Use of donor gametes and embryos for the treatment of infertility

Bichevaya N.K., Leontyeva O.A., Saifitdinova A.F., Pastukhova Yu.R., Kuznetsova R.A., Nevskaya E.E., Reshetnikov I.V., Panina A.N., Samoilovich Ya.A., Pashina O.B., Puppo I.L., Isakova E.V.

1) International Center for Reproductive Medicine, Saint Petersburg, Russia; 2) A.I. Herzen Russian State Pedagogical University, Saint Petersburg, Russia; 3) V.A. Almazov National Medical Research Center, Saint Petersburg, Russia
Objective. To evaluate the effectiveness of programs using donor gametes and embryos for the treatment of infertility by assisted reproductive technologies (ART).
Materials and methods. The investigation used data on the effectiveness of ART cycles using donor sperm (DS), both fresh and cryopreserved donor oocytes (DOs, or donor embryos (DEs), including those after preimplantation genetic testing for aneuploidy (PGT-A).
Results. Analysis of the effectiveness of 165 cycles with DS revealed a relationship of the effectiveness of programs using DS to a woman’s age. The analysis of that of 299 cycles with DOs showed no significant differences in the programs using fresh and cryopreserved DOs. The results of 32 cycles with DEs suggest their high efficiency.
Conclusion. The findings suggest that the use of donor gametes and embryos in the ART programs is highly effective in overcoming infertility. These programs used in accordance with clinical indications allow pregnancy to be achieved in patients who have significant restrictions on the use of their own gametes.

Keywords

assisted reproductive technologies
oocyte donor
sperm donor
cultivation
cryopreservation
preimplantation genetic testing

Программы с использованием донорских гамет и эмбрионов способствуют решению проблем бесплодия разной этиологии. Исторически сложилось так, что использование донорской спермы (ДС) изначально планировалось при мужском бесплодии, а именно азооспермии, тяжелой олигозооспермии и другой выраженной патозооспермии или нарушениях эякуляции у мужчины. Позже к показаниям добавились наследственные заболевания, наличие у мужа (партнера) неизлечимой инфекции, передаваемой половым путем, а также следующие показания со стороны женщины: отрицательный Rh-фактор и тяжелая Rh-изоиммунизация при наличии положительного Rh-фактора у супруга, вынужденное бесплодие, связанное с отсутствием полового партнера [1]. Первая беременность, возникшая в результате переноса донорского эмбриона (ДЭ), была зарегистрирована в 1983 г. у женщины с овуляторным менструальным циклом, но бесплодной [2]. Беременность закончилась самопроизвольным абортом на сроке 10 недель. Через 4 месяца первые успешные беременности, полученные в результате оплодотворения донорских яйцеклеток спермой партнеров, закончившиеся впоследствии рождением здоровых детей, были зарегистрированы сразу у двух женщин [3]. Основными показаниями для проведения программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) с использованием донорских ооцитов (ДО) являются: отсутствие ооцитов, обусловленное естественной менопаузой, синдром недостаточности яичников, состояние после овариэктомии, химиотерапия, генетические заболевания; неудачные повторные попытки переноса эмбрионов при 3 и более попытках в программах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) и интрацитоплазматической инъекции сперматозоида (ИКСИ); недостаточный ответ яичников на стимуляцию, неоднократное получение эмбрионов низкого качества, перенос которых не приводит к наступлению беременности; наличие у женщины генетических заболеваний, сцепленных с полом [1]. Перенос ДЭ рассматривается при отсутствии у партнеров собственных половых клеток, высоком риске передачи наследственных заболеваний, неоднократном получении эмбрионов низкого качества, перенос которых не приводит к наступлению беременности в паре [1, 4].

В нашей стране первый банк ДС был создан в Международном центре репродуктивной медицины (МЦРМ, Санкт-Петербург) в 1995 г. [5]; за 25 лет его деятельности в программе приняли участие 119 доноров. В том же году в МЦРМ был проведен первый в России цикл с использованием свежих донорских яйцеклеток [6]. Следом за этим была начата работа по криоконсервации яйцеклеток и созданию банка ДО. Уже в 2003 г. впервые в практике ЭКО в России на свет родилась тройня после переноса эмбрионов, полученных из размороженных ДО [7]. Накопленный опыт позволяет нам на собственных данных провести анализ эффективности программ лечения бесплодия с использованием донорских гамет и эмбрионов в циклах ВРТ.

Материалы и методы

Материалом для исследования послужили данные о результативности циклов с использованием ДС, свежих и размороженных ДО, а также с использованием ДЭ. Для участия в программах ВРТ с использованием ДС, ДО, ДЭ отбирались пациенты по показаниям, перечисленным в п.п. 55, 63, 74 Приказа Министерства здравоохранения Российской Федерации №107н от 30.08.2012. Процедуры проводились в соответствии с национальными этическими нормами и условиями Хельсинкской декларации. Все доноры и пациенты подписали информированное добровольное согласие на проведение исследования и обработку персональных данных, включая данные историй болезни, при условии обезличенного использования для публикаций.

Отбор претендентов в программу ДС и ДО соответствовал требованиям, перечисленным в Приказе Министерства здравоохранения Российской Федерации №107н с некоторыми дополнительными условиями, определенными на основе опыта работы МЦРМ. Все претенденты проходили дополнительное обследование у психолога и медико-генетическое тестирование, которое включало в себя анализ не только кариотипа, но и мутаций в генах, определяющих четыре самых частых аутосомно-рецессивных наследственных заболевания в России (муковисцидоз, фенилкетонурия, несиндромальная нейросенсорная тугоухость, спинальная мышечная атрофия). Каждый донор ооцитов имел как минимум одного здорового ребенка. Возраст доноров спермы составил от 18 до 33 лет включительно, что на 2 года меньше установленных законом рамок. Дополнительным требованием было также наличие постоянной или временной регистрации в Ленинградской области или Санкт-Петербурге не менее 1 года, что позволяло обеспечивать постоянный контакт с донором.

В ходе исследования была проанализирована результативность 165 циклов с использованием ДС из криобанка МЦРМ с 2014 по 2018 гг. Критериями исключения из анализа были: использование собственных криоконсервированных ооцитов пациенток, суррогатное материнство, отсутствие переноса эмбрионов в свежем цикле. Главным исследуемым параметром была частота наступления клинической беременности (ЧНКБ) в расчете на перенос эмбрионов в свежем цикле в зависимости от возраста женщины.

Соотношение по возрастам женщин-реципиентов в программах с использованием ДО рассчитывали на основе данных 299 циклов, проведенных по этой программе в МЦРМ за 2017 и 2018 гг. Были проанализированы результаты эффективности программ ДО в 145 циклах с использованием свежих ооцитов и 154 циклах с применением криоконсервированных ДО, а также 32 циклов с ДЭ, выполненных в МЦРМ в этот период. В качестве критерия для оценки использовались показатели ЧНКБ на перенос и кумулятивная ЧНКБ на цикл, а также данные о рождении детей.

Криоконсервация спермы доноров проводилась в виалах сразу после ее анализа (спермограммы) в соответствии с рекомендациями производителя среды для криоконсервации спермы SpermFreeze (FertiPro, Бельгия). Хранение замороженных образцов ДС осуществлялось в жидком азоте или парах азота в сосудах Дьюара [5].

Оплодотворение и культивирование

Сперму для оплодотворения обрабатывали стандартным методом с использованием SupraSperm (Origio, Дания), центрифугировали, промывали 2 раза средой Sperm medium (COOK, Австралия) и помещали на 1–3 ч в инкубатор 37°С, с 6% углекислого газа для всплытия подвижной фракции сперматозоидов (swim-up) до момента оплодотворения. Свежие ооциты оплодотворяли методом ЭКО или ИКСИ в зависимости от качества спермы через 4–5 ч после пункции фолликулов. Оплодотворение методом ЭКО проводили в каплях среды Universal IVF medium (Origio, Дания) под маслом. После проведения ИКСИ клетки переносили в культуральную среду Cleavege medium (COOK, Австралия) под маслом и инкубировали. Через 16–18 ч проверяли результат оплодотворения (наличие двух пронуклеусов). Размороженные ооциты оплодотворяли только методом ИКСИ. Полученные в результате оплодотворения зиготы переносили в культуральную среду Cleavege medium (COOK, Австралия), культивировали до 3-го дня развития c заменой среды на Blastocyst medium (COOK, Австралия) и продолжали культивирование с 3-го до 5/6-го дня развития в инкубаторе [5]. Для морфологической оценки бластоцист использовали классификацию Гарднера [8].

Криоконсервацию ооцитов и эмбрионов проводили методом витрификации в соответствии с рекомендациями производителя (Kitazato Supply Co., Япония). Ооциты витрифицировали через 1–1,5 ч после пункции фолликулов и отбора зрелых ооцитов MII. Эмбрионы, достигшие стадии бластоцисты отличного и хорошего качества, криоконсервировали на 5–6-й день развития. На один крионоситель помещали не больше 3–4 ооцитов, 2–3 эмбрионов или по 1 эмбриону в случае проведения преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии (ПГТ-А). Сразу после витрификации крионосители помещали в криохранилище для последующего хранения в жидком азоте [5].

Размораживание и реабилитация ооцитов и эмбрионов проводились на специализированных средах (Kitazato Supply Co., Япония) в соответствии с протоколом производителя. После разморозки ооцитов через 2 ч прекультивирования в среде Universal IVF medium (Origio) под маслом в условиях 37°С в атмосфере 6% углекислого газа, 5% кислорода, 89% азота проводили оплодотворение методом ИКСИ. После разморозки эмбрионов проводили прекультивирование в среде Blastocyst medium (COOK, Австралия) под маслом в инкубаторе в течение 2–3 ч до переноса эмбрионов в полость матки [5].

ПГТ-А было выполнено для ДЭ, полученных в результате оплодотворения донорских гамет, достигших стадии бластоцисты отличного и хорошего качества. Для этого на 4-й день развития проводили хетчинг с помощью лазера. На 5–6-й день развития была выполнена биопсия клеток трофэктодермы с использованием лазера (cutting) либо механически, путем притирания биопсийной пипетки о присоску (flipping). После проведения биопсии трофэктодермы бластоцисты замораживали методом витрификации, как описано выше. Клетки трофэктодермы сразу после биопсии перекладывали в фосфатный буфер, замораживали и хранили до проведения амплификации и последующего секвенирования. Полногеномную амплификацию проводили с использованием набора реактивов SmarTer PicoPLEX WGA Kit (Takara Boi, США) по протоколу производителя. Качественную оценку амплификата осуществляли методом электрофореза в 1,5% агарозном геле. Количество амплификата оценивали на флюориметре Qubit 4.0 с использованием набора реактивов Qubit ds DNA BR Assay Kits (Invitrogen, Life technologies, США) согласно рекомендациям производителя. Секвенирование и анализ численных хромосомных аномалий выполняли методом массового параллельного секвенирования нового поколения (NGS) с использованием оборудования Illumina MiSeq и программного обеспечения BluFuse Multi v 4.3 (Illumina, США) согласно протоколу производителя на базе в СПб ГБУЗ «Городская больница № 40» и ООО «Сербалаб».

Перенос эмбриона(-ов) являлся заключительным этапом цикла ВРТ. В свежем цикле перенос осуществлялся на 4–5-е сутки развития эмбрионов, для размороженных эмбрионов проводился после их реабилитации в течение 2–3 ч в условиях СО2-инкубатора [5]. Катетер для переноса выбирался в зависимости от клинической ситуации и предпочтений врача-репродуктолога, осуществляющего перенос: Cook (СООК Medical, США), Wallace Classis (Smiths Medical, Великобритания) или Fridman (Laboratoire C.C.D., Франция). Решение о количестве переносимых эмбрионов (не более 2) принималось врачом акушером-гинекологом, исходя из клинической ситуации, качества эмбрионов и желания пациентки.

Результаты и обсуждение

Для оценки результативности программ с использованием ДС была выполнена оценка ЧНКБ в расчете на перенос эмбрионов в свежем цикле, отобранных для анализа на основе критериев, описанных выше, без дифференцировки метода оплодотворения (ЭКО/ИКСИ). Значения среднего приводятся с указанием в скобках стандартного отклонения. Пациентки были разделены на три возрастные группы: до 34 лет включительно (группа 1, средний возраст 30,1 (2,8) года, 99 циклов), 35–39 лет (группа 2, средний возраст 37,0 (1,2) года, 46 циклов), 40 лет и старше (группа 3, средний возраст 41,8 (1,9) года, 20 циклов). Наиболее высокое значение ЧНКБ было достигнуто в самой молодой возрастной группе 1, для которой оно составило 49,5%, тогда как в группе 2 получена ЧНКБ 30,4%, а в группе 3 – 20,0% (рис. 1). Полученная закономерность полностью соответствует распределению доли эуплоидных эмбрионов в зависимости от возраста матери [9].

193-1.jpg (62 KB)

По анализу 299 циклов с ДО, включая использование свежих и размороженных ДО, с переносом эмбрионов как в свежем, так и в криоцикле были получены данные о востребованности таких программ в зависимости от возраста женщины (рис. 2). В 56% таких циклов возраст женщин-реципиентов был выше 40 лет. Эти данные согласуются с результатами анализа данных Национальной системы мониторинга ВРТ, входящей в состав Центра контроля и предупреждения заболеваний (США) [10].

Согласно литературным данным, результативность циклов с ДО возрастает при переносе эмбрионов 5-го дня развития по сравнению с переносом эмбрионов 3-го дня развития (29,6% против 23,3%), а также при селективном переносе одного эмбриона по сравнению с неселективным переносом одного эмбриона (44,7% против 24,9%) [10]. Под селективным переносом одного эмбриона подразумевался перенос одного эмбриона при наличии дополнительных эмбрионов, которые впоследствии были криоконсервированы. В нашем исследовании большая часть эмбрионов, полученных из ДО, были перенесены на 5-й день развития, в том числе с использованием селективного переноса при наличии такой возможности.

В 145 циклах, проведенных со свежими ДО, в 55 циклах оплодотворение было выполнено методом ЭКО, а в 90 – методом ИКСИ; в среднем у доноров получали 18,1 (7,7) ооцита, 79,4% из них были пригодны для оплодотворения, что составило в среднем 14,4 (6,3) ооцита на пациентку. Перенос в свежем цикле выполнен у 77 пациенток (53% случаев). В 12 случаях переносили один эмбрион (15,6% случаев), в 65 – 2 эмбриона (84,4% случаев). ЧНКБ составила 50,6%, что демонстрирует высокую эффективность программы (табл. 1). Полученная нами эффективность циклов с использованием свежих ДО оказалась немного выше показателей, имеющихся в литературе [11, 12].

194-2.jpg (84 KB)

В 125 циклах (86% от начатых) были получены эмбрионы хорошего качества, пригодные для криоконсервации; в дальнейшем они были использованы для переносов пациенткам в криоциклах. Кумулятивная ЧНКБ в этой группе составила 66%, что привело к рождению 76 живых детей (исход 14 беременностей неизвестен). Такая стратегия позволила дополнительно увеличить эффективность выполненных программ.

Криоконсервированные ДО из банка доноров МЦРМ были использованы в 154 циклах; в 59 из них размораживание ооцитов было приурочено ко дню пункции реципиентки («комбинированные» циклы с использованием свежих ооцитов пациентки и размороженных ДО); в 95 случаях у реципиентов пункции не проводились и не планировались. Размораживали в среднем 7,9 (4,4) ооцита на пациента, при этом 6,4 (3,4) были пригодны для оплодотворения. Частота выживаемости ооцитов после криоконсервации составила 79,8%. Перенос одного эмбриона был выполнен в 54 циклах (45,4%), двух – в 65 циклах (54,6%). В циклах с использованием размороженных ДО ЧНКБ составила 49,6%, причем наилучший результат (71%) – в циклах с «комбинированным» переносом двух эмбрионов (один эмбрион из размороженных ДО, второй – из свежего ооцита пациентки (табл. 2)).

В 59 циклах (38% от начатых) были получены эмбрионы хорошего качества, пригодные для криоконсервации; в дальнейшем они были использованы для переносов пациенткам в криоциклах. Кумулятивная ЧНКБ в группе пациентов, где для переноса использовали только эмбрионы, полученные из размороженных ДО без учета результативности комбинированных циклов, составила 53%, что привело к рождению 56 живых детей (исход 10 беременностей неизвестен).

194-1.jpg (30 KB)Кумулятивная частота наступления беременности в циклах с ДО (свежие/криоконсервированные) не различалась у пациентов разных возрастных групп (рис. 3).

В литературе существуют противоречивые данные о сравнении преимуществ программ с использованием свежих и криоконсервированных ДО; эффективность программ с размороженными ДО составляет от 46 до 59% [11, 12]. Нам не удалось выявить значимых различий в ЧНКБ для циклов с использованием свежих и размороженных ДО. Некоторое увеличение кумулятивной ЧНКБ в циклах со свежими ДО может быть связано с большим числом ДО, использованных в каждом цикле, в результате чего число эмбрионов хорошего качества, пригодных для криоконсервации и последующего переноса в криоциклах, было больше.

В 32 циклах с использованием ДЭ для пациентов МЦРМ был выполнен перенос 38 размороженных ДЭ, в том числе в 79% был выполнен перенос одного эмбриона на основе данных морфологической оценки и результатов ПГТ-А. Кумулятивная ЧНКБ в этой группе составила 78%, что привело к рождению 18 живых детей, в том числе в составе двух беременностей двойней, из которых одна монохориальная наступила в результате криопереноса единственного эмбриона после ПГТ-А.

Ежегодно в США проводится около 20 000 циклов ВРТ с использованием ДО и ДЭ [13]; в России эта цифра составляет около 10 000 и имеет тенденцию к росту [14, 15]. Очевидно, что программы с применением донорских гамет в соответствии с медицинскими показаниями позволяют достичь наступления беременности у пациентов, имеющих существенные ограничения для использования собственных половых клеток. Так, в России в 2017 г. ЧНКБ в программе донорства ооцитов составила в расчете на цикл 44,3%, на перенос – 45,5% [15]; в США в 2016 г. ЧНКБ с криоконсервированными ДО составила 54,7% [16], со свежими – 65%; в АО «МЦРМ» за период 2017–2018 гг. кумулятивная ЧНКБ составила 53 и 66% в программах с криоконсервированными и свежими ДО соответственно. За 2017 г. в России по программе «Донорство эмбрионов» было проведено 1384 переноса эмбрионов, в результате наступили 642 беременности (46,4%) [15]; в США в 2016 г. ЧНКБ по этой программе составила 56% [16]; в МЦРМ за период 2017–2018 гг. кумулятивная ЧНКБ при переносе ДЭ – 78%.

Заключение

Полученные нами результаты свидетельствуют о высокой эффективности использования ДС, ДО и ДЭ в программах ВРТ для преодоления бесплодия и соответствуют, а по некоторым параметрам даже превосходят опубликованные общероссийские и мировые показатели работы центров ВРТ с донорскими гаметами.

References

  1. Вспомогательные репродуктивные технологии и искусственная инсеминация. Клинические рекомендации (протокол лечения). Утверждены Приказом Минздрава РФ от 21.02.2019 N 15-4/466-07. Доступно по: http://rahr.ru/d_pech_mat_metod/ВРТ1.pdf [Assisted reproductive technologies and artificial insemination. Clinical recommendations (treatment Protocol). Approved by Order of the Ministry of health of the Russian Federation of 21.02.2019 N 15-4/466-07. (in Russian)]. http://rahr.ru/d_pech_mat_metod/ВРТ1.pdf.
  2. Trounson A., Leeton J., Besanko M., Wood C., Conti A. Pregnancy established in an infertile patient after transfer of a donated embryo fertilised in vitro. Br. Med. J. (Clin. Res. Ed.). 1983; 286(6368): 835-8. https://dx.doi.org/10.1136/bmj.286.6368.835.
  3. Buster J.E., Bustillo M., Thorneycroft I.H., Simon J.A., Boyers S.P., Marshall J.R. et al. Non-surgical transfer of in vivo fertilised donated ova to five infertile women: report of two pregnancies. Lancet. 1983; 2(8343): 223-4. https://dx.doi.org/10.1016/s0140-6736(83)90208-8.
  4. Приказ Минздрава РФ от 30.08.2012. N 107н. (ред. 11.06.2015 N 332н, 01.02.2018 N 43н) «О порядке использования ВРТ технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению». Доступно по: https://normativ.kontur.ru/document?moduleId=1&documentId=309497 [Order of the Ministry of Health of the Russian Federation of 30.08.2012. N 107n. (ed. 11.06.2015 N 332n, 01.02.2018 N 43n) “on the procedure for using art technologies, contraindications and restrictions to their use”. (in Russian)]. http://www.consultant.ru/document/cons_doc_LAW_142595/.
  5. Корсак В.С., ред. Руководство по клинической эмбриологии. 2-е изд. М.: СИМК; 2019. 224 с. [Korsak V.S., ed. Guide to clinical embryology. 2 ed. Korsak V.S., Balakhonov A.V., Bichevaya N.K., Kuznetsova R.A., Leontieva O.A. et al. M.: SIMK; 2019. 224 p. (in Russian)].
  6. Исакова Э.В. Первый банк доноров яйцеклеток. Журнал акушерства и женских болезней. 2000; 49(1): 23-7. [Isakova E.V. First Bank of egg donors. Journal of obstetrics and women’s diseases. 2000; 49 (1): 23-7. (in Russian)].
  7. Исакова Э.В., Леонтьева О.А. Беременность после переноса эмбрионов, полученных в результате оплодотворения размороженных ооцитов. Проблемы репродукции. 2005; 11(2): 53. [Isakova E.V., Leontieva O.A. Pregnancy after the transfer of embryos obtained as a result of fertilization of thawed oocytes. Reproduction problems. 2005; 11 (2): 53. (in Russian)].
  8. Gardner D.K., Schoolcraft W.B. In vitro culture of human blastocysts. In: Jansen R., Mortimer D., eds. Towards reproductive certainty: fertility and genetics beyond 999: The Plenary Proceedings of the 11th World Congress. London: Parthenon Publishing Group; 1999: 378-88.
  9. Малышева О.В., Бичевая Н.К., Гзгзян А.М., Глотов О.С., Кинунен А.А., Лобенская А.Ю., Мекина И.Д., Полякова И.В., Пуппо И.Л., Сайфитдинова А.Ф., Щербак С.Г., Коган И.Ю. Технологические платформы преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии: сравнительная эффективность диагностики хромосомной патологии. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 65-71. [Malysheva O.V., Bichevaya N.K., Gzgzyan A.M., Glotov O.S., Kinunen A.A., Lobenskaya A.Yu. et al. Technological platforms for preimplantation genetic testing for aneuploidy: comparative effectiveness of diagnostics of chromosomal pathology. Obstetrics and gynecology. 2020; 4: 65-71. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.4.65-71.
  10. Kawwass J.F., Monsour M., Crawford S., Kissin D.M., Session D., Kulkarni A.D. et al. Trends and outcomes for donor oocyte cycles in the United States, 2000-2010. JAMA. 2013; 310(22): 2426-34. https://dx.doi.org/ 10.1001/jama.2013.280924.
  11. Грищенко Н.Г., Луцкий А.С. Анализ эффективности экстракорпорального оплодотворения при использовании нативных и витрифицированных ооцитов донора. Клиническая медицина Казахстана. 2018; 4: 30-3. [Grishchenko N.G., Lutsky A.S. Analysis of the effectiveness of in vitro fertilization using native and vitrified donor oocytes. Clinical Medicine of Kazakhstan. 2018; 4(50): 30-3 (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.23950/1812-2892-JCMK-00599.
  12. Eaton J.L., Truong T., Li Y.J., Polotsky A.J. Prevalence of a good perinatal outcome with cryopreserved compared with fresh donor oocytes. Obstet. Gynecol. 2020; 135(3): 709-16. https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000003695.
  13. Sauer M.V. Revisiting the early days of oocyte and embryo donation: relevance to contemporary clinical practice. Fertil. Steril. 2018; 110(6): 981-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.09.005.
  14. Регистр ВРТ. Отчет РАРЧ за 2016 год. Доступно по: http://www.rahr.ru/d_registr_otchet/RegistrART2016.pdf [Register ART. Russian Association of Human Reproduction Report 2016. (in Russian)]. http://www.rahr.ru/d_registr_otchet/RegistrART2016.pdf
  15. Регистр ВРТ. Отчет РАРЧ за 2017 год. Доступно по: http://www.rahr.ru/d_registr_otchet/RegistrART2017.pdf [Register ART. Russian Association of Human Reproduction Report 2017. (in Russian)]. http://www.rahr.ru/d_registr_otchet/RegistrART2017.pdf
  16. Centers for Disease Control and Prevention. ART-2016 National Summary Report. Available at: https://www.cdc.gov/art/pdf/2016-report/ART-2016-National-Summary-Report.pdf

Received 30.07.2020

Accepted 20.10.2020

About the Authors

Natalia K. Bichevaya, Head of the Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: bichevaya@mcrm.ru. ORCID: 0000-0001-8866-5821. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Olga A. Leonteva, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: olga_leont@mail.ru. ORCID: 0000-0002-3667-0511. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Alsu F. Saifitdinova, Associate Professor, Department of Human and Animal Anatomy and Physiology, A.I. Herzen State Pedagogical University of Russia;
Deputy Head of the Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: saifitdinova@mail.ru. ORCID: 0000-0002-1221-479X.
48 Moyka Embankment, St. Petersburg, 191186, Russia; 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Yanina A. Samoylovich, Ph.D, obstetrician-gynecologist of Assisted Reproductive Technologies department, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: yanasam@yandex.ru. ORCID: 0000-0003-2627-0028. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Yuliya R. Pastukhova, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: yrpast@mail.ru. ORCID: 0000-0002-8531-4214. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Igor V. Reshetnikov, PhD, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: reshetnikov@mcrm.ru. ORCID: 0000-0003-0146-7465. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Alisa N. Panina, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: alisa@panina.net. ORCID: 0000-0002-2713-2068. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Elizaveta E. Nevskaia, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
E-mail: elizaveta.nevsk@yandex.ru. ORCID: 0000-0003-0626-6048. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Rena A. Kuznetsova, Embryologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
E-mail: kuznetsova@mcrm.ru. ORCID: 0000-0003-4195-6968. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Olga B. Pashina, Biologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: olgaP01@mail.ru. ORCID: 0000-0001-8065-8889. 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Irina L. Puppo, Associate Professor, Department of Laboratory Medicine and Genetics, Almazov National Medical Research Centre
of the Ministry of Health of the Russian Federation; Biologist, Laboratory of Assisted Reproductive Technologies, International Centre for Reproductive Medicine.
Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: il_trofimova@list.ru. ORCID: 0000-0001-8538-3845.
2 Akkuratova str., St. Petersburg, 197341, Russia; 53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.
Elvira V. Isakova, Ph.D, obstetrician-gynecologist of Assisted Reproductive Technologies department, Head of the Department of Assisted Reproductive Technologies International Centre for Reproductive Medicine. Tel.: +7(812)327-19-50. E-mail: elvira@mcrm.ru. ORCID: 0000-0003-4462-6606.
53/1 Komendantskij prospect, St. Petersburg, 197350, Russia.

For citation: Bichevaya N.K., Leontyeva O.A., Saifitdinova A.F., Pastukhova Yu.R., Kuznetsova R.A., Nevskaya E.E., Reshetnikov I.V., Panina A.N., Samoilovich Ya.A., Pashina O.B., Puppo I.L., Isakova E.V. Use of donor gametes and embryos for the treatment of infertility.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2020; 11: 190-196 (in Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.11.190-196

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.