Premature birth: past restrictions and new opportunities

Gorina K.A., Khodzhaeva Z.S., Belousov D.M., Baranov I.I., Gokhberg Ya.A., Pashchenko A.A.

Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia
The data available in the world literature on studies of infection and inflammation as a factor that leads to premature birth have been sought and analyzed. Premature birth is the central problem of modern obstetrics, the leading cause of perinatal and infant morbidity and mortality. New potential methods for the diagnosis of spontaneous premature birth and preterm amniorrhea, as well as the basic stages of the pathogenesis of this process have been analyzed in detail. Diagnostic transabdominal ultrasound-guided amniocentesis should be considered as an important element in the diagnostic verification of threatening and imminent preterm births with subsequent correction of their obstetric management according to the findings.

Keywords

premature birth
amniocentesis
intra-amniotic inflammation
intra-amniotic infection
perinatal outcomes

Преждевременные роды (ПР) – важнейшая медико-социальная проблема, пути решения которой ведут к улучшению генофонда нации. Известно, что ПР – ведущая причина перинатальной, неонатальной смертности и заболеваемости, а также детской инвалидности [1]. В настоящее время основными задачами родовспомогательных служб являются: проведение лечебно-профилактических мероприятий перед наступлением, в том числе, первой беременности, во время беременности – ранняя диагностика угрожающих ПР, а самое важное – определение причин этого состояния [2, 3].

Современная ведущая парадигма, описывающая возможные причины возникновения ПР, – это этиологическая, патогенетическая и клиническая мимикрия процесса родоразрешения per se, независимо от срока гестации. В обоих случаях имеется один «общий путь»: маточный компонент, включающий усиление сократительной активности, «созревание» шейки матки (ШМ), ее сглаживание, размягчение и раскрытие, разрыв плодных оболочек. Gotsch F. и соавт. назвали эти изменения трехсторонним компонентом в «общем пути к родоразрешению» [4–6].

Биология беременности уникальна и требует «мирного» сосуществования в равной степени со стороны двух «хозяев». R. Romero называет ПР «преждевременным родовым синдромом» – это серия патологических процессов, потенциально приводящих к досрочному родоразрешению, которые включают: внутриутробную инфекцию, ишемизацию тканей матки, перерастяжение миометрия, аномальное аллогенное распознавание, аллергоподобный иммунный ответ (гиперчувствительность I типа), патологию шейки матки и эндокринные расстройства [7]. При родоразрешении в сроках между 21 и 24 неделями беременности гистологическое исследование плаценты в 94% случаев выявляет признаки хориоамнионита, что позволяет сделать вывод об инфекционном факторе как о ведущем в генезе ранних ПР, особенно экстремальных [8].

Терминология

В нашей стране отсутствуют какие-либо классификации, отражающие инфекционный статус амниотической жидкости, а также степень вовлечения плаценты и плода в инфекционно-воспалительный процесс, однако именно внутриамниотическая инфекция (ВАИ), являющаяся последствием микробной инвазии в амниотическую полость (МИАП), – основополагающий фактор в реализации инфекционного процесса [9–13].

Выделяют четыре возможных способа достижения патогенами амниотической полости: 1 – восходящий – из нижнего отдела генитального тракта; 2 – гематогенный; 3 – случайная контаминация при инвазивных внутриматочных манипуляциях; 4 – ретроградный заброс из маточных труб через брюшную полость (убедительных доказательных данных нет) [9, 14].

В 1983 г. Rudolph P. Galask [15] эмпирически доказал способность Streptococcus группы В к адгезии оболочек амниона с последующим проникновением в течение 8 ч к плоду, что подтвердило возможность контаминации амниотической полости без разрыва плодных оболочек и излития околоплодных вод. МИАП определяется как наличие микроорганизмов в амниотической полости, частота данного состояния зависит от клинической картины и гестационного срока. У беременных с угрожающими ПР и интактными плодными оболочками частота положительных микробных культур амниотической жидкости составляет 12,8% [7, 16]. Однако даже при отрицательном бактериологическом и/или молекулярно-биологическом исследовании у пациенток с ПР нельзя исключить наличие внутриамниотического воспаления (ВАВ), о чем свидетельствует повышенный уровень провоспалительных цитокинов [17]. ВАИ, или хориоамнионит, представляет собой инфекцию с сопутствующим воспалительным процессом околоплодных вод, плаценты, плода, плодных оболочек или децидуальной оболочки [18], то есть это комбинация МИАП и ВАВ [19].

Микробная инвазия в амниотическую полость: всегда ли патология?

Romero R. и соавт. [20] описывают МИАП как наименее клинически значимое и опасное изменение инфекционного статуса амниотической жидкости. Однако положительная культура может быть получена только в том случае, если соблюдены оптимальные условия культивирования, то есть поддержка роста конкретного микроорганизма. Современные методы детекции, в частности секвенирование гена 16S рибосомальной РНК (16S рРНК) возбудителя в сочетании с флуоресцентной гибридизацией in situ (FISH), позволили британским исследователям сделать важный вывод о возможности персистенции бактерий в плодных оболочках без стимуляции воспалительного ответа, что подтверждает недостаточность присутствия микроорганизмов для индукции ПР [21. В настоящее время все большему сомнению подвергается общепринятая парадигма об «абсолютной стерильности» плаценты; скорее, она, как и многие другие органы, содержит уникальный микробиом, наличие которого не связано с неблагоприятными исходами беременности [22, 23]. Эти данные еще раз доказывают необходимость воспалительного компонента в реализации микробной инвазии. При более детальном анализе микробиома околоплодных вод методом глубокого 16SрРНК-секвенирования были обнаружены бактериальные и вирусные (с помощью метагеномного секвенирования) биомассы, схожий состав микробиома отражался и в меконии новорожденных [24].

Роль воспаления в инициации преждевременных родов

Каждая из десяти пациенток с ПР и интактными плодными оболочками имеет признаки ВАВ, которое в большинстве случаев протекает субклинически; у этих пациенток высок риск не только ПР, преждевременного излития околоплодных вод (ПИОВ), но и осложнений раннего неонатального периода и материнской заболеваемости [25]. Среди известных этиологических причин спонтанных ПР именно ВАИ и ВАВ имеют наиболее хорошо изученную и доказанную причинно-следственную связь. ВАВ может быть инициировано несколькими причинами: микробной инвазией в амниотическую полость, DAMPs (молекулярный фрагмент, ассоциированный с повреждением (damage-associated molecular pattern) [26, 27]. Культуральная и микробиологическая детекция патогенов при данном состоянии невозможна, золотым стандартом выступает определение уровня интерлейкина (ИЛ)-6 в амниотической жидкости в концентрации более 2,6 нг/мл. Наиболее часто ВАВ наблюдается у пациенток: с ПР и интактными плодными оболочками; при бессимптомном укорочении шейки матки; при преждевременном разрыве плодных оболочек и у пациенток с симптомами клинического хориоамнионита при доношенном сроке [10, 25, 26, 28].

Воспаление – жизненно важный и необходимый для защиты от патогенов процесс [29]. Моноцитарная и лейкоцитарная инфильтрация тканей миометрия и шейки матки сопровождается увеличением экспрессии провоспалительных цитокинов: ИЛ-1β, ИЛ-6 и ИЛ-8. Сократительная активность миометрия резко увеличивается в результате каскадного поступления ионов кальция в гладкомышечные клетки под влиянием ИЛ-1, дополнительный вклад вносят простагландины (ПГ) ПГ F2α и ПГ Е2 под влиянием «тройки»: ИЛ-1β+ИЛ-6+ИЛ-8 [30]. Дальнейшая экспозиция провоспалительными цитокинами приводит к стимуляции экспрессии матриксных металлопротеиназ (ММП), в частности MMП-9, которая вызывает деградацию внеклеточного вещества и, как следствие, ремоделирование ШМ. Гладкомышечные клетки миометрия и ШМ обладают бимодальной функциональностью – и как истинная гладкомышечная клетка, и как иммунная клетка. На этом факте основан противовоспалительный эффект влагалищного прогестерона, который ингибирует липополисахарид(ЛПС)-индуцированную экспрессию ИЛ-6 как на уровне мРНК, так и на уровне синтеза белка. Эмпирически было доказано, что происходит 40% снижение концентрации супернатанта белка ИЛ-6 и восстановление мРНК ИЛ-6 до исходного уровня при ЛПС-индуцированном воспалении [30–32]. Аналогичные события, связанные с лизисом межклеточного матрикса, происходят в плодных оболочках. Амнион представляет собой тонкую бессосудистую оболочку, состоящую из пяти различных слоев: клеточный, базальная мембрана, компактный, фибробластный и наружный губчатый. Биохимия разрыва плодных оболочек включает в себя ряд сложных взаимодействий, таких как ферментативная активация, приводящая к деградации внеклеточного матрикса, и апоптотическое ремоделирование. Микробная инвазия вызывает «массовую» деградацию коллагена посредством прямого протеолиза и активации ММП, стимуляции клеток врожденного иммунитета и продукции провоспалительных цитокинов и хемокинов (ИЛ-1β, ИЛ-6, фактор некроза опухоли (ФНО)-α, моноцитарный хемотаксический фактор 1), вызывая вторичную супериндукцию синтеза ММП, приводящую к биомеханическому ослаблению мембраны и разрыву плодных оболочек [33, 34].

Таким образом, итогом каскада патогенетической цепи родоассоциированных провоспалительных изменений являются: индукция утеротонической активности миометрия; деградация внеклеточного матрикса плодных оболочек; созревание ШМ как следствие гиперсекреции ММП и снижения экспрессии их ингибиторов [6, 35, 36]. То есть происходят абсолютно те же процессы, что и при физиологических родах, за исключением времени возникновения указанных событий.

Эволюция проявлений хориоамнионита

Хориоамнионит – прогрессирующий инфекционный процесс, который может возникнуть до, во время или после родов; может быть острым, подострым или хроническим. Длительное хроническое течение хориоамнионита ассоциировано с ретинопатией недоношенных, очень низкой массой тела при рождении и нарушением развития головного мозга у недоношенного ребенка [8].

Существует несколько систем классификации и оценки тяжести острого хориоамнионита. Наиболее широко используемой в Европе и США является рекомендованная Комитетом по изучению инфекций в амниотической жидкости Общества детской патологии система, предложенная Redline и соавт. в 2003 г. [37]. Острые воспалительные повреждения плаценты классифицируют по 2 категориям: материнский и плодовый воспалительные ответы. Тяжесть инфекционного процесса описывают различными стадиями и степенями. Термин «стадия» относится к прогрессированию заболевания на основе вовлечения анатомических областей, инфильтрированных нейтрофилами, в то время как «степень» описывает интенсивность острого воспалительного процесса. В контексте материнской воспалительной реакции стадия I характеризуется наличием нейтрофилов в хорионе или субхорионическом пространстве; стадия II – нейтрофильной инфильтрацией соединительной ткани хориона и/или амниона; стадия III – некрозом тканей амниона с дегенерацией нейтрофилов (кариорексис). Степень I (от легкой до умеренной) определяется при отдельном небольшом скоплении нейтрофилов, диффузно проникающих через слои хориона, хориальную пластину или амнион. Степень II (тяжелая) наступает при наличии трех и более микроабсцессов в хорионе, которые определяются как слияние нейтрофилов, общим размером не менее 10×20 клеток. Микроабсцессы обычно расположены между хорионом и децидуальной оболочкой и/или под хориальной пластиной [38, 39].

Восходящий путь инфицирования из нижних половых путей является наиболее распространенным в развитии ВАИ [6, 38, 40–42]. В то время как у всех беременных нижний генитальный тракт колонизирован микроорганизмами, у подавляющего большинства не развивается воспалительный процесс. Шеечная слизь («слизистая пробка») представляет собой анатомический (механический), иммунологический и функциональный барьер для восходящей инфекции. Полость матки нестерильна и имеет свой нормальный уникальный микробиом, при этом децидуальное пространство остается интактным по микробному статусу [43, 44]. Восходящий путь инфицирования микроорганизмами при ПР проходит в несколько этапов. Стадия I соответствует изменению микрофлоры влагалища/шейки матки – колонизации облигатными или массивному росту факультативных патогенов. Следующим барьером являются плодные оболочки; микроорганизмы колонизируют область перешейка матки между амнионом и хорионом (стадия II). Далее микроорганизмы инвазируют слои амниона (амнионит) и достигают амниотической полости, что приводит к ВАИ (стадия III), затем через входные ворота инфекции микробы могут «атаковать» плод (стадия IV). Очаги проникновения микробов к плоду включают дыхательные пути (в результате периодической активации дыхательной мускулатуры), желудочно-кишечный тракт (в процессе заглатывания амниотической жидкости), кожу и ухо, в определенные гестационные сроки возможна контаминация конъюнктивы [38, 45].

Первоначально считалось, что нейтрофилы амниотической жидкости имеют исключительно материнское происхождение. Тем не менее экспериментальные данные показали, что они могут иметь и плодовое – из сосудов хориона плода или смешанное происхождение. Исследователи из Национального института детского здоровья и развития человека Eunice Kennedy Shriver (США) с помощью метода FISH определяли происхождение нейтрофилов, инфильтрирующих амниотическую полость и/или плодные оболочки. Полученные результаты генетической дактилоскопии профилей ДНК показали, что у 43% (6/14) женщин в околоплодных водах, полученных с помощью амниоцентеза, преобладали фетальные нейтрофилы, у 21% (3/14) женщин наблюдалась смесь нейтрофилов фетального и материнского происхождения. В 71% случаев наличия фетальных нейтрофилов произошли экстремально ранние ПР [46–48].

Плод как объект инфекционной агрессии

Любая микробная инвазия в амниотическую полость может протекать транзиторно, не оставляя катастрофических последствий, эффективно элиминируясь иммунными «силами» организма, либо при дефектах в «системе защиты» происходят прогрессия и поражение плода. В 30% случаев ВАИ в кровотоке плода выявляются бактерии, что приводит к системной воспалительной реакции у плода (СВРП). При наличии данного синдрома имеется значительно более высокий риск возникновения долгосрочных осложнений, таких как церебральный паралич и хроническая патология легких. Данные осложнения у недоношенных новорожденных вызваны в большей степени последствиями внутриутробного воспалительного процесса [49].

Синдром СВРП – состояние, характеризующееся системной активацией его врожденной иммунной системы, с признаками полиорганного поражения и более высоким уровнем заболеваемости, независимо от гестационного возраста. Субклинический хориоамнионит – наиболее частая причина синдрома СВРП. Он представляет фетальный аналог синдрома системного воспалительного ответа у взрослых. Термин «синдром СВРП» был предложен в 1997 г. Gomez R. и соавт. [50] на основании анализа образцов крови плода и амниотической жидкости, полученной путем амнио- и кордоцентеза. Частота СВРП при спонтанных ПР составляет около 39%; интересно и объяснимо, что СВРП присутствует почти у 50% плодов с ПИОВ. Ведущим диагностическим критерием синдрома СВРП является наличие ИЛ-6 в плазме пуповинной крови в концентрации более 11 пг/мл [7, 38, 51]. Прогресс ультразвуковой визуализации, разработка новых функциональных методов предлагают консервативные способы получения диагностических критериев. Одним из основных органов, участвующих в развитии иммунной системы плода, является вилочковая железа. Размеры тимуса менее 5-го процентиля коррелируют с ВАИ, что можно объяснить его инволюцией из-за миграции лимфоцитов и активации провоспалительного пути. Ультразвуковые маркеры ВАИ обнаруживаются и в других органах, например, в сердце отмечается более высокое отношение пиковой скорости кровотока в ранней диастоле (волна Е) к пиковой скорости потока в поздней диастоле (волна А) в обоих желудочках, парадоксальные движения миокарда с продольным расширением в систолу. Также оцениваются особенности кровотока в селезеночной вене (при СВРП отмечается прерывистый характер тока крови). Сонографические изменения морфологии надпочечников плода коррелируют не только с СВРП (объем надпочечников ≥405 мм3), но и с риском возникновения ПР [52, 53].

Определение гестационных тканей, ответственных за активацию ВАВ, является важным шагом в понимании этапов развития и прогрессии синдрома СВРП, а также в поиске потенциальных методов лечения. Большая часть данных литературы описывает непосредственное участие легких плода [54, 55]. Однако в последнее время угол зрения смещен на кожу, которая представляет собой большой, обильно васкуляризированный и иммунокомпетентный орган, находящийся в постоянном контакте с околоплодными водами. В экспериментах на животных было доказано, что ЛПС-индуцированное воспаление приводит к воспалительному ответу со стороны кожи, который проявляется увеличением мРНК ИЛ-1β, ИЛ-6 и ИЛ-8 уже через 16 ч. Новый вектор современной терапии – генно-инженерные препараты – находит применение и в перинатологии, пока экспериментальной. Так, вве­дение препарата Anakinra (рекомбинантный антагонист рецептора ИЛ-1) значительно уменьшало воспалительные изменения (50 мг при интраамниальном введении и 100 мг при подкожном введении беременным) [56, 57].

В проспективном аналитическом исследовании 120 недоношенных новорожденных оценивали краткосрочные и долгосрочные осложнения через год после рождения с синдромом СВРП. Процент младенцев с аномальным коэффициентом развития (DQ) был больше в группе с СВРП (10% против 1,8%). В австрийском исследовании 57/176 (32%) новорожденных имели неблагоприятные перинатальные исходы (бронхо-легочная дисплазия (БЛД), перивентрикулярная лейкомаляция (ПВЛ), внутрижелудочковое кровоизлияние (ВЖК), ранний и поздний дебют септических осложнений и/или смерть), которые сопровождались более высокой концентрацией ИЛ-6 в пуповинной крови и более низким гестационным возрастом на момент рождения [51, 58].

Клиническое обоснование применения диагностического амниоцентеза

Антенатальное инфекционное воздействие является ведущим фактором риска развития ПР и основной причиной заболеваемости и смертности у новорожденных. Пионером в исследовании данной патологии является R. Romero. При анализе 1452 случаев в 436 (30%) из них ПР имели клинически «молчащий» хориоамнионит; женщины с «тяжелым» воспалением имели более короткий интервал от амниоцентеза (с целью диагностики ВАВ/ВАИ) до родоразрешения и, следовательно, более ранний гестационный срок на момент родов. Новорожденные от матерей с «тяжелым» воспалением имели достоверно меньшую массу тела и баллы по шкале Апгар [59]. ИЛ-6 является маркером прогнозирования ПВЛ и ВЖК у новорожденных, а также других осложнений неонатального периода [17, 18, 38]. ВАИ/ВАВ еще до рождения приводят к гистологическим изменениям в легких, которые аналогичны наблюдаемым при БЛД, что проявляется повышением экспрессии ИЛ-1β, ИЛ-6 и ИЛ-8, ФНО-α, коллагена I типа и снижением выработки сосудисто-эндотелиального фактора роста (VEGF), сурфактантного белка типов А, В и С в легочной ткани [49, 60].

ВАВ, даже при отсутствии доказанной инфекции, встречается у 80% пациенток с истмико-цервикальной недостаточностью (ИЦН), что ухудшает прогнозы и исходы. Субклинический хориоамнионит является важным фактором риска преждевременного укорочения и созревания шейки матки, поэтому во многих ведущих клиниках амниоцентез рекомендован как объективный метод для исключения воспаления/инфекции до хирургической коррекции ИЦН для наложения таргетного, или селективного, серкляжа. У пациенток с ИЦН и ВАИ/ВАВ применение антибиотиков (цефтриаксон, кларитромицин и метронидазол) сопровождалось разрешением ВАВ или инфекции в 75% случаях и было связано с успехом лечения – в около 60% [61].

Новые возможности фармакологического менеджмента

Новое – это хорошо забытое старое, роль препаратов прогестерона и антибиотиков остается актуальной. В работе, проведенной американскими и корейскими исследователями, из 62 пациенток с угрожающими ПР и наличием лабораторно подтвержденного ВАВ/ВАИ 50 получали антибактериальную терапию, успешное лечение отмечено у 16/50 (32%) [62]. Японскими исследователями показан положительный эффект от антибактериальной терапии ампициллин-сульбактамом и азитромицином (схема 2) на частоту заболеваемости БЛД при ПИОВ в сроках 22/27 недель гестации. Заболеваемость БЛД у недоношенных, получавших схему 2, была значительно ниже, чем в группе, получавшей ампициллин/цефазолин + кларитромицин (схема 1), даже с учетом гестационного возраста на момент излития вод (ОШ 0,02; ДИ 95%). Общее количество дней на искусственной вентиляции легких (ИВЛ) было значительно ниже в группе, получавшей схему 2, чем в группе, получавшей схему 1 [63].

Роль прогестерона в профилактике и лечении ПР остается несомненной, и исследователи находят новые потенциальные мишени его воздействия в блокировании путей инициации родовой деятельности. Прогестерон стимулирует местный противовоспалительный ответ при ЛПС-индуцированном воспалении на границе тканей мать–плод, характеризующийся уменьшением эффекторных Т-клеток, активированных макрофагов и нейтрофилов, а также повышением регуляторных Т-клеток; кроме того, ослабляет экспрессию генов, связанных с провоспалительной активацией (например, Casp11, Pycard, Nod1) [64].

Экспериментальные исследования на животных позволяют использовать новые терапевтические подходы. Многие из них направлены на коррекцию (ослабление) реакции системного воспаления у матери с целью улучшения качества жизни новорожденного. Используются ЛПС-индуцированные воспалительные модели на животных (системного материнского воспаления – внутрибрюшинная инъекция ЛПС и ВАВ – интраамниальное введение ЛПС). Системное воспаление стимулирует материнский цитокиновый каскад, но мягкий провоспалительный ответ плода. Интраамниальное введение ЛПС вызывало фетальный цитокиновый «шторм». В качестве терапевтического метода применялся Эксендин/Эксенатид-4 (Ex4) – агонист рецепторов глюкагоноподобного полипептида, который используется у больных сахарным диабетом. Кроме этого, препарат обладает рядом протективных эффектов и в фокусе ПР предотвращает вызванную воспалением миграцию макрофагов и высвобождение провоспалительных цитокинов in vitro и in vivo. Новорожденные мыши, получавшие Ex4, демонстрировали профиль цитокинов, подобный здоровым контрольным новорожденным; отмечались иммуномодулирующие эффекты с поляризацией макрофагов и с подавлением пула регуляторных Т-клеток CD8+ [65].

Вопросы безопасности, практической значимости и этики

Возможности диагностического амниоцентеза многогранны и не лимитируются исключительно диагностикой анеуплоидий. В Европе и США, а также в ряде стран Юго-Восточной Азии его применение для диагностики/исключения МИАП/ВАВ/ВАИ является рутинной процедурой при наличии показаний [13, 19, 27]. Для оценки эффективности полученных при амниоцентезе данных и их влияния на неонатальные исходы пациенток с ПР и интактными плодными оболочками был проведен многофакторный анализ, который показал, что после корректировки конфаундеров гестационный возраст на момент родоразрешения и проведения амниоцентеза оставался значимо различным. При этом в группе с амниоцентезом были лучшие исходы для новорожденных, чем у группы без амниоцентеза как в отношении краткосрочных (ОШ 0,19; 95% ДИ 0,07–0,55), так и долгосрочных (ОШ 0,15; 0,05–0,46) результатов [66, 67]. Результаты исследования безопасности проведения генетического амниоцентеза в сроках более 20 недель свидетельствуют о безопасности выполняемой процедуры, не коррелируют с показателями частоты ПР, гестационного возраста и массы тела при рождении и в целом аналогичны тем же результатам, когда амниоцентез выполнялся до 20 недель [68].

Амниоцентез – инвазивная диагностическая процедура, но современная ультразвуковая техника и девайсы позволяют ее делать максимально бережно и безопасно для пациентки и ее будущего ребенка. Как и от любой другой манипуляции, пациентка вправе отказаться при наличии необоснованных предрассудков о возможных последствиях, однако научные факты и опыт не подтверждают эти опасения. Стоит отметить, что ПР, как и ПИОВ, вызывает не пункция амниотической полости, а инфекция и катастрофические последствия воспаления, неразлучно сопутствующие ей. В научных исследованиях процедура трансабдоминального амниоцентеза обязательно должна получить одобрение местного этического комитета.

Заключение

Большая часть нозологий в медицине вообще и в акушерстве в частности полиэтиологична и, вероятно, полигенна с особой ролью эпигенетического воздействия. ПР – не исключение, так как имеют огромное множество точек приложения и воздействия повреждающих факторов. Именно поэтому, только события с четко доказанной причинно-следственной связью могут быть достоверно изучены и, самое важное, подвергнуты терапевтической коррекции. Инфекционный фактор, как ведущий и максимально доказанный, требует регулярного динамического мониторинга в течение беременности, и при наличии обоснованных подозрений и/или объективного его присутствия – незамедлительной коррекции. Учитывая этапность развития воспалительного процесса, возможную транзиторную персистенцию патогенов с индукцией провоспалительного ответа, диагностический трансабдоминальный амниоцентез под ультразвуковой ассистенцией должен рассматриваться как значимый элемент в верификации диагноза угрожающих и неминуемых ПР с последующей коррекцией акушерского менеджмента в зависимости от полученных результатов.

References

  1. Preterm Labour and Birth: NICE Guideline [NG25]. Natl. Inst. Heal. Care Excell. 2015.
  2. Leung C. Born Too Soon. Neuro Endocrinol. Lett. 2004; 25 Suppl 1; 133–136. PMID: 15735596
  3. Uydess I., Meyers C. Developing and Sustaining a Quality Culture. Pharm. Technol. 2011; 35; 64–65.
  4. Gotsch F., Romero R., Erez O., Vaisbuch E., Kusanovic J.P., Mazaki-Tovi S., Kim S.K., Hassan S., Yeo L. The preterm parturition syndrome and its implications for understanding the biology, risk assessment, diagnosis, treatment and prevention of preterm birth. J Matern Fetal Neonatal Med. 2009; 22 (Suppl2): 5–23. doi: 10.1080/14767050902860690.
  5. Romero R., Dey S.K., Fisher S.J. Preterm labor: one syndrome, many causes. Science. 2014; 345(6198): 760–5. doi: 10.1126/science.1251816.
  6. Kemp M.W. Preterm Birth, Intrauterine Infection, and Fetal Inflammation. Front. Immunol. 2014; 5: 574. doi.org/10.3389/fimmu.2014.00574.
  7. Romero R., Espinoza J., Kusanovic J.P., Gotsch F., Hassan S., Erez O., Chaiworapongsa T., Mazor M. The Preterm Parturition Syndrome. BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 2006; 113 (Suppl. 3): 17–42. doi.org/10.1111/j.1471-0528.2006.01120.x.
  8. Fowler J.R., Simon L.V. Chorioamnionitis. [Updated 2019 Oct 16]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2019. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK532251
  9. Kim C.J., Romero R., Chaemsaithong P., Chaiyasit N., Yoon B.H., Kim Y. M. Acute Chorioamnionitis and Funisitis: Definition, Pathologic Features, and Clinical Significance. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213 (4): S29–S52. doi.org/10.1016/j.ajog.2015.08.040.
  10. Romero R., Miranda J., Chaiworapongsa T., Korzeniewski S.J., et al. Prevalence and Clinical Significance of Sterile Intra-Amniotic Inflammation in Patients with Preterm Labor and Intact Membranes. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72 (5): 458–474. doi.org/10.1111/aji.12296.
  11. Oh K.J., Kim S.M., Hong J.S., Maymon E., Erez O., Panaitescu B., Gomez-Lopez N., Romero R., Yoon B.H. Twenty-Four Percent of Patients with Clinical Chorioamnionitis in Preterm Gestations Have No Evidence of Either Culture-Proven Intraamniotic Infection or Intraamniotic Inflammation. Am J Obstet Gynecol. 2017; 216(6): 604. e1-604. e11 doi.org/10.1016/j.ajog.2017.02.035.
  12. Myntti T., Rahkonen L., Nupponen I., Pätäri-Sampo A., Tikkanen M., Sorsa T., Juhila J., Andersson S., Paavonen J., Stefanovic V. Amniotic Fluid Infection in Preterm Pregnancies with Intact Membranes. Dis. Markers 2017; 2017: 1–9. doi.org/10.1155/2017/8167276.
  13. Park J.W., Park K.H., Jung E.Y. Clinical Significance of Histologic Chorioamnionitis with a Negative Amniotic Fluid Culture in Patients with Preterm Labor and Premature Membrane Rupture. PLoS One. 2017; 12(3): e0173312. doi.org/10.1371/journal.pone.0173312.
  14. Gomez-Lopez N., Laresgoiti-Servitje E., Olson D.M., Estrada-Gutiérrez G., Vadillo-Ortega F. The Role of Chemokines in Term and Premature Rupture of the Fetal Membranes: A Review1. Biol. Reprod. 2010; 82(5): 809–814. doi.org/10.1095/biolreprod.109.080432.
  15. Galask R.P., Varner M.W., Petzold C.R., Wilbur S.L. Bacterial attachment to the chorioamniotic membranes. Am J Obstet Gynecol. 1984; 148(7): 915–28. doi.org/10.1016/0002-9378(84)90534-9.
  16. Gonçalves L.F., Chaiworapongsa T., Romero R. Intrauterine Infection and Prematurity. Ment Retard Dev Disabil Res Rev. 2002; 8(1): 3–13. doi.org/10.1002/mrdd.10008.
  17. Cobo T., Kacerovsky M., Jacobsson B. Amniotic Fluid Infection, Inflammation, and Colonization in Preterm Labor with Intact Membranes. Am J Obstet Gynecol 2014; 211(6): 708. doi.org/10.1016/j.ajog.2014.06.060.
  18. Committee on Obstetric Practice. Committee Opinion No. 712: Intrapartum Management of Intraamniotic Infection. Obstet Gynecol. 2017; 130(2): e95–e101. doi.org/10.1097/AOG.0000000000002236.
  19. Chaemsaithong P., Romero R., Korzeniewski S.J., Martinez-Varea A., Dong Z., Yoon B.H., Hassan S.S., Chaiworapongsa T., Yeo L. A Rapid Interleukin-6 Bedside Test for the Identification of Intra-Amniotic Inflammation in Preterm Labor with Intact Membranes. J Matern Neonatal Med. 2016; 29 (3): 349–59. doi.org/10.3109/14767058.2015.1006620.
  20. Romero R., Avila C., Brecus C. A., Morotti R. The Role of Systemic and Intrauterine Infection in Preterm Parturition. Ann N.Y. Acad Sci. 1991; 622 (1 The Primate E): 355–375. doi.org/10.1111/j.1749-6632.1991.tb37880.x.
  21. Steel J.H., Malatos S., Kennea N., Edwards A.D., Miles L., Duggan P., Reynolds P.R., Feldman R. G., Sullivan M.H.F. Bacteria and Inflammatory Cells in Fetal Membranes Do Not Always Cause Preterm Labor. Pediatr. Res. 2005; 57 (3): 404–411. doi.org/10.1203/01.PDR.0000153869.96337.90.
  22. Vinturache A.E., Gyamfi-Bannerman C., Hwang J., Mysorekar I.U., Jacobsson B. Maternal Microbiome - A Pathway to Preterm Birth. Semin. Fetal Neonatal Med. 2016; 21(2): 94–9. doi.org/10.1016/j.siny.2016.02.004.
  23. Younes J.A., Lievens E., Hummelen R., van der Westen R., Reid G., Petrova M.I. Women and Their Microbes: The Unexpected Friendship. Trends Microbiol. 2018; 26(1): 16–32. doi.org/10.1016/j.tim.2017.07.008.
  24. Payne M.S., Keelan J.A., Stinson L.F. Re: “Amniotic Fluid from Healthy Term Pregnancies Does Not Harbor a Detectable Microbial Community”. 2018; 6: 87. doi:10.1186/S40168-018-0475-7. Microbiome. 2019; 7(1): 20. doi.org/10.1186/s40168-019-0642-5.
  25. Romero R., Miranda J., Chaiworapongsa T., Chaemsaithong P., et al. Sterile Intra-Amniotic Inflammation in Asymptomatic Patients with a Sonographic Short Cervix: Prevalence and Clinical Significance. J Matern Neonatal Med. 2015; 28(11): 1343–59. doi.org/10.3109/14767058.2014.954243.
  26. Romero R., Miranda J., Chaiworapongsa T., Chaemsaithong P., et al. A Novel Molecular Microbiologic Technique for the Rapid Diagnosis of Microbial Invasion of the Amniotic Cavity and Intra-Amniotic Infection in Preterm Labor with Intact Membranes. Am J Reprod Immunol. 2014; 71(4): 330–58. doi.org/10.1111/aji.12189.
  27. Romero R., Chaemsaithong P., Chaiyasit N., Docheva N., et al. CXCL10 and IL-6: Markers of Two Different Forms of Intra-Amniotic Inflammation in Preterm Labor. Am J Reprod Immunol. 2017; 78 (1): e12685. doi.org/10.1111/aji.12685.
  28. Gomez-Lopez N., Romero R., Panaitescu B., Leng Y., Xu Y., Tarca A.L., Faro J., Pacora P., Hassan S.S., Hsu C.-D. Inflammasome Activation during Spontaneous Preterm Labor with Intra-Amniotic Infection or Sterile Intra-Amniotic Inflammation. Am J Reprod Immunol. 2018; 80(5): e13049. doi.org/10.1111/aji.13049.
  29. Chen G.Y., Nuñez G. Sterile Inflammation: Sensing and Reacting to Damage. Nat Rev Immunol. 2010; 10(12): 826–37. doi.org/10.1038/nri2873.
  30. Boyle A.K., Rinaldi S.F., Norman J.E., Stock S.J. Preterm Birth: Inflammation, Fetal Injury and Treatment Strategies. J Reprod Immunol. 2017; 119: 62–66. doi.org/10.1016/j.jri.2016.11.008.
  31. Olson D.M. The Role of Prostaglandins in the Initiation of Parturition. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2003; 17(5): 717–30. doi.org/10.1016/S1521-6934(03)00069-5.
  32. Kim M.-G., Shim J.-Y., Pak J. H., Jung B.-K., Won H.-S., Lee P.-R., Kim A. Progesterone Modulates the Expression of Interleukin-6 in Cultured Term Human Uterine Cervical Fibroblasts. Am J Reprod Immunol. 2012; 67(5): 369–375. doi.org/10.1111/j.1600-0897.2011.01094.x.
  33. Cobo T., Kacerovsky M., Palacio M., Hornychova H., Hougaard D.M., Skogstrand K., Jacobsson B. Intra-Amniotic Inflammatory Response in Subgroups of Women with Preterm Prelabor Rupture of the Membranes. PLoS One. 2012; 7(8): e43677. doi.org/10.1371/journal.pone.0043677.
  34. Lannon S.M.R., Vanderhoeven J.P., Eschenbach D.A., Gravett M.G., Waldorf K.M.A. Synergy and Interactions Among Biological Pathways Leading to Preterm Premature Rupture of Membranes. Reprod Sci. 2014; 21 (10); 1215–27. doi.org/10.1177/1933719114534535.
  35. Sheller-Miller S., Urrabaz-Garza R., Saade G., Menon R. Damage-Associated Molecular Pattern Markers HMGB1 and Cell-Free Fetal Telomere Fragments in Oxidative-Stressed Amnion Epithelial Cell-Derived Exosomes. J Reprod Immunol. 2017; 123: 3–11. doi.org/10.1016/j.jri.2017.08.003.
  36. Keelan J.A. Intrauterine Inflammatory Activation, Functional Progesterone Withdrawal, and the Timing of Term and Preterm Birth. J Reprod Immunol. 2018; 125: 89–99. doi.org/10.1016/j.jri.2017.12.004.
  37. Redline R.W., Faye-Petersen O., Heller D., Qureshi F., Savell V., Vogler C. Amniotic Infection Syndrome: Nosology and Reproducibility of Placental Reaction Patterns. Pediatr Dev Pathol. 2003; 6(5): 435–48. doi.org/10.1007/s10024-003-7070-y.
  38. Kim C.J., Romero R., Chaemsaithong P., Chaiyasit N., Yoon B. H., Kim Y. M. Acute Chorioamnionitis and Funisitis: Definition, Pathologic Features, and Clinical Significance. Am J Obstet Gynecol. 2015; 213(4): S29–S52. doi.org/10.1016/j.ajog.2015.08.040.
  39. Torricelli M., Voltolini C., Toti P., Vellucci F.L., Conti N., Cannoni A., Moncini I., Occhini R., Severi F.M., Petraglia F. Histologic Chorioamnionitis: Different Histologic Features at Different Gestational Ages. J Matern Neonatal Med. 2014; 27(9): 910–13. doi.org/10.3109/14767058.2013.846313.
  40. Romero R., Espinoza J., Kusanovic J.P., Gotsch F., Hassan S., Erez O., Chaiworapongsa T., Mazor M. The Preterm Parturition Syndrome. BJOG. 2006; 113 Suppl: 17–42. doi.org/10.1111/j.1471-0528.2006.01120.x.
  41. Suff N., Karda R., Diaz J.A., Ng J., et al. Ascending Vaginal Infection Using Bioluminescent Bacteria Evokes Intrauterine Inflammation, Preterm Birth, and Neonatal Brain Injury in Pregnant Mice. Am J Pathol. 2018; 188(10): 2164–2176. doi.org/10.1016/j.ajpath.2018.06.016.
  42. Gilman-Sachs A., Dambaeva S., Salazar Garcia M.D., Hussein Y., Kwak-Kim J., Beaman K. Inflammation Induced Preterm Labor and Birth. J Reprod Immunol. 2018; 129: 53–8. doi.org/10.1016/j.jri.2018.06.029.
  43. Puhan M.A., Chandra D., Mosenifar Z., Ries A., Make B., Hansel N.N., Wise R.A., Sciurba F. The Minimal Important Difference of Exercise Tests in Severe COPD. Eur Respir J. 2011; 37(4): 784–90. doi.org/10.1183/09031936.00063810.
  44. Baker J.M., Chase D.M., Herbst-Kralovetz M.M. Uterine Microbiota: Residents, Tourists, or Invaders? Front Immunol. 2018; 9: 208. doi: 10.3389/fimmu.2018.00208
  45. Gotsch F., Romero R., Kusanovic J. P., Mazaki-Tovi S., Pineles B.L., Erez O., Espinoza J., Hassan S.S. The Fetal Inflammatory Response Syndrome. Clin Obstet Gynecol. 2007; 50(3): 652–83. doi.org/10.1097/GRF.0b013e31811ebef6.
  46. Steel J.H., O’Donoghue K., Kennea N.L., Sullivan M.H.F., Edwards A.D. Maternal Origin of Inflammatory Leukocytes in Preterm Fetal Membranes, Shown by Fluorescence in Situ Hybridisation. Placenta. 2005; 26(8–9): 672–7. doi.org/10.1016/j.placenta.2004.10.003.
  47. Lee S.D., Kim M.R., Hwang P.G., Shim S.-S., Yoon B.H., Kim C.J. Chorionic Plate Vessels as an Origin of Amniotic Fluid Neutrophils. Pathol Int. 2004; 54(7): 516–22. doi.org/10.1111/j.1440-1827.2004.01659.x.
  48. Gomez-Lopez N., Romero R., Xu Y., Leng Y., et al. Are Amniotic Fluid Neutrophils in Women with Intraamniotic Infection and/or Inflammation of Fetal or Maternal Origin? Am J Obstet Gynecol. 2017; 217(6): 693.e1-693.e16. doi.org/10.1016/j.ajog.2017.09.013.
  49. Leviton A., Allred E. N., Kuban K.C.K., Hecht J.L., Onderdonk A.B., O’shea T.M., Paneth N. Microbiologic and Histologic Characteristics of the Extremely Preterm Infant’s Placenta Predict White Matter Damage and Later Cerebral Palsy. the ELGAN Study. Pediatr Res. 2010; 67(1): 95–101. doi.org/10.1203/PDR.0b013e3181bf5fab.
  50. Gomez R., Ghezzi F., Romero R., Yoon B.H., Mazor M., Berry S.M. Two Thirds of Human Fetuses with Microbial Invasion of the Amniotic Cavity Have a Detectable Systemic Cyto-Kine Response before Birth. Am J Obstet Gynecol. 1997; 176 (1): S14. doi.org/10.1016/S0002-9378(97)80102-0.
  51. Ozalkaya E., Karatekin G., Topcuoğlu S., Gürsoy T., Ovalı F. Morbidity in Preterm Infants with Fetal Inflammatory Response Syndrome. Pediatr Int 2016; 58(9); 850–54. doi.org/10.1111/ped.12895.
  52. Sciaky-Tamir Y., Hershkovitz R., Mazor M., Shelef I., Erez O. The Use of Imaging Technology in the Assessment of the Fetal Inflammatory Response Syndrome-Imaging of the Fetal Thymus. Prenat Diagn. 2015; 35(5): 413–19. doi.org/10.1002/pd.4560.
  53. Mastrolia S. A., Erez O., Loverro G., Di Naro E., Weintraub A. Y., Tirosh D., Baron J., Hershkovitz R. Ultrasonographic Approach to Diagnosis of Fetal Inflammatory Response Syndrome: A Tool for at-Risk Fetuses? Am J Obstet Gynecol. 2016; 215(1); 9–20. doi.org/10.1016/j.ajog.2016.01.164.
  54. Kramer B.W., Kallapur S.G., Moss T.J.M., Nitsos I., Polglase G.P., Newnham J.P., Jobe A.H. Modulation of Fetal Inflammatory Response on Exposure to Lipopolysaccharide by Chorioamnion, Lung, or Gut in Sheep. Am J Obstet Gynecol. 2010; 202(1): 77.e1-77.e9. doi.org/10.1016/j.ajog.2009.07.058.
  55. Kemp M.W., Kannan P.S., Saito M., Newnham J.P., Cox T., Jobe A.H., Kramer B.W., Kallapur S.G. Selective Exposure of the Fetal Lung and Skin/Amnion (but Not Gastro-Intestinal Tract) to LPS Elicits Acute Systemic Inflammation in Fetal Sheep. PLoS One. 2013; 8(5): e63355. doi.org/10.1371/journal.pone.0063355.
  56. Kemp M.W., Molloy T.J., Usuda H., Woodward E., et al. Outside-in? Acute Fetal Systemic Inflammation in Very Preterm Chronically Catheterized Sheep Fetuses Is Not Driven by Cells in the Fetal Blood. Am J Obstet. Gynecol. 2016; 214(2): 281.e1-281.e10. doi.org/10.1016/j.ajog.2015.09.076.
  57. Boonkasidecha S., Kannan P.S., Kallapur S.G., Jobe A H., Kemp M. W. Fetal Skin as a Pro-Inflammatory Organ: Evidence from a Primate Model of Chorioamnionitis. PLoS One. 2017; 12(9); e0184938. doi.org/10.1371/journal.pone.0184938.
  58. Francis F., Bhat V., Mondal N., Adhisivam B., Jacob S., Dorairajan G., Harish B.N. Fetal Inflammatory Response Syndrome (FIRS) and Outcome of Preterm Neonates–a Prospective Analytical Study. J Matern Neonatal Med. 2019; 32(3): 488–92. doi.org/10.1080/14767058.2017.1384458.
  59. Buhimschi C.S., Dulay A.T., Abdel-Razeq S., Zhao G., Lee S., Hodgson E.J., Bhandari V., Buhimschi I.A. Fetal Inflammatory Response in Women with Proteomic Biomarkers Characteristic of Intra-Amniotic Inflammation and Preterm Birth. BJOG An Int J Obstet Gynaecol. 2009; 116(2): 257–67. doi.org/10.1111/j.1471-0528.2008.01925.x.
  60. Pan J., Zhan C., Yuan T., Wang W., Shen Y., Sun Y., Wu T., Gu W., Chen L., Yu H. Effects and Molecular Mechanisms of Intrauterine Infection/Inflammation on Lung Development. Respir Res. 2018; 19(1): 93. doi.org/10.1186/s12931-018-0787-y.
  61. Oh K.J., Romero R., Park J.Y., Lee J., Conde-Agudelo A., Hong J.-S., Yoon B.H. Evidence That Antibiotic Administration Is Effective in the Treatment of a Subset of Patients with Intra-Amniotic Infection/Inflammation Presenting with Cervical Insufficiency. Am J Obstet Gynecol. 2019; 221(2): 140.e1-140.e18. doi.org/10.1016/j.ajog.2019.03.017.
  62. Yoon B.H., Romero R., Park J.Y., Oh K.J., Lee J., Conde-Agudelo A., Hong J.S. Antibiotic Administration Can Eradicate Intra-Amniotic Infection or Intra-Amniotic Inflammation in a Subset of Patients with Preterm Labor and Intact Membranes. Am J Obstet Gynecol. 2019; 221(2): 142.e1-142.e22. doi.org/10.1016/j.ajog.2019.03.018.
  63. Tanaka S., Tsumura K., Nakura Y., Tokuda T., Nakahashi H., Yamamoto T., Ono T., Yanagihara I., Nomiyama M. New Antibiotic Regimen for Preterm Premature Rupture of Membrane Reduces the Incidence of Bronchopulmonary Dysplasia. J Obstet Gynaecol Res. 2019; 45(5): 967–73. doi.org/10.1111/jog.13903.
  64. Arenas-Hernandez M., Romero R., Xu Y., Panaitescu B., et al. Effector and Activated T Cells Induce Preterm Labor and Birth That Is Prevented by Treatment with Progesterone. J Immunol. 2019; 202(9): 2585–2608. doi.org/10.4049/jimmunol.1801350.
  65. Garcia-Flores V., Romero R., Miller D., Xu Y., et al. Inflammation-Induced Adverse Pregnancy and Neonatal Outcomes Can Be Improved by the Immunomodulatory Peptide Exendin-4. Front Immunol. 2018; 9:1291.doi.org/10.3389/fimmu.2018.01291.
  66. Gabbay Ben Ziv R., Ben-Haroush A., Yogev Y., Meizner I., Pardo J. Risk of Preterm Delivery Following Late Amniocentesis. Ultrasound Obstet Gynecol. 2010; 36(S1): 205. doi.org/10.1002/uog.8436.
  67. Maki Y., Furukawa S., Kodama Y., Sameshima H., Ikenoue T. Amniocentesis for Threatened Preterm Labor with Intact Membranes and the Impact on Adverse Outcome in Infants Born at 22 to 28 Weeks of Gestation. Early Hum Dev. 2015; 91(5): 333–7. doi.org/10.1016/j.earlhumdev.2015.03.006.
  68. Williams S.F. Pregnancy Outcomes after Late Second Trimester Amniocentesis for Prenatal Diagnosis. J Gynecol Obstet. 2015; 2(4); 59. doi.org/10.11648/j.jgo.20140204.13.

Received 19.06.2019

Accepted 21.06.2019

About the Authors

Ksenia A. Gorina, Junior researcher the Department of Pregnancy Pathology, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Healthcare of Russian Federation. Phone: +7 (926)649-77-32. E-mail: k_gorina@oparina4.ru
117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4.
Zulfiya S. Khodzhaeva, M.D., Professor, Head of High Risk Pregnancy Dept,
National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology
named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Healthcare of Russian Federation, Phone: +7(916)407-75-67E-mail: zkhodjaeva@mail.ru
117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4.
Dmitry M. Belousov, ultrasound department specialist National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician
V.I. Kulakov Ministry of Healthcare of Russian Federation. Phone: +7(925)506-51-46. E-mail: d_belousov@oparina4.ru
117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4.
Igor I. Baranov, M.D., Professor, Head of science-education department, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named
after Academician V.I. Kulakov Ministry of Healthcare of Russian Federation. Phone: +7 (495)438 94 92. E-mail: i_baranov@oparina4.ru
117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4.
Yael A. Gokhberg, clinical resident, «National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov» Ministry
of Healthcare of Russia. Phone: + 7(964) 794-79-12. E-mail: dr.yaelgokhberg@gmail.com
117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4.
Alexander A. Pashchenko, clinical resident, «National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov» Ministry
of Healthcare of Russia. Phone: +7(916)177-72-49. E-mail: al.pashenko2018@gmail.com. 117997, Russia, Moscow, Akademika Oparina str. 4

For citation: Gorina K.A., Khodzhaeva Z.S., Belousov D.M., Baranov I.I., Gokhberg Ya.A., Pashchenko A.A. Premature birth: past restrictions and new opportunities.
Akusherstvo i Ginekologiya/ Obstetrics and gynecology. 2020; 1: 12-19. (In Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.1.12-119

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.