Clinical value of the ovarian reserve in reproductive function

Gasparov A.S., Dubinskaya E.D., Titov D.S., Lapteva N.V.

Department of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Medicine, Faculty for Advanced Training of Medical Workers, Peoples’ Friendship University of Russia, Moscow; United Hospital and Polyclinic, Department for Presidential Affairs of the Russian Federation, Moscow
The paper outlines present-day views on the ovarian reserve. It considers different exogenous and endogenous factors giving rise to premature ovarian reserve exhaustion. The role of surgical interventions into reproductive organs is covered in the light of further reproductive function. An understanding of the pathological mechanisms that act on ovarian tissue will be able to improve diagnostic methods and to predict fertility techniques.

Keywords

ovarian reserve
fertility
ovarian reserve markers

Определение овариального резерва

Понятия «овариальный резерв» и «бедный овариальный ответ», несмотря на широкое употребление в различных источниках литературы, сформулированы недостаточно четко и ясно [1, 2]. В июле 2011 г. рабочей группой ESHRE введено понятие «плохой ответ яичников на стимуляцию яичников», одним из критериев, которого является сниженный овариальный резерв [3]. Под овариальным резервом понимают функциональный резерв яичника, который определяет способность последнего к развитию здорового фолликула с полноценной яйцеклеткой. Этот показатель отражает величину фолликулярного пула яичников и качество содержащихся в них ооцитов, снижающийся с возрастом и определяющий состояние репродуктивной функции женщины [4].

Ряд авторов определяет овариальный резерв как способность яичников адекватно отвечать на овариальную стимуляцию ростом полноценных фолликулов, содержащих здоровые яйцеклетки [3–5]. Овариальный резерв отражает количество находящихся в яичниках фолликулов (примордиальный пул и растущие фолликулы) и зависит от физиологических и патофизиологических факторов [6].

Следовательно, овариальный резерв является важной составляющей частью репродуктивного потенциала женщины.

Работы последних лет значительно расширили представления о репродуктивной функции женщины и позволили сформировать представления об индивидуальном биологическом возрасте яичников – овариальном резерве [7]. Согласно современным представлениям, выделяют тотальный овариальный резерв, который объединяет в себе фолликулярный запас (количество ооцитов в яичнике) и фолликулогенез (формирование и функционирование доминантного фолликула и желтого тела) [7].

Факторы, влияющие на овариальный резерв

Физиологические причины

Интерес исследователей к проблеме фолликулогенеза и расходования фолликулярного запаса в течении репродуктивной жизни женщины обострился при широком использовании вспомогательных репродуктивных технологий. В настоящее время эмбриологи большое значение придают как процессу элиминации фолликулов при физиологическом старении [8], так и гаметопатиям при различных патологических состояниях [9].

К физиологическим факторам, определяющим овариальный резерв, относится в первую очередь количество примордиальных фолликулов (примордиальный пул), находящихся в яичниках девочки к моменту становления менструальной функции. В норме оно составляет 270 000–470 000 фолликулов [10]. Неизвестно, может ли изначально уменьшенное количество примордиальных фолликулов определять овариальный резерв женщины, однако описаны случаи ранней гипергонадотропной недостаточности яичников с характерным уменьшенным примордиальным пулом и первичной аменореей, что свидетельствует о наличии выраженной овариальной дисгенезии или синдрома Шершевского–Тернера.

Другим физиологическим фактором, определяющим овариальный резерв, является частота элиминации примордиальных фолликулов в яичнике. Хорошо известно, что с каждым менструальным циклом общее количество фолликулов уменьшается, и при исчезновении последних фолликулов наступает менопауза. Проведенные в последние годы исследования показывают, что частота элиминации фолликулов удваивается, когда примордиальный пул сокращается до 25 000 фолликулов, что в норме соответствует возрасту примерно 38 лет. Этот возраст определяется как критический, после которого овариальный резерв резко снижается [11].

Вышесказанное подтверждает, что важнейшим физиологическим фактором, определяющим овариальный резерв, является возраст пациентки. Однако существуют значительные индивидуальные особенности во времени наступления менархе (10–16 лет), времени наступления менопаузы (45–55 лет), которые могут определять индивидуальный биологический возраст женщины. Также следует отметить, что наличие менструальной функции и даже овуляции не отражает репродуктивного потенциала женщины. Исследования показывают, что средний возраст женщин, реализовавших естественную фертильность, составляет 41–43 года, тогда как овуляторная функция, измеренная концентрациями эстрадиола и прогестерона, остается в пределах нормы до 45 лет, и средний возраст менопаузы составляет около 50 лет [12].

Аналогичный подход должен быть использован для других факторов риска, связанных с преждевременным истощением яичников, таких как генетические или приобретенные факторы. Численные и структурные хромосомные аберрации, а также мутации или изменчивость в конкретных генах, например, количество повторов CGG в гене FMR1 могут быть причастны к снижению резерва яичников [13, 14].

Также определена роль аутоиммунных факторов преждевременной недостаточности яичников – антиовариальных антител. В последние годы одной из причин снижения овариального резерва является аутоиммунный оофорит. При этом в первую очередь происходит мононуклеарная инфильтрация тека-клеток антральных фолликулов с последующим замещением лимфоцитами, поражения гранулезных клеток не происходит

Патологические причины

Кроме физиологических факторов, на овариальный резерв влияют различные патологические состояния, к которым относятся перенесенные и существующие заболевания, интоксикации и различные ятрогенные состояния (оперативные вмешательства, химиотерапия, радиационное облучение органов малого таза). К тяжелой степени снижения овариального резерва можно отнести так называемое преждевременное истощение яичников (ПИЯ).

ПИЯ встречается примерно у 1% женского населения в возрасте до 40 лет, что приводит к репродуктивным проблемам, ранним симптомам менопаузы и тяжелым соматическим заболеваниям. Предположительно есть 3 механизма, участвующих в развитии ПИЯ. Это заболевание характеризуется аменореей, низким уровнем в крови эстрогенов и повышенным уровнем гипофизарных гонадотропинов, в первую очередь фолликулостимулирующего гормона (ФСГ). Диагноз ставится на основании наличия аменореи более 4 месяцев у женщины моложе 40 лет и двух анализов уровня ФСГ более 40 мЕд/Л [15]. К основным причинам развития ПИЯ относится: 1) наличие врожденной дисгенезии гонад, которая обычно связана с синдромом Шершевского–Тернера или мозаицизмом по данному синдрому; 2) аутоиммунная агрессия против антигенов яичника (что характеризует частое присутствие антиовариальных антител при ПИЯ); 3) энзиматические дефекты (галактоземия, дефекты ферментов синтеза половых стероидов холестероловой десмолазы, 17α-гидролазы, ароматазных ферментов, дефекты рецепторов к ФСГ); 4) состояния после перенесенной химиотерапии и лучевого лечения различных опухолевых заболеваний [16]. Однако, несмотря на выраженные изменения в репродуктивной функции, неоднократно были описаны случаи наличия у пациенток с ПИЯ периодической овуляторной функции и даже спонтанного наступления беременности [17].

Несомненную помощь в ранней диагностике ПИЯ и пограничных состояний, которые могут привести к этому заболеванию, а также для распознавания пациенток с возможным восстановлением репродуктивной функции должны оказать тесты, определяющие овариальный резерв. В прогностическом плане наиболее ранним маркером снижения овариального резерва является антимюллеров гормон (АМГ) и количество антральных фолликулов на 3-й день менструального цикла, определенное с помощью ультразвукового исследования. Такие маркеры овариального резерва, как ФСГ, эстрадиол, ингибин В менее информативны, так как реагируют в более позднем периоде [18].

Кроме ПИЯ, при котором резко снижается репродуктивный потенциал яичников, существует большое количество гинекологических заболеваний, при которых этот потенциал также значительно уменьшается.

Воспалительные заболевания органов малого таза, сопровождающиеся выраженным склерозом тканей с нарушением питания фолликулярного аппарата, должны значительно снизить овариальный резерв [19]. Другими факторами, снижающими овариальный резерв, являются интоксикации, вызываемые различными химическими веществами, которые используются в промышленности и сельском хозяйстве в качестве пестицидов, гербицидов, растворителей, а также воздействие различных отходов промышленности – тяжелых металлов и продуктов химического синтеза. Показано, что многие из вышеперечисленных веществ значительно влияют на работу репродуктивной системы, действуя как аналоги эстрогенов и связываясь с их рецепторами. Многие из них также обладают способностью к биотрансформации, то есть имеют возможность приобретать биологическую активность только в организме человека, что затрудняет распознавание их как вредных агентов. Классическим примером токсического воздействия на репродуктивную систему является действие дихлордифенилтрихлорэтана и диэтилстильбэстрола. Оба вещества выступают в виде химических аналогов эстрогенов и могут вызывать значительные изменения в репродуктивной системе человека. Дальнейшие исследования, по-нашему мнению, должны показать распространенность уменьшенного овариального резерва, связанного с воздействием вредных агентов окружающей среды.

Несомненную роль в уменьшении овариального резерва играет курение женщин. Так, Sowers и соавт. показывают, что у курящих женщин средний базальный уровень ФСГ составляет 15,0 мЕд/л, тогда как у некурящих женщин той же возрастной группы – 12,4 мЕд/л [20]. Менопауза наступает у курящих женщин в среднем на 1–3 года раньше, чем у некурящих. Авторы делают вывод о значительном влиянии курения на овариальный резерв. Freour и соавт. обследовали 277 женщин, лечившихся по поводу бесплодия методом ЭКО. Выяснили, что сниженный овариальный резерв у курящих женщин встречается в 3 раза чаще, чем у некурящих (12,3 и 4,3% соответственно) [21]. При исследовании гормонального профиля у пациенток, включенных в программы ЭКО с трубно-перитонеальным фактором бесплодия, ряд авторов отмечают повышение количества пролактина у курящих женщин [22]. По некоторым данным при нормальных цифрах ФСГ в плазме крови у пациенток двух групп в программах ЭКО (курящие и некурящие женщины) отмечают снижение концентрации ФСГ в фолликулярной жидкости у пациенток, курящих более 10 сигарет в день [23–26].

Следовательно, уменьшенный овариальный резерв может быть принципиальным механизмом сниженной фертильности у курящих женщин.

Хорошо известно и о значительном отрицательном воздействии на репродуктивную функцию радиационного и химиотерапевтического лечения различных опухолевых заболеваний [27, 28]. Воздействие химиотерапии на функцию яичников зависит от возраста пациентки, выбранного препарата, а также от его дозы. Так, лечение лимфогранулематоза вызывает стойкую менопаузу в 38–57% случаев, причем у пациенток старше 35 лет химиотерапия приводит обычно к стойким изменениям менструальной функции [7]. К наиболее гонадотоксичным препаратам относятся алкилирующие агенты, такие как циклофосфамид, мелфелан, антиметаболит цитарабин, винбластин, а также препараты цисплатины [29]. Высокие дозы препаратов, применяемые перед пересадкой костного мозга, фактически всегда приводят к стойкой утрате менструальной функции. Разработка тестов определения овариального резерва позволит с максимальной точностью прогнозировать дальнейшую менструальную и репродуктивную функцию у пациенток, перенесших лечение по поводу онкологического заболевания.

Значительную роль в уменьшении овариального резерва играют оперативные вмешательства на органах малого таза, даже если они выполнены не на яичниках – при выполнении эмболизации маточных сосудов по поводу симптомной миомы матки, а также после гистерэктомии ряд авторов отмечают снижение показателей овариального резерва [30, 31]. Хорошо известно, что у женщин, проходящих лечение по поводу бесплодия, часто в анамнезе имеют место перенесенные оперативные вмешательства [32–36]. Эти вмешательства могут и сами быть причиной бесплодия, например, вследствие спаечного процесса в малом тазу после перенесенной аппендэктомии, и быть попыткой лечебного воздействия, например, когда выполняется восстановление проходимости маточных труб с помощью разделения спаек, микрохирургическая пластика труб, удаление очагов эндометриоза. Ряд авторов отмечают снижение овариального резерва в большей или меньшей степени в зависимости от объема оперативного лечения: сальпингэктомия, цистэктомия, односторонняя овариоэктомия. Даже при выполнении сальпингэктомии отмечено снижение овариального резерва ввиду возможного снижения кровоснабжения [37].

Крайне распространены резекции по поводу разнообразных кист яичников при лечении синдрома Штейна–Левенталя. Последние проводятся крайне широко без всякого учета дальнейшего репродуктивного потенциала женщины и зачастую приводят к выраженному снижению овариального резерва [38]. Несмотря на то что научной информации по изучению овариального резерва после оперативных вмешательств на яичнике пока мало, ряд выводов сделать можно. Остается открытым вопрос о возможности реализации репродуктивной функции при СПКЯ. Парадоксально, что при достаточном количестве фолликулов нет полноценной овуляции. После хирургического лечения ряд авторов отметили восстановление спонтанной овуляции на протяжении 6 месяцев; даже при одностороннем вмешательстве на яичнике овуляция восстанавливалась также в неоперированном яичнике. Отмечено отсутствие необходимости оказывать чрезмерный термический эффект при разрушении капсулы яичника (возможно механическое разрушение) [39].

Рядом авторов отмечено восстановление спонтанной овуляции у пациенток с СПКЯ и соответственно изменение фенотипа, протекторное действие на сердечно-сосудистую систему, изменение показателей обмена липопротеинов низкой плотности и углеводного обмена [40]. Механизм восстановления спонтанной овуляции у пациенток с СПКЯ после 40 лет не известен.

H. Abu Hashim с соавт. обнаружили значительное снижение фолликулярного ответа при индукции овуляции в группе женщин с двухсторонней и односторонней резекцией яичников, особенно если это вмешательство было сделано без диагноза СПКЯ [41]. Схожие данные получили авторы, которые проанализировали овариальный ответ и количество ооцитов в яичниках женщин, проходящих лечение в программе ЭКО после удаления кисты яичника [32–36]. Авторы делают вывод, что эта процедура значительно уменьшает овариальный ответ, и что удаление эндометриодной кисты яичника оказывает большее влияние, чем удаление фолликулярной или дермоидной кисты [42, 43].

Остается дискутабельным вопрос о целесообразности оперативного лечения эндометриоидных кист яичников с сохраненной спонтанной овуляцией в пораженном и контрлатеральном яичнике [44].

Авторы обнаружили, что у женщин с одним яичником был значительно увеличен базальный уровень ФСГ и, соответственно, уменьшен ответ на овариальную стимуляцию и количество полученных ооцитов.

Дискутабельным для клиницистов остается вопрос о целесообразности оперативного лечения эндометриодных кист яичников диаметром до 3 см.

Ряд авторов [45] провели исследование у 1642 пациенток репродуктивного возраста (до 36 лет) с односторонними и двусторонними эндометриоидными кистами яичников. Отмечено, что у пациенток 31–35 лет с эндометриоидными кистами диаметром более 3 см показатели АМГ в сыворотке, измеренные в I фазе менструального цикла, составили 2,34±0,19 нг/мл при норме 3,31±0,08 нг/мл, а по истечении 6 месяцев после оперативного лечения, выполненного в объеме цистэктомии, отмечено дополнительное снижение уровня АМГ сыворотки крови до 1,53±0,14 нг/мл.

Исследования, проведенные пациенткам с доброкачественными опухолями яичников, выявили более низкий уровень АМГ (4,2±2,3 против 2,8±2,2 нг/мл соответственно, р=0,02) и количество антральных фолликулов (14,7±4,1 против 9,7±4,8 соответственно, р<0,01). При оценке АМГ сыворотки крови отмечено дополнительное снижение уровня АМГ через 6 месяцев после оперативного лечения (2,8±2,2 против 1,8±1,3 нг/мл, р=0,02), в то время как количество антральных фолликулов оставалось неизменным (9,7±4,8 против 10,4±4,2, р=0,63). Предоперационный уровень сывороточного АМГ положительно коррелирует с темпами снижения АМГ в сыворотке крови после операции (R=0,47, р=0,02) [46].

В данном исследовании на фоне снижения овариального резерва в послеоперационном периоде восстановление овуляторной функции яичника и естественной фертильности отмечено на 50% чаще, чем у группы пациенток с наличием эндометриоидной кисты. Очевидно, более выраженное снижение овариального резерва отмечено у пациенток после оперативного лечения двусторонних эндометриоидных кист яичников по сравнению с односторонним.

Однако согласно результатам отечественного исследования, в ходе обследования и подготовки к программам ЭКО у 13,8% пациенток с цистэктомией в анамнезе и у 2,2% пациенток с эндометриоидной кистой яичника наступила спонтанная маточная беременность. При этом кумулятивная частота беременностей, включающая спонтанную беременность и беременность после ЭКО, составила 58,5% в группе пациенток после оперативного лечения эндометриоидных кист яичников и 40% – у пациенток с эндометриомами [47].

При сравнительной характеристике овариального резерва у пациенток с односторонне расположенной эндометриоидной, дермоидной и фолликулярной кистой до оперативного лечения отмечено более выраженное снижение при одностороннем или двустороннем расположении эндометриоидных кист.

Этиопатогенез снижения овариального резерва при эндометриоидных кистах яичниках точно не определен. Это наличие инфильтративного роста эндометриоидных гетеротопий с разрушением сосудистой сети и последующей хронической ишемией; развитие асептического воспаления с формированием обширной зоны перифокального фиброза; токсическое действие содержимого кисты; повышенная экспрессия проапоптотических белков в яичниковой ткани за счет активации эндометриоидными гетеротопиями.

Не решен окончательно вопрос о возможностях реализации репродуктивной функции у пациенток с онкологическими заболеваниями половых органов и молочных желез. При раке яичников всегда отмечается снижение овариального резерва у пациенток молодого и юного возраста, что диктует необходимость проведения органосохраняющего оперативного или комбинированного лечения после получения биоматериала (яичниковая ткань, зрелые и незрелые ооциты, эмбрионы) для последующей реализации репродуктивной функции с помощью программ ЭКО [48].

Представленные данные отражают растущий в научных кругах интерес к определению овариального резерва, которое является попыткой определения индивидуального биологического возраста яичников. Однако отсутствие классификации и систематизации методов определения овариального резерва, разнородность применяемых методов, различие в оценках исхода, отсутствие сравнения эффективности различных методов свидетельствуют о множестве нерешенных задач в этой области.

References

  1. Kyrou D., Kolibianakis E., Venetis C.A., Papanikolaou E.G., Bontis J., Tarlatzis B.C. How to improve the probability of pregnancy in poor responders undergoing in vitro fertilization: a systematic review and meta-analysis. Fertil. Steril. 2009; 91(2): 749–66.
  2. Loutradis D., Vomvolaki E., Drakakis P. Poor responder protocols for in-vitro fertilization: options and results. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2008; 20(4): 374–8.
  3. Ferraretti A.P., La Marca A., Fauser B.C., Tarlatzis B., Nargund G., Gianaroli L.; ESHRE working group on Poor Ovarian Response Definition. ESHRE consensus on the definition of 'poor response' to ovarian stimulation for in vitro fertilization: the Bologna criteria. Hum. Reprod. 2011; 26(7): 1616–24.
  4. Broer S.L., Eijkemans M.J., Scheffer G.J., van Rooij I.A., de Vet A., Themmen A.P. et al. Anti-mullerian hormone predicts menopause: a long-term follow-up study in normoovulatory women. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2011; 96(8): 2532–9.
  5. Pandian Z., McTavish A.R., Aucott L., Hamilton M.P., Bhattacharya S. Interventions for 'poor responders' to controlled ovarian hyper stimulation (COH) in in-vitro fertilisation (IVF). Cochrane Database Syst. Rev. 2010; (1): CD004379. doi: 10.1002/14651858. CD004379.pub3
  6. Check J.H. Understanding the physiology of folliculogenesis serves as the foundation for perfecting diagnosis and treatment of ovulatory defects. Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 2012; 39(3): 273–9.
  7. Boyarskiy K.Yu., Gaydukov S.N., Chkuaseli A.S. Faktoryi, opredelyayuschie ovarialnyiy rezerv. Zhurnal akusherstva i zhenskih bolezney. 2009; 2: 65–71.
  8. Boyarskiy K.Yu. Rol pokazateley ovarialnogo rezerva pri lechenii besplodiya metodom EKO i PE. V kn.: Kulakov V.I., Leonov B.V., Kuzmichev L.N., red. Lechenie zhenskogo i muzhskogo besplodiya (vspomogatelnyie reproduktivnyie tehnologii). M.: MIA; 2005: 53–60.
  9. Weghofer A., Kim A., Barad D.H., Gleicher N. Follicle stimulating hormone and anti-Müllerian hormone per oocyte in predicting in vitro fertilization pregnancy in high responders: a cohort study. PLoS One. 2012; 7(4): e34290.
  10. Gougeon A. All about follicles. Gynecol. Obstet. Fertil. 2010; 38(6): 394.
  11. Dólleman M., Faddy M.J., van Disseldorp J., van der Schouw Y.T., Messow C.M., Leader B. et al. The relationship between anti-Müllerian hormone in women receiving fertility assessments and age at menopause in subfertile women: evidence from large population studies. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2013; 98(5): 1946–53.
  12. The menopausal transition. Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Fertil. Steril. 2008; 90(Suppl.3): S61–5.
  13. De Vos M., Devroey P., Fauser B.C. Primary ovarian insufficiency. Lancet. 2010; 376(9744): 911–21.
  14. Gleicher N., Weghofer A., Oktay K., Barad D. Relevance of triple CGG repeats in the FMR1 gene to ovarian reserve. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19: 385–90.
  15. La Marca A., Brozzetti A., Sighinolfi G., Marzotti S., Volpe A., Falorni A. Primary ovarian insufficiency: autoimmune causes. Curr. Opin. Obste.t Gynecol. 2010; 22(4): 277–82.
  16. Jin M., Yu Y., Huang H. An update on primary ovarian insufficiency. Sci. China Life Sci. 2012; 55(8): 677–86.
  17. Okeke T., Anyaehie U., Ezenyeaku C. Premature menopause. Ann. Med. Health Sci. Res. 2013; 3(1): 90–5.
  18. Fréour T., Jean M., Mirallie S., Barriere P. Computer-assisted sperm analysis parameters in young fertile sperm donors and relationship with age. Syst. Biol. Reprod. Med. 2012; 58(2): 102–6.
  19. Utkin E.V., Podonina N.M., Kordubaĭlova N.I. Role and place of antibacterial therapy in prophylaxis of disturbances in reproductive function of women. Antibiot. Khimioter. 2012; 57(7-8): 38–42.
  20. Sowers M.R., Mc Connell D., Yosef M., Jannausch M.L., Harlow S.D. Relating smoking, obesity, insulin resistance, and ovarian biomarker changes to the final menstrual period. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2010; 1204: 95–103.
  21. Freour T., Dessolle L., Jean M., Masson D., Barriere P. Predictive value of ovarian reserve markers in smoking and non-smoking women undergoing IVF. Reprod. Biomed. Online. 2010; 20(6): 857–60.
  22. Benedict M.D., Missmer S.A., Ferguson K.K., Vitonis A.F., Cramer D.W., Meeker J.D. Secondhand tobacco smoke exposure is associated with prolactin but not thyroid stimulating hormone among nonsmoking women seeking in vitro fertilization. Environ. Toxicol. Pharmacol. 2012; 34(3): 761–7.
  23. Dechanet C., Anahory T., Mathieu Daude J.C., Quantin X., Reyftmann L., Hamamah S. et al. Effects of cigarette smoking on reproduction. Hum. Reprod. Update. 2011; 17(1): 76–95.
  24. Dechanet C., Brunet C., Anahory T., Hamamah S., Hedon B., Dechaud H. Effects of cigarette smoking on female reproduction: from oocyte to embryo (Part I). Gynecol. Obstet. Fertil. 2011; 39(10): 559–66.
  25. Rickert W.S., Trivedi A.H., Momin R.A., Wagstaff W.G., Lauterbach J.H. Mutagenic, cytotoxic, and genotoxic properties of tobacco smoke produced by cigarillos available on the Canadian market. Regul. Toxicol. Pharmacol. 2011; 61(2): 199–209.
  26. Fuentes A., Muñoz A., Pommer R., Argüello B., Galleguillos A., Torres A., Jesam C. Decreased anti-Müllerian hormone concentration in follicular fluid of female smokers undergoing artificial reproductive techniques. Chemosphere. 2012; 88(4): 403–6.
  27. Stangel-Wojcikiewicz K., Zdebik A., Jach R., Huras H., Wadowska-Jaszczynska K., Radon-Pokracka M. et al. Hormone replacement therapy regimens in chemotherapy-induced premature ovarian failure and the subsequent correction of hormone levels. Neuro Endocrinol. Lett. 2012; 33(7): 697–702.
  28. Van Dorp W., van den Heuvel-Eibrink M.M., Stolk L., Pieters R., Uitterlinden A.G., Visser J.A., Laven J.S.E. Genetic variation may modify ovarian reserve in female childhood cancer survivors. Hum. Reprod. 2013; 28(4): 1069–76.
  29. Oktem O., Oktay K. Fertility preservation for breast cancer patients. Semin. Reprod. Med. 2009; 27(6): 486–92.
  30. Atabekoğlu C., Taşkin S., Kahraman K., Gemici A., Taşkin E.A., Ozmen B. et al. The effect of total abdominal hysterectomy on serum anti-Müllerian hormone levels: a pilot study. Climacteric. 2012; 15(4): 393–7.
  31. Bouwsma E.V., Hesley G.K., Woodrum D.A., Weaver A.L., Leppert P.C., Peterson L.G., Stewart E.A. Comparing focused ultrasound and uterine artery embolization for uterine fibroids-rationale and design of the Fibroid Interventions: reducing symptoms today and tomorrow (FIRSTT) trial. Fertil. Steril. 2011; 96(3): 704–10.
  32. Biacchiardi C.P., Piane L.D., Camanni M., Deltetto F., Delpiano E.M., Marchino G.L. et al. Laparoscopic stripping of endometriomas negatively affects ovarian follicular reserve even if performed by experienced surgeons. Reprod. Biomed Online. 2011; 23(6): 740–6.
  33. Celik H.G., Dogan E., Okyay E., Ulukus C., Saatli B., Uysal S., Koyuncuoglu M. Effect of laparoscopic excision of endometriomas on ovarian reserve: serial changes in the serum antimüllerian hormone levels. Fertil. Steril. 2012; 97(6): 1472–8.
  34. Raffi F., Metwally M., Amer S. The impact of excision of ovarian endometrioma on ovarian reserve: a systematic review and meta-analysis. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2012; 97(9): 3146–54.
  35. Raffi F., Shaw R.W., Amer S.A. National survey of the current management of endometriomas in women undergoing assisted reproductive treatment. Hum. Reprod. 2012; 27(9): 2712–9.
  36. Suksompong S., Dejarkom S., Petyim S., Dangrat C., Orachon D., Choavaratana R. Ovarian reserve evaluation by anti-mullerian hormone in women undergoing laparoscopic cystectomy of endometrioma. J. Med. Assoc. Thai. 2012; 95(11): 1389–95.
  37. Rustamov O., Smith A., Roberts S.A., Yates A.P., Fitzgerald C., Krishnan M. et al. Anti-Mullerian hormone: poor assay reproducibility in a large cohort of subjects suggests sample instability. Hum. Reprod. 2012; 27(10): 3085–91.
  38. Roy K.K., Baruah J., Moda N., Kumar S. Evaluation of unilateral versus bilateral ovarian drilling in clomiphene citrate resistant cases of polycystic ovarian syndrome. Arch. Gynecol. Obstet. 2009; 280(4): 573–8.
  39. Sunj M., Canic T., Baldani D.P., Tandara M., Jeroncic A., Palada I. Does unilateral laparoscopic diathermy adjusted to ovarian volume increase the chances of ovulation in women with polycystic ovary syndrome? Hum. Reprod. 2013; 28(9): 2417–24.
  40. Carmina E., Campagna A.M., Lobo R.A. Emergence of ovulatory cycles with aging in women with polycystic ovary syndrome (PCOS) alters the trajectory of cardiovascular and metabolic risk factors. Hum. Reprod. 2013; 28(8): 2245–52.
  41. Abu Hashim H., Al-Inany H., De Vos M., Tournaye H. Three decades after Gjönnaess's laparoscopic ovarian drilling for treatment of PCOS; what do we know? An evidence-based approach. Arch. Gynecol. Obstet. 2013; 288(2): 409–22.
  42. Benaglia L., Somigliana E., Vighi V., Ragni G., Vercellini P., Fedele L. Rate of severe ovarian damage following surgery for endometriomas. Hum. Reprod. 2010; 25(3): 678–82.
  43. Garcia-Velasco J.A., Somigliana E. Management of endometriomas in women requiring IVF: to touch or not to touch. Hum. Reprod. 2009; 24(3): 496–501.
  44. Benaglia L., Somigliana E., Vercellini P., Abbiati A., Ragni G., Fedele L. Endometriotic ovarian cysts do not negatively affect the rate of spontaneous ovulation. Hum. Reprod. 2009; 24(9): 2183-6. doi: 10.1093/humrep/dep202.
  45. Hwu Y.M., Wu F.S., Li S.H., Sun F.J., Lin M.H., Lee R.K. The impact of endometrioma and laparoscopic cystectomy on serum anti-Müllerian hormone levels. Reprod. Biol. Endocrinol. 2011; 9: 80.
  46. Uncu G., Kasapoglu I., Ozerkan K., Seyhan A., Oral Yilmaztepe A., Ata B. Prospective assessment of the impact of endometriomas and their removal on ovarian reserve and determinants of the rate of decline in ovarian reserve. Hum. Reprod. 2013; 28(8): 2140–5.
  47. Gasparov A.S., Dubinskaya E.D., Dmitrieva N.V., Yakovenko S.A. Otdalennyie rezultatyi lecheniya besplodiya s ispolzovaniem vspomogatelnyih reproduktivnyih tehnologiy u patsientok s endometrioidnyimi kistami yaichnikov. V kn.: VI Obscherossiyskiy nauchno-prakticheskiy seminar s mezhdunarodnyim uchastiem «Reproduktivnyiy potentsial Rossii: versii i kontraversii». Sochi, 7-10 sentyabrya 2013: 18.
  48. Jersus J., Woodruff T. Preservation of fertility in patients with cancer. N. Engl. J. Med. 2009; 360: 902–11.

 

About the Authors

Gasparov Alexander, MD, professor of the Department of obstetrics & gynecology PFUR. 117198, Russia, Moscow, Mikluho-Maclaya str. 8. Tel.: +79857767778. E-mail: 5454444@mail.ru
Dubinskaya Ekaterina D., MD, D. Sc in Medicine, associate professor of the Department of obstetrics & gynecology PFUR. 117198, Russia, Moscow, Mikluho-Maclaya str. 8. Tel.: +79031175558. E-mail: eka-dubinskaya@yandex.ru
Titov Denis S., assistant professor of the Department of obstetrics & gynecology PFUR. 117198, Russia, Moscow, Mikluho-Maclaya str. 8. Tel.: +79162984931. E-mail: ginekologija@rambler.ru
Lapteva Natalia V., assistant professor of the Department of obstetrics & gynecology People’s Friendship University of Russia. 117198, Russia, Moscow, Mikluho-Maclaya str. 8. Tel.: +74954341060. E-mail: nlapteva@gmail.com

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.