Use of embryo cryopreservation techniques in assisted reproductive technology programs

Kravchuk Ya.N., Kalugina A.S., Zubova Yu.G.

The paper gives an update on the use of an embryo cryopreservation technique in the assisted reproductive technology programs. The efficiency of slow freezing versus vitrification method is analyzed. The possibilities of non-invasive procedures for assessing the quality of embryos are considered.

Keywords

cryopreservation
slow freezing
vitrification

На сегодняшний день криоконсервация эмбрионов широко применяется в программах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Возможность переноса замороженных/размороженных эмбрионов приводит к увеличению кумулятивной частоты наступления беременности, позволяет избежать повторных циклов стимуляции суперовуляции, снизить риск развития синдрома гиперстимуляции яичников, тем самым повышая эффективность и безопасность ВРТ [7, 31]. Криоконсервированные эмбрионы могут быть использованы после неудачного переноса нативных эмбрионов или, в случае успешного завершения беременности, при желании семейной пары иметь еще детей данные программы могут быть реализованы позже. Таким образом, криоконсервация эмбрионов является альтернативным вариантом использования оставшихся эмбрионов [20, 25].

В настоящий момент существуют два основных метода криоконсервации: метод медленного замораживания и активно развивающийся в последние несколько лет метод витрификации.

Первая беременность в результате переноса эмбрионов после криоконсервации методом медленного замораживания была получена австралийскими врачами А. Trounson и L. Mohr в 1983 г. Следуя технологии метода медленного замораживания, эмбрионы постепенно подвергают воздействию относительно низких концентраций криопротекторов. Режим медленного замораживания обеспечивают аппаратные устройства, так называемые «программируемые замораживатели». После достижения необходимой температуры соломинки помещают в жидкий азот и хранят при температуре -196 оС. Размораживание эмбрионов проводят при комнатной температуре в откалиброванных средах. Сидинг и очень медленная скорость замораживания, использующиеся в технологии медленного замораживания, обеспечивают внеклеточное образование кристаллов льда, тем самым способствуя снижению вероятности криоповреждения клеток эмбрионов.

Метод витрификации впервые был применен на мышиных эмбрионах в 1985 г. В начале 90-х гг. прошлого века появились первые сообщения об успешном переносе пациенткам эмбрионов, витрифицированных на стадии пронуклеусов и 2–3 дней развития. Описание первой беременности, закончившейся родами после переноса пациентке бластоцист, криоконсервированных методом витрификации, принадлежит японскому врачу Y. Yokota.

В основе метода витрификации лежит ультрабыстрая технология охлаждения, исключающая кристаллообразование. В процессе витрификации эмбрионы сначала подвергают воздействию относительно высоких концентраций криопротекторов, а затем их погружают непосредственно в жидкий азот.

Основным сдерживающим фактором в развитии метода витрификации являлась необходимость использования высоких концентраций криопротекторов, оказывающих токсический эффект и вызывающих осмотическое повреждение клеток. Прорыв в области витрификации был связан с внедрением различных технологий (Cryotop, Cryoloop, Cryo-E, Rapid-i и т.д.), приводящих к уменьшению объема охлаждаемого образца, что позволило снизить концентрацию криопротекторов и значительно повысить эффективность метода [17, 23, 24, 35]. На сегодняшний день лидирующая роль по совершенствованию метода витрификации и исследованию в области криоконсервации принадлежит японскому врачу M. Kuwayama. Длительность хранения эмбрионов не влияет на их качество. В исследовании, проведенном R. Riggs и соавт. в 2010 г., хранение эмбрионов в течение двадцати лет не оказывало влияния на такие параметры, как выживаемость после оттаивания, частота имплантации, частота наступления беременности, число выкидышей и родов [27].

В ряде исследований было показано, что число интактных бластомеров является важным прогностическим фактором наступления беременности после переноса размороженных эмбрионов [43, 44]. Несмотря на значительные успехи в области криоконсервации эмбрионов, до сих пор нет единого мнения относительно стадии развития эмбрионов, наиболее оптимальной для криоконсервации. В некоторых странах, в частности в Германии, криоконсервация эмбрионов после слияния пронуклеусов запрещена по этическим соображениям. В лабораториях других стран, особенно в последнее время, в связи с улучшением методов культивирования предпочтение отдается более поздним стадиям развития эмбрионов – 2-го и 3-го дней развития и стадии бластоцисты [1]. При применении метода медленного замораживания для криоконсервации эмбрионов на стадии зиготы выживаемость находилась в пределах 69–86,5% [22, 29], а частота наступления беременности не превышала 29%, что значимо уступало эффективности использования нативных зигот [39]. Тем не менее, по некоторым данным, выживаемость и клинические результаты были выше при криоконсервации эмбрионов на стадии пронуклеусов по сравнению с замораживанием эмбрионов на ранней стадии дробления [6, 22].

Появление метода витрификации позволило повысить выживаемость эмбрионов на стадии пронуклеусов до 81–93%, а также улучшить клинические результаты [13, 21]. В исследованиях, сравнивающих эффективность метода медленного замораживания и витрификации, получены следующие результаты. По данным M. Kuwayama и соавт., выживаемость 5881 витрифицированных на стадии пронуклеусов эмбрионов составила 100%, стадии дробления – 93%, а стадии бластоцисты – 52%. В то время как после криоконсервации эмбрионов на той же стадии развития методом медленного замораживания эти показатели составили 80, 90 и 41% соответственно [16]. Кроме того, S. Al-Hasani и соавт. получили более высокую частоту наступления беременности после витрификации (36,9%) по сравнению с медленным замораживанием (10,2%) [3].

По данным литературы, выживаемость при криоконсервации эмбрионов на стадии дробления методом медленного замораживания колебалась в пределах 43,1–80,6%, а частота наступления беременности составляла 18,3–46,9% [5, 29, 42]. При использовании метода витрификации большинству исследователей удалось достичь высокой выживаемости эмбрионов. В среднем этот показатель составил более 80%. Частота наступления беременности также была выше по сравнению с методом медленного замораживания и находилась в пределах 22–35% [16, 26, 35]. В более поздних исследованиях при использовании метода витрификации частоту наступления беременности удалось повысить до 49% [4].

Наибольший сравнительный анализ эффективности метода витрификации и медленного замораживания был проведен M. Kuwayama и соавт., которые показали, что выживаемость эмбрионов на стадии дробления после витрификации выше (98%) по сравнению с медленным замораживанием (91%). Но при этом частота наступления беременности при сравнении этих двух методов значимо не различалась и составила 51% для медленного замораживания и 53% для витрификации [16]. Однако сравнение результатов криоконсервации эмбрионов 3-го дня развития методом витрификации и медленного замораживания, проведенное G.A. Rama Raju и соавт., показало, что метод витрификации более эффективен по всем параметрам. Выживаемость (95,3%), частота имплантации (35%) и наступления беременности (14%) после витрификации значимо превышали эти показатели по сравнению с медленным замораживанием, которые составили в этой группе 60,0, 17,4 и 4,2% соответственно [26]. По данным B. Balaban и соавт. (2008), эмбрионы 3-го дня значительно лучше переносили витрификацию (94,8%), чем медленное замораживание (88,7%). Утилизация пирувата, отражающая уровень метаболизма, была выше у эмбрионов, подвергшихся витрификации. Кроме того, в витрифицированной группе число эмбрионов, достигших стадии бластоцисты, было выше (60,3%) по сравнению с группой, подвергшейся медленному замораживанию (49,5%) [4]. В исследовании, проведенном M.R. Valojerdi и соавт. в 2009 г., метод витрификации также оказался более эффективным по сравнению с методом медленного замораживания [38]. Исследования, сравнивающие результаты криоконсервации бластоцист методом медленного замораживания и витрификации, показали следующее. По данным E.J. Stehlik и соавт., выживаемость бластоцист при использовании метода медленного замораживания составила 83,1%, а частота наступления беременности не превышала 16,7%. Эти показатели при использовании витрифицированных бластоцист достигли 100 и 50% соответственно [33]. По данным C. Huang и соавт., выживаемость бластоцист после витрификации была значительно выше (84%) по сравнению с бластоцистами, подвергшимися медленному замораживанию (56,9%) [12]. Однако в исследовании, проведенном J. Lieberman и M.J. Tucker, метод витрификации приводил к такой же выживаемости (96,5%) и частоте наступления беременности (46,1%), что и метод медленного замораживания (92,1 и 42,9%) [19]. Наибольший вклад внесло исследование, проведенное M. Kuwayama и соавт., в котором было использовано более 6000 бластоцист человека. Выживаемость после витрификации составила 90,0%, а частота наступления беременности – 53,0%, в то время как после медленного замораживания эти показатели были ниже – 84,0 и 51,0% соответственно [16].

Таким образом, по данным различных исследователей, выживаемость размороженных бластоцист при использовании протокола медленного замораживания находится в пределах 56,9–91,2%, а после витрификации – 79–100%. В недавно проведенном исследовании D. Zhu и соавт. результаты переноса витрифицированных эмбрионов на стадии бластоцисты оказались лучше по сравнению с переносом нативных бластоцист. Так, частота имплантации (37%) и частота наступления беременности (55,1%) статистически значимо превышали эти показатели в контрольной группе, которые составили 25,2 и 36,4% соответственно [45]. Исследования, проведенные K. Takahashi и соавт., показали, что частота врожденных пороков одинакова среди детей, полученных после переноса витрифицированных и нативных бластоцист (1,4%) [36]. J. Liebermann и M.J. Tucker также не выявили повышения частоты врожденных поро-ков после переноса витрифицированных и медленно замороженных бластоцист [19].

В литературе представлен ряд исследований, направленных на повышение выживаемости эмбрионов после криоконсервации. Предложенные методики включают в себя воздействие на такие криочувствительные компоненты клетки, как клеточная мембрана, цитоскелет, условия культивирования эмбрионов и другие [11, 15]. Бóльшая часть из них носит экспериментальный характер. Попытки улучшить результаты криоконсервации путем различных воздействий на эмбрионы требуют дальнейших исследований, в ходе которых удастся выбрать наиболее эффективные и включить их в протоколы криоконсервации.

Успешность программ ВРТ во многом зависит от качества и имплантационного потенциала переносимых эмбрионов [14, 28]. Для криоконсервации отбирают эмбрионы только хорошего и отличного качества. Однако оценка качества эмбрионов в основном строится на анализе их морфологических характеристик. В ряде исследований было показано, что корреляция между морфологическими параметрами эмбрионов и их жизнеспособностью и способностью к имплантации невысока [30]. Проведение преимплантационной генетической диагностики методом FISH также имеет ряд недостатков, ограничивающих его возможности. К ним относятся риск повреждения эмбриона в ходе проведения биопсии, мозаицизм, а также лимитированное количество исследуемых хромосом. Поэтому в настоящий момент активно изучаются альтернативные технологии скрининга анеуплоидии, например сравнительная геномная гибридизация, проводимая на клетках, полученных в ходе биопсии трофэктодермы бластоцист [2].

В недавнее время были предложены новые неинвазивные способы оценки жизнеспособности эмбрионов, в основе которых лежит анализ метаболизма, измерение специфических молекул (аминокислот, протеинов, глюкозы, жирных кислот и т.д.) в культуральной среде, коррелирующих с имплантационным потенциалом эмбрионов [34]. Так, например было показано, что эмбрионы с бóльшим уровнем потребления кислорода более жизнеспособны и характеризуются более высокой частотой имплантации [37, 41]. Метаболомика позволяет провести быструю неинвазивную оценку эмбрионов непосредственно перед переносом. Последующие исследования позволят определить возможность применения метаболических тестов в программах ВРТ, а дальнейшее совершенствование технологий позволит использовать данные тесты в рутинной практике.

Метод динамической морфологической оценки эмбрионов (time-lapse съемка) также является новым многообещающим направлением [18, 40]. Основные исследования в этой области нацелены на поиск морфологических маркеров, определяющих развитие эмбрионов хорошего качества с высоким потенциалом к имплантации.

Таким образом, криоконсервация эмбрионов является эффективным методом, значительно расширяющим возможности программ ВРТ. А метод витрификации является новым многообещающим подходом к криоконсервации эмбрионов человека на всех стадиях развития.

References

1. Vejsman A. Perenos kriojembrionov. Problemy reprodukcii. 2010; 16(2): 34–40.
2. Alfarawati S., Fragouli E., Colls P., Stevens J., Gutiérrez-Mateo C., Schoolcraft W.B. et al. The relationship between blastocyst morphology, chromosomal abnormality, and embryo gender. Fertil. Steril. 2011; 95(2): 520–4.
3. Al-Hasani S., Ozmen B., Koutlaki N., Schoepper B., Diedrich K., Schultze-Mosgau A. Three years of routine vitrification of human zygotes: is it still fair to advocate slow-rate freezing? Reprod. Biomed. Online. 2007; 14(3): 288–93.
4. Balaban B., Urman B., Ata B., Isiklar A., Larman M.G., Hamilton R., Gardner D.K. A randomized controlled study of human Day 3 embryo cryopreservation by slow freezing or vitrification: vitrification is associated with higher survival, metabolism and blastocyst formation. Hum. Reprod. 2008; 23(9): 1976–82.
5. Chi H.J., Koo J.J., Kim M.Y., Joo J.Y., Chang S.S., Chung K.S. Cryopreservation of human embryos using ethylene glycol in controlled slow freezing. Hum. Reprod. 2002; 17(8): 2146–51.
6. Damario M.A., Hammitt D.G., Session D.R., Dumesic D.A. Embryo cryopreservation at the pronuclear stage and efficient embryo use optimizes the chance for a liveborn infant from a single oocyte retrieval. Fertil. Steril. 2000; 73(4): 767–73.
7. El-Toukhy T., Wharf E., Walavalkar R., Singh A., Bolton V., Khalaf Y., Braude P. Delayed blastocyst development does not influence the outcome of frozen-thawed transfer cycles. Br. J. Obstet. Gynaecol. 2011; 118(13): 1551–6.
8. Fitzmaurice G.J., Boylan C., McClure N. Are pregnancy rates compromised following embryo freezing to prevent OHSS? Ulster Med. J. 2008; 77(3): 164–7.
9. Hashimoto S., Murata Y., Kikkawa M. Successful delivery after the transfer of twice-vitrified embryos derived from in vitro matured oocytes: A Case Report. Hum. Reprod. 2007; 22(1): 221–3.
10. Hiraoka K., Fujimoto Y. , Tateaki Y., Hiraoka K., Horiuchi T., Okano S. et al. Case report: two successful pregnancies following the transfer of re-vitrified human day 7 blastocysts developed from vitrified cleaved embryos. J. Assist. Reprod. Genet. 2008; 25(9-10): 503–9.
11. Hiraoka K., Hiraoka K., Horiuchi T., Kusuda T., Okano S., Kinutani M., Kinutani K. Case report: successful delivery following the transfer of a human re-vitrified day-7 spontaneously hatched blastocyst developed from vitrified cleaved embryos. J. Assist. Reprod. Genet. 2009; 26(7): 405–9.
12. Hiraoka K., Kiraoka K., Kinutani M., Kinutani K. Blastocoele collapse by micropipetting prior to vitrification gives excellent survival and pregnancy outcomes for human day 5 and 6 expanded blastocysts. Hum. Reprod. 2004; 19(12): 2884–8.
13. Horvath G., Seidel G.E. Vitrification of bovine oocytes after treatment with cholesterol-loaded methyl-beta-cyclodextrin. Theriogenology. 2006; 66: 1026-33.
14. Huang C.C., Lee T.H., Chen S.U., Chen H.H., Cheng T.C., Liu C.H. et al. Successful pregnancy following blastocyst cryopreservation using super-cooling ultra-rapid vitrification. Hum. Reprod. 2005; 20(1): 122–8.
15. Jelinkova L., Selman H.A., Arav A., Strehler E., Reeka N., Sterzik K. Twin pregnancy after vitrification of 2-pronuclei human embryos. Fertil. Steril. 2002; 77(2): 412–4.
16. Kader A., Choi A., Orief Y., Agarwal A. Factors affecting the outcome of human blastocyst vitrification. Reprod. Biol. Endocrinol. 2009; 7: 99.
17. Kader A., Sharma R.K., Falcone T., Agarwal A. Mouse blastocyst previtrification interventions and DNA integrity. Fertil. Steril. 2010; 93: 1518–25.
18. Kaufman R.A., Ménézo Y., Hazout A., Nicollet B., DuMont M., Servy E.J. Cocultured blastocyst cryopreservation: experience of more than 500 transfer cycles. Fertil. Steril. 1995; 64(6): 1125–9.
19. Kuwayama M., Vajta G., Ieda S., Kato O. Comparison of open and closed methods for vitrification of human embryos and the elimination of potential contamination. Reprod. Biomed. Online. 2005; 11(5): 608–14.
20. Larman M.G., Gardner D.K. Vitrification of mouse embryos with super-cooled air. Fertil. Steril. 2011; 95(4): 1462–6.
21. Lemmen J.G. , Agerholm I., Ziebe S. Kinetic markers of human embryo quality using time-lapse recordings of IVF/ICSI fertilized oocytes. Reprod. Biomed. Online. 2008; 17: 385–91.
22. Lieberman J., Tucker M.J. Comparison of vitrification and conventional cryopreservation of day 5 and day 6 blastocysts during clinical application. Fertil. Steril. 2006; 86(1): 20–6.
23. Ménézo Y., Nicollet B., Herbaut N., André D. Freezing cocultured human blastocysts. Fertil. Steril. 1992; 58(5): 977–80.
24. Mesut N., Ciray H.N., Mesut A., Aksoy T., Bahceci M. Cryopreservation of blastocysts is the most feasible strategy in good responder patients. Fertil. Steril. 2011; 96(5): 1121–5.
25. Mukaida T., Oka C., Goto T., Takahashi K. Artificial shrinkage of blastocoeles using either a micro-needle or a laser pulse prior to the cooling steps of vitrification improves survival rate and pregnancy outcome of vitrified human blastocysts. Hum. Reprod. 2006; 21(12): 3246–52.
26. Nachtigall R.D., Mac Dougall K., Harrington J., Duff J., Lee M., Becker G. How couples who have undergone IVF decide what to do with surplus frozen embryos. Fertil. Steril. 2009; 92(6): 2094–6.
27. Park S.P., Kim E.Y., Oh J.H., Nam H.K., Lee K.S., Park S.Y. et al. Ultra-rapid freezing of human multipronuclear zygotes using electron microscope grids. Hum. Reprod. 2000; 15(8): 1787–90.
28. Pavone M.E., Innes J., Hirshfeld-Cytron J., Kazer R., Zhang J. Comparing thaw survival, implantation and live birth rates from cryopreserved zygotes, embryos and blastocysts. J. Hum. Reprod. Sci. 2011; 4(1): 23–8.
29. Petyim S., Makemahar O., Kunathikom S., Choavaratana R., Laokirkkiat P., Penparkkul K. The successful pregnancy and birth of a healthy baby after human blastocyst vitrification using Cryo-E, first case in Siriraj Hospital. J. Med. Assoc. Thai. 2009; 92(8): 1116–21.
30. Portman M., Nag y Z.P., Behr B. Evaluation of blastocyst survival following vitrification/warming using two different closed carrier systems. Hum. Reprod. 2010; 25(Suppl. 1): 375.
31. Provoost V., Pennings G., De Sutter P., Gerris J., Van de Velde A., Dhont M. Patients’ conceptualization of cryopreserved embryos used in their fertility treatment. Hum. Reprod. 2010; 25(3): 705–13.
32. Rama Raju G.A., Haranath G.B., Krishna K.M., Prakash G.J., Madan K. Vitrification of human 8-cell embryos, a modified protocol for better pregnancy rates. Reprod. Biomed. Online. 2005; 11(4): 434–7.
33. Rama Raju G.A., Prakash G.J., Krishna K.M., Madan K. Vitrification of human early cavitating and deflated expanded blastocysts: clinical outcome of 474 cycles. J. Assist. Reprod. Genet. 2009; 26(9–10): 523–9.
34. Riggs R., Mayer J., Dowling-Lacey D., Chi T.F., Jones E., Oehninger S. Does storage time influence postthaw survival and pregnancy outcome? An analysis of 11,768 cryopreserved human embryos. Fertil. Steril. 2010; 93(1): 109–15.
35. Roberts S.A., Hirst W.M., Brison D.R., Vail A.; towardSET collaboration. Embryo and uterine influences on IVF outcomes: an analysis of a UK multi-centre cohort. Hum. Reprod. 2010; 25(11): 2792–802.
36. Salumets A., Tuuri T., Mäkinen S., Vilska S., Husu L., Tainio R., Suikkari A.M. Effect of developmental stage of embryo at freezing on pregnancy outcome of frozen-thawed embryo transfer. Hum. Reprod. 2003; 18(9): 1890–5.
37. Senn A., Urner F., Chanson A., Primi M.P., Wirthner D., Germond M. Morphological scoring of human pronuclear zygotes for prediction of pregnancy outcome. Hum. Reprod. 2006; 21(1): 234–9.
38. Sills E.S., McLoughlin L.J., Genton M.G., Walsh D.J., Coull G.D., Walsh A.P. Ovarian hyperstimulation syndrome and prophylactic human embryo cryopreservation: analysis of reproductive outcome following thawed embryo transfer. J. Ovarian Res. 2008; 1(1): 7. URL: http://www.ovarianresearch.com/content/1/1/7
39. Son W.Y., Yoon S.H., Yoon H.J., Lee S.M., Lim J.H. Pregnancy outcome following transfer of human blastocysts vitrified on electron microscopy grids after induced collapse of the blastocoele. Hum. Reprod. 2003; 18(1): 137–9.
40. Stanger J., Wong J., Conceicao J., Yovich J. Vitrification of human embryos previously cryostored by either slow freezing or vitrification results in high pregnancy rates. Reprod. Biomed. Online. 2012; 24(3): 314–20.
41. Stehlik E., Stehlik J., Katayama K.P., Kuwayama M., Jambor V., Brohammer R., Kato O. Vitrification demonstrates significant improvement versus slow freezing of human blastocysts. Reprod. Biomed. Online. 2005; 11(1): 53–7.
42. Stokes P.J., Hawkhead J.A., Fawthrop R.K., Picton H.M., Sharma V., Leese H.J., Houghton F.D. Metabolism of human embryos following cryopreservation: Implications for the safety and selection of embryos for transfer in clinical IVF. Hum. Reprod. 2007; 22(3): 829–35.
43. Sugiyama R., Nakagawa K., Shirai A., Sugiyama R., Nishi Y., Kuribayashi Y., Inoue M. Clinical outcomes resulting from the transfer of vitrified human embryos using a new device for cryopreservation (plastic blade). J. Assist. Reprod. Genet. 2010; 27(4): 161–7.
44. Takahashi K., Mukaida T., Goto T., Oka C. Perinatal outcome of blastocyst transfer with vitrification using cryoloop: a 4 year follow-up study. Fertil. Steril. 2005; 84(1): 88–92.
45. Tejera A., Herrero J., de Los Santos M.J., Garrido N., Ramsing N., Meseguer M. Oxygen consumption is a quality marker for human oocytes competence conditioned by ovarian stimulation regimens. Fertil. Steril. 2011; 96(3): 618–23.
46. Rezazadeh Valojerdi M., Eftekhari-Yazdi P., Karimian L., Hassani F., Movaghar B. Vitrification versus slow freezing gives excellent survival, post warming embryo morphology and pregnancy outcomes for human cleaved embryos. J. Assist. Reprod. Genet. 2009; 26(6): 347–54.
47. Veeck L.L., Amundson C.H., Brothman L.J., DeScisciolo C., Maloney M.K., Muasher S.J., Jones H.W. Jr. Significantly enhanced pregnancy rates per cycle through cryopreservation and thaw of pronuclear stage oocyte. Fertil. Steril. 1993; 59(6): 1202–7.
48. Wanderzwalmen P., Bertin G., Debauche Ch., Standaert V., Bollen N., van Roosendaal E. et al. Vitrification of human blastocysts with the Hemi-Straw carrier: application of assisted hatching after thawing. Hum. Reprod. 2003; 18(7): 1504–11.
49. Wanderzwalmen P., Bertin G., Debauche Ch., Standaert V., van Roosendaal E., Vandervorst M. et al. Birth after vitrification at morula and blastocyst stage: effect of artificial reduction of the blastocoelic cavity before vitrification. Hum. Reprod. 2002; 17(3): 744–51.
50. Wikland M., Hardarson T., Hillensjö T., Westin C., Westlander G., Wood M., Wennerholm U.B. Obstetric outcomes after transfer of vitrified blastocysts. Hum. Reprod. 2010; 25(7): 1699–707.
51. Wong C.C., Loewke K.E., Bossert N.L., Behr B., De Jonge C.J., Baer T.M., Reijo Pera R.A. Non-invasive imaging of human embryos before embryonic genome activation predicts development to the blastocyst stage. Nat. Biotechnol. 2010; 28(10): 1115–21.
52. Yamanaka M., Hashimoto S., Amo A., Ito-Sasaki T., Abe H., Morimoto Y. Developmental assessment of human vitrified-warmed blastocysts based on oxygen consumption. Hum. Reprod. 2011; 26(12): 3366–71.
53. Yanaihara A., Yorimitsu T., Motoyama H., Ohara M., Kawamura T. Clinical outcome of frozen blastocyst transfer; single vs. double transfer. J. Assist. Reprod. Genet. 2008; 25(11-12): 531–4.
54. Yeung W.S., Li R.H., Cheung T.M., Ng E.H., Lau E.Y., Ho P.C. Frozen-thawed embryo transfer cycles. Hong Kong Med. J. 2009; 15(6): 420–6.
55. Zhang S., Lu C., Lin G., Gong F., Lu G. The number of blastomeres in post-thawing embryos affects the rates of pregnancy and delivery in freeze-embryo-transfer cycles. J. Assist. Reprod. Genet. 2009; 26(11–12): 569–73.
56. Zheng X., Liu P., Chen G., Qiao J., Wu Y., Fan M. Viability of frozen-thawed human embryos with one-two blastomeres lysis. J. Assist. Reprod. Genet. 2008; 25(7): 281–5.
57. Zhu D., Zhang J., Cao S., Zhang J., Heng B.C., Huang M. et al. Vitrified-warmed blastocyst transfer cycles yield higher pregnancy and implantation rates compared with fresh blastocyst transfer cycles – time for a new embryo transfer strategy? Fertil. Steril. 2011; 95(5): 1691–5.

About the Authors

Kravchuk Yana Nikolayevna, Postgraduate Student, Department of Female Reproductive Health, I.I. Mechnikov North-Western State Medical University
Telephone: 8(921) 895-87-95. E-mail: ynkravchuk@mail.ru

Kalugina Alla Stanislavovna, MD, Postgraduate Student, Department of Female Reproductive Health, I.I. Mechnikov North-Western State Medical University; Deputy Head Doctor in Reproductive Medicine, AVA-PETER Clinic
Address: 22-24, Nevsky Prospekt, Saint Petersburg 191186, Russia. Telephone: 8 (812) 600-77-78. E-mail: Kalugina-AS@avaclinic.ru

Zubova Yulia Gennadyevna, Embryologist, AVA-PETER Clinic
Address: 22-24, Nevsky Prospekt, Saint Petersburg 191186, Russia. Telephone: (812) 600-77-78

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.