Gene polymorphism for catecholamine metabolic enzymes and DNA excision repair as a predictor of reproductive losses

Makarov O.V., Morozova K.V., Salnikova L.E., Khadzieva M.B., Goncharova V.S., Lutsenko N.N.

1N.I. Pirogov Russian National Research Medical University, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ostrovityanova str. 1, Russia; 2N.I. Vavilov Institute of General Genetics, Russian Academy of Sciences, Moscow, Gubkina str. 3, Russia
Despite the development of modern science and medicine, the problem of miscarriage does not lose its relevance. In parallel with the long studied causes of pregnancy loss, a great deal of recent attention has been paid to its genetic ones. The elaboration of catecholamines, whose physiological concentrations are maintained owing to the generation of the genetically determined enzyme catechol-O-methyltransferase (COMT), is one of the most significant adaptive body systems. The maintenance of the primary structure of DNA, which is required for normal body homeostasis, is accomplished by the coordinated work of a cascade of reactions in the DNA repair system, one of the main components of which is the enzyme 8-oxoguanine DNA glycosylase, which ensures the mechanism of excision repair.
Our investigation included 274 women to examine for the alleles of the COMT gene polymorphism rs4680 and the OGG1 gene polymorphism rs1052133. The findings suggest that the COMT rs5680 A/A and GA genotypes and the OGG1 rs1052133 G/G and C/G genotypes enhance the risk of pregnancy loss in patients with a history of miscarriage.

Keywords

miscarriage
gynecology
gene polymorphism
catechol-O-methyltransferase
8-oxoguanine DNA glycosylase

Невынашивание беременности является одной из самых актуальных, до сих пор не решенных проблем современного акушерства и гинекологии. Согласно статистике, частота самопроизвольных выкидышей колеблется в диапазоне 15–20% клинически подтвержденных беременностей [1]. По разным данным около 50% репродуктивных потерь приходится на I триместр беременности; затем с ростом срока гестации частота самопроизвольных выкидышей снижается до 20%. Примерно 70–80% всех случаев самопроизвольного выкидыша приходится на первую половину гестации. Основными причинами потери беременности являются инфекционные, гормональные, иммунные, анатомические факторы [2–4]. Несмотря на многочисленные всесторонние исследования, направленные на установление причин невынашивания, до сих пор как минимум в 30% случаев идентифицировать причину не удается.

Помимо известных факторов, провоцирующих репродуктивные потери, в последнее время пристальное внимание уделяется изучению комплексных генетически обусловленных нарушений гомеостаза организма, оказывающих опосредованное влияние на течение беременности [1, 5]. В условиях современного мегаполиса организм женщины постоянно подвергается множеству негативных воздействий, как со стороны загрязненной окружающей среды, так и влиянию полиэтиологических стрессоров. Давно известно, что в организме существует целый ряд процессов и систем, обеспечивающих внутриклеточные взаимодействия. Одной из таких систем является каскад метаболизма катехоламинов. При стрессе возникает гиперпродукция катехоламинов, которые в норме инактивируются при участии фермента катехол-о-метилтрансферазы, вырабатываемого в результате экспрессии гена COMT [6, 7]. Однако в условиях недостаточности фермента происходит чрезмерное накопление катехоламинов, воздействующих через связывание со специфическими рецепторами на органы мишени, в том числе и на матку, вызывая изменение ее тонуса и ухудшение маточно-плацентарного кровотока. Также катехол-о-метилтрансфераза участвует в метаболизме эстрогенов и при снижении активности фермента происходит накопление катехолэстрагенов, которые в процессе связывания с гуанином формируют 4-гидроксиэстрогены, участвующие в генотоксическом типе гормонального канцерогенеза, вызывая прямые повреждения молекулы ДНК [7] .

Все повреждения ДНК находятся под контролем системы репарации, одним из основных механизмов которой является система эксцизионной репарации, выполняющая свою функцию посредствам «вырезания» дефектных участков из структуры ДНК [8]. Одним из наиболее важных ферментов эксцизионной репарации ДНК является фермент 8-оксогуанин-ДНК-гликозилаза, кодируемый геном OGG1. Снижение эффективности процессов репарации, обусловленное недостаточной активностью фермента 8-оксогуанин-ДНК-гликозилаза приводит к усилению мутагенной активности повреждающих агентов, что может крайне неблагоприятно сказываться на начальных этапах развития эмбриона [8]. Давно известно, что полиморфизм генов, кодирующих выработку ферментов может сопровождаться значительным изменением их активности, что, в свою очередь, отражается на их функциональной состоятельности [9].

В представленной работе впервые изучено влияние носительства полиморфизма G1947А (rs4680) гена COMT и полиморфизма С977G (rs1052133) гена OGG1 на течение первой половины беременности.

Материал и методы исследования

Объектом проведенного исследования стали 274 женщины; 151 находились на стационарном лечении в гинекологическом отделении в связи с самопроизвольным прерыванием беременности на сроке 7–20 недель гестации. Нами были отобраны пациентки с несколькими эпизодами репродуктивных потерь в анамнезе, исключая анэмбрионии и случаи невынашивания беременности, наступившей в результате ЭКО. В качестве группы сравнения были выбраны 123 женщины с реализованной репродуктивной функцией, 2 и более нормальными беременностями в анамнезе, протекавшими без угрозы прерывания и закончившимися самопроизвольными родами. Также условием включения пациенток в контрольную группу было отсутствие эпизодов невынашивания беременности в анамнезе. Все пациентки являлись представительницами славянской национальности, имели идентичные территориальные и климатические условия проживания (Москва и Московская область).

В рамках общего обследования всем пациенткам был проведен сбор анамнеза, общий осмотр, полное клинико-лабораторное обследование, включая оценку гормонального профиля и диагностику заболеваний передающихся половым путем методом полимеразной цепной реакции (ПЦР); с целью установления срока и характера течения беременности выполнялось ультразвуковое исследование органов малого таза. Пациенткам основной группы с самопроизвольным выкидышем производилось выскабливание слизистой матки. С целью исключения тяжелой хромосомной патологии эмбриона, как причины потери беременности всем пациенткам основной группы было выполнено кариотипирование абортусов, случаи хромосомных аберраций были исключены из исследования.

Для проведения молекулярно-генетического исследования нами был осуществлен забор 5 мл периферической венозной крови в пробирку, содержащую консервант – раствор К3EDTA, в соотношении 1:10. Хранение образцов осуществляли при температуре -20˚–-80˚C вплоть до постановки реакции. Выделение ДНК производили с использованием наборов реактивов Diatom DNA Prep 200 (Isogene Lab.Ltd, страна производитель Россия) согласно протоколу, заявленному производителем.

Генотипирование выполнялось методом аллель-специфической тетрапраймерной ПЦР [10]. Последовательности праймеров и условия реакции приведены в таблице. Метод отличается от известных аналогов аллель-специфической реакции тем, что позволяет в одной пробирке амплифицировать фрагменты ДНК различной длины, соответствующие альтернативным аллелям. Для постановки ПЦР использовали готовые лиофилизированные наборовы Master Mix (фирма Изоген) и праймеры (Евроген или Синтол). В дальнейшем выполняли электрофорез амплифицированных фрагментов ДНК в 2% агарозном геле с интеркалирующим красителем бромистым этидием.

В ходе генотипирования выявляли полиморфные варианты G1947А (rs4680) гена COMT и С977G (rs1052133) гена OGG1 и в последующем проводили оценку частот распределения генотипов в группах обследуемых пациенток.

Для статистической обработки полученных результатов применяли методы χ2. Вклады различных генотипов в заболеваемость определяли с помощью традиционного для таких исследований показателя «odds ratio». В некоторых случаях, с целью оценки достоверности различий частот бинарных показателей, использовали также трендовый тест Армитажа.

Результаты исследования

Изучению полиморфизма генов, как предикторов развития различных заболеваний в современной науке уделяется большое внимание. Однонуклеотидный полиморфизм G1947А (rs4680) гена COMT характеризуется заменой гуанина на аденин в первичной структуре нуклеотида, что сопровождается заменой валина на метионин в аминокислотной последовательности белка. Такое изменение в структуре белка сопровождается выработкой фермента катехол-О-метилтансферазы со сниженной активностью. При этом, доказано, что у носителей генотипа G/G наблюдается экспрессия полноценного фермента, гетерозиготы G/A отличает некоторое снижение активности СОМТ, у гомозигот по мутантному аллелю А (генотип A/A) наблюдается 3–4-кратное снижение активности фермента, по сравнению генотипом дикого типа [11].

По данным разных авторов носители генотипа А/А значительно чаше страдают психическими заболеваниями, такими как шизофрения, биполярное и панические расстройства, болезнь Альцгеймера [12–14]. Ранее установлена корреляция повышенного риска развития миомы матки и некоторых онкологических заболеваний с носительствам аллеля А [5].

В контексте невынашивания беременности роль полиморфизма G1947А (rs4680) ранее не изучалась. Частота встречаемости генотипов данного полиморфизма в популяции распределилась следующим образом: гомозиготный мутантный генотип А/А выявляется у 30%, гетерозигота G/A около 45% и гомозигота по дикому аллелю G наблюдается у 17% европеоидов. В ходе проводимого общего обследования у пациенток основной группы достоверно чаще были выявлены такие эстроген зависимые заболевания, как миома матки, аденомиоз и фиброзно-кистозная мастопатия. Нам представлялось интересным также проследить взаимосвязь между данными заболеваниями и носительством аллелей rs4680. Распределение генотипов в основной и контрольной группах соответствовало равновесию Харди–Вайнберга. Уровень успешности генотипирования у обследованных пациенток составило 92%. По результатам проведенного нами генотипирования гомозигота G/G выявлена у 33% (n=37) здоровых испытуемых, что оказалось достоверно выше, чем у пациенток с невынашиванием беременности – 13% (n=12), χ2=10,31, р=0,0013 (рис. 1). Данный результат подтверждает протективную роль аллеля G, наличие которого в гомозиготном состоянии обеспечивает продукцию полноценно активного фермента СОМТ.

Генотип А/А в основной группе встречался в 29% (n=26), что оказалось несколько выше, чем в группе общего контроля 24,4% (n=28) и совпало с общепопуляционными значениями, однако достоверная разница не была установлена (рис. 1).

В основной группе количество гетерозигот G/A оказалось на уровне 57,8% (n=52), тогда как среди здоровых женщин этот показатель был ниже и составил 42,47% (n=48), различия статистически незначимы (рис. 1).

С целью выяснения характера проявления наследуемого признака, нами был проведен аддитивный тест Кохрана–Армитажа. По результатам было установлено, что у пациенток основной группы имеется доминантная модель наследования аллеля А, из чего следует что оба генотипа А/А и G/А являются рисковыми по развитию невынашивания беременности у данных пациенток, χ2=5,47, р=0,02. Также нами установлено, что у пациенток носителей аллеля А в 1,61 раза выше шанс потери беременности в первой половине гестации, по сравнению с носителями аллеля G (OR=1,61, р=0,02, 95% df=1,06-2,43).

Также мы провели анализ ассоциации аллелей rs4680 гена СОМТ с эстрогензависимыми заболеваниями (миома матки, аденомиоз, фиброзно-кистозная мастопатия) (рис. 2).

Выявлено, что миома матки достоверно чаще наблюдалась у группы пациенток носительниц аллеля А (в гомозиготном и гетерозиготном состоянии), χ2=13,35, р=0,0003. Что касается аденомиоза, то у пациенток с генотипом А/А и G/А также наблюдалось значительное превалирование данного заболевания, по сравнению со здоровыми женщинами, χ2=12,78, р=0,0004. Фиброзно-кистозная мастопатия выявлена в подавляющем большинстве (более 90%) у носителей аллеля А в гомо- и гетерозиготном состоянии, тогда как среди группы с генотипом G/G практически не встречалась, χ2=28,71, р<0,0001 (рис. 2).

Основываясь на приведенных выше данных можно сделать вывод о том, что снижение активности фермента катехоламин-о-метилтрансферазы, обусловленное однонуклеотидной заменой rs-4680 гена СОМТ, приводит к недостаточно эффективной детоксикации эстрогенов и накоплению генотоксичных катехолэстрогенов, что может приводить к повышенному риску развития мультифакторных заболеваний, в том числе и невынашивания беременности.

Поддержание стабильности генома играет крайне важную роль в обеспечении гомеостаза организма. Одним из наиболее важных ферментов эксцизионной репарации ДНК является 8-оксогуанин-ДНК-гликозилаза (OGG1), осуществляющая репарацию окисленных и поврежденных оснований ДНК [15]. Однонуклеотидная замена С977G (rs1052133) гена OGG1 характеризуется заменой цитозина на гуанин в нуклеотидной последовательности, что сопровождается изменением в строении белка с заменой аминокислоты серина на цистеин. По результатам проведенных ранее генетических исследований минорный аллель G ассоциирован с повышенным уровнем спонтанных аберраций хромосомного типа в условиях радиационного загрязнения [15]. По данным ряда авторов генотип G/G был ассоциирован с повышенным риском рака ободочной и прямой кишки, плоскоклеточного рака пищевода, риском развития хронических заболеваний почек, сахарного диабета 2-го типа [6, 8, 16]. Также существуют данные об ассоциации аллеля G с риском развития эпителиального рака яичников, рака молочной железы у пациенток в постменопаузе, а также ряда онкологических заболеваний другой локализации [17].

Несмотря на столь широкое изучение полиморфизма С977G (rs1052133) как предиктора соматических заболеваний, в структуре невынашивания беременности его изучение ранее не проводилось. Частота распределения генотипов в популяции европеоидов выражается в подавляющем большинстве встречаемости дикого генотипа С/С – 60%; 30% европеоидов являются носителями гетерозиготного генотипа С/G, а мутантный генотип G/G является наименее распространенным и встречается всего у 6% европеоидов. В нашем исследовании распределение генотипов rs1052133 гена OGG1 соответствовало равновесию Харди–Вайнберга. Среди пациенток с репродуктивными потерями гомозиготный генотип С/С наблюдался в 59% (n=54), тогда как у здоровых женщин он составил 72% (n=87), однако достоверной разницы выявлено не было (рис. 3).

Гетерозигота C/G в обеих группах наблюдалась примерно в равном проценте случаев, у пациенток с невынашиванием генотип C/G выявлен в 36,3% (n=33), что достоверно не отличалось от группы контроля, где этот показатель оказался равен 27,2% (n=33) (рис. 3).

Генотип G/G наблюдался у 4,39% (n=4) женщин с репродуктивными потерями, тогда как в группе здоровых пациенток выявлен всего в одном случае, χ2=4,1, р=0,04. Установленная разница оказалась статистически достоверной, что позволяет рассматривать генотип G/G как неблагоприятный (рис. 3).

Рис. 3. показывает доминантную модель наследования, то есть рисковый генотип включает аллель G в гомо- и гетерозиготном состоянии.

При оценке odds ratio установлен эффект аллеля G в связи с повышенным риском потери беременности на сроках более 10 недель, (OR=1,72, р=0,04, 95%, df=0,34–0,99).

Заключение

Изученные полиморфные варианты генов ферментов обмена катехоламинов и эксцизионной репарации ДНК являются функционально и клинически значимыми. При включении в состав предгравидарного обследования пациенток генотипирования на выявление генотипов А/А и G/А rs4680 гена СОМТ и генотипов G/G и C/G rs1052133 гена OGG1 возможно сформировать группы риска по невынашиванию беременности. В дальнейшем большой практический интерес представляет разработка методов профилактики, приводящих к снижению негативного фенотипического проявления перечисленных генотипов, что позволит снизить процент репродуктивных потерь в первой половине беременности.

References

  1. Sidelnikova V.M. Preparation and maintenance of pregnancy in women with recurrent pregnancy loss. Teaching aids and clinical protocols. M.: MEDpress-inform; 2010. 219 p. (in Russian)
  2. Makarov O.V., Kovalchuk L.V., Gankovskaya L.V., Bakhareva I.V., Gankovskaya O.A. Miscarriage, infection, innate immunity. Monograph. M.: GEOTAR-Media; 2007. (in Russian)
  3. Sidelnikova V.M. Defective luteal phase (LPI) – tactics of treatment of women with habitual loss of pregnancy. In: Habitual pregnancy loss – new perspective on the role of sex hormones: Abstracts of the All-Russian Forum „Mother and Child”. M.; 2002: 907-8. (in Rusiian)
  4. Sidelnikova V.M. Habitual pregnancy loss. M.: Triad – X; 2002. 304 p. (in Russian)
  5. Feng Y., Zhao X., Zhou C., Yang L., Liu Y., Bian C. et al. The associations between the Val158Met in the catechol-O-methyltransferase (COMT) gene and the risk of uterine leiomyoma (ULM). Gene. 2013; 529(2): 296-9.
  6. Su Y., Xu A., Zhu J. The effect of oxoguanine glycosylase 1 rs1052133 polymorphism on colorectal cancer risk in Caucasian population.Tumour Biol. 2014; 35(1): 513-7.
  7. Sereda E.E., Kondakova I.V., Slonimskaya E.M. Estrogen metabolic enzymes and receptors as risk factors and prognosis in breast cancer. Siberian Journal of Oncology. 2004; 1: 35-43. (in Russian)
  8. Zhang J., Zhou J., Zhang P., Wang W., Tao S., Wang M. A meta-analysis of the association between the hOGG1 Ser326Cys polymorphism and the risk of esophageal squamous cell carcinoma. PLoS One. 2013; 8(6): e65742.
  9. Сальникова Л.Е., Чумаченко А.Г., Веснина И.Н., Лаптева Н.Ш., Кузнецова Г.И., Абилев С.К., Рубанович А.В. Полиморфизм генов репарации и цитогенетические эффекты облучения. Радиационная биология. Радиоэкология. 2010; 50(6): 656-62.
  10. Millikan R.C., Pittman G.S., Tse C.K., Duell E., Newman В., Savitz D., Bell D.A. Catechol-O-methyltransferase and breast cancer risk. Carcinogenesis. 1998; 19: 1943-7.
  11. Woo J.M., Yoon K.S., Yu B.H. Catechol O-methyltransferase genetic polymorphism in panic disorder. Am. J. Psychiatry. 2002; 159(10): 1785-7.
  12. Hamajima N. PCR-CTPP: a new genotyping technique in the era of geneticepidemiology. Expert. Rev. Mol. Diagn. 2001; 1: 119–23.
  13. Corvol J.-C., Bonnet C., Charbonnier-Beaupel F., Bonnet A.-M., Fievet M.-H., Bellanger A. et al.The COMT Val158Met polymorphism affects the response to entacapone in Parkinson’s disease: a randomized crossover clinical trial. Ann. Neurol. 2011; 69: 111-8.
  14. Domschke K., Tidow N., Schrempf M., Schwarte K., Klauke B., Reif A. et al. Epigenetic signature of panic disorder: a role of glutamate decarboxylase 1 (GAD1) DNA hypomethylation? Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 2013; 46: 189-96.
  15. Salnikova L., Chumachenko A., Belopolskaya O., Rubanovich A. Correlations between DNA polymorphism and frequencies of gamma-radiation induced and spontaneous cytogenetic damage. Health Phys. 2012; 103(1):37-41.
  16. Sun C., Liu X., Zhang H., Guo W., Cai Z., Chen H. et al. Functional polymorphism of hOGG1 gene is associated with type 2 diabetes mellitus in Chinese population. Mol. Cell. Endocrinol. 2010; 325(1-2): 128-34.
  17. Chen X., Wang J., Guo W., Liu X., Sun C., Cai Z. et al. Two functional variations in 5’-UTR of hoGG1 gene associated with the risk of breast cancer in Chinese. Breast Cancer Res. Treat. 2011; 127(3): 795-803.

About the Authors

Makarov Oleg Vasilievich, MD, Professor, honored doctor of Russia, head of the Department of obstetrics and gynecology № 1 N.I. Pirogov Russian National Research Medical University. 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str. 1. Tel.: +74992374033. E-mail: profmakarov@mail.ru
Morozova Ksenia V., post-graduate student of the Department of obstetrics and gynecology № 1 N.I. Pirogov Russian National Research Medical University.
117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str. 1. Tel.: +79162802018. E-mail: morozovadk@mail.ru
Salnikova Love Efimovna, Dr. Biol. Sci., leading researcher, laboratory of ecological genetics, N.I. Vavilov Institute of General Genetics, Russian Academy of Sciences. Russia, Moscow, Gubkina str. 3. Tel.: +74991328958. E-mail: salnikova@vigg.ru
Hadzieva Maryam Borisovna, graduate student, Junior researcher, N.I. Vavilov Institute of General Genetics, Russian Academy of Sciences. Russia,
Moscow, Gubkina str. 3. Tel.: +74991328958. E-mail: m.had@mail.ru
Goncharova Varvara Sergeevna, post-graduate student of the Department of obstetrics and gynecology № 1 N.I. Pirogov Russian National Research Medical University. 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str. 1. Tel.: +79166750099. E-mail: v_seredenina@mail.ru
Lutsenko Nikolai Nikolaevich, PhD, associate Professor of obstetrics and gynecology № 1 N.I. Pirogov Russian National Research Medical University.
117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str. 1. Tel.: +79267199595. E-mail: lnn55@mail.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.