Survival and composition of the cellular component of breast milk under various conditions of its expression and storage

Ryumina I.I., Fatkhudinov T.Kh., Arutyunyan I.V., Makarov A.V., Lokhonina A.V., Narogan M.V., Sharipova K.R., Orlovskaya I.V., Zubkov V.V., Baibarina E.N.

1) Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) Research Institute of Human Morphology, Moscow, Russia; 3) I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia
Objective. To determine the composition and survival of the cellular component of breast milk under various conditions of its single and double pumping and storage.
Materials and methods. Eighty-six breast milk samples were collected using a Symphony Medela single (n = 63) or double (n = 23) clinical breast pump. Each sample was divided into two halves and stored for 72 hours when it was cooled to 4°C or room temperature. The fractions of living cells were assessed at 4, 24, and 72 hours after breast milk expression. Flow cytofluorometry was used to determine the expression of specific surface and intracellular markers.
Results. The total number of cells in breast milk did not depend on the method of its expression, gestational age, or number of fetuses; the median was about 80,000 cells per ml. The main milk cell populations were epithelial cells and white blood cells; vimentin-positive stromal cells were a minor population. The storage of breast milk, regardless of its expression method, led to a gradual decrease in the number of living cells due to the partial death of short-lived leukocyte subpopulations. After 4 hours, about a third of all cells remained alive; cooling the milk to +4°C could prolong the period of this level of cell survival. Moreover, this effect was more pronounced in the samples obtained using a double clinical breast pump.
Conclusion. The total number of cells in breast milk does not depend on its expression method, gestational age, or number of fetuses. To preserve the cellular component of the expressed breast milk, the latter can be stored at room temperature for the first 4 hours when it was cooled to +4°C for 24 hours; in this case double pumping has some advantage over single pumping.

Keywords

breast milk
cells
storage mode
breast pump
single pumping
double pumping

Во время беременности и кормления женская грудь претерпевает значительные изменения, затрагивающие функции эпителия и стромы, которые обеспечивают поддержание синтеза и секреции молока и его доставку ребенку. Грудное молоко является оптимальным продуктом питания новорожденного ребенка, максимально адаптированным к его потребностям и обладающим высокой биодоступностью. Более того, грудное молоко способствует защите здоровья ребенка, созреванию его иммунной системы, а процесс кормления необходим для становления психоэмоционального единения матери и новорожденного. В состав молока входят сотни биоактивных молекул (гидролитических ферментов, гормонов, факторов роста, цитокинов, пре- и пробиотиков и т.д.), соотношение которых невозможно воспроизвести в искусственных смесях. Однако главное отличие грудного молока от его субститутов заключается в присутствии уникального клеточного компонента, отличающегося высокой вариабельностью.

Клеточный состав молока может меняться в зависимости от многих факторов (длительности лактации, состояния здоровья матери и ребенка, жирности молока, времени, прошедшего с последнего кормления). На первом этапе вскармливания важнейшую роль играют лейкоциты молока, обеспечивающие иммунную защиту как матери, так и ребенка. Предполагается, что особое значение для этого процесса могут иметь макрофаги, активно мигрирующие в протоки желез. Помимо лейкоцитов, грудное молоко содержит также эпителиальные (от прогениторных до терминально дифференцированных) и стромальные клетки [1–7].

Приоритет грудного вскармливания является неоспоримым, исключение составляют только дети с некоторыми редкими врожденными заболеваниями. Успешное грудное вскармливание возможно при наличии у ребенка зрелого сосательного рефлекса и координации сосания, глотания и дыхания. Если ребенок не может быть приложен к груди после рождения, рекомендуется начать сцеживать молоко в течение первых 6 ч после родов. Молозиво, которое синтезируется в небольшом количестве в первые несколько дней после родов, крайне необходимо для ребенка, поэтому введение капель молозива за щеку ребенка рекомендуется даже детям с экстремально низкой массой тела и нуждающимся в искусственной вентиляции легких. При заболеваниях матери, вследствие которых временно необходимо принимать лекарства, не рекомендуемые при кормлении грудью, грудное вскармливание прекращается только на время лечения, в процессе которого также необходимо регулярно сцеживать грудное молоко. Таким образом, сцеживание грудного молока позволяет кормить больных новорожденных и недоношенных детей материнским молоком, а также поддерживать лактацию, пока мать или ребенок болеет или они находятся в разлуке.

В настоящее время существуют современные технологии, которые позволяют не только безопасно и комфортно сцеживать грудное молоко, сохранить лактацию и обеспечить больного ребенка питанием, но и создать определенный запас грудного молока (индивидуальный банк молока) [8]. Возможность хранения, с точки зрения микробиологической безопасности, нативного сцеженного грудного молока исследована многими авторами, и, несмотря на различные данные, сегодня нет сомнений в том, что сцеженное грудное молоко может храниться достаточно долго. Опубликовано большое количество исследований, которые предлагают различные временные промежутки для безопасного хранения сцеженного грудного молока без дополнительной обработки – от 48 ч до 8 суток [9, 10]. По данным ВОЗ, сцеженное молоко можно хранить в стерильной закрытой посуде при температуре +18–20 °С в темном месте в течение 24 ч, в холодильнике (при температуре +4–5 °С) – около 72 ч и в морозильнике (при температуре от 18 °С до –20 °С) – примерно 4 месяца [11]. Грудное молоко традиционно считалось стерильным, однако недавние исследования показали, что для кишечника ребенка молоко является постоянным источником разных бактерий, которые могут быть симбионтами, обладать взаимно полезными (мутуализм) и/или потенциально пробиотическими свойствами. Таким образом, изменение микробиоты кишечника матери в течение беременности и лактации напрямую воздействует на здоровье младенца [12].

Существующие рекомендации по хранению грудного молока при различных температурных режимах исходят из соображений сохранности основных нутриентов и предотвращения контаминации молока патогенной микрофлорой. Однако данные о сохранности клеточного компонента молока или изменении его состава в научной литературе отсутствуют. Учитывая потенциально высокую значимость материнских клеток молока для развития ребенка, исследование выживаемости клеток при различных режимах хранения молока является актуальным.

Цель исследования – определить состав и выживаемость клеточного компонента грудного молока при разных условиях сцеживания (одинарное или двойное) и хранения.

Материалы и методы

Образцы грудного молока. Исследовали 86 образцов грудного молока, полученных от 77 матерей. У 54 женщин беременность была одноплодной, у 23 – многоплодной. У 24 женщин роды произошли своевременно, средняя масса тела детей при рождении составила 3481 (376) г (от 1996 до 4230 г). У 53 женщин произошли преждевременные роды, средняя масса тела детей при рождении составила 2122 (636) г (от 850 до 3098 г).

Критерии включения: доношенная беременность и роды в срок 37–41 недель; преждевременные роды в сроке 26–36 недель; отсутствие воспалительных процессов молочной железы (мастит, трещины соска и т.п.); клинические показания для сцеживания грудного молока.

Критерии исключения: воспалительные заболевания молочной железы, отказ матери от участия в исследовании.

Грудное молоко (не менее 10 мл) собирали с помощью одинарного (63 образца) или двойного (23 образца) клинического молокоотсоса Symphony Medela. Каждый образец делили пополам в стерильных условиях, предварительно перемешав на вортексе, и хранили в течение 72 ч при охлаждении до 4 °С или комнатной температуре (RT, room temperature).

Определение количества клеток в образцах грудного молока. Общее количество и доли живых клеток оценивали через 4, 24 и 72 ч после сцеживания для обоих температурных режимов. Крайние временные точки были выбраны, исходя из рекомендаций компании Medela по хранению сцеженного грудного молока при комнатной температуре (4 ч) или при охлаждении до 4 °С (72 ч). Из каждого образца молока стерильно отбирали по 1 мл клеточной суспензии, трижды отмывали раствором Хэнкса («Панэко», Россия) с помощью центрифугирования в течение 10 минут при 1100 об/мин. Общее количество и доли живых клеток оценивали с помощью клеточного анализатора TC20 (Bio-Rad, США) при использовании программного обеспечения TC20 Data Analyzer Software.

Определение клеточного состава молока. Для определения экспрессии специфических поверхностных и внутриклеточных маркеров клеток использовали метод проточной цитофлуориметрии. Пермеабилизацию и фиксацию клеток для окрашивания на внутриклеточные маркеры осуществляли с помощью набора Inside Stain Kit (MiltenyiBiotec, Германия) в соответствии с рекомендациями производителя. Для окрашивания на поверхностные маркеры клетки ресуспендировали в фосфатно-солевом буфере в концентрации 100 000 клеток в 100 мкл и добавляли антитела. В качестве негативного контроля неспецифического связывания использовали изотипический контроль. Анализ проводили на цитофлуориметре Cytomics FC 500 (Beckman Coulter, США) с помощью программы CXP (Beckman Coulter, США). Используемые антитела приведены в таблице.

166-1.jpg (83 KB)

Статистический анализ. Количественные данные (масса тела детей при рождении, количество клеток в 1 мл молока и др.) представляли в виде среднего (M) и стандартного отклонения (SD) или в виде медианы и интерквартильного размаха (min, Q1, Me, Q3, max). При отсутствии нормального распределения независимые выборки сравнивали с использованием непараметрического U-критерия Манна–Уитни. Статистически значимыми считали различия при p<0,05. Обработку статистических данных проводили с помощью пакета SigmaStat (Systat Software, США).

Результаты и обсуждение

Общее содержание клеток в грудном молоке

Все полученные образцы грудного молока содержали клетки; общее их количество определяли сразу после доставки биоматериала в лабораторию (рис. 1, А). Данный параметр значительно варьировал в зависимости от образца, индивидуальные отличия превышали 2 порядка: от 5,4 тыс. до 858 тыс. клеток в 1 мл молока. Мы разбивали все образцы на 2 группы, отличающиеся либо типом используемого молокоотсоса (одинарный или двойной), либо сроком гестации (родоразрешение на сроках 26–36 недель или 37–41 неделя), либо количеством плодов (1 или 2 ребенка). Для каждого варианта распределения между группами сравнивали содержание клеток в единице объема грудного молока. После статистической обработки данных было обнаружено, что количество клеток молока не зависело от способа сцеживания (p=0,319), срока гестации (p=0,874) или количества плодов (p=0,705), медианный показатель во всех группах составил около 80 тыс. клеток в 1 мл молока (рис. 1, Б).

168-1.jpg (260 KB)

Таким образом, даже в случае преждевременных родов содержание клеток в грудном молоке находится на том же уровне, что и при своевременных родах, что еще раз подтверждает необходимость сохранения лактации и кормления недоношенных детей материнским молоком. В случае необходимости допустимо сцеживание молока, при этом использование двойного клинического молокоотсоса увеличивает как скорость сцеживания, так и объем сцеживаемого молока, по сравнению с одинарным молокоотсосом [13], однако само молоко при этом не снижает своего качества по общему содержанию клеток в единице объема.

Выживаемость клеток молока в зависимости от типа используемого молокоотсоса и режима хранения

Хранение при комнатной температуре приводило к постепенному снижению количества живых клеток в грудном молоке, через 72 ч среднее количество живых клеток в молоке составило около 30 тыс. клеток в 1 мл независимо от типа используемого молокоотсоса (p=0,895) (рис. 1, В).

При хранении молока при +4 °С среднее значение количества живых клеток в образцах, полученных с использованием двойного клинического молокоотсоса Symphony, было примерно в 2 раза выше во всех временных точках аналогичного показателя образцов, полученных с использованием одинарного молокоотсоса, однако отличия не достигали статистической значимости (p=0,178) (см. рис. 1, В).

При исследовании долей живых и погибших клеток было обнаружено, что в образцах, полученных при использовании одинарного молокоотсоса, температурный режим хранения влиял на динамику выживаемости клеток только в отдаленных временных точках, тогда как при хранении молока в течение 4 ч (рекомендуемое время для хранения молока при комнатной температуре с целью последующего кормления ребенка) этот показатель составил чуть более 30% (рис 1, Г).

В образцах, полученных при использовании двойного клинического молокоотсоса Symphony, наблюдали несколько иную динамику: охлаждение молока до +4 °С позволяло замедлить гибель клеток в течение первых 24 ч хранения (см. рис. 1, Г).

Таким образом, хранение молока, независимо от способа сцеживания, приводило к постепенному снижению количества живых клеток. В течение первых 4 ч хранения, независимо от выбранного температурного режима, около трети всех клеток оставались живыми. Охлаждение молока до +4 °С позволяло продлить период данного уровня выживаемости клеток, при этом в образцах, полученных с использованием двойного клинического молокоотсоса, данный эффект был более выраженным. Мы предполагаем, что на выживаемость клеток может влиять жировой компонент молока: известно, что фосфолипиды и триглицериды являются непроникающими криопротекторами. В сцеженном с помощью двойного клинического молокоотсоса Symphony грудном молоке содержание жира выше по сравнению с образцами, полученными с использованием одинарного молокоотсоса, что могло воздействовать на динамику выживаемости клеток в течение 24 ч при охлаждении до +4 °С [13].

Известно, что нативное молоко сохраняет свои защитные и нутритивные свойства, так как, помимо факторов гуморального иммунитета, содержит живые лейкоциты, что объясняет снижение количества бактериальных единиц в свежем молоке в течение нескольких часов. Именно поэтому, по мнению многих исследователей, сцеженное молоко может храниться при комнатной температуре по крайней мере в течение 4 ч без какой-либо обработки и использоваться для следующего кормления ребенка [14]. Некоторые авторы считают, что возможно хранение сцеженного молока в течение 4 ч и при более высокой температуре – 27–32 °С [9], а при охлаждении до 4 °C молоко можно хранить в течение 96 ч без существенных изменений не только количества бактериальных клеток, но и количества лейкоцитов, осмолярности, рН, концентраций IgA, лактоферрина, общего количества жира и свободных жирных кислот [15].

Внедрение современных организационных технологий по поощрению, поддержке и охране грудного вскармливания, наряду со сложнейшими лечебными мероприятиями, является одной из основных задач любого родовспомогательного учреждения и неонатологического стационара. К сожалению, в течение многих лет и до настоящего времени в РФ действуют нормативные документы, запрещающие хранение сцеженного грудного молока, а «…в случае необходимости отсроченного кормления новорожденного сцеженным молоком (отделение реанимации и т.п.) собранное грудное молоко подвергают пастеризации» [16]. Запрет на хранение и использование сцеженного материнского молока в акушерских и неонатологических стационарах вынуждает неонатологов назначать искусственные смеси для докорма новорожденных даже при достаточном количестве грудного молока у матери.

Полученные нами результаты позволяют утверждать, что с точки зрения сохранности клеточного компонента в течение первых 4 ч допустимо хранение сцеженного грудного молока при комнатной температуре, но более длительное хранение требует охлаждения до +4 °С, при этом оптимальное время хранения в таком режиме составляет 24 ч.

Гетерогенность клеток грудного молока

При исследовании с помощью световой микроскопии было подтверждено, что в грудном молоке содержится значительное количество гетерогенных по своим морфологическим и функциональным свойствам клеток. При переносе клеток в ростовую среду (DMEM/F12, содержащую 10% эмбриональной телячьей сыворотки) мы наблюдали прикрепление клеток к культуральной подложке (рис. 2, А). Большая часть клеток в дальнейшем откреплялась от подложки, оказавшись неспособной к пролиферации в условиях in vitro, однако через 5–7 суток мы наблюдали колонии клеток с характерным для эпителиальных культур рисунком поверхности типа «черепица», а через 2–3 недели появлялись колонии стромальных клеток, образующих характерный для фибробластоподобных клеток волновой рисунок (рис. 2, Б, В). Среди эпителиальных клеток присутствовали клетки, экспрессирующие маркер люминального эпителия цитокератин 18, а также миоэпителиальные клетки, экспрессирующие гладкомышечный актин (αSMA) (рис. 2, Г, Д). Стромальные клетки экспрессировали виментин (рис. 2, Е).

169-1.jpg (223 KB)

Все клетки молока по их происхождению предложено разделять на две группы – попавшие в молоко из крови матери или из тканей молочной железы. К первой группе относят клетки иммунной системы и гематопоэтические стволовые/прогениторные клетки, ко второй группе – лактоциты, люминальные эпителиальные клетки, миоэпителиальные клетки, эпителиальные прогениторные клетки, а также клетки, экспрессирующие маркеры мезенхимальных и эмбриональных стволовых клеток [17–19]. Основной популяцией клеток зрелого молока здоровой матери являются эпителиальные клетки (включая р63+ прогениторные клетки, миоэпителиальные клетки, клетки люминального эпителия и терминально дифференцированные лактоциты). Открытым остается вопрос иерархии этих эпителиальных клеток: некоторые исследователи считают, что люминальный эпителий в условиях in vitro может переходить в миоэпителий, другие предполагают, что к подобному взаимному переходу способны предшественники мио- и люминального эпителиев, третьи говорят о возможности одновременной экспрессии маркеров люминального эпителия и миоэпителия [1, 20–22]. Общим маркером для всех эпителиальных клеток грудного молока является EpCam (молекула клеточной адгезии эпителия) – мембранный белок, опосредующий Ca2+-независимую межклеточную адгезию в эпителии, который был выбран нами в качестве маркера эпителиальной фракции клеток молока.

Как в нашем, так и в сходных исследованиях стромальные клетки появлялись в первичной культуре значительно позднее эпителиальных; некоторые авторы предполагают, что столь позднее их появление в культуре может являться следствием эпителио-мезенхимального перехода, однако этот вопрос требует дальнейшего изучения [23, 24].

Известно, что в процессе внутриутробного развития происходит обмен стволовыми/прогениторными клетками между матерью и ребенком; возможно, что микрохимеризация продолжается и во время грудного вскармливания. Исследования на животных показали, что клетки молока способны выживать в незрелом желудочно-кишечном тракте потомства, мигрировать в кровоток и заселять органы in vivo, влияя на гомеостаз тканей, их развитие и регенерацию, а также обеспечивая уникальную толерантность новорожденного по отношению к материнским антигенам, реализуемую, например, в лучшей переносимости трансплантации материнских органов детям, которые находились на грудном вскармливании. Все вышеперечисленное подтверждает гипотезу о том, что с грудным молоком материнские клетки поступают к ребенку, где они в определенной мере влияют на его развитие в раннем возрасте [1, 3, 5, 6, 19].

Выживаемость популяций клеток в грудном молоке при различных режимах хранения

С помощью проточной цитофлуориметрии исследовали содержание различных типов клеток в образцах. Выбранные маркеры позволили выделить отдельные популяции EpCam+ эпителиальных клеток, CD45+ лейкоцитов и Vim+ стромальных клеток. Анализ результатов исследования был в значительной степени затруднен в силу высокой индивидуальной вариабельности образцов как по общему количеству клеток, так и по соотношению клеточных типов, что является следствием зависимости клеточного компонента молока от множества факторов: срока, прошедшего после родоразрешения, состояния здоровья матери и ребенка, степени опустошения груди перед сцеживанием и др.

Так как на предыдущем этапе исследования мы выявили, что выживаемость клеток имеет сходную динамику и при хранении в течение 72 ч не зависит от типа используемого молокоотсоса, мы сравнили образцы молока через 4 и 72 ч после сцеживания. Оказалось, что при такой длительности хранения молока двумя основными популяциями клеток являются эпителиальные клетки и лейкоциты, в то время как виментин-положительные стромальные клетки являются минорной популяцией (рис. 3, А). При длительном хранении охлажденного молока доля виментин-положительных клеток оставалась очень низкой, доля лейкоцитов снижалась (медианные значения уменьшались с 26 до 21%), а доля эпителиальных клеток соответствующим образом возрастала (рис. 3, Б).

170-1.jpg (67 KB)

Лейкоциты преобладают в составе молозива (до 70% всех клеток) и представлены в основном макрофагами (до половины всех лейкоцитов), нейтрофилами (до 40–50%) и, в меньшей степени, Т-лимфоцитами (не более 8%) и В-лимфоцитами (менее 1%). В зрелом же молоке лейкоциты являются транзиентной популяцией: количество их в значительной степени зависит от состояния здоровья диады «мать–ребенок», а продолжительность жизни колеблется от нескольких часов до нескольких месяцев в зависимости от типа [22, 25–27]. Мы предполагаем, что при длительном хранении молока в первую очередь погибали короткоживущие субпопуляции лейкоцитов.

Заключение

Нами установлено, что общее количество клеток в единице объема грудного молока не зависит от способа сцеживания, срока гестации или количества плодов: медианный показатель во всех группах составляет около 80 тыс. клеток в 1 мл молока. При использовании двойного клинического молокоотсоса Symphony увеличиваются как скорость сцеживания, так и объем сцеживаемого молока по сравнению с одинарным молокоотсосом, однако эти условия не влияют на общее содержание клеток в единице объема.

Клетки молока гетерогенны по своим морфологическим и функциональным свойствам, основными популяциями клеток являются эпителиальные клетки (в том числе миоэпителиальные клетки и люминальный эпителий) и лейкоциты, в то время как виментин-положительные стромальные клетки являются минорной популяцией. Соотношение двух основных популяций имеет значительные отличия в зависимости от индивидуальных особенностей донора молока. Хранение молока приводит к небольшому сдвигу соотношения эпителиальных клеток и лейкоцитов в пользу первых за счет частичной гибели короткоживущих субпопуляций лейкоцитов.

Хранение молока, независимо от способа сцеживания, приводит к постепенному снижению количества живых клеток, однако в течение первых 4 часов хранения независимо от выбранного температурного режима около трети всех клеток остаются живыми. Охлаждение молока до +4 °С позволяет продлить период данного уровня выживаемости клеток до 24 ч, при этом в образцах, полученных с использованием двойного молокоотсоса, данный эффект был более выраженным, что, по-видимому, обусловлено более высоким содержанием жира в молоке, сцеженном при использовании двойного молокоотсоса.

В случае необходимости отсроченного кормления сцеженным материнским молоком при соблюдении гигиенических требований собранное грудное молоко можно хранить в индивидуальных контейнерах при комнатной температуре в течение 4 ч или в холодильнике при температуре +4 °C в течение 24 ч без пастеризации.

References

  1. Hassiotou F., Twigger A., Hartmann P.E., Hodgetts S., Filgueira L. Neural differentiation of human breastmilk stem cells. Paper presented at: International Society for Research in Human Milk and Lactation; 2012; Trieste, Italy.
  2. Weiler I.J., Hickler W., Sprenger R. Demonstration that milk cells invade the suckling neonatal mouse. Am J Reprod Immunol. 1983; 4(2): 95–8. doi: 10.1111/j.1600-0897.1983.tb00261.x
  3. Zhou L., Yoshimura Y., Huang Y., Suzuki R., Yokoyama M., Okabe M., Shimamura M. Two independent pathways of maternal cell transmission to offspring: through placenta during pregnancy and by breast-feeding after birth. Immunology. 2000; 101(4): 570–81. doi: 10.1046/j.1365-2567.2000.00144.x
  4. Hassiotou F., Hepworth A.R., Metzger P., Tat Lai C., Trengove N., Hartmann P.E., et al. Maternal and infant infections stimulate a rapid leukocyte response in breastmilk. Clin Transl Immunol. 2013; 2(4): e3. doi: 10.1038/cti.2013.1
  5. Twigger A.J., Hodgetts S., Filgueira L., Hartmann P.E., Hassiotou F. From breast milk to brains: the potential of stem cells in human milk. J Hum Lact. 2013; 29(2): 136–9. doi: 10.1177/0890334413475528.
  6. Twigger A.J., Hepworth A.R., Lai C.T., Chetwynd E., Stuebe A.M., Blancafort P., et al. Gene expression in breastmilk cells is associated with maternal and infant characteristics. Sci Rep. 2015; 5: 12933. doi: 10.1038/srep12933.
  7. Sani M., Hosseini S.M., Salmannejad M., Aleahmad F., Ebrahimi S., Jahanshahi S., Talaei-Khozani T. Origins of the breast milk-derived cells; an endeavor to find the cell sources. Cell Biol Int. 2015; 39(5): 611-8. http://dx.doi.org/10.1002/cbin.10432
  8. Meier P.P., Engstrom J.L., Janes J.E., Jegier B.J., Loera F. Breast pump suction patterns that mimic the human infant during breastfeeding: Greater milk output in less time spent pumping for breast pump-dependent mothers with premature infants. J Perinatol. 2012; 32: 103–10. doi: 10.1038/jp.2011.64.
  9. Eglash A., Simon L.; Academy of Breastfeeding Medicine. ABM Clinical Protocol #8: Human Milk Storage Information for Home Use for Full-Term Infants, Revised 2017. Breastfeed Med. 2017; 12(7): 390–5. doi: 10.1089/bfm.2017.29047.aje.
  10. Jones F. Best Practice for Expressing, Storing and Handling Human Milk in Hospitals, Homes and Child Care Settings, Second Edition. The Human Milk Banking Association of NorthAmerica, (HMBANA). 3rd edition, 2011.
  11. ВОЗ. Руководство по грудному вскармливанию. Хранение сцеженного молока, 1997. [WHO. Breastfeeding Guide. Storage of expressed milk, 1997. (in Russian)].
  12. Родригес Х.М. Микробиота женского молока. Consilium medicum/ Педиатрия, 2016; 4: 35-40. [Rodríguez J.M. The human milk microbiota. Consilium Medicum. Pediatrics (Suppl.). 2016; 4: 35–40. (in Russian)]
  13. Prime D.K., Garbin C.P., Hartmann P.E., Kent J.C. Simultaneous breast expression in breastfeeding women is more efficacious than sequential breast expression. Breastfeed Med. 2012; 7: 442–7. doi: 10.1089/bfm.2011.0139
  14. Jones E., King C., Spencer A. Feeding and Nutrition in the Preterm Infant. Edinburgh. New York: Elsevier Churchill Livingstone, 2005. 205 р.
  15. Slutzah M., Codipilly C.N., Potak D., et al. Refrigerator storage of expressed human milk in the neonatl intensive care unit. J Pediatr. 2010; 156: 26–8. doi: 10.1016/j.jpeds.2009.07.023.
  16. СанПиН 2.1.3.2630-10. Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность. [SanPiN 2.1.3.2630-10. Sanitarno-epidemiologicheskiye trebovaniya k organizatsiyam, osushchestvlyayushchim meditsinskuyu deyatel’nost’. (in Russian)].
  17. Fan Y., Chong Y.S., Choolani M.A., Cregan M.D., Chan J.K.Y. Unravelling the Mystery of Stem/Progenitor Cells in Human Breast Milk. PLoS ONE. 2010; 5(12): e14421. https://doaj.org/article/3c23575beeb14201af7df8e124
  18. Indumathi S., Dhanasekaran M., Rajkumar J.S., Sudarsanam D. Exploring the stem cell and non-stem cell constituents of human breast milk. Cytotechnology. 2013; 65(3): 385–93. doi: 10.1007/s00464-014-3917-8
  19. Hassiotou F., Hartmann P.E. At the Dawn of a New Discovery: The Potential of Breast Milk Stem Cells. Adv Nutr. 2014; 5(6): 770–8. doi: 10.3945/an.114.006924.
  20. Pechoux C., Gudjonsson T., Ronnov-Jessen L., Bissell M.J., Petersen O.W. Human mammary luminal epithelial cells contain progenitors to myoepithelial cells. Dev Biol. 1999; 206: 88–99. doi: 10.1006/dbio.1998.9133
  21. Thomas E., Zeps N., Cregan M., Hartmann P., Martin T. 14-3-3σ (sigma) regulates proliferation and differentiation of mmultipotentp63-positive cells isolated from human breastmilk. CellCycle. 2011; 10(2): 1–7. DOI: 10.4161/cc.10.2.14470
  22. Hassiotou F., Geddes D.T., Hartmann P.E. Cells in human milk: state of the science. J Hum Lact. 2013; 29(2): 171–82. doi: 10.1177/0890334413477242.
  23. Patki S., Kadam S., Chandra V., Bhonde R. Human breast milk is a rich source of multipotent mesenchymal stem cells. Human Cell. 2010; 23(2): 35–40. doi: 10.1111/j.1749-0774.2010.00083.x.
  24. Sani M., Hosseini S.M., Salmannejad M., Aleahmad F., Ebrahimi S., Jahanshahi S., Talaei-Khozani T. Origins of the breast milk-derived cells; an endeavor to find the cell sources. Cell Biol Int. 2015; 39(5): 611–8. http://dx.doi.org/10.1002/cbin.10432
  25. Goldman A.S., Chheda S., Garofalo R. Spectrum of immunomodulating agents in human milk. Int J Pediatr. 1997, 4: 491.
  26. Jin Y.Y., Wei Zhao, Cao R.M, Xi Wang, Wu S.M., Chen T.X. Characterization of immunocompetent cells in human milk of Han Chinese. J Hum Lact. 2011; 27(2): 155-62. doi: 10.1177/0890334410392041.
  27. Hamprecht K., Maschmann J., Vochem M., Dietz K., Speer C.P., Jahn G. Epidemiology of transmission of cytomegalovirus from mother to preterm infant by breastfeeding. Lancet. 2001; 357: 513–8. DOI: 10.1016/S0140-6736(00)04043-5

Received 13.11.2019

Accepted 29.11.2019

About the Authors

Irina I. Ryumina, MD, Head of the Department of Pathology of Newborns and Premature Children, Scientific and Research Center for Microbiology, AGP named after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (903) 7708048. E-mail: i_ryumina@oparina4.ru
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Timur Kh. Fatkhudinov, MD, Deputy Director for Scientific Development, Federal State Budget Scientific Institution Scientific Research Institute of Human Morphology, Leading Scientific Researcher at the Laboratory of Regenerative Medicine, Scientific Research Center for Scientific and Applied Mathematics Academician V.I. Kulakova Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (903)256-11-57. E-mail: tfat@yandex.ru. ORCID iD 0000-0002-6498-5764.
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Irina V. Arutyunyan, Ph.D., Senior Researcher, Laboratory of Regenerative Medicine, Scientific Research Center of Medical Sciences named after A.P. Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia, NS growth and development laboratories of FSBI NIIMCH. Tel.: +7 (926)147-44-30. E-mail: labrosta@yandex.ru.
ORCID iD 0000-0002-4344-8943.
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Andrey V. Makarov, candidate of medical sciences, senior researcher at the Laboratory of Regenerative Medicine of the Scientific and Research Center “AGP named
after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (903) 256-34-04. E-mail: anvitmak@yandex.ru. ORCID iD 0000-0003-2133-2293.
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Anastasia V. Lokhonina, Researcher at the Laboratory of Regenerative Medicine, Russian Research Center for Medical Research “AGP named after Academician V.I. Kulakova of the Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (910)431-66-76. Email: nastya.serbsky@gmail.com. ORCID ID: 0000-0001-8077-2307.
Address: 117437, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Marina V. Narogan, MD, Leading Researcher, Department of Pathology of Newborns and Premature Children, NICC “AGP named after Academician V.I. Kulakova
“Ministry of Health of Russia; Professor, Department of Neonatology, Federal State Autonomous Educational Institution of Higher Education “First MGMU named
after THEM. Sechenov »Ministry of Health of Russia (Sechenov University). Tel.: +7 (905) 5501621. E-mail: m_narogan@oparina4.ru
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4; 119991, Moscow, st. Trubetskaya, d. 8, p. 2.
Kamila R. Sharipova, Clinical Resident of the Scientific and Research Center “AGP named after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia.
Tel.: +7 (977) 503-47-21. Email: k.r.sharipovaa@gmail.com
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Irina V. Orlovskaya, head of the clinical work of the department of pathology of newborns and premature babies NICC “AGP named after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia. Tel.: +7 (916) 6962056. E-mail: i_orlovskaya@oparina4.ru.
Address: 117997, Russia, Moscow, ul. Academician Oparin, d. 4.
Victor V. Zubkov, MD, director of the Institute of Neonatology and Pediatrics, NICC “AGP named after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia; Professor, Department of Neonatology, Federal State Autonomous Educational Institution of Higher Education “First MGMU named after THEM. Sechenov »Ministry of Health of Russia (Sechenov University).
Elena N. Baibarina, Chief Researcher, Institute of Neonatology and Pediatrics, NICC “AGP named after Academician V.I. Kulakova “Ministry of Health of Russia.

For citation: Ryumina I.I., Fatkhudinov T.Kh., Arutyunyan I.V., Makarov A.V., Lokhonina A.V., Narogan M.V., Sharipova K.R., Orlovskaya I.V., Zubkov V.V., Baibarina E.N. Survival and composition of the cellular component of breast milk under various conditions of its expression and storage.
Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and gynecology. 2020; 3: 164-72.(In Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.3.164-172

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.