Current ideas about the specific features of vaginal microbiocenosis in HIV-positive women of reproductive age

Maryanyan A.Yu., Slepchenko V.V., Rashidova M.A., Podkameneva T.V., Kolesnikova L.I.

1) Research Center of Family Health and Human Reproduction Problems, Irkutsk, Russia; 2) Irkutsk State Medical University, Ministry of Health of Russia, Irkutsk, Russia; 3) Irkutsk State Medical Academy of Postgraduate Education, Branch, Russian Medical Academy of Continuing Professional Education, Ministry of Health of Russia, Irkutsk, Russia
To analyze data from investigations dealing with the impact of HIV infection on vaginal microbiocenosis; to study the differences of dysbiotic disorders in seronegative and seropositive women; to evaluate the impact of the vaginal microbiota on the pre-exposure prophylaxis of HIV. The results of Russian and foreign studies of the microbiota in HIV-positive women, which had been published in international databases, were analyzed. The presented data analysis suggests that dysbiotic disorders are significantly more common in HIV-infected patients. The atypical clinical presentation of vaginal microbiocenotic changes has been also noted to prevail. There is a relationship between vaginal microbiocenosis in HIV-positive women and systemic immunity indicators and CD4+ cell levels.
There is a need for additional studies of the qualitative and quantitative composition of the microflora in HIV-positive women, by evaluating the impact of the vaginal microbiota and the influence of possible factors on the change in the concentration of antiretroviral drugs.

Keywords

vaginal microbiocenosis
HIV infection
dysbiotic disorders

Одной из основных проблем глобального общественного здравоохранения остается вирус иммунодефицита человека (ВИЧ). По данным Центра СПИД Иркутской области, ежегодно увеличивается рост числа ВИЧ-позитивных женщин, инфицированных половым путем. В 2018 г. в Иркутской области показатель заболеваемости составил 141,7 случая на 100 000 населения, из них 44,8% – женщины, в основном репродуктивного возраста [1].

Связь бактериального вагиноза и риска передачи ВИЧ-инфекции

В состав вагинальной микрофлоры входит более 300 видов микроорганизмов, которые находятся в тесной связи со структурными компонентами влагалища. Влагалищный эпителий покрыт многослойным плоским неороговевающим эпителием, который изменяется в ответ на действие гормонов организма. Под влиянием эстрогенов происходит насыщение клеток эпителия гликогеном, который питает микроорганизмы [2]. Lactobacillus участвуют в поддержании гомеостаза микробиоценоза влагалища, осуществляя барьерную функцию, ограничивая размножение транзиторной микрофлоры. В составе микрофлоры присутствуют также микроорганизмы, способные продуцировать молочную кислоту, поддерживая оптимальный баланс; к ним относятся условно-патогенные агенты (Megasphaera spp., Prevotella bivia, Leptotrichia spp.) и некоторые агенты, свидетельствующие о нарушении микробиоты влагалища (Atopobium vaginae) [3–6].

Одними из основных факторов, повышающих риск инфицирования половым путем ВИЧ-инфекцией, являются нарушение вагинальной микрофлоры и наличие заболеваний, передающихся половым путем. При возникновении бактериального вагиноза в 95% случаев присутствует Gardnerella vaginalis. Формирование биопленки на эпителии влагалища Gardnerella vaginalis сопровождается выделением цитокинов, способствующих деструкции клеток эпителия. Снижение роста Lactobacillus приводит к повышению концентрации ферментов (муциназы, сиалидазы, коллагеназы, протеазы, фосфолипазы А2 и С), органических кислот, ди- и полиаминов. Нарушение защитного эпителия влагалища увеличивает возможность быстрого прикрепления бактерий к клеткам эпителия [7].

При бактериальном вагинозе происходят защелачивание среды и активация лимфоцитов CD4+, которые становятся мишенями для ВИЧ, следовательно, увеличивается риск заражения партнеров ВИЧ-позитивных женщин [8, 9]. Длительное избыточное образование активных форм кислорода приводит к окислительному стрессу и, как следствие, к возникновению ряда патологических изменений [10, 11]. Иммунодефицит связан с прогрессированием ВИЧ-инфекции, что может привести к изменению в микробиоценозе влагалища и присоединению оппортунистических инфекций [12]. Благодаря снижению количественного и качественного состава микробиоты, происходит снижение активности ферментов антиоксидантной защиты (АОЗ) [13]. Наличие гиперпероксидации при снижении адаптационных возможностей системы АОЗ приводит к усилению окислительного стресса [14, 15].

Большинство исследований, связанных с изучением вагинальной микробиоты, проводились в Африке у ВИЧ-положительных женщин негроидной расы. Для оценки данных в основном использовались микроскопические методы, которые создают неполное представление о микробиоте влагалища. В 2017 г. Chehoud C. и соавт. [16] опубликовали результаты исследования, проведенного в Чикаго в двух больницах. Ученые оценивали влияние ВИЧ-инфекции на микробиоту влагалища и ее связь с лечением и демографическими факторами; сравнивали образцы вагинальной микробиоты, взятые от ВИЧ-положительных и ВИЧ-отрицательных женщин. Авторы использовали секвенирование гена рибосомной РНК 16S для характеристики присутствующих типов бактериальных сообществ. Chehoud C. и соавт. выявили, что ВИЧ-инфекция может способствовать возникновению нарушения микрофлоры влагалища, несмотря на эффективную антиретровирусную терапию [16]. Высокая частота наличия бактериального вагиноза представляет собой маркеры социально-экономических, генетических или других факторов, которые тоже положительно связаны с ВИЧ-инфекцией, но не коррелируют с ней. В 2017 г. опубликованы результаты исследования Gosmann C. и соавт. [17], подтверж­дающие связь между дисбиотическими нарушениями влагалища и повышением риска заражения ВИЧ. В проспективной когорте молодых, здоровых южноафриканских женщин авторы обнаружили, что люди с различными генитальными бактериальными сообществами, в которых преобладают анаэробы, отличные от Gardnerella, имели более высокий риск заражения ВИЧ и увеличенное количество активированных CD4+-Т-клеток слизистой, по сравнению с теми, у кого преобладают сообщества Lactobacillus crispatus. Анаэробные таксоны (Megasphaera, Clostridium, Prevotella, Atopobium vaginae и Sneathia) были связаны с усилением воспаления в цервикальном канале. Эпителиальные клетки шейки матки продуцировали более высокие концентрации IL-6 и IL-8 при совместном культивировании с Gardnerella vaginalis, Prevotella bivia и Prevotella amnii, по сравнению с Lactobacillus crispatus. Prevotella melaninogenica, Veillonella montpellierensis, Mycoplasma spp., Prevotella bivia и Sneathia sanguinegens связаны с усилением воспаления половых органов и тоже ассоциируются с приобретением ВИЧ. То есть наличие бактериального вагиноза увеличивает риск заражения ВИЧ, вызывая благоприятные условия для создания клеток-мишеней ВИЧ-инфекции. К такому же выводу пришли и другие ученые [18–20].

Coleman J.S. и соавт. [21] отметили, что при сниженном количестве Lactobacillus у женщин наблюдается увеличение РНК ВИЧ-1 в цервикальном канале, по сравнению с женщинами с нормоценозом. Исследование в Кении показало, что нарушение микробиоценоза влагалища способствует инфицированию ВИЧ и гонореей [22]. В других исследованиях отмечено, что у ВИЧ-позитивных женщин с бактериальным вагинозом концентрация возбудителя в вагинальном содержимом выше [23]. Это имеет большее значение с учетом быстрого распространения ВИЧ-инфекции. При оценке данных, проведенных в Зимбабве, выявлены связи распространенности ВИЧ с различными инфекциями репродуктивного тракта у женщин при отсутствии клинических проявлений. Mbizvo E.M. и соавт. отметили, что есть прямая корреляция между ВИЧ-инфекцией и бактериальным вагинозом [24].

В 2015 г. Eade C.R. и соавт. опубликовали данные, полученные при культивации эпителия цервикального канала и Atopobium vaginae у ВИЧ-положительных женщин. Авторы отметили, что бактериальный вагиноз способствует передаче ВИЧ-инфекции за счет повышения активности секретируемых пептидов c низкой молекулярной массой [25]. В том же году Jespers V. и соавт. [26] обследовали 426 африканских женщин методом полимеразной цепной реакции, чтобы выявить вероятность развития дисбактериоза. Было отмечено, что у женщин с оценкой по Nugent 4–6 баллов (промежуточный тип мазка) и оценкой 7–10 баллов (присутствие бактериального вагиноза) Gardnerella vaginalis (р=0,204) и Atopobium vaginae (р=0,001) широко представлены по сравнению с женщинами с оценкой 0–3 баллов (нормальная флора).

Особенности микробиоценоза влагалища при высокоактивной антиретровирусной терапии и использовании местных препаратов

В настоящее время изучаются препараты для предэкспозиционной профилактики ВИЧ (ПрЭП) [27, 28]. Ежедневный пероральный прием препаратов на основе тенофовира очень эффективен для снижения заболеваемости ВИЧ; такого рода профилактика распространяется на группы населения с высоким риском заражения ВИЧ [29, 30]. Препараты, содержащие, например, дапивирин, тенофовир, алафенамид, маравирок и т.д., тоже находятся на различных этапах исследования и могут стать многообещающими вариантами профилактики ВИЧ пролонгированного действия [31–33]. Однако Klatt N.R. и соавт. [34] в 2017 г. высказали предположение, что эффективность препаратов ПрЭП местного применения может снижаться при нарушении микрофлоры влагалища. Это является серьезной проблемой здравоохранения с учетом широкого распространения бактериального вагиноза у женщин в районах, наиболее вовлеченных в эпидемический процесс [35].

Вторичный анализ из когорты CAPRISA-004 показал, что эффект 1% геля на основе тенофовира отсутствует при наличии микробиоты влагалища с преобладанием Gardnerella vaginalis и других анаэробных бактерий [36]. В 2017 г. был опубликован анализ данных, сравнивающий эффективность пероральных и местных препаратов ПрЭП на основе тенофовира среди женщин с бактериальным вагинозом и без него. Было выявлено, что эффективность пероральных форм ПрЭП не изменяется при наличии бактериального вагиноза. Gardnerella vaginalis может быстро метаболизировать тенофовир, особенно когда он применяется только локально, и предотвращать попадание препарата в клетки. Вагинальный дисбиоз, ассоциированный с Gardnerella vaginalis, нарушает метаболизм и снижает эффективность 1% геля тенофовир, но не пероральных ПрЭП на основе тенофовира. Не было выявлено существенных различий эффективности между пероральными препаратами ПрЭП в период, когда у женщины нет нарушения микробиоты (оценка по Nugent 0–3 балла), при промежуточном типе мазка (4–6 баллов) и бактериальном вагинозе (оценка 7–10 баллов) [37]. Все это позволяет предположить, что дисбиотические нарушения влагалища не могут существенно снижать эффективность пероральной ПрЭП. Активные метаболиты тенофовира системно распределяются и обнаруживаются в большей концентрации в плазме крови при пероральном использовании, чем при местном применении [37, 38].

Метаболизм тенофовира может происходить довольно быстро; исследования показали снижение уровня тенофовир-дифосфата (активная форма тенофовира) в ткани шейки матки в течение 2 ч и снижение его концентрации в цервиковагинальной жидкости и плазме через одну неделю при наличии избыточного количества Gardnerella vaginalis [39].

На фоне использования высокоактивной антиретровирусной терапии (ВААРТ) заметно увеличилась продолжительность жизни ВИЧ-положительных больных. Однако одной из важных проблем для таких пациентов остается присоединение оппортунистических инфекций [40]. В 2015 г. Lallar M. и соавт. [41] опубликовали данные распространенности бактериального вагиноза, кандидоза, трихомониаза у ВИЧ-серопозитивных женщин. Авторы оценивали связь между применением ВААРТ и уровнем CD4+. В исследовании участвовали 200 ВИЧ-положительных женщин в возрасте от 18 до 45 лет. Среди них бактериальный вагиноз был выявлен в 47,7% случаев, кандидоз – в 43,2% и трихомониаз – в 8,8% случаев. В 30% случаев отмечена инфекция нижних половых путей (ИНПП) у женщин с числом лимфоцитов CD4+ <200 клеток/мкл, в 17,4% случаев – у женщин с уровнем CD4+ >200 клеток/мкл. ИНПП на фоне приема ВААРТ была выявлена в 23% случаев, при отсутствии антиретровирусной терапии – в 18,6% случаев. При низком уровне CD4+ у ВИЧ-положительных женщин выявляемость ИНПП выше, однако прием ВААРТ не снижает распространенность ИНПП. Главной целью ВААРТ является прерывание репликации вируса в организме и увеличение количества CD4+-лимфоцитов для восстановления нормального иммунного ответа. У ВИЧ-позитивных беременных при приеме ВААРТ было отмечено увеличение случаев нормоценозов, уменьшение случаев нарушения микробиоценоза влагалища, связанных с Mycoplasma spp. [42–45]. Восстановление местного иммунитета, а именно наличие стабильного микробиоценоза влагалища возможно за счет реализации клинического эффекта антиретровирусной терапии.

Заключение

Большинство исследований, отражающих высокую распространенность нарушения микрофлоры влагалища у ВИЧ-позитивных женщин по сравнению с серонегативными, было проведено среди популяции жительниц Африки.

Данные по изучению микробиоты ВИЧ-поло­жительных женщин европеоидной и азиатской рас отсутствуют. Необходимо провести оценку ка­чест­венного и количественного состава ВИЧ-по­ложительных женщин в нашей стране.

Результаты исследований многих ученых свидетельствуют о том, что дисбактериоз влагалища может снизить эффективность местных препаратов ПрЭП на основе тенофовира за счет изменения концентрации препарата.

При разработке новых актуальных стратегий профилактики ВИЧ необходимо уточнение факторов, влияющих на изменение биодоступности и эффективности препаратов. Эта проблема остается по-прежнему важной для достижения снижения уровня заболеваемости населения.

References

  1. Экспресс-информация об эпидемической ситуации по ВИЧ-инфекции на 01.01. 2019 г. по Иркутской области. Центр СПИД. [Express information on the HIV epidemic on 01.01. 2019 in the Irkutsk region. AIDS Center.(in Russian)]. https://aids38.ru/special/stat/
  2. Янковский Д.С., Дымент Г.С. Использование пробиотиков с целью улучшения репродуктивного здоровья женщины. Здоровье женщины. 2008; 2: 161–170. [Yankovskii D.S., Dyment G.S. Ispol’zovanie probiotikov s tsel’yu uluchsheniya re-produktivnogo zdorov’ya zhenshchiny. Zdorovje zhen-shchiny. 2008; 2:161–70. (In Russ.)]
  3. Плахова К.И., Гомберг М.А., Атрошкина М.Е. Роль Atopobium vaginae при рецидивировании бактериального вагиноза. Вестник дерматологии и венерологии. 2007; 5: 9–13. [Plahova K.I., Gomberg M.A., Atroshkina M.A. Rol Atopobium vaginae pri retsidivirovanii bakterialnogo vaginoza. Vestnik dermatologii i venerologii. 2007; 5: 9–13. (in Russian)]
  4. Рахматулина М.Р., Плахова К.И. Бактериальный вагиноз, ассоциированный с Atopobium vaginae: cовременные принципы диагностики и терапии. Акушерство и гинекология. 2012; 3: 88–92.[Rakhmatulina M.R., Plakhova K.I. Bacterial vaginosis associated with Atopobium. vaginae: the current principles of diagnosis and therapy. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and gynecology. 2012; 3: 88–92.(in Russian)].
  5. Ferris M.J., Masztal A., Aldridge K.E., Fortenberry J.D., Fidel P.L. Jr., Martin D.H. Association of Atopobium vaginae, a recently described metronidazole resistant anaerobe, with bacterial vaginosis. BMC Infectious Diseases. 2004; 4: 5–8. doi: 10.1186/1471-2334-4-5
  6. Verhelst R., Verstraelen H., Claeys G., Temmerman M., Vaneechoutte M. Culture-independent analysis of vaginal microflora: the unrecognized association of Atopobium vaginae with bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol. 2004; 191(4): 1130–2. doi: 10.1016/j.ajog.2004.04.013
  7. McGregor J., French L. Bacterial vaginosis in pregnancy. Obstet Gynecol Surv. 2000; 55: 1–19. doi: 10.1097/00006254-200005001-00001
  8. Nunn K.L., Wang Y.Y., Harit D., Humphrys M.S., Ma B., Cone R., et al. Enhanced Trapping of HIV-1 by Human Cervicovaginal Mucus Is Associated with Lactobacillus crispatus-Dominant Microbiota. MBio. 2015; 6(5): e01084–15. doi: 10.1128/mBio.01084-15
  9. Hill J.E., Goh S.H., Money D.M., Doyle M., Li A., Crosby W.L., Links M., et al. Characterization of vaginal microflora of healthy, nonpregnant women by haperonin-60 sequence-based methods. Am J Obstet Gynecol. 2005;193(3 Pt 1): 682–92. doi: 10.1016/j.ajog.2005.02.094
  10. Колесникова Л.И., Даренская М.А., Рашидова М.А., Шолохов Л.Ф., Гребенкина Л.А., Лещенко О.Я., Тимофеева Е.В. Оценка показателей оксидативного стресса у женщин с ВИЧ моно- и коинфекцией. Инфекционные болезни. 2016; 14(S1): 138. eLIBRARY ID: 26658883
  11. Kolesnikova L., Darenskaya M., Grebenkina L., Timofeeva E., Leshenko O., Semenova N., Kurashova N., Vanteeva O. Oxidative stress parameters in women with HIV and HIV/hepatitis B and/or C co-infection. Journal of AIDS and Clinical Research. 2014; 5(11): 5–11.
  12. Monaco C.L., Gootenberg D.B., Zhao G., Handley S.A., Ghebremichael M.S., Lim E.S., et al. Altered Virome and Bacterial Microbiome in Human Immunodeficiency Virus-Associated Acquired Immunodeficiency Syndrome. Cell Host Microbe. 2016; 19(3): 311–22. doi: 10.1016/j.chom.2016.02.011.
  13. Медведева О.А., Королев В.А., Авдеева Ю.А. Состояние микробиоценоза толстого кишечника и прооксидантно-антиоксидантного баланса колоноцитов в условиях экспериментального дисбиоза и профилактики мексидолом. Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Медицина. Фармация. 2017; 5(254): 134–40. [Medvedeva O.A., Korolev V.A., Avdeeva Yu.A. State of the large intestine microbiocenosis and prooxidant-antioxidant balance of colonocytes in experimental dysbiosis and prevention of Mexidol. Nauchnye vedomosti Belgorodskogo gosudarstvennogo universiteta. Serija: Medicina. Farmacija. 2017; 5(254): 134–40.(in Russian)] Leshchenko O., Marianian A., Timofeeva E., Atalyan A., Balochova T., Plotnicova Y., Suturina L. HIV infection in men and women of reproductive age. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 2017; 41(6): 150A. eLIBRARY ID: 30653253
  14. Marianian A., Timofeeva E., Atalyan A., Leshchenko O., Suturina L., Balachova T. Alcohol use, pregnancy planning, and reproductive health concerns in people living with HIV/AIDS in Russia. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 2018; 42(6): 76–79.eLIBRARY ID: 36082804
  15. Chehoud C., Stieh D.J., Bailey A.G., Laughlin A.L., Allen S.A., McCotter K.L., Sherrill-Mix S.A., Hope T.J., Bushman F.D., et al. Associations of the vaginal microbiota with HIV infection, bacterial vaginosis and demographic factors. AIDS. 2017; 31(7): 895–904. doi: 10.1097/QAD.0000000000001421.
  16. Gosmann C., Anahtar M.N., Handley S.A., Farcasanu M., Abu-Ali G., Bowman B.A., Padavattan N., Desai C., Droit L., Moodley A., Dong M., Chen Y., Ismail N., Ndung’u T., Ghebremichael M.S., Wesemann D.R., Mitchell C., Dong K.L., Huttenhower C., Walker B.D., Virgin H.W., Kwon D.S. Lactobacillus-Deficient Cervicovaginal Bacterial Communities are Associated with Increased HIV Acquisition in Young South African Women. Immunity. 2017; 46(1): 29–37. doi: 10.1016/j.immuni.2016.12.013
  17. Atashili J., Poole C., Ndumbe P.M., Adimora A.A., Smith J.S. Bacterial vaginosis and HIV acquisition: a meta-analysis of published studies. AIDS. 2008; 22(12): 1493–1501. doi: 10.1097/QAD.0b013e3283021a37.
  18. Passmore J.-A.S., Jaspan H.B., Masson L. Genital inflammation, immune activation and risk of sexual HIV acquisition. Curr Opin HIV AIDS. 2016;11(2): 156–62. doi: 10.1097/COH.0000000000000232.
  19. Masese L., Baeten J.M., Richardson B.A., Bukusi E., John-Stewart G., Graham S.M. et al. Changes in the contribution of genital tract infections to HIV acquisition among Kenyan high-risk women from 1993 to 2012. AIDS. 2015; 29(9):1077–85. doi: 10.1097/QAD.0000000000000646.
  20. Coleman J.S., Hitti J., Bukusi E.A., Mwachari C., Muliro A., Nguti R. et al. Infectious correlates of HIV-1 shedding in the female upper and lower genital tracts. AIDS. 2007; 21: 755–59. doi: 10.1097/QAD.0b013e328012b838
  21. Martin D. The microbiota of the vagina and its influence on women’s health and disease. Am J Med Sci. 2012; 343(1): 2–9. doi: 10.1097/MAJ.0b013e31823ea228.
  22. Mirmonsef P., Krass L., Landay A. The role of bacterial vaginosis and trichomonas in HIV transmission across the female genital tract. Curr. HIV Res. 2012; 10: 202–10. doi: 10.2174/157016212800618165
  23. Mbizvo E.M., Msuya S.E., Stray-Pedersen B. HIV seroprevalence and its associations with the other reproductive tract infections in asymptomatic women in Harare, Zimbabwe. Int J STD AIDS. 2001; 12: 524–31. doi: 10.1258/0956462011923624
  24. Eade C.R., Diaz C., Chen S., Cole A.L., Cole A.M. HIV-Enhancing Factors Are Secreted by Reproductive Epithelia upon Inoculation with Bacterial Vaginosis-Associated Bacteria. Protein Pept Lett. 2015; 22: 672–80. doi: 10.2174/0929866522666150309155735
  25. Jespers V., Crucitti T., van de Wijgert J., Vaneechoutte M., Delany-Moretlwe S., Mwaura M. A DNA tool for early detection of vaginal dysbiosis in African women. Res Microbiol. 2015; 11: 180–1. doi: 10.1016/j.resmic.2015.10.006.
  26. Adimora A.A., Ramirez C., Auerbach J.D., Aral S.O., Hodder S., Wingood G. et al. Preventing HIV infection in women. J Acquir Immune Defic Syndr. 2013; 63(02): 168–73. doi: 10.1097/QAI.0b013e318298a166
  27. Caceres C.F., O’Reilly K.R., Mayer K.H., Baggaley R. PrEP implementation: moving from trials to policy and practice. J Int AIDS Soc. 2015; 18(4): 202–22. doi: 10.7448/IAS.18.4.20222.
  28. Baeten J.M., Donnell D., Ndase P., Mugo N.R., Campbell J.D., Wangisi J, et al. Antiretroviral prophylaxis for HIV prevention in heterosexual men and women. N Engl J Med. 2012; 367(5): 399–410. doi: 10.1056/NEJMoa1108524.
  29. Thigpen M.C., Kebaabetswe P.M., Paxton L.A., Smith D.K., Rose C.E., Segolodi T.M. et al. Antiretroviral preexposure prophylaxis for heterosexual HIV transmission in Botswana. N Engl J Med. 2012; 367(5): 423–34. doi: 10.1056/NEJMoa1110711.
  30. Baeten J.M., Palanee-Phillips T., Brown E.R., Schwartz K., Soto-Torres L.E., Govender V. et al. Use of a vaginal ring containing dapivirine for HIV-1 prevention in women. N Engl J Med. 2016; 375: 2121–2132. doi: 10.1056/NEJMoa1506110.
  31. Nel A., van Niekerk N., Kapiga S., Bekker L.-G., Gama C., Gill K. et al. Safety and efficacy of a dapivirine vaginal ring for HIV prevention in women. N Engl J Med. 2016; 375(22): 2133–43. doi: 10.1056/NEJMoa1602046.
  32. Schlesinger E., Johengen D., Luecke E., Rothrock G., McGowan I., van der Straten A., et al. A tunable, biodegradable, thin-film polymer device as a long-acting implant delivering tenofovir alafenamide fumarate for HIV pre-exposure prophylaxis. Pharm Res. 2016; 33(7): 1649–56. doi: 10.1007/s11095-016-1904-6.
  33. Klatt N.R., Cheu R., Birse K., Zevin A.S., Perner M., Noel-Romas L. et al. Vaginal bacteria modify HIV tenofovir microbicide efficacy in African women. Science. 2017; 356: 938–45. doi: 10.1126/science.aai9383.
  34. Anahtar M.N., Byrne E.H., Doherty K.E., Bowman B.A., Yamamoto H.S., Soumillon M. et al. Cervicovaginal bacteria are a major modulator of host inflammatory responses in the female genital tract. Immunity. 2015; 42(5): 965–976. doi: 10.1016/j.immuni.2015.04.019.
  35. Akil A., Agashe H., Dezzutti C.S., Moncla B.J., Hillier S.L., Devlin B., et al. Formulation and characterization of polymeric films containing combinations of antiretrovirals (ARVs) for HIV prevention. Pharm Res. 2015; 32(2): 458–68. doi: 10.1007/s11095-014-1474-4.
  36. Heffron R.A. Oral PrEP is efficacious for HIV prevention among women with abnormal vaginal microbiota. Lancet HIV. 2017; 4(10): 449–56. doi: 10.1016/S2352-3018(17)30110-8.
  37. Hendrix C.W., Chen B.A., Guddera V., Hoesley C., Justman J., Nakabiito C. et al. MTN-001: randomized pharmacokinetic cross-over study comparing tenofovir vaginal gel and oral tablets in vaginal tissue and other compartments. PloS One. 2013; 8(1): 550–613. doi: 10.1371/journal.pone.0055013.
  38. Hillier S.L., Meyn L., Bunge K., Austin M., Moncla B.J., Dezzutti C. et al. Impact of vaginal microbiota on genital tissue and plasma concentrations of tenofovir. CROL. 2017; http://www.croiwebcasts.org/p/2017croi/croi33459
  39. Oliveira P., Mascarenhas R., Lacroix C., Ferrer S.R., C Oliverira R.P., Cravo E.A., et al. Braz J Infect Dis Candida species isolated from the vaginal mucosa of HIV-infected women in Salvador, Bahia, Brazil.2011;15: 239–44. doi: 10.1016/s1413-8670(11)70182-9
  40. Lallar M., Nanda S., Nandal R. Lower Genital Tract Infections in HIV-Infected Women: Can We Afford to Miss? J Obstet Gynecol India. 2015; 65: 45. https://doi.org/10.1007/s13224-014-0604-6
  41. Cohen C. J., Kuritzkes D.R.HIV essentials. Jones and Bartlett Learning, 2008; 192 p.
  42. Hall J., Hall B., Cockerell C. HIV/AIDS in the post-HAART era: Manifestations, treatment, and epidemiology. PMPH-USA, 2011; 1019 p. https://books.google.ru/books?id=9TR6XuLNhIUC
  43. Volberding P., Greene W., Lange J.M.A., Gallant J.E., Sewankambo N. Sande’s HIV/AIDS medicine: Medical management of AIDS 2013; Elsevier Health Sciences, 2012; 596 p. https://books.google.ru/books?id=DrsIKtpVimUC
  44. Saag M.S., Pavia, A.T., Chambers, H.F., Eliopoulos G.M., Gilbert D.N., ed. The Sanford guide to HIV/AIDS therapy. Antimicrobial Therapy Inc., 2017; 186 p. ISBN-13: 978-1944272050

Received 17.04.2019

Accepted 19.04.2019

About the Authors

Anait Yu Marianian., MD, PhD, Head of the Laboratory of Socially Important Problems of Reproductology, Leading Researcher; Associate Professor of the Department of Obstetrics and Gynecology of the ISMAPGE - Branch Campus of the FSBEI FPE RMACPE MOH Russian. Tel.: +7 (3952)207636; +7(914)0147065.
E-mail: anait_24@mail.ru; iphr@sbamsr.irk.ru ORCID: 0000-0002-9544-2172
Address: 664003, Russia, Irkutsk, Timiryazev str. 16.
Valeria V. Slepchenko , resident of the Department of Obstetrics and Gynecology, Irkutsk State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation.
Tel.: +7(908)6424540. E-mail: slepchenko.vv@mail.ru ORCID: 0000-0003-2807-4768
Address: 664003, Russia, Irkutsk, Krasnogo Vostania str. 1.
Maria A. Rashidova, PhD, Scientific Researcher, Laboratory of Physiology and Pathology of the endocrine system Centre for Family Health and Human Reproduction Problems. Tel.: +7 (3952)207636; +7(924)7018727. E-mail: rashidovama@mail.ru ORCID: 0000-0003-4730-5154
Address: 664003, Russia, Irkutsk, Timiryazeva str. 16.
Tatyana V. Podkameneva, PhD, assistant of the Department of Obstetrics and Gynecology with a course of gynecology of children and adolescents, Irkutsk State Medical University, Ministry of Health of the Russian Federation. Tel.: +7(924)8325060. E-mail: t.podkameneva@mail.ru ORCID: 0000-0002-4909-4680
Address: 664003, Russia, Irkutsk, Krasnogo Vostania str. 1.
Lyubov I. Kolesnikova, academician of RAS, Scientific Supervisor, Scientific Centre for Family Health and Human Reproduction Problems.
Tel.: +7 (3952)207636. E-mail: iphr@sbamsr.irk.ru ORCID: 0000-0003-3354-2992
Address: 664003, Russia, Irkutsk, Timiryazeva str. 16.

For citation: Maryanyan A.Yu., Slepchenko V.V., Rashidova M.A., Podkameneva T.V., Kolesnikova L.I. Current ideas about the specific features of vaginal microbiocenosis in HIV-positive women of reproductive age.
Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and gynecology. 2019; 12: 12-17. (In Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.12.12-17

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.