаты проведенных исследований pbNK-клеток при неудачах имплантации также неоднозначны. В ряде работ продемонстрировано значительное повышение количества pbNK-клеток, в других приводятся противоположные данные или не обнаруживается различий показателей.

Так, Sacks G. et al. (2012) обнаружили, что пациентки с ПНИ имеют значительное увеличение количества pbNK-клеток по сравнению с фертильными женщинами [30]. Подобные результаты получены в работе Santillan I. et al. (2015), продемонстрировавших, что количество и pbNK-клеток, и uNK-клеток повышается при повторных неудачах ЭКО. Уровни pbNK-клеток составили 13,4% у пациентов с ПНИ и 8,4% в группе фертильных пациенток [31].

Напротив, в работе Ho Y.K. et al. (2019) количество pbNK-клеток у пациентов с ПНИ, равное 10,6%, установлено как пограничное для прогнозирования исходов беременности в цикле ЭКО. Количество pbNK-клеток менее 10,6% ассоциировано со снижением показателей наступления имплантации и беременности по сравнению с количеством pbNK-клеток >10,6% [32].

Zhang H. et al. (2019) не обнаружили различий в количестве, фенотипе, цитотоксической активности и рецепторном профиле pbNK-клеток при ПНИ [33]. Аналогично, Kolanska K. et al. (2019) провели исследование в группах пациентов с ПНБ, ПНИ и группой фертильных пациенток с оценкой pbNK-клеток без учета фазы менструального цикла. Не обнаружено различий в относительном содержании и субпопуляциях клеток между исследуемыми группами и контролем, а также в исходах беременности (выкидыш/роды) [34].

Проведенные по данной тематике метаанализы Seshadri S., Sunkara S.K. (2014) и VonWoon E. et al. (2020) подтверждают повышение количества обеих субпопуляций NK-клеток, однако заключают, что необходимы дальнейшие исследования pbNK-клеток и uNK-клеток, прежде чем рекомендовать их в качестве критериев диагностики эффективности протоколов ЭКО, исходов беременности и назначения терапии [35, 36].

Трудности в сравнении исследований возникают в результате использования различных методов количественной и функциональной оценки uNK-клеток (проточная цитофлуометрия/иммуногистохимия), методов оценки цитотоксичности, отсутствия единых референсных интервалов и трактовки термина ПНИ в циклах ЭКО (2 и более, 3 и более неудачных циклов ЭКО; различное количество и качество перенесенных эмбрионов, день переноса), стандартизации групп.

Дальнейшие исследования могут позволить подробнее изучить роль обеих популяций NK-клеток в патогенезе неудач имплантаций, определить референсные показатели, оценить прогностическую роль данных клеток в эффективности циклов ЭКО, а также расширить возможные методы терапии.

NK-клетки при привычном невынашивании беременности

ПНБ неустановленной этиологии составляет до 50% случаев повторных выкидышей [26]. Большое количество исследований подтверждает роль иммунологического фактора, в частности, изменения в показателях периферических и эндометриальных NK-клеток, в генезе невынашивания беременности.

Изменение количества и цитотоксической активности NK-клеток может приводить к чрезмерному цитокиновому ответу Th1-типа, в частности, увеличению синтеза TNFα и IFNγ и снижению цитокинов Th-2-профиля, IL-4 и IL-10, обуславливая иммунологический дисбаланс, что создает неблагоприятную среду для имплантации и пролонгирования беременности [37]. Однако на сегодняшний день парадигма Th1/Th2-иммунного ответа, отражающая важность определенного соотношения провоспалительных и противовоспалительных факторов для индукции поддержания толерантности при беременности, сменяется на парадигму, включающую Т-регуляторные клетки (Th1/Th2/Th17/Тreg). Т-регуляторным лимфоцитам (Treg) отводится важная роль в сохранении иммунотолерантности за счет супрессирующего действия на генерацию провоспалительных регуляторных клеточных типов, таких как Th1 и Th17 [38]. Treg также подавляют пролиферацию и активность NK-клеток, в том числе влияют на экспрессию активирующего рецептора NKG2D in vitro. В основе супрессорного действия Treg лежит способность к продукции TGFβ и IL-10 [39].

Баланс активирующих и ингибирующих сигналов от клеток трофобласта также может оказывать регуляторное воздействие на функциональную активность NK-клеток. Клетки трофобласта продуцируют TGFβ, что может являться одним из факторов, снижающих цитотоксичность NK-клеток и увеличивающих количество pbNK-клеток с регуляторным фенотипом [40]. Потенциальным механизмом нарушения имплантации также может являться нарушение взаимодействия HLA-G инвазирующего трофобласта и материнских иммуноглобулиноподобных рецепторов uNK-клеток, что приводит к повышению их цитотоксической активности. Важную роль играют обусловленный uNK-клетками ангиогенез и ремоделирование спиральных артерий эндометрия. При этом увеличение количества uNK-клеток может вызывать увеличение периимплантационного кровотока и раннее формирование плодово-материнского кровообращения, приводя к чрезмерному окислительному стрессу, повышая вероятность самопроизвольного выкидыша [41].

По данным ряда работ, при ПНБ увеличивается количество pbNK-клеток с цитотоксическим фенотипом с параллельным снижением иммунорегуляторного фенотипа CD56brightpbNK-клеток, что приводит к цитокиновому дисбалансу. Так, в работе Azargoon A. et al. (2019) показано значительное увеличение цитотоксичности pbNK-клеток и содержания в них перфорина в середине лютеиновой фазы в группах ПНБ по сравнению с контрольной группой. При этом количественная разница pbNK-клеток не отмечена [42]. Аналогичные результаты получены Ghafourian M. et al. [43], которые сообщили, что процент активированных pbNK-клеток значительно повышается у пациентов с ПНБ и при ПНИ. Однако Baczkowski T. и Kurzawa R. не обнаружили подобных различий в данных подгруппах [44].

Повышенная цитотоксичность pbNK-клеток может сохраняться в течение нескольких месяцев после самопроизвольного выкидыша, что подтверждается данными обследования пациентов через 3–12 месяцев [45]. Также необходимо отметить разницу в pbNK- и uNK-клетках у пациентов с ПНБ в зависимости от наличия родов в анамнезе. Пациенты с ПНБ и отсутствием родов в анамнезе демонстрируют значительно более высокое количество NK-клеток по сравнению с пациентами с ПНБ, имевшими хотя бы 1 роды в анамнезе [46].

Дискуссионным является вопрос корреляции pbNK-клеток с uNK-клетками эндометрия при ПНБ и ПНИ. Некоторые исследователи продемонстрировали, что pbNK-клетки могут отражать изменения в локальной эндометриальной среде [47], другие данные результаты не подтвердили [48].

Все больше исследований подтверждают роль uNK-клеток в патогенезе ПНБ. Продемонстрированы более высокие концентрации uNK-клеток в сравнении с фертильным контролем [49]. Также отмечено значительное уменьшение субпопуляции CD16-CD56bright uNK-клеток у пациенток с ПНБ по сравнению с фертильными женщинами. Продемонстрировано увеличение функциональной активности NK-клеток обеих популяций, увеличение количества цитотоксических uNK-клеток [49] и uNK-клеток с повышенной экспрессией рецепторов естественной цитотоксичности NKp46, NKp44 и NKp30 у женщин с идиопатическим ПНБ [50].

Согласно проведенному метаанализу, при ПНБ отмечается более высокое относительное и абсолютное содержание количество pbNK-клеток по сравнению с фертильными женщинами. Однако не выявлено существенных различий количества uNK-клеток в группе ПНБ [35].

На сегодняшний день несколько исследований предлагают критерии оценки количественных изменений NK-клеток. В работе Kuon R.J. et al. (2017) был проведен анализ концентрации uNK-клеток в группе пациентов с ПНБ и фертильными жен­щинами. Количество uNK-клеток: 0–40 uNK-клеток/мм2 оценено как низкое, 40–300 – нормальное, более 300 – высокое, ассоциированное с высоким риском потери беременности [51]. В работе Tang et al. (2013) количество uNK-клеток более 5% от общего количества стромальных клеток определено как высокое [52].

Ebina Y. et al. (2017) изучали активность pbNK-клеток в середине лютеиновой фазы в группе пациенток с идиопатическим ПНБ и ПНБ с установленной этиологией, их влияние на наступление и исход беременности. Авторами продемонстрировано значительное повышение активности pbNK-клеток в группе с идиопатическим ПНБ. Уровень pbNK-клеток более 33% до беременности ассоциирован с повышением риска самопроизвольного выкидыша или наступления биохимической беременности в 3,4 раза [53]. Более ранние исследования предлагали пороговые значения активности NK-клеток, связанные с повышенным риском прерывания беременности: более 34,3% в работе Lee S.K. et al. [54] и более 18% в исследовании Beer A.E. et al. [55].

Таким образом, современная доказательная база имеет достаточно сведений для подтверждения роли NK-клеток при ПНБ, однако данные носят противоречивый характер. В основном это связано с гетерогенностью изучаемых популяций, различиями в самом определении патологии (согласно одним авторам, ПНБ – последовательная потеря 3 и более беременностей до 24 недель, другим – 2 потери до 20 недель), методах исследований, интерпретации результатов.

Заключение

Баланс звеньев локального и системного иммунного ответа имеет фундаментальное значение для наступления и успешной пролонгации беременности. Исследования последних лет подтверждают роль как периферических, так и эндометриальных NK-клеток в репродуктивном здоровье женщины.

NK-клетки крови обладают высокой цитотоксической активностью, а также выполняют иммунорегуляторную функцию, поддерживая иммунологический гомеостаз. Согласно некоторым исследованиям, изменяясь в количестве, фенотипе и функциональной активности в течение менструального цикла, NK-клетки крови могут пополнять пул NK-клеток матки путем трансэндотелиальной миграции с последующим приобретением эндометриального и децидуального фенотипа. В некоторых работах продемонстрирована корреляция между показателями pbNK-клеток и uNK-клеток, в связи с чем существует предположение, что pbNK-клетки могут отражать изменения в локальной эндометриальной среде.

Эндометриальные NK-клетки участвуют в процессах децидуализации, регуляции инвазии бластоцисты и клеток трофобласта в стенку матки, контроле ремоделирования спиральных артерий матки, поддержании плодово-материнской иммунологической толерантности, выполняя иммунорегуляторную и ангиогенную функции.

Продемонстрированное многочисленными исследованиями изменение количественно-качественных показателей pbNK-клеток и uNK-клеток у пациенток с ПНИ и ПНБ подтверждает гипотезу о причинно-следственной связи данных заболеваний и функции NK-клеток. Однако полученные данные противоречивы. С одной стороны, обнаруженное увеличение количества и/или функциональной активности pbNK-клеток и uNK-клеток, а также изменение пропорций их субпопуляций при репродуктивных неудачах может быть связано с патологией инвазии трофобласта, цитокиновым дисбалансом, увеличением периимплантационного кровотока, ранним формированием плодово-материнского кровообращения, окислительным стрессом. С другой стороны, имеются данные о снижении количества и цитотоксической активности как pbNK-клеток, так и uNK-клеток при ПНБ и неудачах ЭКО, что также может быть связано с дефектами плацентации, приводящими к прерыванию беременности или развитию ее осложнений.

Таким образом, NK-клетки могут рассматриваться как важный иммунологический параметр при ПНБ и ПНИ, однако необходимо дальнейшие изучение роли и механизмов их действия. Необходимы дальнейшие исследования для подтверждения или опровержения прогностической ценности NK-клеток крови в качестве маркеров наступления беременности в циклах ЭКО и при ПНБ, ее пролонгирования, исходов, а также критериев назначения и эффективности иммунотропной терапии.

References

  1. Seillet C., Belz G.T., Huntington N.D. Development, homeostasis, and heterogeneity of NK Cells and ILC1. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2016; 395: 37-61. https://dx.doi.org/10.1007/82_2015_474.
  2. Zhou J., Tian Z., Peng H. Tissue-resident NK cells and other innate lymphoid cells. Adv. Immunol. 2020; 145: 37-53. https://dx.doi.org/10.1016/bs.ai.2019.11.002.
  3. Geiger T.L., Sun J.C. Development and maturation of natural killer cells. Curr. Opin. Immunol. 2016; 39: 82-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.coi.2016.01.007.
  4. Абакушина Е.В., Кузьмина Е.Г., Коваленко Е.И. Основные свойства и функции NK-клеток человека. Иммунология. 2012; 33(4): 220-4. [Abakushina E.V., Kuzmina E.G., Kovalenko E.I. The main characteristics of human natural killer cells. Immunology. 2012; 33(4): 220-4. (in Russian)].
  5. Михайлова В.А., Овчинникова О.М., Онохина Я.С., Чугунова А.А., Зайнулина М.С., Сельков С.А., Соколов Д.И. Функциональная активность NK-клеток периферической крови при гестозе. Иммунология. 2014; 35(1): 4-8. [Mikhaylova V.A., Ovchinnikova O.M., Onohina Y.S., Chugunova A.A., Zainulina M.S., Selkov S.A., Sokolov D.I. Functional activity of peripheral blood NK-cells at preeclampsia. Immunology. 2014; 35(1): 4-8. (in Russian)].
  6. Lam V.C., Lanier L.L. NK cells in host responses to viral infections. Curr. Opin. Immunol. 2017; 44: 43-51. https://dx.doi.org/10.1016/j.coi.2016.11.003.
  7. Angelo L.S., Banerjee P.P., Monaco-Shawver L., Rosen J.B., Makedonas G., Forbes L.R. et al. Practical NK cell phenotyping and variability in healthy adults. Immunol. Res. 2015; 62(3): 341-56. https://dx.doi.org/10.1007/s12026-015-8664-y.
  8. Hudspeth K., Donadon M., Cimino M., Pontarini E., Tentorio P., Preti M. et al. Human liver-resident CD56bright/CD16neg NK cells are retained within hepatic sinusoids via the engagement of CCR5 and CXCR6 pathways. J. Autoimmun. 2016; 66: 40-50. https://dx.doi.org/10.1016/j.jaut.2015.08.011.
  9. Marcenaro E., Carlomagno S., Pesce S., Della Chiesa M., Parolini S., Moretta A., Sivori S. NK cells and their receptors during viral infections. Immunotherapy. 2011; 3(9): 1075-86. https://dx.doi.org/10.2217/imt.11.99.
  10. Михайлова В.А., Белякова К.Л., Сельков С.А., Соколов Д.И. Особенности дифференцировки NK-клеток: CD56dim и CD56bright NK-клетки во время и вне беременности. Медицинская иммунология. 2017; 19(1): 19-26. [Mikhailova V.A., Belyakova K.L., Selkov S.A., Sokolov D.I. Peculiarities of NK cells differentiation: CD56dim and CD56bright NK cells at pregnancy and in non-pregnant state. Medical Immunology (Russia). 2017; 19(1): 19-26. (in Russin)]. https://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2017-1-19-26.
  11. Lee S., Kim J., Jang B., Hur S., Jung U., Kil K. et al. Fluctuation of peripheral blood T, B, and NK cells during a menstrual cycle of normal healthy women. J. Immunol. 2010; 185(1): 756-62. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.0904192.
  12. Souza S., Castro F., Mendonça H., Palma P.V., Morais F.R., Ferriani R.A., Voltarelli J.C. Influence of menstrual cycle on NK activity. J. Reprod. Immunol. 2001; 50(2): 151-9. https://dx.doi.org/10.1016/s0165-0378(00)00091-7.
  13. Gregory C., Lee H., Scott I., Golding P. Phenotypic heterogeneity and recycling capacity of natural killer cells in normal human pregnancy. J. Reprod. Immunol. 1987; 11(2): 135-45. https://dx.doi.org/10.1016/0165-0378(87)90017-9.
  14. Yovel G., Shakhar K., Ben-Eliyahu S. The effects of sex, menstrual cycle, and oral contraceptives on the number and activity of natural killer cells. Gynecol. Oncol. 2001; 81(2): 254-62. https://dx.doi.org/10.1006/gyno.2001.6153.
  15. Northern A.L.D., Rutter S.M., Peterson C.M. Cyclic changes in the concentrations of peripheral blood immune cells during the normal menstrual cycle. Exp. Biol. Med. 1994; 207(1): 81-8. https://dx.doi.org/ 10.3181/00379727-207-43795.
  16. Fu B., Wei H. Decidual natural killer cells and the immune microenvironment at the maternal-fetal interface. Sci. China Life Sci. 2016; 59(12): 1224-31. https://dx.doi.org/10.1007/s11427-016-0337-1.
  17. Sojka D.K., Yang L., Plougastel-Douglas B., Higuchi D.A., Croy B.A., Yokoyama W.M. Cutting edge: local proliferation of uterine tissue-resident NK cells during decidualization in mice. J. Immunol. 2018; 201(9): 2551-6. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.1800651.
  18. Lockwood C.J., Huang S.J., Chen C.P., Huang Y., Xu J., Faramarzi S. et al. Decidual cell regulation of natural killer cell–recruiting chemokines. Am. J. Pathol. 2013; 183(3): 841-56. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2013.05.029.
  19. Cerdeira A.S., Rajakumar A., Royle C.M., Lo A., Husain Z., Thadhani R.I. et al. Conversion of peripheral blood NK cells to a decidual NK-like phenotype by a cocktail of defined factors. J. Immunol. 2013; 190(8): 3939-48. https://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.1202582.
  20. Chazara O., Xiong S., Moffett A. Maternal KIR and fetal HLA-C: a fine balance. J. Leukoc. Biol. 2011; 90(4): 703-16. https://dx.doi.org/10.1189/jlb.0511227.
  21. Apps R., Sharkey A., Gardner L., Male V., Kennedy P., Masters L. et al. Ex vivo functional responses to HLA-G differ between blood and decidual NK cells. Mol. Hum. Reprod. 2011; 17(9): 577-86. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gar022.
  22. Coupel S., Moreau A., Hamidou M., Horejsi V., Soulillou J.P., Charreau B. Expression and release of soluble HLA-E is an immunoregulatory feature of endothelial cell activation. Blood. 2007; 109(7): 2806-14. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2006-06-030213.
  23. Jabrane-Ferrat N. Features of human decidual NK cells in healthy pregnancy and during viral infection. Front. Immunol. 2019; 10: 1397. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2019.01397.
  24. Sojka D.K., Yang L., Yokoyama W.M. Uterine natural killer cells: To protect and to nurture. Birth Defects Res. 2018; 110(20): 1531-8. https://dx.doi.org/10.1002/bdr2.1419.
  25. Gong H., Chen Y., Xu J., Xie X., Yu D., Yang B., Kuang H. The regulation of ovary and conceptus on the uterine natural killer cells during early pregnancy. Reprod. Biol. Endocrinol. 2017; 15(1): 73. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-017-0290-1
  26. Mekinian A., Cohen J., Alijotas-Reig J., Carbillon L.., Nicaise-Roland P., Kayem G. et al. Unexplained recurrent miscarriage and recurrent implantation failure: is there a place for immunomodulation? Am. J. Reprod. Immunol. 2016; 76(1): 8-28. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12493.
  27. Marron K., Walsh D., Harrity C. Detailed endometrial immune assessment of both normal and adverse reproductive outcome populations. J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 36(2): 199-210. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-018-1300-8.
  28. Tuckerman E., Mariee N., Prakash A., Li T.C., Laird S. Uterine natural killer cells in peri-implantation endometrium from women with repeated implantation failure after IVF. J. Reprod. Immunol. 2010; 87(1-2): 60-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2010.07.001.
  29. Chen X., Mariee N., Jiang L., Liu Y., Wang C.C., Li T.C., Laird S. Measurement of uterine natural killer cell percentage in the periimplantation endometrium from fertile women and women with recurrent reproductive failure: establishment of a reference range. Am. J. Obstet. Gynecol. 2017; 217(6): 680. e1-680. e6. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2017.09.010.
  30. Sacks G., Yang Y., Smith S., Chapman M. Detailed analysis of peripheral blood natural killer cells in women with repeated IVF failure. J. Reprod. Immunol. 2012; 94(1): 24. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2012.03.280.
  31. Santillán I., Lozano I., Illán J., Verdú V., Coca S., Bajo-Arenas J.M., Martinez F. Where and when should natural killer cells be tested in women with repeated implantation failure? J. Reprod. Immunol. 2015; 108: 142-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2014.12.
  32. Ho Y.K., Chen H.H., Huang C.C., Lee C.I., Lin P.Y., Lee M.S., Lee T.H. Peripheral CD56 CD16 NK cell populations in the early follicular phase are associated with successful clinical outcomes of intravenous immunoglobulin treatment in women with repeated implantation failure. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2020 Jan 21; 10:937. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2019.00937.
  33. Zhang H., Huang C., Chen X., Li L., Liu S., Li Y. et al. The number and cytotoxicity and the expression of cytotoxicity-related molecules in peripheral natural killer (NK) cells do not predict the repeated implantation failure (RIF) for the in vitro fertilization patients. Genes Dis. 2020; 7(2): 283-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.gendis.2019.03.005.
  34. Kolanska K., Suner L., Cohen J., Ben Kraiem Y., Placais L., Fain O. et al. Proportion of cytotoxic peripheral blood natural killer cells and T-Cell large granular lymphocytes in recurrent miscarriage and repeated implantation failure: case–control study and meta-analysis. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 2019; 67(4): 225-36. https://dx.doi.org/10.1007/s00005-019-00546-5.
  35. Seshadri S., Sunkara S.K. Natural killer cells in female infertility and recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod. Update. 2014; 20(3): 429-38. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmt056.
  36. Woon E.V., Day A., Bracewell-Milnes T., Male V., Johnson M. Immunotherapy to improve pregnancy outcome in women with abnormal natural killer cell levels/activity and recurrent miscarriage or implantation failure: A systematic review and meta-analysis. J. Reprod. Immunol. 2020; 142: 103189. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2020.103189.
  37. Fukui A., Kwak-Kim J., Ntrivalas E., Gilman-Sachs A., Lee S.-K., Beaman K. Intracellular cytokine expression of peripheral blood natural killer cell subsets in women with recurrent spontaneous abortions and implantation failures. Fertil. Steril. 2008; 89(1): 157-65. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.02.012.
  38. Saito S., Nakashima A., Shima T., Ito M. Th1/Th2/Th17 and regulatory T-Cell paradigm in pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 2010; 63(6): 601-10. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2010.00852.x.
  39. Соколов Д.И., Сельков С.А. Децидуальные макрофаги: роль в иммунологическом диалоге матери и плода. Иммунология. 2014; 35(2): 113-7. [Sokolov D.I., Selkov S.A. Decidual macrophages: the role in immunologic dialogue of mother and the fetus. Immunology. 2014; 35(2): 113-7. (in Russian)].
  40. Mikhailova V.A., Kudryavtsev I.V., Serebryakova M.K., Milyutina Y.P., Demidova E.S., Panina A.N., Bazhenov D.O., Belikova M.E., Selkov S.A., Sokolov D.I. Trophoblast cell influence on peripheral blood natural killer cell proliferation and phenotype in non-pregnant women and women in early pregnancy. Immunobiology. 2020; 225(3): 151910. https://dx.doi.org/10.1016/j.imbio.2020.151910.
  41. Quenby S., Nik H., Innes B., Lash G., Turner M., Drury J., Bulmer J. Uterine natural killer cells and angiogenesis in recurrent reproductive failure. Hum. Reprod. 2009; 24(1): 45-54. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/den348.
  42. Azargoon A., Mirrasouli Y., Barough M.S., Barati M., Kokhaei P. The state of peripheral blood natural killer cells and cytotoxicity in women with recurrent pregnancy loss and unexplained infertility. Int. J. Fertil. Steril. 2019; 13(1): 12-7. https://dx.doi.org/10.22074/ijfs.2019.5503.
  43. Ghafourian M., Karami N., Khodadadi A., Nikbakhat R. Increase of CD69, CD161 and CD94 on NK cells in women with recurrent spontaneous abortion and in vitro fertilization failure. Iran. J. Immunol. 2014; 11(2):84-96.
  44. Baczkowski T., Kurzawa R. Immunophenotypic profiles of peripheral blood lymphocytes on the day of embryo transfer in women undergoing in vitro fertilization. Folia Histochem. Cytobiol. 2007; 45(Suppl. 1): S73-7.
  45. Lissauer D.M., Piper K.P., Moss P.A.H., Kilby M.D. Fetal microchimerism: the cellular and immunological legacy of pregnancy. Expert Rev. Mol. Med. 2009; 11: e33. https://dx.doi.org/10.1017/S1462399409001264.
  46. Toth B., Vomstein K., Togawa R., Böttcher B., Hudalla H., Strowitzki T., Daniel V., Kuon R.J. The impact of previous live births on peripheral and uterine natural killer cells in patients with recurrent miscarriage. Reprod. Biol. Endocrinol. 2019; 17(1): 72. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-019-0514-7.
  47. Ali S.B., Jeelall Y., Pennell C.E., Hart R., Mclean-Tooke A., Lucas M. The role of immunological testing and intervention in reproductive medicine: A fertile collaboration? Am. J. Reprod. Immunol. 2018; 79(3). https://dx.doi.org/10.1111/aji.12784.
  48. Junovich G., Azpiroz A., Incera E., Ferrer C., Pasqualini A., Gutierrez G. Endometrial CD16 and CD16−NK cell count in fertility and unexplained infertility. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 70(3): 182-9. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12132.
  49. Giuliani E., Parkin K.L., Lessey B.A., Young S.L., Fazleabas A.T. Characterization of uterine NK cells in women with infertility or recurrent pregnancy loss and associated endometriosis. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(3): 262-9. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12259.
  50. Fuchinoue K., Fukui A., Chiba H., Kamoi M., Funamizu A., Taima A. et al. Expression of retinoid-related orphan receptor (ROR)γt on NK22 cells in the peripheral blood and uterine endometrium of women with unexplained recurrent pregnancy loss and unexplained infertility. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2016; 42(11): 1541-52. https://dx.doi.org/10.1111/jog.13075.
  51. Kuon R.-J., Weber M., Heger J., Santillán I., Vomstein K., Bär C. et al. Uterine natural killer cells in patients with idiopathic recurrent miscarriage. Am. J. Reprod. Immunol. 2017; 78(4). https://dx.doi.org/10.1111/aji.12721.
  52. Tang A.-W., Alfirevic Z., Turner M.A., Drury J.A., Small R., Quenby S. A feasibility trial of screening women with idiopathic recurrent miscarriage for high uterine natural killer cell density and randomizing to prednisolone or placebo when pregnant. Hum. Reprod. 2013; 28(7): 1743-52. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det117.
  53. Ebina Y., Nishino Y., Deguchi M., Maesawa Y., Nakashima Y., Yamada H. Natural killer cell activity in women with recurrent miscarriage: Etiology and pregnancy outcome. J. Reprod. Immunol. 2017; 120: 42-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2017.04.005.
  54. Lee S.K., Na B.J., Kim J.Y., Hur S.E., Lee M., Gilman-Sachs A., Kwak-Kim J. Determination of clinical cellular immune markers in women with recurrent pregnancy loss. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 70(5): 398-411. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12137.
  55. Beer A.E., Kwak J.Y., Ruiz J.E. Immunophenotypic profiles of peripheral blood lymphocytes in women with recurrent pregnancy losses and in infertile women with multiple failed in vitro fertilization cycles. Am. J. Reprod. Immunol. 1996; 35(4): 376-82. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.1996.tb00497.x.

Received 21.12.2020

Accepted 12.01.2021

About the Authors

Valeriya A. Zagaynova, Postgraduate student of the Department of Assisted Reproductive Technologies, D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology. E-mail: zagaynovav.al.52@mail.ru. ORCID: 0000-0001-6971-7024. 199034, Mendeleevskaya line, 3, St. Petersburg, Russia.
Igor Yu. Kogan, Corresponding Member of RAS, MD, PhD, DSci (Medicine), Director of the D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology; Professor of the Department of Obstetrics, Gynecology and Reproductology, St. Petersburg State University. E-mail: ovrt@ott.ru. ORCID: 0000-0002-7351-6900.
199034, Mendeleevskaya line, 3, St. Petersburg, Russia; 199034, Universitetskaya emb., 7, St. Petersburg, Russia.
Olesya N. Bespalova, MD, PhD, DSci (Medicine), Deputy Director, D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology. E-mail: shiggerra@mail.ru, ORCID: 0000-0002-6542-5953. 199034, Mendeleevskaya line, 3, St. Petersburg, Russia.
Sergey A. Selkov, Honored Scientist of the Russian Federation, Professor, Head of the Department of Immunology and Intercellular Interactions, D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology. E-mail: selkovsa@mail.ru. ORCID: 0000-0003-1560-7529. 199034, Mendeleevskaya line, 3, St. Petersburg, Russia.
Dmitry I. Sokolov, DSci (Bio), Head of the Laboratory of Intercellular Interactions, Department of Immunology and Intercellular Interactions, D.O. Ott Research Institute of Obstetrics, Gynecology and Reproductology. E-mail: falcojugger@yandex.ru. ORCID: 0000-0002-5749-2531. 199034, Mendeleevskaya line, 3, St. Petersburg, Russia.

For citation: Zagainova V.A., Kogan I.Yu., Bespalova O.N., Selkov S.A., Sokolov D.I. The role of peripheral and endometrial natural killer cells in recurrent reproductive losses.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2021; 7: 19-27 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.7.19-27

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.