Main oncological aspects of the diagnosis of precancerous diseases and early stages of endometrial, cervical and ovarian malignancies

Lavrinovich O.E., Smirnova O.A., Meshkova I.E., Ul’rikh E.A., Mikaya N.A., Yakovleva M.G., Bondarev N.E., Abramova A.V., Ibragimov Z.N., Beibulatova R.M., Nekrasova E.A., Gorodnova T.V., Mikhet’ko A.A., Urmancheeva A.F., Berlev I.V., Belyaev A.M.

1) Petrov National Medical Research Center of Oncology of МMinzdrav of Russia, St. Petersburg, Russia; 2) Mechnikov North-Western State Medical University of Minzdrav of Russia, St. Petersburg, Russia
Prevention and early diagnosis of reproductive tract malignancies are one of the most important socio-medical tasks, which depends mainly on physicians’ cancer awareness and is necessary to develop an effective patient management strategy. Of greatest importance are the development and implementation of effective screening programs focused on the detection of early-stage cancers, often at an asymptomatic stage, in a practically healthy target population. These measures are aimed at cancer risk reduction, detection of early disease, and improvement in treatment strategies. Oncological preventive activities should include strengthening physicians’ cancer awareness, availability of primary care and diagnostic tests, clear patient referral guidelines, coordinating care, and timely appropriate treatment. The cancer care system is effective only if all these stages are accessible and consistent.

Keywords

screening
early diagnosis
atypical endometrial hyperplasia
cervical dysplasia
ovarian cyst
uterine cancer
cervical cancer
ovarian cancer

В структуре онкологической заболеваемости женщин России злокачественные опухоли репродуктивной системы имеют наибольший удельный вес – 39,2% и составляют 18,2% всех злокачественных новообразований.

Рак тела матки выявляется у 7,8% женщин, рак шейки матки (РШМ) – у 5,3%, рак яичника (РЯ) – у 4,3%, доминируя в возрастной группе женщин на пике репродуктивной и социальной активности – 30–59 лет, уступая лишь раку молочной железы (РМЖ). В возрастной группе 30–34 лет заболеваемость РШМ и смертность от данной патологии являются максимальными (23,76% и 23,6% соответственно), доминируя по сравнению с другими возрастными группами. На ранних (I–II) стадиях заболевание выявляется у 65,6% пациенток.

В структуре смертности женщин опухоли репродуктивной системы занимают 2-е место и составляют 15,4%, при этом лидирует смертность от РЯ (5,7%). Выявляемость РЯ на ранних стадиях составляет всего лишь 24,9%, РШМ – 31,8%, а тела матки – в 62% [1].

Своевременная диагностика и лечение предраковых заболеваний и ранних стадий злокачественных опухолей репродуктивной системы являются важнейшей медицинской и социальной проблемой.

Гиперпластические процессы эндометрия (ГПЭ) относятся к числу наиболее распространенных гинекологических заболеваний, встречающихся с частотой от 30 до 55% и рассматриваются в онкологическом аспекте, являясь пролиферативным состоянием (рис. 1). С 2014 г. экспертами ВОЗ была утверждена новая классификация опухолей женской репродуктивной системы, в рамках которой выделяют доброкачественную гиперплазию эндометрия и эндометриоидную интраэпителиальную неоплазию (атипическую гиперплазию (АГП)) [2]. Риск прогрессии гиперплазии эндометрия без атипии составляет менее 5% в течение 20 лет, и в большинстве случаев наблюдается спонтанная регрессия [3]. Однако, по данным ряда авторов, в 70% случаев ГПЭ предшествуют раку тела матки, а в 20–79% АГЭ в течение 1–3 лет озлокачествляется в рак (рис. 1) [4, 5].

Наиболее клинически и статистически значимыми факторами риска прогрессирования патологического процесса эндометрия являются: рецидивирующие ГПЭ, морбидное ожирение – индекс массы тела (ИМТ) более 35, сахарный диабет второго типа (СД 2 типа), синдром поликистозных яичников, ановуляция, наличие патологических образований яичников, например гранулезоклеточные опухоли, бесплодие (первичное или вторичное), сочетанная патология матки (миома и/или аденомиоз), отягощенный онкологический анамнез, возраст 50 лет и старше, прием тамоксифена и эстрогенов [6].

Около 5% случаев рака тела матки ассоциированы с наследственным синдромом Линча, признаком которого является развитие вследствие мутаций генов опухолей толстой кишки (до 85%), рака эндометрия (до 71%), РЯ (до 10%) [7, 8].

Хотя рак эндометрия, как правило, диагностируется у женщин в пре- и постменопаузе, средний возраст пациенток составляет 62,6 (75%) года, от 5 до 29% случаев рака эндометрия выявляется у женщин в возрасте ≤40 лет. Более чем у 80% больных данная патология диагностируется на ранних (I–II) стадиях заболевания. Летальность на первом году с момента установления диагноза составляет 8,6% [1].

АПГ и начальный рак эндометрия (карцинома in situ, Ia стадии) отличаются благоприятным клиническим течением, а при своевременном лечении5-летняя выживаемость достигает 98,7% [9].

Достаточным и адекватным объемом лечения пациенток с данной патологией является простая экстирпация матки с придатками.

Самым простым, доступным и обладающим высокой ценностью методом первичной диагностики патологии матки является ультразвуковое исследование (УЗИ). Не вызывает сомнений, что ценность УЗИ как дополнительного метода исследования, который позволяет сформировать показания для углубленного обследования, зачастую определяет возможность диагностировать патологический процесс до появления его клинической симптоматики (рис. 2). Чувствительность сонографии как диагностического метода в определении внутриматочной патологии составляет 99,1%, а специфичность – 97,3% [10].

Однако УЗ-эхография не может дать информации о морфологической картине гиперпластического процесса. Одним из самых доступных методов морфологической диагностики гиперплазии эндометрия, предрака и рака эндометрия является аспирационная биопсия (например, Pipelle), но проблемы доступа к полости матки и погрешности в заборе материала ограничивают клиническую значимость отрицательного результата. В случае локальных поражений цитологическое исследование аспирата из полости матки или «слепое» раздельное диагностическое выскабливание матки может быть малоинформативным [3].

В онкогинекологии при выявлении гиперпластического процесса полости матки и подозрении на рак слизистой тела матки выполняется целый ряд клинико-инструментальных методов обследования, но основой определения тактики лечения является морфологическая верификация диагноза. Чтобы диагностировать начальный онкологический процесс эндометрия и тем самым обеспечить ранний старт и лучший результат лечения, возможность гистероскопической визуализации всего эндометрия дает большее преимущество, особенно у пациенток с локальными поражениями, например атипией в полипе эндометрия (рис. 3).

Гистероскопия обладает высокой чувствительностью и специфичностью (0,84–0,97% и 0,88–0,93% соответственно) как диагностический метод, являясь золотым стандартом не только диагностики, но и лечения внутриматочной патологии [11–13].

Внедрение гистерорезектоскопических методик в онкогинекологической практике позволило применить данный метод в диагностике АПГ, начального рака эндометрия и, что особенно актуально, в лечении пациенток репродуктивного возраста при желании сохранить репродуктивную функцию [14, 15].

В случаях бессимптомных патологических образований эндометрия в постменопаузе, выявленных при вагинальном УЗИ, на долю которых приходится 6% всех случаев, выполнение гистерорезектоскопии является обязательным [16].

В 2018 г. итальянскими учеными было проведено ретроспективное исследование с участием 295 бессимптомных женщин, у которых в постменопаузе методом ультразвуковой диагностики (УЗД) была диагностирована гиперплазия эндометрия более 5 мм. Пациенткам выполняли гистероскопию с биопсией эндометрия в период между 2009 и 2015 гг., с последующей гистологической оценкой состояния эндометрия. Чувствительность, специфичность, положительная и отрицательная прогностическая ценность результатов представлены в таблице [17].

Таким образом, каждой пациентке в постменопаузе, с толщиной эндометрия более 5 мм (по данным УЗИ), должно быть проведено дополнительное обследование в объеме гистероскопии, которая рассматривается как обязательный метод исследования, позволяющий визуализировать все стенки матки и выполнить прицельную биопсию всех зон пораженного эндометрия.

Применение УЗД в комплексе с гистероскопией и прицельной биопсией позволяет достичь 98,2% специфичности и чувствительности в диагностике патологических изменений эндометрия [10]. И даже при гистероскопически визуализированном атрофическом эндометрии без видимых патологических изменений биопсия должна быть выполнена (рис. 4).

Актуален вопрос диссеминации раковых клеток в брюшную полость при уже имеющемся онкологическом процессе в эндометрии при выполнении гистерорезектоскопии, который обусловлен транстубарным рефлюксом раковых клеток эндометрия в брюшную полость [18].

В ретроспективном исследовании 2011 г. было доказано, что продолжительность гистероскопии и положительная перитонеальная цитология никак не влияют на показатели общей и безрецидивной 5-летней выживаемости больных раком эндометрия [19]. Поэтому нет оснований избегать диагностической гистероскопии у пациенток с предполагаемым раком эндометрия, особенно на ранних стадиях. По данным международной классификации TNM, положительная перитонеальная цитология указывается отдельно без изменения стадии [20].

Тем не менее, чтобы минимизировать риск распространения опухоли, гистероскопию следует проводить при внутриматочном давлении не более 80 мм рт.cт., а продолжительность процедуры должна быть как можно меньше. По данным некоторых исследований установлено, что риск протекания транстубарной жидкости во время выполнения гистероскопии отсутствует, если манипуляция выполняется с внутриматочным давлением менее 40 мм рт.ст., невысокий – при давлении ниже 70 мм рт.ст., тогда как заметно увеличивается при давлении 100 мм рт.ст. [21].

Использование гистероскопии и биопсии патологии эндометрия приводит к почти 100% точности диагностики рака эндометрия и выявлению фоновых и предраковых изменений. Она представляет собой идеальный метод обследования женщин старше 45 лет с аномальными маточными кровотечениями, позволяет сформировать группы повышенного риска развития рака эндометрия [22].

Все существующие диагностические методики обследования шейки матки (ШМ) разрабатывались для ранней диагностики рака шейки матки (РШМ) и его облигатного предрака – цервикальных интраэпителиальных неоплазий (СIN/SIL).

Несмотря на то что РШМ отвечает всем требованиям популяционного скрининга, в возрастной группе 30–39 лет (период наибольшей репродуктивной активности) он является основной причиной смертности (24,4%), а в возрасте 40–49 лет составляет 14,8%, уступая лишь новообразованиям молочной железы (22,6%), что делает его одной из глобальных проблем здравоохранения [1].

Скрининг РШМ позволяет выявить неопластические изменения эпителия на начальном этапе трансформации клеток, которые индуцируются персистирующей инфекцией, вызванной вирусом папилломы человека (ВПЧ) [23].

В цитологическом скрининге наиболее важной составляющей является широта охвата населения, а не частота его проведения.

Самостоятельная регрессия предопухолевых изменений является одним из ограничений скрининга. В этом случае оправданы удлиненные интервалы между обследованиями – 3–5 лет. Изучено несколько методов скрининга, а также их комбинации: могут применяться как стандартная, так и жидкостная цитология и полуколичественный ВПЧ Digene-тест, сочетание которых имеет высокую прогностическую ценность негативного результата, близкую к 100% [24, 25]. Зачастую значительным препятствием для реализации программ профилактики PШМ является нежелание женщин посещать гинеколога из-за неприятных ощущений при заборе мазка, поэтому в последние годы в клиническую практику внедрены также различные методы самoзабора вагинального отделяемого для выполнения ВПЧ-тестирования [26].

На сегодняшний день большой интерес представляют тесты на основе метода полимеразной цепной реакции (ПЦР), способные обнаруживать ВПЧ. В рамках скрининга они на 40% более чувствительны, чем цитологический мазок [27]. Но несмотря на более высокую чувствительность, диагностика с помощью ПЦР не позволяет отличить клинически значимую папилломавирусную инфекцию (ПВИ) от клинически не значимой. В таком случае активно используют полуколичественный ВПЧ-тест гибридного захвата НС2 (Hybrid Capture 2 Digene test), он позволяет выявлять широкий спектр ВПЧ (высокого и низкого онкогенного риска), определяет клинически значимую концентрацию вируса, которая характеризует угрожающий уровень инфекции, приводящий к развитию неоплазии шейки матки, в то время как ПЦР-исследование определяет только наличие вируса вне зависимости от его клинического проявления. В группе женщин от 35 лет и старше чувствительность и специфичность метода составляют в среднем 89 и 90% соответственно, а в сочетании с цитологическим мазком предсказательная ценность отрицательного результата достигает 100% [25].

Визуальные методы играют важную роль в профилактике РШМ, особенно в странах с низким доходом. Скрининг может быть проведен с помощью одной из двух проб:

  • проба с 3–5% раствором уксусной кислоты – VIA;
  • проба с раствором Люголя — VILI (Шиллер-тест).

Метод предельно прост – тест с уксусной кислотой выполняют без увеличения (кольпоскопа), при этом оценивают только наличие ацетобелого эпителия (побеление есть – позитивный, побеления нет – негативный). В тесте VILI регистрируется наличие или отсутствие йоднегативной зоны. Однако при высокой чувствительности этот метод обладает низкой специфичностью [28, 29].

Преимущества визуального скрининга – доступность и малозатратность, недостатки – низкие специфичность и информативность у женщин в постменопаузе, когда переходная зона часто локализуется в цервикальном канале и не видна при осмотре.

Эксперты ВОЗ для стран с низкими ресурсами рекомендуют стратегию под названием «скрининг–лечение» (screen and treat), то есть в случае позитивного результата сразу проводится лечение, без дополнительной диагностики [30]. Эта рекомендация объясняется тем, что снижение заболеваемости РШМ сопоставимо с традиционной стратегией, но данный подход, несмотря на гипердиагностику и чрезмерное лечение, экономически выгоднее.

Попытки использовать кольпоскопический метод диагностики в качестве скрининга до настоящего момента не увенчались успехом. Кольпоскопия занимает много времени, требует высококвалифицированного специалиста и оборудования. Обла­дает высокой чувствительностью – до 91%, но низ­кой специфичностью – около 25%, так как ацетобелый эпителий возникает не только при HSIL, но и при LSIL, незрелой метаплазии, репаративных изменениях [31]. Именно из-за гипердиагностики кольпоскопия считается неприемлемой для скрининга, и нигде в мире, кроме России, не используется в качестве скринингового метода. Однако применение ВПЧ-тестирования или цитологического исследования для первичного скрининга с последующей кольпоскопией и прицельной биопсией увеличивает ее роль [32].

Биопсия ШМ выполняется с целью уточнения диагноза при подозрении на опухолевый процесс, она должна быть выполнена радио/электрохирургическим методом или скальпелем, мультифокально, с захватом неизмененного эпителия, под контролем кольпоскопического исследования, желательно с кюретажем эндоцервикса, с толщиной биоптата 3–5 мм [9].

С 2012 г. используется гистопатологическая классификация Bethesda, разделяя интраэпителиальное поражение шейки матки на LSIL и HSIL [33]. LSIL является обратимым процессом практически в 91% случаях, и рекомендуется консервативная и выжидательная тактика в течение года, а при трижды отрицательных результатах далее проводится стандартный скрининг РШМ [34–36]. В существующей классификации CIN II и III объединены в HSIL и требуют одинакового подхода к лечению, что зачастую обязует врачей использовать хирургический подход даже у молодых нерожавших пациенток, исключая попытки консервативной тактики. В данном случае выполняется конизация шейки матки (циркулярное иссечение тканей шейки матки с захватом не менее ⅓ цервикального канала скальпелем, наконечником Геймса–Роговенко, ультразвуковым скальпелем или радиоволновым ножом), которая является лечебно-диагностической операцией, позволяющей добиться полного удаления диспластических изменений ШМ в 94% случаев. Хирургическое иссечение является единственным полноценным лечебно-диагностическим методом при плоскоклеточном поражении ШМ в диапазоне HSIL (Cancer in situ ) – Ia1 стадии, обеспечивая радикальное удаление патологически измененных тканей в пределах здоровых тканей, что соответствует онкологическим принципам, дает возможность тщательного гистологического исследования и шанс на сохранение физиологических функций, включая репродуктивную.

Важно, чтобы патоморфологический отчет основывался на серийных срезах удаленной части шейки матки и содержал описание ширины и глубины патологической ткани, оценку состояния резецированных краев с указанием наличия или отсутствия интраэпителиального и/или инвазивного поражения (рис. 5). Гистологическая диагностика резецированной части ШМ – это исследование не менее 12 фрагментов ШМ, независимо от размеров удаленного конуса, не менее 3 срезов каждого фрагмента.

Рецидив или неполная излеченность после хирургического лечения возникает в 3–14%. Следует отметить наиболее значимые предиктивные факторы рецидива тяжелой дисплазии и преинвазивного рака при выполнении хирургического иссечения пораженной ткани ШМ: положительные края резекции, гистологический тип опухоли, позитивная гистологическая оценка соскоба из цервикального канала, вовлеченность эндоцервикальных желез, пациентки среднего и старшего возраста (по некоторым данным – старше 35 лет), большая площадь патологического поражения (равная или более 4 см), персистенция ПВИ. Наличие тяжелой плоскоклеточной дисплазии в краях резекции свидетельствует о высоком риске рецидива, но не является поводом для рутинной повторной эксцизии, если зона трансформации полностью визуализируется [37]. Адекватного наблюдения (цитологический мониторинг, кольпоскопия) за интраэпителиальной патологией достаточно в данной ситуации, что особенно актуально у молодых нерожавших пациенток.

Альтернативным методом лечения рецидива (в диапазоне CIN III – Cancer in situ – Cancer colli uteri Ia1) для пациенток репродуктивного периода является повторная эксцизия. Данный метод лечебно-диагностического пособия вполне адекватен, приводит к стойкой ремиссии (90,9%), с сохранением возможности деторождения, зачастую являясь, наравне с диагностическим, и лечебным [38].

Для пациенток постменопаузального возраста консервативный подход лечения преинвазивных форм РШМ лишен смысла. У женщин данной группы из-за неудовлетворительной кольпоскопической картины (стык плоского и цилиндрического эпителиев не визуализируется), атрофических изменений ШМ, невозможности выполнения полноценной биопсии исключена возможность получения полноценного конуса (длина удаленного конуса короче) [39, 40]. Существуют данные научных исследований, что частота рецидивов тяжелой дисплазии ШМ в старшей возрастной группе пациенток в два раза выше, чем у пациенток молодого возраста (20,8 и 10,9% соответственно) [41]. Диагноз микро- и инвазивного РШМ устанавливается только на основании гистологического исследования, по­­этому конизация ШМ в данной возрастной группе пациенток рассматривается чаще как диагностический метод, который может служить руководством для планирования дальнейшего метода лечения. Кроме того, частота рецидивов тяжелой дисплазии ШМ в старшей возрастной группе пациенток в два раза выше, конизация ШМ в постменопаузальном возрасте остается дискуссионной, для данной категории больных предпочтительнее выполнение экстирпации матки с придатками.

Преинвазивные аденокарциномы ШМ являются редкой (0,4%) патологией, в 67% они имеют скрытое течение и сложны в диагностике [42]. Обнаружение преинвазивной железистой карциномы ШМ, характеризующейся более агрессивным течением с частотой рецидива преинвазивных форм до 20%, не опровергает консервативную тактику лечения в репродуктивном возрасте, но требует обязательной повторной конизации ШМ при выявлении положительных гистологических результатов в краях резекции и более тщательного последующего динамического наблюдения с ПЦР- тестированием [43]. В ретроспективном американском исследовании были проанализированы результаты конизации 78 женщин с первичным диагнозом преинвазивного железистого РШМ (ACIS). При подтверждении диагноза выполнялась повторная конизация или экстирпация матки. В результате исследования выявлено, что инвазивная форма рака выявляется у 12–17% пациенток, а женщины с отрицательными краями первичной резекции и соскоба из цервикального канала имеют 14% риска остаточной железистой дисплазии. Поэтому отрицательные гистологические данные краев выполненного конуса и кюретажа ШМ не могут в достаточной степени гарантировать излеченность от заболевания. В то же время динамическое наблюдение за пролеченными пациентками с железистым типом дисплазии шейки матки и преинвазивным раком является сложным и дискутабельным, так как типичное цитологическое исследование является малоинформативным. Авторами предлагается в качестве прогностического фактора ПЦР-диагностика ВПЧ высокого канцерогенного риска (ВКР) как один из самых информативных прогностических факторов развития рецидива железистой дисплазии шейки матки [44].

Для женщин с реализованной репродуктивной функцией консервативное ведение железистых форм интраэпителиальных поражений недопустимо и требует радикального хирургического лечения [45].

Одним из новых направлений прогнозирования течения диспластических изменений является метод молекулярно-биологической оценки микроРНК, который способен отображать степень пролиферации патологического эпителия и может быть использован как биомаркер прогноза развития опухоли [46]. В настоящее время ведутся научные работы по оценке степени экспрессии микроРНК, при этом 7 из 16 микроРНК, специфичных для инвазивного роста, уже показали свою значимость в прогнозе развития тяжелой дисплазии до инвазивного РШМ. Например, экспрессия miR-127 прогрессивно повышается от дисплазии до инвазивного РШМ и может выступать маркером метастазирования в лимфатические узлы [47]. В то время как экспрессия miR-375 в тканях РШМ прогрессивно снижается по сравнению с нормальной тканью ШМ в 4,45 раза. Данные могут свидетельствовать о том, что подавление miR-375 способствует клеточному злокачественному прогрессированию и, следовательно, может способствовать прогрессированию РШМ. Исследование микроРНК в качестве предиктора злокачественной прогрессии имеет большие перспективы, учитывая, что изменения в показателях значений возникают раньше, чем морфологические изменения в пораженных тканях, что может определять тактику лечения [48].

Внедрение популяционных программ скрининга должно стать приоритетом в большинстве стран, а выбор инструмента скрининга зависит от диагностических возможностей и ресурсов для контроля качества.

Несмотря на научные поиски предикторов малигнизации кистозных образований яичников, заболеваемость и смертность от РЯ остаются на высоком уровне. Несомненно, высокая смертность от опухолей яичников связана с тем, что большинство пациенток с данной патологией диагностируются на поздних стадиях, то есть тогда, когда традиционные методы лечения оказываются менее эффективными (выявляемость первой стадии заболевания не превышает 24,9%) [1]. Во всем мире ежегодно диагностируется около 200 000 случаев РЯ [49].

С применением современных методов комбинированного лечения для женщин с ранней стадией заболевания общая 5-летняя выживаемость колеблется от 80 до 95%, однако для женщин с распространенным процессом (III и IV стадий) выживаемость не превышает 30–40% [20].

Диагностика РЯ является сложной проблемой, принимая во внимание вариабельность гистологических форм и отсутствие патогномоничных симптомов течения ранних стадий заболевания. У 22,6% пациенток РЯ обнаруживается случайно при отсутствии каких-либо жалоб, а у 7% пациенток РЯ выявляется при микроскопическом исследовании удаленного препарата кисты яичника [49]

На сегодняшний день для диагностики РЯ как стратегия скрининга применимы УЗИ и иммунологическое исследование крови – определение опухолевых маркеров в сыворотке крови, самым распространенным из которых является CA-125 (Cancer Antigen 125). CA-125 является маркером сыворотки крови, которому уделяется наибольшее внимание при определении методов раннего выявления эпителиального РЯ [50]. Однако CA-125 недостаточно специфичен для скрининга общей популяции, концентрация его может меняться и на фоне доброкачественных заболеваний (эндометриоз, аденомиоз, кисты яичника, миома матки, дисфункция почек, заболевания печени, поджелудочной железы). Даже у женщин в постменопаузе диагностическое значение CA-125 (норма 35 Ед/мл) может достичь специфичности 94–99%, что может быть объяснено значительной долей выявляемых III–IV стадий РЯ, но не соответствует требованию скрининга, когда специфичность должна составлять 99,7% [51].

Также широко распространено для диагностики эпителиального РЯ определение онкомаркера НЕ4 (Human Epididymis Protein 4), чувствительность которого на ранних стадиях РЯ (I–II стадии) достоверно превышает таковую СА-125 и составляет 73,7% [52].

В дифференциальной диагностике с доброкачественными образованиями яичников уровень специфичности НЕ4 также значимо превышает уровень СА-125 и составляет 60,1% и 95,6% соответственно. Анализ же комплексной оценки этих маркеров (индекс ROMA) повышает информативную ценность метода, когда чувствительность составляет 96%, а специфичность – 76% [53].

Злокачественные эпителиальные опухоли яичников на начальных этапах заболевания не имеют характерных клинических симптомов. Клиническая картина заболевания имеет «стертый» характер, выражающийся в «дискомфорте» со стороны желудочно-кишечного тракта, увеличении объема живота за счет асцита, боли возникают уже при довольно значительных размерах опухолей, зачастую уже при наличии диссеминации опухолевых клеток в брюшной полости.

Обратная ситуация обстоит с неэпителиальными опухолями (стромальноклеточными, герминогенными), диагностика которых возможна в 70% случаев на I стадии заболевания. В отличие от эпителиальных опухолей яичников, герминогенные опухоли имеют солидное строение, поэтому болевые ощущения возникают на начальных этапах развития опухоли из-за натяжения подвешивающей связки или ее перекрута. В таких случаях информативно определение в крови альфафетопротеина (АФП), лактатдегидрогеназы (ЛДГ) и β-субъединицы хорионического гонадотропина человека (β-ХГЧ) для исключения герминогенных опухолей, а также ингибина В – для исключения стромальных опухолей. Опухоли, развивающиеся из стромы полового тяжа, являются гормонпродуцирующими, и симптомы заболевания могут быть проявлением гиперпродукции эстрогенов или андрогенов.

УЗИ является ведущим методом диагностики новообразований в малом тазу, доступным, информативным, как этап первичной диагностики, позволяющим сформировать показания к объему дополнительного обследования. Общая диагностическая точность УЗИ в отношении опухоли яичника составляет около 80%. Этот метод обладает высокой разрешающей способностью и информативностью [54].

В настоящее время активно внедряются в практику методики, повышающие диагностическую ценность УЗИ: исследование в В-режиме (трансабдоминальный и трансвагинальный методы), цветное допплеровское картирование (ЦДК), соноэластография. Для повышения чувствительности и специфичности эхографической методики в диагностике злокачественных и доброкачественных опухолей яичников оцениваются визуализация сосудов и состояние кровотока. Спектральный анализ допплеровской волны, излучаемой цветным допплерографическим анализатором, широко используется для определения состояния кровотока в опухолях [55].

Одним из самых перспективных и новаторских методов в диагностике онкологической патологии репродуктивных органов является контрастно-усиленная эхография (CEUS – contrast-enhanced ultrasonography), характеризующаяся быстротой и легкостью исполнения, приемлемой стоимостью и практически отсутствием противопоказаний. Применение CEUS (препарат Соновью 2,5 мл) в гинекологии особенно актуально в диагностике патологии яичников, показанием к которому является любой солидный компонент в кистозных образованиях яичников. Данный метод позволяет детально оценить сосудистое русло, выявить признаки неоангиогенеза, а используемая качественная оценка (по сравнению с двухмерными индексами) позволяет в целом оценить характер кровотока в опухоли [54, 56].

При этом методе внутривенно вводятся эхоконтрастные агенты, которые состоят из микропузырьков, стабилизированных мембраной, позволяющей им сохраняться в кровотоке не менее 4–5 минут. Они усиливают ультразвуковой сигнал, поступающий от крови, что дает возможность в реальном времени отображать динамику васкуляризации поражений, паренхимы и кровеносных сосудов. Метод основан на том, что из-за выраженного неоангиогенеза опухолевая ткань интенсивно накапливает контрастный препарат и быстро его выводит, с обратным эффектом в доброкачественной ткани [57].

Эхографические признаки доброкачественных образований яичников: жидкостное гладкостенное образование в проекции яичника, внутренняя структура – анэхогенная (серозные кисты) или гипоэхогенная (эндометриоидные, муцинозные), округлая или овоидная форма, ровные, гладкие контуры (папиллярные кисты с мелкими единичными пристеночными гиперэхогенными включениями), одностороннее поражение, вариабельность размеров (муцинозные – чаще крупные размеры), кровоток по капсуле образования отсутствует, самопроизвольный регресс на протяжении нескольких менструальных циклов или при назначении оральных контрацептивов в течение 2–3 месяцев (рис. 6).

О патологическом характере кист яичников на основании УЗД говорят структура стенки кисты, ее толщина и сложность септ, наличие внутренних сосочков или твердых структур, разрастаний по капсуле яичника, наличие патологического кровотока [58] (рис. 7).

CEUS особенно актуальна у больных РЯ, так как легко выполнима, практически не имеет противопоказаний, позволяет сформировать показания к дополнительному обследованию, включая селективное назначение опухолевых маркеров.

В США была выполнена всесторонняя оценка диагностической ценности традиционного УЗИ, УЗИ в режиме допплеровского картирования и УЗИ с контрастным усилением (CEUS) для дифференциации доброкачественных и злокачественных образований яичников. Чувствительность и специфичность обычного УЗИ составляли 0,92 и 0,86% соответственно, УЗИ в режиме допплеровского картирования – 0,93% и 0,85% соответственно. Для CEUS чувствительность составила 0,97%, а специфичность – 0,92%. Все три метода визуализации имеют относительно высокую диагностическую ценность для дифференциальной диагностики злокачественных опухолей яичников от доброкачественных, дополняя друг друга и предоставляя новые возможности в оценке патологического процесса [59] (рис. 8).

В постменопаузальном периоде при УЗИ размеры яичников не должны превышать 2 см, должны иметь однородную гипоэхогенную структуру, не иметь кистозных образований, допустимо наличие кист не более 2–3 см в диаметре, гладкостенных, однокамерных, без включений и признаков васкуляризации. Наблюдение кисты возможно не более 6 месяцев под динамическим УЗ-контролем не реже 1 раза в 3 месяца при нормальных показателях сывороточного онкомаркера СА-125 и НЕ4. При наличии образования яичника более 6 месяцев, жидкости в малом тазу, при повышении показателей СА-125 и других маркеров опухолевого роста показано хирургическое лечение.

Следует помнить, что РЯ является одной из самых частых разновидностей семейного рака (10–15% случаев РЯ). Большинство наследственных опухолевых синдромов характеризуются строгой органоспецифичностью: наличие мутации повышает риск развития РМЖ, рака желудка, кишечника, эндометрия, поджелудочной железы и некоторых других локализаций. В 90–95% случаев наследственный РЯ обусловлен мутациями в генах BRCA1 и BRCA2 [60]. Онкологические больные с отягощенным семейным анамнезом должны быть тестированы на наличие мутаций в генах BRCA1 и BRCA2, родственникам «BRCA-позитивных» пациентов нужно рекомендовать молекулярно-генетическое обследование с целью формирования индивидуального плана профилактического наблюдения.

Для ранней диагностики развития наследственного РЯ показано динамическое наблюдение не реже 1 раз в 6 месяцев (сонография органов малого таза и определение опухоль-ассоциированного антигена СА-125) начиная с 35 лет [61].

Заключение

Ранняя диагностика злокачественных новообразований зависит главным образом от онкологической настороженности врачей общей практики и их знаний, выработки единой тактики эффективных методов обследования пациенток. Совершенствование просветительной работы, применение комплексного современного обследования пациенток улучшат своевременную диагностику злокачественных новообразований и отдаленные результаты лечения.

References

  1. Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В., ред. Злокачественные новообразования в России в 2017 году (заболеваемость и смертность) М.: МНИОИ им. П.А. Герцена филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2018. 250 с. [Kaprin A.D., Starinskii V.V., Petrova G.V., eds. Zlokachestvennye novoobrazovaniya v Rossii v 2017 (zabolevaemost’ i smertnost’) Moscow: MNIOI im. P.A. Gertsena filial FGBU «NMITs radiologii» Minzdrava Rossii; 2018. 250 p. (in Russian)].
  2. Emons G., Beckmann M.W., Schmidt D., Mallmann P. New WHO classification of endometrial hyperplasias. Geburtsh. Frauenheilk. 2015; 75: 135–6.
  3. Royal College of Obstetricians and Gynaecologists – RCOG. Management of Endometrial Hyperplasia. RCOG/BSGE Green–top Guideline No. 67. February 2016.
  4. Уварова Е.В. Сочетанная патология эндо- и миометрия у больных репродуктивного возраста (вопросы патогенеза, диагностики и лечения): дисс. … д-ра мед. наук. М.; 1993. 127 с. [Uvarova E.V. Sochetannaya patologiya endo- i miometriya u bol’nykh reproduktivnogo vozrasta (voprosy patogeneza, diagnostiki i lecheniya). Diss. Moscow; 1993. 127 p. (in Russian)].
  5. Харенкова E.JI. Прогноз и профилактика гиперпластических процессов эндометрия в менопаузе: дисс. … канд. мед. наук. Иркутск; 2009. 23 с. [Kharenkova E.JI. Prognoz i profilaktika giperplasticheskikh protsessov endometriya v menopause. Diss. Irkutsk; 2009. 23 p. (in Russian)].
  6. Baak J.P., Mutter G.L., Robboy S., van Diest P.J., Uyterlinde A.M., Orbo A. et al. The molecular genetics and morphometry- based endometrial intraepithelial neoplasia classification system predicts disease progression in endometrial hyperplasia more accurately than the 1994 World Health Organization classification system. Cancer. 2005; 103(11): 2304–12. https://dx.doi.org/10.1002/cncr.21058.
  7. Resnick K.E., Hampel H., Fishel R., Cohn D.E. Current and emerging trends in Lynch syndrome identification in women with endometrial cancer. Gynecol. Oncol. 2009; 114(1): 128–34. https://dx.doi.org/10.1016/j.ygyno.2009.03.003.
  8. Паяниди Ю.Г., Жорданиа К.И., Паукер В.,Сельчук В.Ю., Казубская Т.П. Первично-множественные злокачественные новообразования органов репродуктивной системы и толстой кишки у женщин. Вестник РОНЦим. Н.Н. Блохина РАМН. 2016; 27(2): 109–12. [Payanidi Yu.G., Jordania K.I, Pauker V., Selchuk V.Yu., Kazubskaya T.P. Primary multiple malignant neoplasms bodies reproductive system and colon in women. Vestnik RONTs im. N.N. Blokhina RAMN. 2016; 27(2): 109–12. (in Russian)].
  9. Бохман Я.В. Руководство по онкогинекологии. Монография. Л.: Медицина; 1989. 463 с. [Bokhman Ya.V. Rukovodstvo po onkoginekologii. Monografiya. Leningrad: Meditsina; 1989. 463 p. (in Russian)].
  10. Сафронов А.В. Оценка сонографии и гистероскопии в диагностике опухолей гениталий у женщин с постменопаузальными кровотечениями: дисс. … канд. мед. наук. Санкт-Петербург; 2004. [Safronov A.V. Otsenka sonografii i gisteroskopii v diagnostike opukholei genitalii u zhenshchin s postmenopauzal’nymi krovotecheniyami. Diss. St. Petersburg; 2004. (in Russian)].
  11. Edris F., Vilos G.A., Al-Mubarak A., Ettler H.C., Hollett-Caines J., Abu-Rafea B. Resectoscopic surgery may be an alternative to hysterectomy in high-risk women with atypical endometrial hyperplasia. J. Minim. Invasive Gynecol. 2007; 14(1): 68–73. https://dx.doi.org/10.1016/j.jmig.2006.08.007.
  12. Савельева Г.М., Бреусенко В.Г., Капушева Л.М. Гистероскопия: атлас и руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2017. 248 с. [Savel’eva G.M., Breusenko V.G., Kapusheva L.M. Gisteroskopiya: atlas i rukovodstvo. Moscow: GEOTAR-Media; 2017. 248 p. (in Russian)].
  13. Taneja B.K., Arora R.P., Alam M. Role of hysteroscopy in diagnosis of menstrual discorders. Med. J. Armed. Forces India. 1996; 52(1): 15–8. https://dx.doi.org/10.1016/S0377-1237(17)30827-4.
  14. Попов А.А., Алиева А.С., Мананникова Т.Н., Барто Р.А. Сравнение различных методов абляции при гиперпластических процессах эндометрия. РМЖ Мать и дитя. 2017; 26: 1942–5. [Popov A.A., Alieva A.S., Manannikova T.N., Barto R.A. Sravnenie razlichnykh metodov ablyatsii pri giperplasticheskikh protsessakh endometriya. RMZh Mat’ i ditya. 2017; (26): 1942–5.(in Russian)].
  15. Feng Y.Z., Shiozawa T., Miyamoto T., Kashima H., Kurai M., Suzuki A., Konishi I. BRAF mutation in endometrial carcinoma and hyperplasia: correlation with KRAS and p53 mutations and mismatch repair protein expression. Clin. Cancer Res. 2005; 11(17): 6133–8. https://dx.doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-04-2670.
  16. Kudela M., Pilka R., Hejtmánek P., Dzvincuk P., Ondrová D. The importance of sonography and hysteroscopy at suspected findings on endometrium of menopausal women. CeskaHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18567430” HYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18567430”GynekolHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18567430”. 2008; 73(2): 104–8.
  17. Trojano G., Damiani G.R., Casavola V.C., Loiacono R., Malvasi A., Pellegrino A. et al. The role of hysteroscopy in evaluating postmenopausal asymptomatic women with thickened endometrium. Gynecol. Minim. Invasive Ther. 2018; 7(1): 6–9. https://dx.doi.org/10.4103/GMIT.GMIT_10_17.
  18. Polyzos N.P., Mauri D., Tsioras S., Messini C.I., Valachis A., Messinis I.E. Intraperitoneal dissemination of endometrial cancer cells after hysteroscopy: a systematic review and meta-analysis. Int. J. Gynecol. Cancer. 2010; 20(2): 261–7. https://dx.doi.org/10.1111/igc.0b013e3181ca2290.
  19. Tempfer C.B., Froese G., Buerkle B., Polterauer S., Grimm C., Concin N. et al. Does duration of hysteroscopy increase the risk of disease recurrence in patients with endometrial cancer? A multi-centre trial. Exp. Ther. Med. 2011; 2(5): 991–5. https://dx.doi.org/10.3892/etm.2011.309.
  20. Wiebea E., Denny L., Thomas G. Cancer of the cervix uteri. Figo cancer report. Int. J. Gynecol. Obstet. 2012; 119(Suppl. 2): S100–9. https://dx.doi.org/10.1016/S0020-7292(12)60023-X.
  21. Ayman Al-Talib, Farr Nezhat, Togas Tulandi. Cite as. The role of hysteroscopy in diagnosis and management of endometrial cancer. Gynecol. Surg. 2010; 7(3): 211–6. https://dx.doi.org/10.1007/s10397-010-0604-1.
  22. Mencaglia L. Hysteroscopy and adenocarcinoma. ObstetHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”.HYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538” GynecolHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”. HYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”ClinHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”. HYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”NorthHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538” HYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”AmHYPERLINK “https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8524538”. 1995; 22(3): 573–9.
  23. Киселев В.И. Вирусы папилломы человека в развитии рака шейки матки. М.; 2004. 179 с. [Kiselev V.I. Virusy papillomy cheloveka v razvitii raka sheiki matki. Moscow; 2004. 179 p. (in Russian)].
  24. Роговская С.И., Липова Е.В. Шейка матки, влагалище, вульва. Физиология, патология, кольпоскопия, эстетическая коррекция. Руководство для практикующих врачей. 2-е изд. М.: Медиабюро «Статус презенс»; 2016. [Rogovskaya S.I., Lipova E.V. Sheika matki, vlagalishche, vul’va. Fiziologiya, patologiya, kol’poskopiya, esteticheskaya korrektsiya. Rukovodstvo dlya praktikuyushchikh vrachei. 2nd ed. Moscow: Mediabyuro «Status prezens»; 2016. (in Russian)].
  25. Altobelli E., Scarselli G., Lattanzi A., Fortunato C., Profeta V.F. A comparison between Pap and HPV screening tests and screening methods. Mol. Clin. Oncol. 2016; 5(2): 348–54. https://dx.doi.org/10.3892/mco.2016.909.
  26. Chen K., Ouyang Y., Hillemanns P., Jentschke M. Excellent analytical and clinical performance of a dry self-sampling device for human papillo- mavirus detection in an urban Chinese referral population. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2016; 42(12): 1839–45. https://dx.doi.org/10.1111/jog.13132.
  27. Ronco G., Dillner J., Elfström K.M., Tunesi S., Snijders P.J., Arbyn M. et al. Efficacy of HPV-based screening for prevention of invasive cervical cancer: follow-up of four European randomised controlled trials. Lancet. 2014; 383(9916): 524–32. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(13)62218-7.
  28. Tjalma W.A. The ideal cervical cancer screening recommendation for Belgium, an industrialized country in Europe. Eur. J. Gynaecol. Oncol. 2014; 35(3): 211–8. https://dx.doi.org/10.1016/j.cmi.2017.05.020.
  29. Saslow D., Solomon D., Lawson H.W., Killackey M., Kulasingam S.L., Cain J. et al. American Cancer Society, Amercan Society for Colposcopy and Cervical Pathology, and American Society for Clinical Pathology screening guidelines for the prevention and early detection of cervical cancer. Am. J. Clin. Pathol. 2012; 137(4): 516–42. https://dx.doi.org/10.1309/AJCPTGD94EVRSJCG.
  30. World Health Organization. Guidelines for screening and treatment of precancerous lesions for cervical cancer prevention. WHO guidelines. WHO; 2013.
  31. Underwood M., Arbyn M., ParrySmith W., De BellisAyres S., Todd R., Redman C.W. et al. Accuracy of colposcopydirected punch biopsies: a systematic review and metaanalysis. BJOG. 2012; 119(11): 1293–301. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2012.03444.x.
  32. Jeronimo J., Schiffman M. Colposcopy at a crossroads. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 195(2): 349–53. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2006.01.091.
  33. Nayar R., Wilbur D.C. The Pap Test and Bethesda 2014. “The reports of my demise have been greatly exaggerated” (after a quotation from Mark Twain). Acta Cytol. 2015; 59(2): 121–32. https://dx.doi.org/10.1159/000381842.
  34. Wei M.K. Pathology of сervical сarcinoma. The Global Library оf Women’s Medicine. 2017.
  35. El-Nashar S.A., Shazly S.A., Hopkins M.R., Bakkum-Gamez J.N., Famuyide A.O. Loop electrosurgical excision procedure instead of cold-knife conization for cervical intraepithelial neoplasia in women with unsatisfactory colposcopic examinations: a systematic review and meta-analysis. J. Low. Genit. Tract Dis. 2017; 21(2): 129–36. https://dx.doi.org/10.1097/LGT.0000000000000287.
  36. Jiang Y., Chen C., Li L. Comparison of cold-knife conization versus loop electrosurgical excision for cervical adenocarcinoma in situ (ACIS): a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2017; 12(1): e0170587. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0170587.
  37. Hasegawa K., Torii Y., Kato R., Udagawa Y., Fukasawa I. The problems of cervical conization for postmenopausal patients. Eur. J. Gynaecol. Oncol. 2016; 37(3): 327–31.
  38. Cheng X., Feng Y., Wang X., Wan X., Xie X., Lu W. The effectiveness of conization treatment for post-menopausal women with high-grade cervical intraepithelial neoplasia Exp. Ther. Med. 2013; 5(1): 185–8. https://dx.doi.org/10.3892/etm.2012.748.
  39. Морохов К.Ю., Нечушкина В.М., Кузнецов В.В. Актуальные вопросы хирургического лечения рака шейки матки. Практическая онкология. 2009; 10(2): 93–101. [Morokhov K.Yu., Nechushkina V.M., Kuznetsov V.V. Aktual’nye voprosy khirurgicheskogo lecheniya raka sheiki matki. Prakticheskaya onkologiya. 2009; 10(2): 93–101. (in Russian)].
  40. Кравец А., Кузнецов В.В., Морхов К.Ю., Нечушкина В.М., Хохлова С.В. Клинические рекомендации по диагностике и лечению рака шейки матки. М.: Ассоциация онкологов России; 2014. [Kravets A., Kuznetsov V.V., Morkhov K.Yu., Nechushkina V.M., Khokhlova S.V. Klinicheskie rekomendatsii po diagnostike i lecheniyu raka sheiki matki. Moscow: Assotsiatsiya onkologov Rossii; 2014. (in Russian)].
  41. Kobak W.H., Roman L.D., Felix J.C., Muderspach L.I., Schlaerth J.B., Morrow C.P. The role of endocervical curettage at cervical conization for high-grade dysplasia. Obstet. Gynecol. 1995; 85(2): 197–201.
  42. Сидорук А.А. Клинико-морфологические особенности и проблемы диагностики аденогенных карцином in situ шейки матки: дисс. … канд. мед. наук. Санкт-Петербург; 2009. [Sidoruk A.A. Kliniko-morfologicheskie osobennosti i problemy diagnostiki adenogennykh kartsinom in situ sheiki matki. Diss. St. Petersburg; 2009. (in Russian)].
  43. Pirtea L., Grigoraş D., Matusz P., Pirtea M., Moleriu L., Tudor A. et al. Human papilloma virus persistence after cone excision in women with cervical high grade squamous intraepithelial lesion: a prospective study. Can. J. Infect. Dis. Med. Microbiol. 2016; 2016: 3076380. https://dx.doi.org/10.1155/2016/3076380.
  44. Tierney K.E., Lin P.S., Amezcua C., Koji Matsuo, Wei Ye, Felix J.C., Roman L.D. Cervical conization of adenocarcinoma in situ: a predicting model of residual disease. Am. J. Obstet. Gynecol. 2014; 210(4): 366. e5.
  45. Luna J., Plata M., Gonzalez M., Correa A., Maldonado I., Nossa C. et al. Long-term follow-up observation of the safety, immunogenicity, and effectiveness of Gardasil in adult women. PLoS One. 2013; 8(12): e8343. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0083431.
  46. Бахидзе Е.В., Берлев И.В., Архангельская А.П., Малек А.В. Возможности оценки прогноза развития преинвазивных неоплазий шейки матки с помощью новейших молекулярно-биологических методов. Вопросы онкологии. 2016; 62(3): 397–400. [Bakhidze E.V., Berlev I.V., Arkhangelskaya P.A., Malek A.V. Possibilities of estimating the prognosis for development of preinvasive cervical neoplasia by the latest molecular biology methods. Voprosy onkologii. 2016; 62(3): 397–400. (in Russian)].
  47. Lee J.W., Choi C.H., Choi J.J., Park Y.A., Kim S.J., Hwang S.Y. et al. Altered MicroRNA expression in cervical carcinomas. Clin. Cancer Res. 2008; 14: 2535–42. https://dx.doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-07-1231.
  48. Wang F., Li Y., Zhou J., Xu J., Peng C., Ye F. et al. miR-375 isdown regulated insquamous cervical cancer and inhibits cell migration and invasion iatargeting transcription factor SP1. Am. J. Pathol. 2011; 179(5): 2580–8. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajpath.2011.07.037.
  49. Никогосян С.О., Каирбаеа М.Ж., Козаченко В.П., Жорданиа К.И., Кузнецов В.В. Хирургическое лечение рака яичников. В кн.: Горбунова В.А., ред. Диагностика и лечение рака яичников. М.; 2011: 87–117. [Nikogosyan S.O., Kairbaea M.Zh., Kozachenko V.P., Zhordania K.I., Kuznetsov V.V. Khirurgicheskoe lechenie raka yaichnikov. In: Gorbunova V.A., ed. Diagnostika i lechenie raka yaichnikov. Moscow; 2011: 87–117.(in Russian)].
  50. Bast RC. Jr. Status of tumor markers in ovarian cancer screening. J. Clin. Oncol. 2003; 21: 200–5.
  51. Bast R.C. Jr. Early detection of ovarian cancer: new technologies in pursuit of a disease that is neither common nor rare. Trans. Am. Clin. Climatol. Assoc. 2004; 115: 233–48.
  52. Клинико-лабораторная концепция исследования серологических опухолеассоциированных маркеров и некоторых гормонов у онкологических больных. М.: «МНИОИ им. П.А. Герцена» – филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России; 2016.10 с. [Kliniko-laboratornaya kontseptsiya issledovaniya serologicheskikh opukholeassotsiirovannykh markerov i nekotorykh gormonov u onkologicheskikh bol’nykh. Moscow: «MNIOI im. P.A. Gertsena» – filial FGBU «NMIRTs» Minzdrava Rossii; 2016. 10 p. (in Russian)].
  53. Чибисова Г.М, Хабаров С.В. Комплексное определение онкомаркеров СА125, НЕ1 и индекса ROMA, как фактор прогноза развития рака яичников. Вестник новых медицинских технологий. 2018; 25(3): 15–20. [Chibisova G.M., Khabarov S.V. Complex determination of oncoprotein ca 125, he 4 and roma index as a prognosis of ovarian cancer. Journal of New Medical Technologies/Vestnik novykh meditsinskikh tekhnologii. 2018; 25(3): 15–20. (in Russian)].
  54. Подзолкова Н.М., Львова А.Г., Зубарев А.Р., Осадчев В.Б. Дифференциальная диагностика опухолей и опухолевидных образований яичников: клиническое значение трехмерной эхографии. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2009; 8(1): 7–16. [Podzolkova N.M., L’vova A.G., Zubarev A.R., Osadchev V.B. A differential diagnosis of tumors and tumor-like ovarian masses: the clinical significance of 3D echography. Voprosy ginekologii, akusherstva i perinatologii. 2009; 8(1): 7–16.(in Russian)].
  55. Delorme S., Knopp M.V. Non-invasive vascular imaging: assessing tumour vascularity. Eur. Radiol. 1998; 8(4): 517–27. https://dx.doi.org/0.1007/s003300050428.
  56. Claudon M., Cosgrove D., Albrecht T., Bolondi L., Bosio M., Calliada F. et al. Guidelines and good clinical practice recommendations for contrast enhanced ultrasound (CEUS) – update 2008. Ultraschall Med. 2008; 29(1): 28–44. https://dx.doi.org/10.1055/s-2007-963785.
  57. Irvine T., Wanitkun S., Powers J., Shiota T., Kenny A., Sahn D.J. Acoustically stimulated transient power scattering explains enhanced detection of the very low velocities in myocardial capillaries by power Doppler imaging: an in vitro study. J. Am. Soc. Echocardiogr. 1999; 12(8): 643–9. https://dx.doi.org/10.1053/je.1999.v12.a99067.
  58. Урманчеева А.Ф., Мешкова И.Е. Вопросы эпидемиологии и диагностики рака яичников. Практическая онкология. 2000; 1(4): 7–13. [Urmancheeva A.F., Meshkova I.E. Voprosy epidemiologii i diagnostiki raka yaichnikov. Prakticheskaya onkologiya. 2000; 1(4): 7–13. (in Russian)].
  59. Liu Z., Yang F., Zhang Y., Yu H., Zhu H., Yang R., Fan L. Conventional, Doppler and Contrast–Enhanced Ultrasonography in Differential Diagnosis of Ovarian Masses. Cell. Physiol. Biochem. 2016; 39(6): 2398–408. https://dx.doi.org/10.1159/000452508.
  60. Любченко Л.Н., Батенева Е.И. Медико-генетическое консультирование и ДНК-диагностика при наследственной предрасположенности к раку молочной железы и раку яичников. М.: ИГ РОНЦ; 2014. 75 с. [Lyubchenko L.N., Bateneva E.I. Mediko-geneticheskoe konsul’tirovanie i DNK-diagnostika pri nasledstvennoi predraspolozhennosti k raku molochnoi zhelezy i raku yaichnikov. Moscow: IG RONTs; 2014. 75 p. (in Russian)].
  61. Лаптиев С.А., Корженевская М.А., Соколенко А.П., Иевлева А.Г., Имянитов Е.Н. Медико-генетическое консультирование при наследственных формах рака молочной железы и рака яичников. Ученые записки СПбГМУ им. акад. И.П. Павлова. 2018; 25(2): 7–18. [Laptiev S.A, Korzhenevskaia M.A., Sokolenko A.P, Iyevleva A.G., Imyanitov E.N. Medical and genetic counseling of hereditary breast and ovarian cancer. The Scientific Notes of the I.P. Pavlov St. Petersburg State Medical University/ Uchenye zapiski SPbGMU im. akad. I.P. Pavlova. 2018; 25(2): 7–18.(in Russian)].

Received 13.01.2020

Accepted 15.01.2020

About the Authors

Olga E. Lavrinovich, PhD, researcher at the Department of Oncogynecology, head of the department of minor surgery of the National Medical Research Center of Oncology named after N.N. Petrov of the Ministry of Health of the Russian Federation. E-mail: olgalav1973@mail.ru
Address: 197758 Russia, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
Olga A. Smirnova, MD, PhD, Oncologist at the Surgical Oncogynecology Department of the Federal State Budgetary Institution of Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.:+7(921)421-13-59; Email: ssmirnova.oa@gmail.com
Address: 197758, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68.
Irina E. Meshkova, PhD, oncologist of the surgical oncogynecological department of the Federal State Budgetary Institution of Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. E-mail: meshkova.62@bk.ru
Address: 197758 St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68.
Elena A. Ulrich, MD, professor, oncologist of the surgical oncogynecological department of the Federal State Budgetary Institution of Oncology named after N.N. Petrova , Ministry of Health of Russia, Professor, Department of Oncology, Federal State Budgetary Educational Establishment of Higher Education Northwest State Medical University named after I.I. Mechnikov Ministry of Health of Russia. E-mail: elenaulrikh@yandex.ru
Address: 197758 Russia, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
191015 Russia, St. Petersburg, ul. Kirochnaya, 41.
Nikolay A. Mikaya, MD, Head of the Department of Oncogynecology, Oncologist, Surgical Oncogynecology Department of the Federal State Budgetary Institution of Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. E-mail: nmikaya@mail.ru; ORCID: 0000-0002-5401-899X
Address: 197758 St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
Maria G. Yakovleva, graduate student of the Scientific Department of Oncogynecology, Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.: + 7(911)813-95-44. E-mail: mersend@mail.ru; ORCID: 0000-0002-1593-6771
Address: 197758 Russia, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68
Nikolay E. Bondarev, PhD, senior researcher of the Department of Oncogynecology, Federal State Budgetary Institution Oncology Research Center named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (812)439-9555. Fax: +7 (812)596-8947. E-mail: oncl@rion.spb.ru
197758, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
Alina V. Abramova, Oncologist, Clinical and Diagnostic Department, Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (812)439-9555. Fax:+7 (812)596-8947. E-mail: oncl@rion.spb.ru
Address: 197758, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68.
Zaur N. Ibragimov, Candidate of Medical Sciences, Researcher, Department of Oncogynecology, Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.: +7(812)439-9555. E-mail: oncl@rion.spb.ru
Address: 197758 Russia, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68
Rita M. Beibulatova, clinical intern Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of the Russian Federation. Tel.:+7(812)439-9555. Fax: +7(812)596-8947. E-mail: rita.beibulatova@mail.ru
Address: 197758 St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68.
Ekaterina A. Nekrasova, Candidate of Medical Sciences, Researcher at the Department of Oncogynecology, Federal State Budgetary Institution National Medical Research Center for Oncology named after N.N. Petrova »Ministry of Health of Russia. Tel .: +7(812)439-9555. Fax: +7 (812) 596-8947. E-mail: ekaterina_neks@mail.ru
Tatyana V. Gorodnova, candidate of medical sciences, researcher at the Department of Oncogynecology of the Federal State Budget Scientific Institution N.M. Petrov Research Center for Oncology of the Ministry of Health of the Russian Federation. Tel.: +7 (921)305-82-18. E-mail: t.gorodnova@mail.ru; SPIN-code of the author in the RSCI: 2661-9106; ORCID: 0000-0003-1719-7498
Address: 197758 St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68.
Andrei A. Mikhetko, candidate of medical sciences, head of the cytology laboratory of the Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova. E-mail: amikhetko@mail.ru;
SPIN code: 3988-1947. Author ID: 932425.
Address: 197758 St. Petersburg, p. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
Adel F. Urmancheeva, MD, professor, leading researcher at the Department of Oncogynecology, Federal State Budgetary Institution Oncology named after N.N. Petrova, Ministry of Health of Russia, Professor, Department of Oncology, Federal State Budgetary Educational Establishment of Higher Education Northwest State Medical University named after I.I. Mechnikov Ministry of Health of Russia. E-mail: adaurm@mail.ru; SPIN of the author in the RSCI: 4169-6011
Address: 197758 Russia, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68.
191015 Russia, St. Petersburg, ul. Kirochnaya, d. 41.
Igor V. Berlev, MD, professor, head of the scientific department of oncogynecology, Federal State Budgetary Institution Scientific Research Center for Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia, Head of the Department of Obstetrics and Gynecology FSBEI HE North-West State Medical University named after I.I. Mechnikov Ministry of Health of Russia. Email: iberlev@gmail.com; ORCID: 0000-0001-6937-2740
Address: 197758 St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya 68
191015 St. Petersburg, ul. Kirochnaya, 41
Alexey M. Belyaev, MD, professor, director of the Federal State Budgetary Institution Oncology Research Center of Oncology named after N.N. Petrova Ministry of Health of Russia. Tel.: +7(812)439-9555. E-mail: oncl@rion.spb.ru
197758, St. Petersburg, pos. Pesochny, st. Leningradskaya, 68

For citation: Lavrinovich O.E., Smirnova O.A., Meshkova I.E., Ul’rikh E.A., Mikaya N.A., Yakovleva M.G., Bondarev N.E., Abramova A.V., Ibragimov Z.N., Beibulatova R.M., Nekrasova E.A., Gorodnova T.V., Mikhet’ko A.A., Urmancheeva A.F., Berlev I.V., Belyaev A.M. Main oncological aspects of the diagnosis of precancerous diseases and early stages of endometrial, cervical and ovarian malignancies.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2020; 1(Suppl): 5-17 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.1suppl.5-17

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.