ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Monozygotic twins discordant for multiple congenital anomalies

Bolshakova A.S., Yarygina T.A., Sakalo V.A., Gladkova K.A., Barkov I.Yu., Sadelov I.O., Khodzhaeva Z.S.

1) Academician V.I. Kulakov National Medical Research Centre for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) A.N. Bakulev National Medical Research Center for Cardiovascular Surgery, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 3) Peoples’ Friendship University of Russia, Moscow, Russia

Relevance: The management of a monochorionic multiple pregnancy with abnormal development of one of the fetuses is a clinical and ethical dilemma, since, there is a risk of preterm birth and perinatal death of the second twin regardless of the chosen tactics. Modern molecular genetic methods assist in optimizing the management of pregnant women and newborns in such cases.
We present a case report on the management of multiple pregnancy: discordant monozygotic twins with multiple developmental anomalies.
Case report: A 40-year-old multigravida presented at 17 weeks gestation to the National Medical Research Centre for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Moscow, to determine the tactics of managing monochorionic twins with large omphalocele and spinal deformity in one of the fetuses.
At the first stage of the examination, the patient underwent a separate amniocentesis; normal female molecular karyotype arr(1-22,X)x2 was detected in both fetuses. Impairments in methylation of IC1 (H19) and IC2 (KCNQ1OT1) sites of the critical region of chromosome 11 associated with Beckwith–Wiedemann syndrome were excluded on the basis of DNA of the amniotic fluid in both fetuses. Monozygosity was confirmed by matching samples of the first and second fetuses for five SNP markers on each of 22 pairs of autosomes. Given the normal result of the genetic examination of both fetuses and the potential risks of perinatal complications during intrauterine intervention, the patient refused selective fetocide.
An operative delivery was performed at 33 weeks and 5 days due to the repeated increase in polyhydramnios and zero diastolic blood flow in the umbilical cord arteries, according to the ultrasound Doppler assessment. The first healthy girl was born with a body weight of 2140 g, an Apgar score of 7-8 points, and was discharged home in satisfactory condition at the age of 12 days of life. The second girl with multiple developmental anomalies was born with a body weight of 1760 g, an Apgar score of 5-6 points, and died at the age of 2 days 2 hours due to multiple organ failure.
Both children had a normal female karyotype (46,XX) which was revealed postnatally, and a whole-exome sequencing of pathogenic and likely pathogenic variants associated with the phenotype was performed. Monozygosity of the twins was confirmed, no accidental findings were detected.
Conclusion: The above case demonstrates the principles of modern ante- and perinatal multidisciplinary tactics for multiple pregnancies discordant for structural fetal malformations.

Authors’ contributions: Khodzhaeva Z.S., Sakalo V.A., Bolshakova A.S., Yarygina T.A. – developing the concept of the study; Sakalo V.A., Gladkova K.A., Bolshakova A.S., Barkov I.Yu. – collecting and processing the material; Bolshakova A.S., Yarygina T.A., Sakalo V.A. – writing the text; Khodzhaeva Z.S., Sadelov I.A. – editing the text.
Conflicts of interest: Authors declare lack of the possible conflicts of interests.
Funding: The investigation has been supported by the Russian Foundation for Basic Research within the framework of Research Project № 121040600434-3.
Ethical Approval: The study was approved by the Ethical Review Board of the Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia.
Patient Consent for Publication: The patient signed an informed consent to have genetic studies during pregnancy, consent to the examination of children and the publication of this clinical observation.
For citation: Bolshakova A.S., Yarygina T.A., Sakalo V.A., Gladkova K.A., Barkov I.Yu., Sadelov I.O., Khodzhaeva Z.S. Monozygotic twins discordant for multiple congenital anomalies.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2023; (12): 205-212 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.286

Keywords

monochorionic pregnancy
monozygotic twins
discordance
malformations
omphalocele
zygosity
selective fetocide
chromosomal microarray analysis (CMA)
whole-exome sequencing

Поиск путей совершенствования качества медицинской помощи пациенткам с многоплодием не теряет своей актуальности в связи с быстрым ростом числа подобных беременностей, достигшего в мире за последние десятилетия беспрецедентного уровня [1]. Беременность двойней составляет более 97% всех случаев многоплодия и представлена дизиготными (разнояйцевыми) близнецами в 60–70% либо монозиготными (однояйцевыми) близнецами в 20–30% случаев [2]. С 1980-х гг. глобальный показатель родов двойней увеличился на треть: с 9,1 до 12,0 случая на 1000 родов, что составляет около 1,6 млн пар близнецов каждый год [1, 3]. В основном столь быстрый рост обусловлен увеличением числа рождений дизиготных двоен в результате применения вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) на фоне возрастания среднего возраста беременных до 30–39 лет [1, 3].

Несмотря на достижения перинатальной медицины последних лет, показатели недоношенности и неонатальной смертности при многоплодии многократно превышают таковые при беременности одним плодом [4], и многоплодие относится к факторам высокого риска мертворождения [5].

Считалось, что уровень рождаемости монозиготных близнецов относительно постоянен [6] и составляет 3,5–4 на 1000 беременностей [7, 8]; однако исследования последних лет продемонстрировали значимое увеличение случаев подобного типа многоплодия – до 16–17 случаев на 1000 беременностей, наступивших в результате экстракорпорального оплодотворения [9].

Хориальность является важнейшим фактором для стратификации риска неблагоприятного исхода при беременности двойней: перинатальная заболеваемость и смертность многократно выше при монохориальном в сравнении с дихориальным типом плацентации [10].

За исключением крайне редких случаев дизиготных монохориальных двоен, зачастую также ассоциированных с ВРТ, дихориальность облигатна для дизиготных двоен; однако нельзя забывать, что до 25% монозиготных двоен также будут иметь две отдельные плаценты, а 75% – одну общую [11–13].

В рутинной клинической практике основным методом определения типа хориальности (но не зиготности) является ультразвуковая диагностика [14].

Однако необходимо помнить, что ошибки в ультразвуковой диагностике монохориальной беременности, обусловленные как недостаточным опытом специалиста, так и объективными затруднениями визуализации, особенностями расположения плаценты и межплодных амниотических мембран, могут достигать 19%, в особенности если исследование проводится в сроках более 14 недель гестации [15, 16].

Ошибочное отнесение монохориальной двойни к дихориальному типу может привести к запоздалой диагностике и, соответственно, лечению осложнений, ассоциированных с монохориальностью. И напротив, диагностика монохориального типа плацентации в случаях наличия двух плацент приводит к необоснованному, как минимум двукратному, увеличению числа проводимых исследований, повышению уровня стресса родителей, увеличению затрат здравоохранения, потенциальной ошибочной диагностике осложнений и риску ятрогенных вмешательств [14, 17].

Для максимально точного установления зиготности близнецов в последние годы активно изучаются неинвазивные генетические методы, имеющие высокую чувствительность и специфичность [16–19]. В нашем клиническом наблюдении на пренатальном этапе использовалось сравнение данных хромосомного микроматричного анализа (ХМА) по амниотической жидкости обоих плодов, а постнатально проводилось сравнение данных полноэкзомного секвенирования по крови новорожденных, что позволило с абсолютной точностью установить факт монозиготности.

Особенный интерес в точном установлении хориальности и зиготности возникает в случаях дискордантных структурных аномалий, частота которых достигает 6–8% при монохориальном и 1–2% при дихориальном типе плацентации [4].

Ведение многоплодной монохориальной беременности с аномалиями развития у одного из плодов представляет собой клиническую и этическую дилемму [20], поскольку как при выжидательной тактике, так и при проведении селективного фетоцида существует риск преждевременного рождения и перинатальной гибели второго близнеца [4, 21, 22].

Более того, необходимо помнить о важности генетического обследования каждого из плодов даже при установлении монозиготности двойни. Ранее считалось, что монозиготные близнецы фенотипически и генетически идентичны, однако опубликовано немало случаев дискордантности [4, 21–24], для объяснения которой существуют несколько теорий: хромосомный мозаицизм, постзиготические мутации, неравновесная инактивация хромосомы Х, другие эпигенетические механизмы, а также внешние факторы [25, 26].

Современные молекулярно-генетические методы: ХМА, полноэкзомное секвенирование, анализ метилирования и другие, внедренные в клиническую практику ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России (далее – Центр), позволяют провести полноценный диагностической поиск для большинства случаев врожденных аномалий при одноплодной и многоплодной беременности, установить генетическую причину дискордантности при ее наличии, оптимизировать тактику ведения беременной и новорожденных [27–36].

Мы представляем наблюдение ведения многоплодной беременности: монозиготой двойни, дискордантной по множественным аномалиям развития.

Клиническое наблюдение

Пациентка 40 лет обратилась на перинатальный консилиум Центра для определения тактики ведения многоплодной беременности с дискордантностью по структурным мальформациям плодов.

Семейный и соматический анамнез пациентки были не отягощены; акушерско-гинекологический анамнез отягощен двумя медицинскими абортами в I триместре беременности, проведенными по желанию пациентки. Две желанные беременности завершились физиологическим рождением здоровых детей мужского и женского пола. Данная беременность пятая, наступила в результате естественного зачатия. При проведении ультразвукового исследования в рамках раннего пренатального скрининга по месту амбулаторного наблюдения пациентки выявлен врожденный порок развития передней брюшной стенки у одного из плодов монохориальной диамниотической двойни.

При исследовании в сроке 16 недель 6 дней в Центре подтвержден предполагаемый тип многоплодия: монохориальная диамниотическая двойня и отсутствие ультразвуковых признаков патологии у первого плода; у второго плода диагностированы омфалоцеле больших размеров, содержащее петли кишечника и печень, деформация позвоночника (рис. 1, 2).

208-1.jpg (81 KB)

С учетом частоты ассоциации данного типа мальформации с генетической патологией на первом этапе обследования пациентке было предложено проведение инвазивной диагностики и получено ее согласие [37].

В сроке 17 недель 4 дня проведен раздельный амниоцентез и проведено молекулярное кариотипирование (ХМА). ДНК плодов была получена из 35 мл амниотической жидкости с помощью набора IGENatal kit. Исследование выполняли с использованием системы GenoScan 3000 на SNP (Single Nucleotide Polymorphism) микроматрицах CytoScan Optima (Thermo Fisher Scientific, США) согласно протоколу производителя. Анализ полученных данных производился с помощью программного обеспечения ChАS (Сhromosome Аnalysis Suite), опираясь на критерии Американского колледжа медицинских генетиков (American College of Medical Genetics) [33]. У плодов выявлен нормальный женский молекулярный кариотип arr(1-22,X)х2.

С целью уточнения зиготности проведено сопоставление образцов первого и второго плода по пяти SNP-маркерам на каждой из 22 пар аутосом; обнаружено совпадение маркеров, что позволило сделать вывод о монозиготности близнецов. Дополнительно по ДНК амниотической жидкости обоих плодов проведен анализ нарушений метилирования участков IC1 (H19) и IC2 (KCNQ1OT1) критического региона хромосомы 11, ассоциированных с синдромом Беквита–Видемана, так как к характерным признакам данного синдрома относится омфалоцеле [37]. Нарушения метилирования обнаружены не были.

На повторном перинатальном консилиуме диагностировано омфалоцеле второго плода в сочетании с деформацией позвоночника (рис. 2). Специалистами медицины плода, акушерами-гинекологами и неонатальными хирургами пациентка была предупреждена о неблагоприятном прогнозе для жизни у второго плода в связи с наличием омфалоцеле больших размеров [37], проинформирована о возможности проведения селективного фетоцида [4, 21], а также риске прерывания беременности, преждевременных родов, низкой массы тела анатомически нормального близнеца при рождении и его перинатальной смертности как при выжидательной тактике [22], так и при внутриутробном вмешательстве [4, 21].

Учитывая нормальный результат генетического обследования обоих плодов и потенциальные риски перинатальных осложнений при проведении внутриутробного вмешательства, от селективного фетоцида пациентка отказалась, продолжив динамическое наблюдение за развитием близнецов согласно протоколу клинической рекомендации «Многоплодная беременность» (2021) [38].

За время антенатального мониторинга ультразвуковых признаков осложнений, ассоциированных с монохориальностью [39], выявлено не было.

Однако после 28 недель развилась гипоплазия дуги и перешейка аорты у второго плода, а также произошло нарастание многоводия в данной амниотической полости, в связи с чем в сроке 30 недель 4 дня в стационарных условиях проведен амниоцентез с амниоредукцией – удалено 3000 мл амниотической жидкости, что позволило пролонгировать беременность. В связи с повторным нарастанием многоводия второго плода с омфалоцеле больших размеров в 33 недели 5 дней проведено оперативное родоразрешение. Первая здоровая девочка массой тела 2140 г и длиной тела 43 см родилась в удовлетворительном состоянии, с оценкой по шкале Апгар 7–8 баллов. Вторая девочка с множественными аномалиями развития массой тела 1760 г и длиной тела 41 см родилась в состоянии средней степени тяжести, с оценкой по шкале Апгар 5–6 баллов.

По клеткам периферической крови новорожденных проведен цитогенетический анализ на препаратах метафазных хромосом при использовании дифференциального окрашивания хромосом по длине (GTG), полученных путем культивирования in vitro лимфоцитов в соответствии со стандартной методикой. У обеих девочек выявлен нормальный женский кариотип (46, ХХ).

По ДНК крови обеих новорожденных проведено полноэкзомное секвенирование с целью поиска возможных моногенных причин множественных аномалий развития. ДНК из крови получена с помощью набора PREP-MB MAX DNA Extraction Kit. Секвенирование проводилось на платформе Illumina NovaSeq 6000 согласно протоколу производителя. Биоинформатический анализ проводился с использованием баз данных OMIM, ClinVar, LOVD, Genome Aggregation Database (gnomAD), собственной внутренней базы данных и других литературных источников, опираясь на рекомендации, разработанные ACMG, и российское руководство по интерпретации данных, полученных методом NGS [31, 32].

Патогенных и вероятно патогенных вариантов, ассоциированных с фенотипом, а также случайных находок (согласно списку генов ACMG) не обнаружено.

Для постнатального подтверждения монозиготности по данным высокопроизводительного секвенирования проведен анализ крайне редких полиморфизмов (частота во внутренней базе Центра и в общепопуляционной базе данных gnomAD менее 0,1%). Оценивался как минимум один полиморфизм на каждой из 22 пар аутосом. У близнецов получено совпадение по всем таким вариантам.

Первая здоровая девочка была выписана домой в удовлетворительном состоянии в возрасте 12 суток жизни; на момент публикации ее психомоторное развитие соответствует постконцептуальному возрасту.

У второго ребенка в связи с отсутствием самостоятельного дыхания и брадикардией в родильном зале проводилась искусственная вентиляция легких, при поступлении в отделение реанимации и интенсивной терапии новорожденных введен сурфактант, подключена инсуффляция оксида азота, ужесточены параметры вентиляции; но, несмотря на проводимую терапию, в возрасте 2 суток 2 ч произошла гибель новорожденной вследствие полиорганной недостаточности.

При патологоанатомическом исследовании было подтверждено наличие основного заболевания – омфалоцеле с эвентрацией печени, селезенки, желудка, поджелудочной железы, петель тонкой и толстой кишки с червеобразным отростком, восходящей части поперечно-ободочной кишки; также обнаружена истинная левосторонняя диафрагмальная грыжа с эвентрацией верхнего полюса левого надпочечника в левую плевральную полость и правосторонний сколиоз позвоночника. Патологоанатомическое исследование плаценты и пуповины, со своей стороны, также подтвердило монохориальную диамниотическую плаценту, выявив в ее структуре замедленное созревание и множественные инфаркты ворсинчатого дерева, гиперизвитость обеих пуповин с краевым прикреплением второй пуповины.

Обсуждение

Беременность монохориальной двойней относится к группе высокого риска широчайшего спектра перинатальных осложнений, в том числе наличия структурных аномалий у обоих либо одного из близнецов [2, 4, 5, 9, 10, 21, 22]; в связи с чем является крайне важным прицельный поиск ранних признаков специфических осложнений монохориального многоплодия, маркеров синдромальной патологии и врожденных пороков развития при проведении ультразвукового исследования в рамках пренатального скрининга I триместра [38, 40].

Предполагается, что совершенствование методики антенатального исследования анатомии плода с применением режимов трехмерной реконструкции позволит увеличить детализацию изображений и, соответственно, точность диагностики, столь важной для формирования прогноза о возможности хирургической коррекции мальформаций [41, 42].

В представленном нами случае именно свое­временная диагностика омфалоцеле предоставила время для проведения консультаций профильных специалистов, полного обследования до достижения сроков жизнеспособности, что позволило пациентке сделать осознанный выбор тактики ведения своей беременности.

При обнаружении во время беременности аномалий развития у одного из плодов при монохориальной двойне крайне важно проведение генетического обследования с целью выбора оптимальной тактики ведения беременности. На первом этапе целесообразно исключение хромосомной патологии, предпочтительнее с применением ХМА, не требующего длительного культивирования амниотической жидкости. ХМА разработан с целью обнаружения микроскопических и субмикроскопических вариаций числа копий в геноме [28, 43]. В методических рекомендациях и публикациях ХMA рекомендуется к проведению у пациентов с врожденными аномалиями развития, в том числе в пренатальной диагностике [29, 30, 33]. Выявление же моногенной патологии у плодов и новорожденных вошло в широкую клиническую практику с появлением технологии высокопроизводительного секвенирования [34]. Диагностическая ценность полно­экзомного секвенирования (т.е. анализа вариантов нуклеотидной последовательности белок-кодирующих участков генома) при аномалиях развития продемонстрирована многочисленными исследованиями [35, 36].

В нашем клиническом наблюдении у монозиготных дискордантных по структурным порокам близнецов исключена хромосомная патология, что дало возможность пролонгировать беременность в интересах анатомически здорового ребенка.

Омфалоцеле – врожденный порок развития, возникающий в результате дефекта закрытия вентральной стенки тела, частота которого в течение последних 40 лет наблюдений имеет тенденцию к значительному росту [44].

Точная этиология порока до конца не выяснена; помимо широкого спектра генетических аномалий [37], которые в представленном клиническом случае были исключены, омфалоцеле чаще встречается у молодых матерей либо беременных старшего репродуктивного возраста, к которому относилась наша пациентка. Кроме того, описана связь омфалоцеле с многоплодием, мальформациями прочих органов и систем плода, преждевременными родами [45, 46], что также соотносится с нашими данными.

Cao A., Monni G. [23] предполагают, что причиной некоторых аномалий, в том числе дефектов передней брюшной стенки, может служить неравномерное распределение бластомеров в момент разделения на два эмбриона и/или различное их прикрепление к плаценте.

В представленном случае неблагоприятный прогноз для жизни больного ребенка был обусловлен значительными размерами дефекта, вызвавшего эвентрацию большинства органов брюшной полости, в сочетании с аномалиями скелета и диафрагмальной грыжей, не диагностированной на антенатальном этапе за счет выраженного изменения топографии органов, и, напротив, минимальным смещением надпочечника в грудную полость. При этом риски проведения селективного фетоцида и пролонгирования беременности оценивались приблизительно как равные, с учетом монохориального типа плацентации у монозиготной двойни. Важным представляется подчеркнуть точность ультразвуковой диагностики хориальности, которая была подтверждена генетическими и патологоанатомическими исследованиями.

Заключение

Анализ клинического наблюдения показал, что возможности медицинской помощи, в том числе хирургии и реанимации новорожденных, по объективным причинам ограничены в клинических ситуациях со сложными анатомическими особенностями второго плода из двойни. Однако последовательность и полноценность мультидисциплинарной анте- и перинатальной помощи, включающей весь необходимый на современном уровне объем генетических исследований, помогли семейной паре получить всеобъемлющую информацию о прогнозе для каждого из детей, вариантах ведения беременности, существующих рисках, сделать осознанный выбор в пользу пролонгирования беременности, что сохранило жизнь и здоровье первой девочке-близнецу.

References

  1. Monden C., Pison G., Smits J. Twin Peaks: more twinning in humans than ever before. Hum Reprod. 2021 May 17;36(6):1666-1673.https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deab029.
  2. Benn P., Rebarber A. Non-invasive prenatal testing in the management of twin pregnancies. Prenat. Diagn. 2021; 41(10): 1233-40. https://dx.doi.org/10.1002/pd.5989.
  3. Hur Y.M. Changes in multiple birth rates and parental demographic factors in South Korea during the last four decades: 1981-2019. Twin Res. Hum. Genet. 2021; 24(3): 163-7. https://dx.doi.org/10.1017/thg.2021.23.
  4. Li N., Sun J., Wang J., Jian W., Lu J., Miao Y. et al. Selective termination of the fetus in multiple pregnancies using ultrasound-guided radiofrequency ablation. BMC Pregnancy Childbirth. 2021; 21(1): 821. https://dx.doi.org/10.1186/s12884-021-04285-4.
  5. Flenady V., Wojcieszek A.M., Middleton P., Ellwood D., Erwich J.J., Coory M. el al.; Lancet Ending Preventable Stillbirths study group; Lancet Stillbirths In High-Income Countries Investigator Group. Stillbirths: recall to action in high-income countries. Lancet. 2016; 387(10019): 691-702.https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(15)01020-X.
  6. Bulmer M.G. Embryology, Human. Clarendon; 1970. 205 p.
  7. Hall J.G. Twinning. Lancet. 2003; 362(9385): 735-43.https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(03)14237-7.
  8. Smits J., Monden C. Twinning across the developing world. PLoS One. 2011; 6(9): e25239. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0025239.
  9. Chen N., Li J., Li Y., Zhang Y., Li J., Gao J. et al. Risk factors associated with monozygotic twinning in offspring conceived by assisted reproductive technology. Hum. Reprod. Open. 2023; 2023(4): hoad035.https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoad035.
  10. Cheong-See F., Schuit E., Arroyo-Manzano D., Khalil A., Barrett J., Joseph K.S. et al.; Global Obstetrics Network (GONet) Collaboration. Prospective risk of stillbirth and neonatal complications in twin pregnancies: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2016; 354: i4353. https://dx.doi.org/10.1136/bmj.i4353.
  11. Peters H.E., König T.E., Verhoeven M.O., Schats R., Mijatovic V., Ket J.C., Lambalk C.B. Unusual twinning resulting in chimerism: a systematic review on monochorionic dizygotic twins. Twin Res. Hum. Genet. 2017; 20(2): 161-8. https://dx.doi.org/10.1017/thg.2017.4.
  12. Trombetta G., Fabbro D., Demori E., Driul L., Damante G., Xodo S. Rare spontaneous monochorionic dizygotic twins: a case report and a systematic review. BMC Pregnancy Childbirth. 2022; 22(1): 564.https://dx.doi.org/10.1186/s12884-022-04866-x.
  13. Semrl N., Barth M., Feigl S., Hochstätter R., Oreskovic I., Fluhr H. et al. Birth of monozygotic dichorionic twins after a single blastocyst embryo transfer: a case report of genetic determination of zygosity. F S Rep. 2023; 4(2): 231-4.https://dx.doi.org/10.1016/j.xfre.2023.03.002.
  14. Khalil A., Rodgers M., Baschat A., Bhide A., Gratacos E., Hecher K. et al. ISUOG Practice Guidelines: role of ultrasound in twin pregnancy. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2016; 47(2): 247-63. https://dx.doi.org/10.1002/uog.15821.
  15. Blumenfeld Y.J., Momirova V., Rouse D.J., Caritis S.N., Sciscione A., Peaceman A.M. et al.; Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development Maternal-Fetal Medicine Units Network. Accuracy of sonographic chorionicity classification in twin gestations. J. Ultrasound. Med. 2014; 33(12): 2187-92. https://dx.doi.org/10.7863/ultra.33.12.2187.
  16. Wojas A., Martin K.A., Koyen Malashevich A., Hashimoto K., Parmar S., White R. et al. Clinician-reported chorionicity and zygosity assignment using single-nucleotide polymorphism-based cell-free DNA: Lessons learned from 55,344 twin pregnancies. Prenat. Diagn. 2022; 42(10): 1235-41.https://dx.doi.org/10.1002/pd.6218.
  17. Baud D., Windrim R., Van Mieghem T., Keunen J., Seaward G., Ryan G. Twin-twin transfusion syndrome: a frequently missed diagnosis with important consequences. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2014; 44(2): 205-9.https://dx.doi.org/10.1002/uog.13328.
  18. Wang Y., Qiu X., Chen S., Pan D., Hua R., Li S. et al. Noninvasive evaluation of fetal zygosity in twin pregnancies involving a binary analysis of single-nucleotide polymorphisms. J. Mol. Diagn. 2023; 25(9): 682-91.https://dx.doi.org/10.1016/j.jmoldx.2023.06.003.
  19. American College of Obstetricians and Gynecologists’ Committee on Practice Bulletins—Obstetrics; Committee on Genetics; Society for Maternal-Fetal Medicine. Screening for Fetal Chromosomal Abnormalities: ACOG Practice Bulletin, Number 226. Obstet. Gynecol. 2020; 136(4): e48-e69.https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000004084.
  20. Sebghati M., Khalil A. Reduction of multiple pregnancy: Counselling and techniques. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2021; 70: 112-22.doi: 10.1016/j.bpobgyn.2020.06.013.
  21. Weber E.C., Strizek B., Recker F., Geipel A., Gembruch U., Berg C., Gottschalk I. Outcome of monochorionic pregnancies after selective feticide with bipolar cord coagulation: a German single center experience. J. Clin. Med. 2022; 11(6): 1516. doi: 10.3390/jcm11061516.
  22. Gul A., Cebeci A., Aslan H., Polat I., Sozen I., Ceylan Y. Perinatal outcomes of twin pregnancies discordant for major fetal anomalies. Fetal Diagn. Ther. 2005; 20(4): 244-8. https://dx.doi.org/10.1159/000085078.
  23. Cao A., Monni G. Phenotypic and genotypic discordance in monozygotic twins. In: Blickstein I., Keith L.G., eds. Multiple pregnancy: epidemiology, gestation and perinatal outcome: Taylor & Francis; 2005: 226-32.
  24. Rydzanicz M., Olszewski P., Kedra D., Davies H., Filipowicz N., Bruhn-Olszewska B. et al. Variable degree of mosaicism for tetrasomy 18p in phenotypically discordant monozygotic twins-diagnostic implications. Mol. Genet. Genomic. Med. 2021; 9(1): e1526. https://dx.doi.org/10.1002/mgg3.1526.
  25. Machin G. Non-identical monozygotic twins, intermediate twin types, zygosity testing, and the non-random nature of monozygotic twinning: a review. Am. J. Med. Genet. C. Semin. Med. Genet. 2009; 151C(2): 110-27.https://dx.doi.org/10.1002/ajmg.c.30212.
  26. Silva S., Martins Y., Matias A., Blickstein I. Why are monozygotic twins different? J. Perinat. Med. 2011; 39(2):195-202. doi: 10.1515/jpm.2010.140.
  27. Riggs E.R., Andersen E.F., Cherry A.M., Kantarci S., Kearney H., Patel A. et al. Technical standards for the interpretation and reporting of constitutional copy-number variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics (ACMG) and the Clinical Genome Resource (ClinGen). Genet. Med. 2020; 22(2): 245-57. https://dx.doi.org/10.1038/s41436-019-0686-8.
  28. Faucett W.A., Savage M. Chromosomal microarray testing. JAAPA. 2012; 25(1): 65-6. https://dx.doi.org/10.1097/01720610-201201000-00016.
  29. Riggs E.R., Wain K.E., Riethmaier D., Smith-Packard B., Faucett W.A., Hoppman N. et al. Chromosomal microarray impacts clinical management. Clin. Genet. 2014; 85(2): 147-53. https://dx.doi.org/10.1111/cge.12107.
  30. Miller D.T., Adam M.P., Aradhya S., Biesecker L.G., Brothman A.R., Carter N.P. et al. Consensus statement: chromosomal microarray is a first-tier clinical diagnostic test for individuals with developmental disabilities or congenital anomalies. Am. J. Hum. Genet. 2010; 86(5): 749-64.https://dx.doi.org/10.1016/j.ajhg.2010.04.006.
  31. Richards S., Aziz N., Bale S., Bick D., Das S., Gastier-Foster J.,Grody W.W. et al.; ACMG Laboratory Quality Assurance Committee. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: A joint consensus recommendation of the American college of medical genetics and genomics and the association for molecular pathology. Genet. Med. 2015; 17(5): 405-24.https://dx.doi.org/10.1038/gim.2015.30
  32. Рыжкова О.П., Кардымон О.Л., Прохорчук Е.Б., Коновалов Ф.А., Масленников А.Б., Степанов В.А., Афанасьев А.А., Заклязьминская Е.В., Ребриков Д.В., Савостьянов К.В., Глотов А.С., Костарева А.А., Павлов А.Е., Голубенко М.В., Поляков А.В., Куцев С.И. Руководство по интерпретации данных последовательности ДНК человека, полученных методами массового параллельного секвенирования (MPS) (редакция 2018, версия 2). Медицинская генетика. 2019; 18(2): 3-23. [Ryzhkova O.P., Kardymon O.L., Prohorchuk E.B., Konovalov F.A., Maslennikov A.B., Stepanov V.A., Afanasyev A.A., Zaklyazminskaya E.V., Rebrikov D.V., Savostianov K.V., Glotov A.S., Kostareva A.A., Pavlov A.E., Golubenko M.V., Polyakov A.V., Kutsev S.I. Guidance on Interpretation of Human DNA Sequence Data Obtained by Mass Parallel Sequencing (MPS) (Revision 2018 Version 2). Medical Genetics. 2019; 18(2): 3-23. (in Russian)].https://dx.doi.org/10.25557/2073-7998.2019.02.3-23.
  33. South S.T., Lee C., Lamb A.N., Higgins A.W., Kearney H.M.; Working Group for the American College of Medical Genetics and Genomics Laboratory Quality Assurance Committee. ACMG Standards and Guidelines for constitutional cytogenomic microarray analysis, including postnatal and prenatal applications: revision 2013. Genet. Med. 2013; 15(11): 901-9. https://dx.doi.org/10.1038/gim.2013.129.
  34. Ребриков Д.В., Коростин Д.О., Шубина Е.С., Ильинский В.В. NGS: высокопроизводительное секвенирование. М.: «Издательство "БИНОМ. Лаборатория знаний"»; 2014. 232 с. [Rebrikov D.V., Korostin D.O.,Shubina E.S., Ilyinsky V.V. NGS: high-throughput sequencing. M.: "Publishing House" BINOM. Knowledge Laboratory"; 2014. 232 p. (in Russian)].
  35. Mone F., Quinlan-Jones E., Ewer A.K., Kilby M.D. Exome sequencing in the assessment of congenital malformations in the fetus and neonate. Arch. Dis. Child Fetal Neonatal. Ed. 2019; 104(4): F452-F456.https://dx.doi.org/10.1136/archdischild-2018-316352.
  36. Lord J., McMullan D.J., Eberhardt R.Y., Rinck G., Hamilton S.J., Quinlan-Jones E. et al Prenatal Assessment of Genomes and Exomes Consortium. Prenatal exome sequencing analysis in fetal structural anomalies detected by ultrasonography (PAGE): a cohort study. Lancet. 2019; 393(10173): 747-57. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(18)31940-8.
  37. Rieder W., Maurer S.V., Giannoni E., Baud D. Fetal omphalocele: review of predictive factors important for antenatal counseling? Obstet. Gynecol. Surv. 2022; 77(11): 683-95. doi: 10.1097/OGX.0000000000001073.
  38. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации «Многоплодная беременность». 2021. [Ministry of Health of the Russian Federation. Clinucal Guidelines “Multiple Pregnancy”. 2021.(in Russian)].
  39. Костюков К.В., Гладкова К.А. Диагностика фето-фетального трансфузионного синдрома, синдрома анемии-полицитемии при монохориальной многоплодной беременности. Акушерство и гинекология. 2016; 1: 10-5. [Kostyukov K.V., Gladkova K.A. Diagnosis of twin-to-twin transfusion syndrome and anemia-polycythemia syndrome in monochorionic multiple pregnancy. Obstetrics and Gynecology. 2016; (1): 10-5. (in Russian)].https://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.1.10-15.
  40. Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации от 20 октября 2020 г. №1130н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи по профилю «акушерство и гинекология». Приложение 9. Зарегистрировано в Минюсте России 12 ноября 2020 г. №60869. [Order of the Ministry of Health of the Russian Federation of October 20, 2020 No. 1130n "On Approval of the Procedure for the Provision of Medical Care in the Profile of Obstetrics and Gynecology." Appendix 9. Registered with the Ministry of Justice of Russia on November 12, 2020 No. 60869. (in Russian)].
  41. Nishie E.N., Osmundo Junior G.S., Mohamed S.H.M., Tannuri A.C.A., Gibelli M.A.B.C., Carvalho W.B. et al. Three-dimensional ultrasound evaluation of lung volume in fetuses with abdominal wall defect. Fetal. Diagn. Ther. 2023; 50(4): 259-68. https://dx.doi.org/10.1159/000531594.
  42. Mu W., He M., Lei T., Zhang L., Du L., Xie H. Measurement of the Cobb angle by 3D ultrasound: a valuable additional method for the prenatal evaluation of congenital scoliosis. Quant. Imaging Med. Surg. 2022; 12(5): 2805-12.https://dx.doi.org/10.21037/qims-21-558.
  43. United Healthcare Medical Policy. Chromosome microarray testing. 10/1/2015. Available at:https://www.unitedhealthcareonline.com/ccmcontent/Providerll/UHC/en-US/ Assets/ProviderStaticFiles/ProviderStaticFilesPdf/Toolsand Resources/PoliciesandProtocols/MedicalPolicies/MedicalPolicies/Chromosome_Microarray_Testing.pdf. Accessed June 26, 2016.
  44. Ng D., Bouhlal Y., Ursell P.C., Shieh J.T. Monoamniotic monochorionic twins discordant for noncompaction cardiomyopathy. Am. J. Med. Genet. A. 2013; 161A(6): 1339-44. https://dx.doi.org/10.1002/ajmg.a.35925.
  45. Ng Z.Y., Sau P.Y., Lim G.J. Discordant type I preaxial polydactyly in monozygotic twins on the same hand: a case report. Ann. Plast Surg. 2015; 75(4): 398-400. https://dx.doi.org/10.1097/SAP.0000000000000336.
  46. Stanek J. Placental fetal vascular malperfusion in congenital diaphragmatic hernia. Virchows Arch. 2023 Jul 13. https://dx.doi.org/10.1007/s00428-023-03600-y.

Received 08.12.2022

Accepted 11.12.2022

About the Authors

Anna S. Bolshakova, geneticist of the Department of Clinical Genetics, Institute of Reproductive Genetics, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(909)982-27-99, a_bolshakova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-7508-0899,
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Tamara A. Yarygina, MD, PhD, specialist of ultrasound diagnostics, researcher, Perinatal Cardiology Center, A.N. Bakulev National Medical Research Center of Cardiovascular Surgery, 121552, Russia, Moscow, Roublyevskoe Shosse, 135, +7(495)414-78-75; Associate Professor of the Department of Ultrasound Diagnostics of the Faculty of Continuing Medical Education of the Medical Institute, Peoples’ Friendship University of Russia named after Patrice Lumumba, 127015, Russia, Moscow, Pistsovaya str., 10, tamarayarygina@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-6140-1930
Viktoriya A. Sakalo, MD, PhD, junior researcher of the Department of Pregnancy Pathology, Institute of Obstetrics, doctor of the 1st Obstetric Department of Pregnancy Pathology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(929)588-72-08,
v_sakalo@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0002-5870-4655, 117997, Russia, Moscow, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Kristina A. Gladkova, MD, PhD, senior researcher of the Fetal Medicine Unit, Institute of Obstetrics, Head of the 1st Obstetric Department of Pregnancy Pathology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(916)321-10-07,
k_gladkova@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-8131-4682, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Ilya Yu. Barkov, MD, PhD, Head of the Laboratory of Prenatal DNA Screening, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(495)438-24-10, i_barkov@oparina4.ru, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Igor O. Sadelov, MD, geneticist, Laboratory of Genomic Data Analysis, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(495)438-24-10, a_sadelov@oparina4.ru, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Zulfiya S. Khodzhaeva, Dr. Med. Sci., Professor, Deputy Director of Obstetrics Institute, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, +7(495)438-07-88, z_khodzhaeva@oparina4.ru, https://orcid.org/0000-0001-8159-3714,
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Corresponding author: Anna S. Bolshakova, a_bolshakova@oparina4.ru

Similar Articles