The role of the FMR1 gene in the development of reproductive and neurological disorders

Marchenko L.A., Rshtuni S.D., Zaretskaya N.V., Pikhut P.P., Mashaeva R.I.

Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia
Objective. To carry out a systematic analysis of the data available in the current literature on the role of the FMR1 gene in the development of reproductive and somatic diseases in mutation carriers and their offspring.
Material and methods. The review includes the data of foreign and Russian articles published in in the past 10 years and found in Pubmed on this topic.
Results. This review discusses a set of phenotypic, reproductive, and neurological disorders, which is coupled with the abnormal number of CGG repeats in the FMR1 gene.
Conclusion. The development of new methods for assessing the ovarian reserve is one of the priority scientific and practical tasks in gynecological endocrinology and reproductology. To date, there are no clear hormonal and ultrasound screening tests that can predict premature termination of ovarian function, unlike the FMR1 gene.

Keywords

premature ovarian failure (POF)
FMR1 gene
the number of CGG repeats

Разработка новых методов оценки яичникового резерва относится к одной из приоритетных научных и практических задач в гинекологической эндокринологии и репродуктологии. В настоящее время существует понятие тотального овариального резерва, которое включает в себя индивидуальный запас фолликулов, зависящий от его внутриутробного развития [1, 2] и функционального резерва, представленного пулом растущих рекрутируемых фолликулов, достигших определенной степени зрелости. Традиционно широко используемый термин «овариальный резерв» эквивалентен понятию «функционального резерва».

С годами тотальный и, соответственно, функциональный овариальный резерв снижается с учетом возрастных коридоров, что приводит к физиологическому овариальному старению в пределах ожидаемых диапазонов (после 45 лет) [3, 4]. Примерно у 10% женщин наблюдаются отклонения от возрастных стандартов [5] и еще до физиологической менопаузы (40 лет) у них развивается преждевременная недостаточность яичников (ПНЯ) [6].

Клинических тестов для оценки объема примордиального пула фолликулов не существует. С помощью доступных лабораторных методов оценивается функциональный овариальный резерв на протяжении непродолжительного времени созревания преантральных и антральных фолликулов. Их маркерами являются возраст женщины, регулярность менструального цикла, уровни ФСГ, АМГ, объемы яичников и число антральных фолликулов в них. При этом АМГ нельзя относить к долгосрочным прогностическим предикторам, так как этот показатель отражает состояние овариального резерва в ограниченном временном диапазоне. На сегодняшний день не существует четких гормональных и ультразвуковых скрининговых тестов, позволяющих точно определить оставшееся количество примордиальных фолликулов в яичнике.

Представленные выше данные стали основанием для поиска новых молекулярно-биологических маркеров, на основании которых возможно задолго до момента снижения тотального овариального резерва предвидеть преждевременное истощение фолликулярного пула.

В последние десятилетия показано, что преждевременное истощение фолликулярного пула генетически предопределено нарушением синтеза белка гена FMR1 (Fragil mental retardation) и зависит от наличия в этом гене триплетных СGG последовательностей [7, 8]. Welt и соавт. в 2004 г. сообщили, что у больных с увеличением длины CGG-повторов в гене FMR1, вплоть до премутации гена (55–199 CGG повторов), отмечается статистически значимое повышение уровня фолликулостимулирующего гормона (ФСГ), снижение уровней ингибина А и В, не соответствующих их возрастной норме. Таким образом, ими было предложено использовать премутацию гена FMR1 в качестве прогностического критерия развития ПНЯ, что было подтверждено временем наступления менопаузы, на 5 и более лет опережающим возраст их сверстниц – носительниц условной нормы CGG-повторов в гене FMR1 [9].

Ген FMR1, впервые описанный в 1991 году, локализован на длинном плече Х-хромосомы в локусе Хq27.8 [10, 11]. В 5-й нетранслируемой области 1-го экзона данного гена содержатся тринуклеотидные CGG повторы [12]. На сегодняшний день наглядно продемонстрировано, что аномальное число CGG-повторов в гене FMR1 является наиболее частой генетической причиной расстройств репродуктивной системы, в частности, развития ПНЯ. Так, N.S. Chen и соавт. предположили, что изменение числа CGG-повторов ведет к уменьшению продукции белка гена FMR1, что приводит к снижению пролиферативной способности фолликулов, блокаде их роста, созревания и развития, в результате чего нарушается биосинтез половых гормонов [13].

В последующем были проведены исследования, демонстрирующие влияние данного гена на овариальный резерв яичников животных. Так, в 2005 году Sullivan и соавт. показали влияние гена FMR1 на овариальный резерв у мышей за счет регулирования пролиферации герминативных клеток [14]. В свою очередь, C. Lu и соавт. в 2012 году также на моделях мышей продемонстрировали, что премутационные аллели гена FMR1 (55–199 число CGG-повторов) ассоциированы с задержкой роста и развития фолликулов и индуцируют апоптоз в клетках [15].

В настоящее время в мировой литературе рассматриваются три варианта нарушений в числе CGG-повторов, трактуемые как истинная мутация или синдром ломкой Х-хромосомы (число повторов более 200) [16, 17], премутация гена FMR1 (55–199 триплетных повторов) [18, 19] и число повторов в пределах «серой зоны» (45–54 CGG повторов) [20, 21]. Н.Н. Шамилова в своем исследовании предлагает рассматривать наличие аномальных аллелей (менее 28 и более 36 CGG-повторов) в гене FMR1 у женщин как предиктор молекулярно-генетической формы ПНЯ, ассоциированной с нарушениями в Х-хромосоме. Нормативные показатели в данной работе получены на основании генетического анализа образцов крови от 364 регулярно менструирующих женщин-доноров старше 40 лет, проживающих в европейской части России, в результате чего был показан средний диапазон распределения CGG-повторов от 28 до 36 [22].

В исследовании, проведенном в США, на этнически смешанной популяции, было наглядно продемонстрировано, что 26–34 CGG-повторы представляют собой нормальный диапазон для всех этнических групп [23].

В практике акушеров-гинекологов исторически ген FMR1 использовался с целью прогнозирования повторного рождения детей с синдромом Мартина–Белла [14]. Также анализ данного гена используется для диагностики причины неврологических и психических расстройств.

Особый интерес для ученых представляет развитие патологии, сопряженной с аномальным числом CGG-повторов в гене FMR1, а также потенциал передачи последующим поколениям данных аллелей.

В настоящем обзоре обсуждается четыре варианта нарушений триплетных повторов и сопряженная с ними совокупность фенотипических, репродуктивных и неврологических нарушений.

Истинная мутация гена FMR1 встречается в общей популяции в 1: 4000 случаев мужчин и приблизительно 1: 5000-8000 женщин и является причиной развития синдрома ломкой Х-хромосомы – FRAXA (fragile X syndrome) [24], обусловленного резкой экспансией тринуклеотидных CGG-повторов (феномен антиципации), локализованных в 1-м экзоне данного гена [25]. Увеличение числа повторов более 200 сопровождается аномальным метилированием промотора гена одновременным подавлением функции гена FMR1. Данный синдром, трактуемый также как синдром Мартина–Белла, является наиболее распространенной наследуемой формой неспецифической умственной отсталости.

В 1976 году J. Cantu и соавт. впервые была дана детальная характеристика клинических особенностей течения заболевания у больных с синдромом ломкой Х-хромосомы, включающая психопатические и речевые нарушения в виде двигательной расторможенности и признаков аутизма. Характерные особенности фенотипа таких пациентов включают в себя долихоцефалию и макроцефалию, выступающий лоб, удлиненное лицо, крупные ушные раковины, эпикант, светлые радужки, клювовидный нос, массивный подбородок, крупные кисти и стопы, гипермобильность суставов, макроорхизм [26]. С этого времени возрастало число работ, посвященных изучению поведенческого фенотипа при этом заболевании.

Необходимо отметить, что ген FMR1 кодирует РНК-связывающий белок – FMRP, который в литературе описан так же, как «белок умственной отсталости», так как он продуцируется в центральной нервной системе, обеспечивая синаптическую связь между нейронами и их пластичность, тем самым регулируя когнитивные функции организма (обучение, память). Белок FMRP экспрессируется в различных тканях, преобладая в нейронах. Данный белок необходим организму на протяжении всей жизни. Синтез белка FMRP при обсуждаемой патологии резко снижен и составляет от 1 до 70% от необходимого количества [13]. Считается, что увеличение числа CGG-повторов в гене FMR1 приводит к выключению транскрипционной активности гена и остановке синтеза соответствующего протеина (fragile X mental retardation protein) [27].

Литературные данные показывают, что этот протеин выполняет в мозге регуляторную, а не структурную функцию, принимая участие в регуляции процессов трансляции в мозговой ткани. Предполагается, что умственная отсталость и является следствием нарушения процессов трансляции из-за отсутствия FMRР. При изучении пациентов с синдромом ломкой Х-хромосомы также было обнаружено, что данный белок играет важную роль в пролиферации половых клеток, о чем свидетельствует высокий уровень его экспрессии в сперматогониях; в последующем продукция данного белка была обнаружена и в яичниках [28].

Одним из механизмов патологического воздействия мутаций гена FMR1 является сниженная продукция мРНК. При этом происходит блок одного или нескольких мРНК-связывающих протеинов, в связи с чем истощаются белковые запасы в клетке, что нарушает различные клеточные функции [29].

Вследствие токсического эффекта мРНК, продуцируемой мутантными аллелями гена FMR1, происходит формирование различных патологических состояний в репродуктивной, нейрокогнитивной, эндокринной и психической системах.

С другой стороны, среди родственниц пациентов с синдромом Мартина–Белла были выявлены специфические фенотипы, не характерные для данного заболевания, в частности ПНЯ. Следует отметить, что в области CGG-повторов гена FMR1 возникают так называемые динамические мутации. Суть этого явления заключается в том, что у потомков конкретного индивида в поколении может меняться количество копий CGG-повторов (феномен антиципации) матерей и сестер, больных синдромом Мартина–Белла, определяют премутацию гена FMR1. Полная же мутация, как отмечалось выше, составляет 200 и более повторов, по мнению некоторых авторов, наименьший размер аллеля, который в следующем поколении может трансформироваться в полную мутацию – не менее 59 CGG-повторов [28].

Для акушеров-гинекологов большое практическое значение имеет выявление женщин – носительниц премутационных аллелей. Распространенность данного состояния в общей популяции составляет 1: 130-250 женщин и 1: 250–810 мужчин [18]. В работе Н.Н. Шамиловой при генетическом обследовании 129 женщин с диагностируемой ПНЯ премутация гена FMR1 выявлена в 4 случаях, что составляет 3,1%; при этом, при семейных случаях (38/129 женщин) – у 7,9% (3/38), при спорадических – у 1,1% (1/91) [22].

Премутация была впервые описана M.E. Pembrey и соавт. в 1985 году. В то время было показано, что данное состояние не несет в себе патологических эффектов, за исключением возможного перехода в последующих поколениях в полную мутацию [30]. Потребовались годы, чтобы опровергнуть данные убеждения. В 1991 году было продемонстрировано как женское, так и мужское носительство премутации с различной степенью значимости физических и умственных нарушений [31].

Понятие премутации гена FMR1 на начальных этапах ее изучения было введено в связи с тем, что с одной стороны, у носителей такого числа триплетных повторов не было выявлено нарушений в репродуктивной системе, явной неврологической симптоматики и задержки умственного развития, а с другой – именно это число повторов является критичным в плане перехода в полную мутацию в последующих поколениях [32].

В исследовании S.L. Nolin и соавт. в результате обследования 1500 женщин – носительниц премутационной аллели было продемонстрировано, что самый короткий повтор, приведший к развитию полной мутации, составил 59 CGG-повторов, который наблюдался у двух женщин-носителей; в связи с этим был сделан вывод, что экспансия повторов происходит длительно в течение многих поколений [33].

Следует отметить, что работ, в которых обсуждались бы нарушения как в репродуктивной, так и в нервной системах, сопряженные с аномальным числом CGG-повторов (исключая премутационные варианты) в гене FMR1, крайне мало. Однако именно эти аспекты в настоящее время представляют большой интерес для исследователей. Для премутации гена FMR1 характерно, помимо нарушений в репродуктивной системе, развитие Х-ассоциированного тремор-атаксического синдрома в возрасте после 50 лет (FXTAS), а также формирование нейрокогнитивных, эндокринных и психических расстройств, связанных преимущественно с токсическим действием мРНК, продуцируемой мутантными аллелями гена FMR1 [34]. Кроме того, выявлена связь между развитием ПНЯ и наличием премутантного аллеля у одного из родителей. Так, установлено, что большинство женщин-носительниц премутации в гене FMR1, у которых развивалась ПНЯ, унаследовали мутантный аллель от отца и лишь в редких случаях – от матери [35].

В процессе образования половых клеток у женщин, в отличие от мужчин, число повторов может резко возрасти. Следовательно, в результате экспансии, если число повторов превысит 200, у матери с премутацией может родиться больной ребенок [13].

Повышение числа триплетных повторов, классифицируемое в мировой литературе как «серая зона», встречается в общей популяции в 5–9%. В работе Н.Н. Шамиловой при генетическом обследовании женщин с ПНЯ увеличение числа триплетных повторов от 45 до 54 выявлено у 16 из 129 больных, что составило 12,4% [22]. В исследовательской работе K. Bretherikc и соавт. (2005) и B. Bodega и соавт. (2006) было показано, что развитие ПНЯ определяется не только премутацией гена FMR1, но и числом CGG-повторов в пределах «серой зоны» [36, 37]. В данных работах авторы утверждают, что чем выше число триплетных повторов, тем чаще выявляется ПНЯ или снижение овариального резерва. При невыраженном повышении числа CGG-повторов возможно раннее снижение овариального резерва без развития финальной стадии ПНЯ. Некоторые авторы утверждают, что аномальное число CGG-повторов в пределах серой зоны характерно не только для классической формы ПНЯ, но и для пациентов с периодическими колебаниями концентрации уровня ФСГ (биохимическая форма преждевременного старения яичников) [38].

Однако в исследовании C. Bennett и соавт. при FMR тестировании 366 женщин с диагностируемой ПНЯ не было обнаружено никаких существенных различий в числе повторов в гене FMR1 по сравнению с контрольной группой. Авторы данного исследования на основе полученных результатов считают нецелесообразным рассмотрение триплетных повторов в пределах «серой зоны» аллелей гена FMR1 в качестве предиктора развития ПНЯ [39]. В Женеве было проведено исследование на 27 женщинах с бесплодием и диагностируемой ПНЯ и контрольной группой из 32 женщин с сохраненной фертильностью. В результате генетического FMR тестирования было показано, что в 22% при ПНЯ число CGG повторов находилось в диапазоне от 40 до 54, в сравнении с 3% из контрольной группы [40]. В работе Г.И. Табеевой в 2008 году у больных со стойким повышением ФСГ до 125 МЕ/л и продолжительностью аменореи 5 и более лет в возрасте до 40 лет, в 9% случаев отмечалось носительство аномального числа CGG повторов в пределах «серой зоны» [38].

Помимо нарушений в репродуктивной системе, внимание ученых было сосредоточено на выявлении корреляционной взаимосвязи аномального числа CGG-повторов в пределах «серой зоны» и развития различной соматической патологии и изменений фенотипа. Так, в исследовании X. Zhang и соавт. была выявлена связь болезни Паркинсона с носительством CGG-повторов в диапазоне от 41 до 54. В исследование вошли 360 пациентов с наследственным дрожательным параличом, из них 147 женщин и 213 мужчин, а также 295 человек из контрольной группы. В результате было выявлено 11 (3%) пациентов с паркинсонизмом, у которых число триплетных повторов варьировало от 41 до 54 в сравнении с одним носителем из контрольной группы [41]. В исследовании D.A. Hall и соавт. был проведен FMR-скрининг 335 пациентов с двигательными расстройствами, тремор-атаксическим синдромом и/или паркинсонизмом и 273 человек, не имевших на момент исследования никаких двигательных расстройств. Авторы не выявили корреляционной связи между наличием двигательных расстройств и аномальным числом CGG-повторов [42]. Исследователи из США представили три клинических случая болезни Паркинсона у женщин, которым была определена длина CGG-повторов в гене FMR1. В двух случаях длины повторов составили 23/41 и 21/51, в то время как третья женщина была носительницей премутационной аллели равной 60 [43].

Известно, что феномен антиципации характерен не только для носителей премутации, но и для носителей аномальных повторов в пределах серой зоны с фенотипическими признаками синдрома Мартина–Белла. В исследовании Fernandez-Carvajal и соавт. в 2009 году был продемонстрирован переход от серой зоны к полной мутации на протяжении двух поколений от деда к внуку. В качестве пробанда был представлен 17-летний юноша с клиническими проявлениями синдрома ломкой Х-хромосомы. Пробанд прошел тщательное клинико-анамнестическое обследование, в результате которого были выявлены признаки, характерные для синдрома ломкой Х-хромосомы. У сестры, матери и отца пробанда при проведении клинического обследования не было отмечено каких-либо патологических нарушений. Дед пробанда демонстрировал клинику тремор-атаксического синдрома. В ходе генетического исследования было выявлено, что мать и сестра являлись носителями премутационных аллелей (мать – 34–56 CGG-повторов и сестра – 91 CGG-повтор), в то время как у деда по материнской линии длина CGG-повтора равна 52, что входит в «серую зону» распределения. При этом у отца было нормальное число триплетных повторов. У пробанда зарегистрировано число повторов, которое превышало 538, на основании чего подтверждена полная мутация гена FMR1. Авторы отмечают, что при передаче мутационных аллелей от матери к сыну отмечается резкая нестабильность экспансии. В данной работе был наглядно продемонстрирован переход мутационных аллелей от серой зоны к полной мутации в двух поколениях. Частота данных переходов крайне редкая и составляет 1,1% [44].

Экспансия триплетных повторов на протяжении двух поколений была также доказана в исследовании A. Terracciano и соавт., в котором проведено FMR тестирование трех поколений семьи 8-летнего пробанда с признаками, характерными для синдрома Мартина–Белла. Ни у кого из родственников пробанда ранее случаев умственной отсталости выявлено не было. В результате исследования показано, что у матери пробанда число повторов равнялось 29/61, в то время как у ее двух сестер – число триплетных повторов составило 31/44. У одной из сестер была дочь, которая также явилась носительницей аномальных аллелей 22/44. У бабушки по материнской линии число триплетных повторов находилось в пределах нормативных значений. Ни одного случая ПНЯ у респондентов выявлено не было. Дедушка по материнской линии и двое его братьев скончались, оставшейся брат был носителем короткого аллеля, равного 23. У пробанда выявлена полная мутация. Несмотря на отсутствие информации о числе повторов у деда пробанда по материнской линии, интерпретация результатов исследования становится очевидной. Более вероятно, что дед являлся носителем длины CGG повторов, равной 44, которая была стабильно передана двум дочерям, а затем и внучке. Авторы предположили, что расширение триплетных повторов до 29/61 у матери пробанда в данной семье произошло вследствие митотического проскальзывания репликации, что привело к тому, что мать стала носителем премутационного аллеля с последующим развитием полной мутации у сына [45].

На основе вышеизложенного становится очевидным, что число триплетных повторов в диапазоне от 45 до 54 на сегодняшний день является фактором риска по развитию неврологической симптоматики и экспансии тринуклеотидного повтора в последующих поколениях, что представляет большой интерес для исследователей.

В литературе последних лет появились научные изыскания, в которых обсуждается роль коротких повторов в гене FMR1 (менее 26–28), оказывающих воздействие на репродуктивную и нервную системы. Начиная с 2009 года показано, что у женщин с коротким числом CGG повторов развивается ПНЯ [29, 46]. Однако работ, в которых прослеживалась бы корреляционная зависимость между короткими повторами в гене FMR1 с генотипическими и фенотипическими особенностями у их носителей, крайне мало. В исследовании J.Y. Wang и соавт. (2013 г.) показано, что у мужчин с коротким числом CGG повторов даже в пределах нормативного его распределения наблюдается умственная отсталость. Данное исследование продемонстрировало влияние коротких триплетных повторов в гене FMR1 на структуры мозга, отвечающие за умственные способности [47]. Наиболее полновесная работа, посвященная данному вопросу и представленная в 2014 году M.R. Mailick и соавт., была проведена на этнически однородной популяции, включающей 10 317 человек в возрасте от 17 до 18 лет, окончивших Висконсинскую среднюю школу. Время наблюдения составило 54 года, возраст обследуемых к финалу достиг 72 лет. Анализ был проведен с учетом 5 конечных точек с интервалом 18, 17, 12 и 7 лет соответственно. При этом изучались когнитивные и познавательные способности, а также психическое здоровье испытуемых в динамике. На финальном этапе исследования дополнительно был проведен анализ числа триплетных повторов в гене FMR1 в слюне методом полимеразной цепной реакции 6732 респондентов, из них 3263 (48,5%) были мужчинами и 3469 (51,5%) составляли женщины. Нормальный диапазон варьировал от 24 до 40 CGG-повторов, медиана 30,6. В дальнейшее исследование были включены 46 женщин (1.8%) и 341 мужчина (11%): носители коротких CGG повторов. Для мужчин наименьший аллель был 9, в то время как для женщин он составил 11.

В процессе сравнительного анализа носители коротких повторов в юном возрасте не выделялись по IQ коэффициенту с респондентами с нормальным числом CGG повторов с учетом гендерной принадлежности. Однако с возрастом в равной степени, как мужчины, так и женщины продемонстрировали снижение когнитивных способностей.

Анамнестически у женщин с коротким числом триплетных повторов в два раза чаще выявлялся рак молочной железы и в 4 раза чаще – рак эндометрия, в сравнении с группой женщин с нормальным числом триплетных повторов в гене FMR1. Особенно важно подчеркнуть, что дети, рожденные носительницами коротких длин CGG-повторов, гораздо чаще (отношение шансов 1,68, р<0,05) страдали различной степенью инвалидности, связанной с нарушениями интеллектуального развития (умственная отсталость, биполярные расстройства, различные варианты психоневрологической симптоматики). Не было выявлено влияния длин CGG-повторов на возникновение тревожных и депрессивных состояний. При этом было продемонстрировано, что женщины с коротким числом CGG-повторов в 6 раз чаще страдали повышенной тягой к алкоголю. В то время как у мужчин данная корреляция не прослеживалась [48].

На основе вышеизложенного становится очевидным, что знание о длине CGG-повторов в гене FMR1 крайне важно не только для генетиков, но и для акушеров-гинекологов, неврологов и психиатров. Так, в 2009 году N. Gleicher и соавт. было показано, что при каждом снижении на 5 CGG-повторов ниже 30 относительный риск преждевременного снижения уровня АМГ возрастает на 60% (p<0,002), а для каждого повышения на 5 CGG-повторов – возрастает на 40% (p<0,01) [49].

Американский комитет акушеров-гинекологов (ACOG) предлагает проводить FMR тестирование всем женщинам с установленным диагнозом ПНЯ неятрогенного генеза. [50]. В свою очередь, комитет медицинских генетиков США рекомендует проводить FMR скрининг всем женщинам с беcплодием и повышенным уровнем ФСГ, особенно с семейной историей ПНЯ, а также наличием у ближайших родственников клинических признаков, характерных для синдрома ломкой Х-хромосомы и/или умственной отсталости [51].

В связи с вышеизложенным, во многих клиниках ЭКО в США и в Израиле тестирование на ген FMR1 входит в обязательный перечень обследования перед включением пациенток в программу ЭКО. Проведение подобного скрининга, с нашей точки зрения, необходимо всем пациенткам, которые имеют клинико-анамнестические факторы риска формирования ПНЯ, включающие наличие в анамнезе ПНЯ у матери (RR=8,33), олигоменореи с менархе (RR=3,6), эпидемического паротита и краснухи в анамнезе (RR=2,88, RR=2,82), аутоиммунного тиреоидита (RR=4,5), а также наличие аутоиммунной патологии неэндокринного генеза (миастении, витилиго, системной красной волчанки, тромбоцитопенической пурпуры, злокачественной анемии, алопеции, болезни Крона и др.) и носительства аллелей комплекса гистосовместимости HLA II класса DRB1*01, DRB1*03, DQB1*0501, DQB1*0302 (RR=2,11, 2,08, 1,81, 2,16).

При выявлении аномального числа CGG повторов в гене FMR1 в сочетании с клиническими факторами риска развития ПНЯ пациенткам показано определение уровня АМГ в крови 1 раз в 6–12 месяцев с учетом уровня ФСГ. При крайне низких уровнях АМГ необходимо предлагать экстренное включение в программу ЭКО или криоконсервацию яйцеклеток, что позволит сохранить собственный генетический материал пациенток, либо реализовать репродуктивную функцию.

References

1. Hansen K.R., Knowlton N.S., Thyer A.C., Charleston J.S., Soules M.R., Klein N.A. A new model of reproductive aging: the decline in ovarian non-growing follicle number from birth to menopause. Hum. Reprod. 2008; 23(3): 699-708.

2. Wallace W.H., Kelsey T.W. Human ovarian reserve from conception to the menopause. PLoS One. 2010; 5(1): e8772.

3. Barad D.H., Weghofer A., Gleicher N. Age-specific levels for basal folliclestimulating hormone (FSH) assessment of ovarian function. Obstet. Gynecol. 2007; 109(6): 1404-10.

4. Barad D.H., Weghofer A., Gleicher N. Utility of age-specific serum anti-Müllerian hormone concentrations. Reprod. Biomed. Online. 2011; 22(3): 284-91.

5. Nikolaou D., Templeton A. Early ovarian ageing: a hypothesis. Detection and clinical relevance. Hum. Reprod. 2003; 18(6): 1137-9.

6. Nelson L.M. Clinical practice. Primary ovarian insufficiency. N. Engl. J. Med. 2009; 360(6): 606-14.

7. Gleicher N., Weghofer A., Barad D.H. Ovarian reserve determinations suggest new function of FMR1 (fragile X gene) in regulating ovarian ageing. Reprod. Biomed. Online. 2010; 20(6): 768-75.

8. Gleicher N., Weghofer A., Oktay K., Barad D. Relevance of triple CGG repeats on the FMR1 gene to ovarian reserve. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19(3): 385-90.

9. Welt C.K., Smith P.C., Taylor A.E. Evidence of early ovarian aging in fragile X premutation carriers. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2004; 89(9): 4569-74.

10. Verkerk A.J.M., Pieretti M., Sutcliffe J.S., Fu Y.H., Kuhl D.P.A., Pizzuti A. et al. Identification of a gene FMR-1 containing a CGG repeat coincident with a breakpoint cluster region exhibiting length variation in fragile X syndrome. Cell. 1991; 65(5): 905-14.

11. Yu S., Pritchard M., Kremer E., Lynch M., Nancarrow J., Baker E. et al. Fragile X genotype characterized by an unstable region of DNA. Science. 1991; 252(5009): 1179-81.

12. Eichler E.E., Richards S., Gibbs R.A., Nelson D.L. Fine structure of the human FMR1 gene. Hum. Mol. Genet. 1993; 2(8): 1147-53.

13. Chen L.S., Tassone F., Sahota P., Hagerman P.J. The (CGG)n repeat element within the 5’ untranslated region of the FMR1 message provides both positive and negative cis effects on in vivo translation of a downstream reporter. Hum. Mol. Genet. 2003; 12(23): 3067-74.

14. Sullivan A.K., Marcus M., Epstein M.P., Allen E.G., Anido A.E., Paquin J.J. et al. Association of FMR1 repeat size with ovarian dysfunction. Hum. Reprod. 2005; 20(2): 402-12.

15. Lu C., Lin L., Tan H., Wu H., Sherman S.L., Gao F. et al. Fragile X premutation RNA is sufficient to cause primary ovarian insufficiency in mice. Hum. Mol. Genet. 2012; 21(23): 5039-47.

16. Hill M.K., Archibald A.D., Cohen J., Metcalfe S.A. A systematic review of population screening for fragile X syndrome. Genet. Med. 2010; 12(7):396-410.

17. Monaghan K.G., Lyon E., Spector E.B.; American College of Medical Genetics and Genomics. ACMG Standards and Guidelines for fragile X testing: a revision to the disease-specific supplements to the Standards and Guidelines for Clinical Genetics Laboratories of the American College of Medical Genetics and Genomics. Genet. Med. 2013; 15(7): 575-86.

18. Tassone F. Newborn screening for fragile X syndrome. JAMA Neurol. 2014; 71(3): 355-9. doi: 10.1001/jamaneurol.2013.4808.

19. Hagerman P.J. The fragile X prevalence paradox. J. Med. Genet. 2008; 45(8): 498-9.

20. Patsalis P.C., Sismani C., Hettinger J.A., Holden J., Lawson J.S., Chalifoux M. et al. Frequencies of “grey zone” and premutation size FMR1 CGG-repeat alleles in patients with developmental disability in Cyprus and Canada. Am. J. Med. Genet. 1999; 84(3): 195-7.

21. Larsen L.A., Grønskov K., Nørgaard-Pedersen B., Brøndum-Nielsen K., Hasholt L., Vuust J. High-throughput analysis of fragile X (CGG)n alleles in the normal and premutation range by PCR amplification and automated capillary electrophoresis. Hum. Genet. 1997; 100(5-6): 564-8.

22. Шамилова Н.Н. Клинико-прогностическое значение молекулярно-биологических маркеров при преждевременной недостаточности яичников: дисс. … канд. мед. наук. М.; 2009. [Shamilova N.N. Clinical and prognostic significance of molecular-biological markers in premature ovarian failure: diss. ... cand. med. sciences. Moscow; 2009. (in Russian)]

23. Gleicher N., Weghofer A., Barad D.H. Discordances between follicle stimulating hormone (FSH) and anti-Müllerian hormone (AMH) in female infertility. Reprod. Biol. Endocrinol. 2010; 8: 64.

24. Ennis S., Ward D., Murray A. Nonlinear association between CGG repeat number and age of menopause in FMR1premutation carriers. Eur. J. Hum. Genet. 2006; 14(2): 253-5.

25. Murray A., Webb J., Grimley S., Conway G., Jacobs P. Studies of FRAXA and FRAXE in women with premature ovarian failure. J. Med. Genet.1998; 35(8): 637-40.

26. Cantú J.M., Scaglia H.E., Medina M., González-Diddi M., Morato T., Moreno M.E., Pérez-Palacios G. Inherited congenital normofunctional testicular hyperplasia and mental deficiency. Hum. Genet. 1976; 33(1): 23-33.

27. Oberle I., Rousseau F., Heitz D., Kretz C., Devys D., Hanauer A. et al. Instability of a 550-base pair D.N.A segment and abnormal methylation in fragile X syndrome. Science. 1991; 252(5010): 1097-102.

28. Devys D., Lutz Y., Rouyer N., Bellocq J.P., Mandel J.L. The FMR-1 protein is cytoplasmic, most abundant in neurons and appears normal in carriers of a fragile X premutation. Nat. Genet. 1993; 4(4): 335-40.

29. Gleicher N., Barad D.H. The FMR1 gene as regulator of ovarian recruitment and ovarian reserve. Obstet. Gynecol. Surv. 2010; 65(8): 523-30.

30. Pembrey M.E., Winter R.M., Davies K.E. A premutation that generates a defect at crossing over explains the inheritance of fragile X mental retardation. Am. J. Med. Genet. 1985; 21(4): 709-17.

31. Fu Y.H., Kuhl D.P., Pizzuti A., Pieretti M., Sutcliffe J.S., Richards S. et al. Variation of the CGG repeat at the fragile X site results in genetic instability: resolution of the Sherman paradox. Cell. 1991; 67(6): 1047-58.

32. Wittenberger M.D., Hagerman R.J., Sherman S.L., McConkie-Rosell A., Welt C.K., Rebar R.W. et al. The FMR1 premutation and reproduction. Fertil. Steril. 2007; 87(3): 456-65.

33. Nolin S.L., Brown W.T., Glicksman A., Houck G.E. Jr., Gargano A.D., Sullivan A. et al. Expansion of the fragile X CGG repeat in females with premutation or intermediate alleles. Am. J. Hum. Genet. 2003; 72(2): 454-64.

34. Hagerman R., Hagerman P. Advances in clinical and molecular understanding of the FMR1 premutation and fragile X-associated tremor/ataxia syndrome. Lancet Neurol. 2013; 12(8): 786-98.

35. Sherman S.L. Premature ovarian failure in the fragile X syndrome. Am. J. Med. Genet. 2000; 97(3): 189-94.

36. Bretherick K.L., Fluker M.R., Robinson W.P. FMR1 repeat sizes in the gray zone and high end of the normal range are associated with premature ovarian failure. Hum. Genet. 2005; 117(4): 376-82.

37. Bodega B., Bione S., Dalpra L., Toniolo D., Ornaghi F., Vegetti W. et al. Influence of intermediate and uninterrupted FMR1 CGG expansions in premature ovarian failure manifestation. Hum. Reprod. 2006; 21(4): 952-7.

38. Табеева Г.И. Оценка андрогенного статуса при преждевременной недостаточности яичников и дифференциальный подход к лечению: дисс. … канд. мед. наук. М.; 2009.

39. Bennett C., Conway G., Macpherson J., Jacobs P., Murray A. Intermediate sized CGG repeats are not a common cause of idiopathic premature ovarian failure. Hum. Reprod. 2010; 25(5): 1335-8.

40. Streuli I., Fraisse T., Ibecheole V., Moix I., Morris M.A., de Ziegler D. Intermediate and premutation FMR1 alleles in women with occult primary ovarian insufficiency. Fertil. Steril. 2009; 92(2): 464-70.

41. Zhang X., Zhuang X., Gan S., Wu Z., Chen W., Hu Y., Wang N. Screening for FMR1 expanded alleles in patients with parkinsonism in mainland China. Neurosci. Lett. 2012; 514(1): 16-21.

42. Hall D.A., Berry-Kravis E., Zhang W., Tassone F., Spector E., Zerbe G. et al. FMR1gray-zone alleles: association with Parkinson’s disease in women? Mov. Disord. 2011; 26(10): 1900-6.

43. Hall D.A., Jennings D., Seibyl J., Tassone F., Marek K. FMR1 gene expansion and scans without evidence of dopaminergic deficits in parkinsonism patients. Parkinsonism Relat. Disord. 2010; 16(9): 608-11.

44. Fernandez-Carvajal I., Lopez Posadas B., Pan R., Raske C., Hagerman P.J., Tassone F. Expansion of an FMR1 grey-zone allele to a full mutation in two generations. J. Mol. Diagn. 2009; 11(4): 306-10.

45. Terracciano A., Pomponi M.G., Marino G.M., Chiurazzi P., Rinaldi M.M., Dobosz M., Neri G. Expansion to full mutation ofa FMR1 intermediate allele over two generations. Eur. J. Hum. Genet. 2004; 12(4): 333-6.

46. Gleicher N., Barad D. Dehydroepiandrosterone (DHEA) supplementation in diminished ovarian reserve (DOR). Reprod. Biol. Endocrinol. 2011; 9: 67.

47. Wang J.Y., Hessl D., Iwahashi C., Cheung K., Schneider A., Hagerman R. J. et al. Influence of the fragile X mental retardation (FMR1) gene on the brain and working memory in men with normal FMR1 alleles. Neuroimage. 2013; 65:288-98.

48. Mailick M.R., Hong J., Rathouz P., Baker M.W., Greenberg J.S., Smith L., Maenner M.. Low - normal FMR1 CGG repeat length: phenotypic associations. Front. Genet. 2014; 5: 309.

49. Gleicher N., Weghofer A., Barad D.H. A pilot study of premature ovarian senescence: I correlation of triple CGG repeats on the FMR1 gene to ovarian reserve parameters FSH and anti-Müllerian hormone. Fertil. Steril. 2009; 91(5): 1700-6.

50. American College of Obstetrics and Gynecology. ACOG committee opinion. No. 338: Screening for fragile X syndrome. Obstet. Gynecol. 2006; 107(6):1483-5.

51. Sherman S., Pletcher B.A., Driscoll D.A. Fragile X syndrome: diagnostic and carrier testing. Genet. Med. 2005; 7(8): 584-7.

Received 10.10.2017

Accepted 27.10.2017

About the Authors

Marchenko Larisa Andreevna, MD, Professor, Leading Researcher of the Department of Gynecological Endocrinology, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954388540. E-mail: l.a.marchenko@yandex.ru
Rshtuni Sandra Jonievna, post-graduate student of gynecological endocrinology department, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology,
Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954388540. E-mail: rshtunisandra@gmail.com
Zaretskaya Nadezhda Vasilievna, Ph.D., Senior Researcher, Department of Reproductive Genetics Laboratory, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954382410. E-mail: n_zaretskaya@oparina4.ru
Pikhut Petr Petrovich, resident of the 2nd year of training, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia.
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954388540. E-mail: pit-petad@mail.ru
Mashaeva Roza Isstanovna, post-graduate student of the department of gynecological endocrinology, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology,
Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954388540. E-mail: mashaevarosa@gmail.com

For citations: Marchenko L.A., Rshtuni S.D., Zaretskaya N.V., Pikhut P.P., Mashaeva R.I. The role of the FMR1 gene in the development of reproductive and neurological disorders.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2018; (3): 22-8. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.3.22-28

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.