Modifying the risk of ascending uterine cavity infection during gynecological procedures

Dobrokhotova Yu.E., Borovkova E.I., Burdenko M.V., Zaidieva Z.S., Amiryan D.S., Marakhovskaya E.

1) Department of Obstetrics and Gynecology, Faculty of General Medicine, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) Maternity Hospital, Separate Subdivision, A.K. Yeramishantsev City Clinical Hospital, Moscow City Healthcare Department, Moscow, Russia
Objective: To modify the risk of ascending uterine cavity infection during gynecological procedures by preventive medical vaginal sanitation. Materials and methods: A prospective cohort study was conducted in 80 patients who required outpatient gynecological procedures (hysterosalpingography, office hysteroscopy). There were 2 randomized groups: a study group who before the manipulation received a 6-day cycle of sanitizing therapy with a multicomponent local agent; a comparison group had no therapy. The formed groups were matched by age, parity, anamnestic data, and gynecological history. The Femoflor-16 PCR-RT assay was used to assess the microbiocenosis of the vagina and uterine cavity. Results: The total vaginal bacterial mass in the patients of both groups was lg 6.3 and 6.2 GE/sample (p=0.94). After the sanitizing therapy, the study group showed a decrease in the total vaginal bacterial contamination to lg 4.8 (Q1–Q3: 4.4–5.05) (p=0.03). The total uterine bacterial mass was lg 2.3 GE/sample (Me, IQR 2.05–2.95) and lg 4.8 GE/sample (Me, IQR 4.25–5.2) in the study and comparison groups, respectively (p<0.001). Comparing the indicators of uterine bacterial contamination with those of vaginal biocenosis after sanitation revealed a decline in the number of Peptostreptococcus spp., Veilonella spp. and Mobiluncus spp. in 17.5% of patients (p=0.018), Staphylococcus spp. (p=0.043) and Atopobium vaginae in 12.5% (p=0.042), Streptococcus spp. in 20% (p=0.012), Gardnerella vaginalis in 27.5% (p=0.003), and members of the Enterobacteriaceae family in 35.5% (p=0.01). Uterine cavity biocenosis could be characterized as lactobacillus-dominant in 98% of patients in the study group; the dominant lactobacillus type of biocenosis was detected in 42.5% of those in the comparison group. Before and after the therapy, the correlation between the total vaginal bacterial mass was statistically significant (p=0.03; rxy=0.63) (Spearman's rank correlation coefficient) and had a noticeable tightness in accordance with the Chaddock scale. There were statistically significant direct correlations between the total vaginal bacterial mass after the therapy and the amount of Lactobacillus spp. (rxy=0.514; p=0.02) and Gardnerella vaginalis (rxy=0.55; p=0.01) in the uterine cavity. Conclusion: Preoperative sanitizing therapy can reduce the overall bacterial contamination of the vagina and uterine cavity by 2 times.

Keywords

intrauterine biocenosis
endometrial microbiota
chronic endometritis
endometrial microflora
contamination
hysterosalpingography
hysteroscopy
endometrial biopsy

На протяжении долгого времени полость матки считалась стерильной, а основными барьерами, препятствующими ее контаминации бактериями из влагалища, были шейка матки и цервикальная слизь [1]. По мере развития науки и внедрения современных методов лабораторной диагностики концепция стерильности эндометрия была пересмотрена. С середины 1980-х гг. проведено множество исследований, посвященных изучению и уточнению состава внутриматочной микробиоты в норме и при различных патологических состояниях [2].

Микробиом эндометрия принято рассматривать как совокупность разнообразных микроорганизмов, включающих более 20 родов бактерий: Lactobacillus, Staphylococcus, Enterococcus, Micrococcus, Schlegelella, Delftia, Gardnerella, Burkholderia, Prevotella, Sphingobacterium, Vagococcus, Megasphaera, Ralstonia, Hydrogenophaga, Cloacibacterium, Limnohabitans, Dietzia, Atopobium, Sediminibacterium, Rothia, Exiguobacterium [3, 4]. В зависимости от соотношения микроорганизмов биоценоз полости матки может быть классифицирован на вариант с доминирующей лактобациллярной флорой (содержание лактобацилл превышает 90% всех других микроорганизмов) и с не доминирующей лактобациллярной флорой (в полости матки присутствует >10% бактерий, отличных от Lactobacillus, таких как A. vaginae, G. vaginalis, виды родов Clostridium, Megasphaera, Parvimonas, Prevotella, Sphingomonas, Sneathia) [4].

Состав микробиоты полости матки зависит от концентрации стероидных гормонов, реактивности факторов врожденной и приобретенной иммунной системы, биоценоза влагалища и кишечника. Повышение уровня эстрогенов в преовуляторный период сопровождается усиленной продукцией противомикробных пептидов и снижением уровня противовоспалительных цитокинов, что приводит к уменьшению концентрации условно-патогенных бактерий во влагалище и предотвращает инфицирование полости матки восходящим путем [5, 6].

В настоящее время выделено 4 возможных пути проникновения возбудителей инфекции в полость матки [5].

1. Восходящий путь: в результате нарушения барьерной функции цервикального канала (пассивное инфицирование при манипуляциях на шейке матки и активное инфицирование за счет передвижения бактерий на сперматозоидах и трихомонадах).

2. Лимфогенное и гематогенное инфицирование: за счет распространения возбудителей через систему регионарных микрососудов (травмы эндометрия при манипуляциях и в родах).

3. Нисходящее гематогенное распространение инфекции из экстрагенитальных очагов.

4. Контактное или прямое инфицирование при распространении бактерий из параметральной клетчатки и органов малого таза.

Даже при условии нормоценоза влагалища проведение внутриматочных манипуляций может повышать риск механического занесения бактерий и вирусов в полость матки. Интраоперационно (в связи с травматизацией ткани и временной иммуносупрессией) создаются условия, повышающие вероятность изменения маточного биоценоза и формирования избыточного бактериального роста в эндометрии. Для ряда пациенток это может стать дополнительным фактором, повышающим риски развития эндометрита и ухудшающим прогноз реализации репродуктивной функции.

В связи с этим целью нашего исследования стала модификация риска реализации восходящего инфицирования полости матки при проведении гинекологических процедур путем профилактической медикаментозной санации влагалища.

Материалы и методы

Набор пациенток проводился на базе консультативно-диагностического отделения родильного дома при ГКБ им. А.К. Ерамишанцева Департамента здравоохранения города Москвы в 2022 г. Работа проводилась с использованием когортного проспективного метода. Проверка первичной документации была выполнена на кафедре акушерства и гинекологии лечебного факультета ФГАОУ ВО «РНИМУ им. Н.И. Пирогова» Минздрава России.

Критерии включения в исследование.

1. Подписанное добровольное информированное согласие на участие в исследовании.

2. Возраст от 20 до 40 лет включительно.

3. Наличие показаний для проведения гистеросальпингографии и диагностической офисной гистероскопии (обследование в программах ВРТ, подозрение на полип эндометрия и внутриматочные синехии).

4. Нормоценоз влагалища по данным микроскопического исследования с окрашиванием по Граму, 1-я степень чистоты.

5. Согласие воздерживаться от любых влагалищных манипуляций в период исследования (половые контакты, спермициды, тампоны, спринцевания, диафрагмы, презервативы).

Критерии невключения в исследование.

1. Любые отклонения по данным микроскопического исследования влагалищного отделяемого (бактериальный вагиноз, вагинит).

2. Беременность.

3. Гиперчувствительность к любому компоненту препарата «Тержинан».

4. Прием системных или местных противогрибковых, антибактериальных, антипротозойных и антисептических препаратов в течение 2 недель до включения в исследование.

5. Применение внутриматочных устройств (содержащих и не содержащих гормональный компонент).

6. Соматические заболевания в стадии суб- и декомпенсации (сахарный диабет, иммунодефицит, ВИЧ-инфекция, заболевания почек и печени).

7. Известная или подозреваемая наркотическая/алкогольная зависимость.

Были сформированы 2 группы, разделенные случайным способом по принципу проведения (основная группа, n=40) и не проведения (группа сравнения, n=40) курса санирующей терапии. В ранее опубликованных исследованиях [7] было показано, что после интраоперационной обработки влагалища раствором хлоргексидина не удается полностью исключить внутриматочную контаминацию вагинальной флорой. В связи с этим нами были продолжены исследования с целью снижения вероятности механического пассивного распространения влагалищной флоры при амбулаторных диагностических процедурах (гистеросальпингография, диагностическая гистероскопия).

Пациентками сформированных групп было осуществлено 2 визита. На первом подписывались информированные согласия, в основной группе проводился забор материала из влагалища для бактериологического исследования и назначался препарат «Тержинан» по профилактической схеме на 6 дней. Препарат представляет собой комплексное лекарственное средство, в состав которого входят тернидазол 200 мг, неомицина сульфат 100 мг, нистатин 100 000 ЕД и преднизолон 3 мг, позволяющие перекрыть весь спектр наиболее распространенных бактерий, занимающих вагинальный биотоп.

На втором визите у пациенток основной группы повторно проводился забор материала из влагалища и первично из полости матки (до проведения манипуляции), у пациенток группы сравнения – первичный забор материала из влагалища и из полости матки (до проведения манипуляции).

Забор материала из влагалища проводился до бимануального исследования и обработки влагалища антисептическими растворами, после введения зеркал Куско. При помощи универсального зонда № 2 получали материал из заднего свода влагалища, помещали его в эппендорф с транспортной средой и в течение 24 часов с соблюдением температурного режима (+4°С) доставляли с лабораторию «Геномед» для проведения молекулярно-биологического исследования методом ПЦР с детекцией результатов в режиме реального времени (ПЦР-РВ) при помощи тест-системы «Фемофлор-16» (ООО «НПО ДНК-Технология»). Далее, после обработки влагалища и шейки матки раствором хлоргексидина при помощи стерильного зонда Pipelle de Cornier, производился забор из полости матки. Полученный аспирационный материал также помещался в эппендорф с транспортной средой и в течение 24 ч доставлялся с лабораторию «Геномед» для молекулярно-биологического тестирования системой «Фемофлор-16» (ООО «НПО ДНК-Техно­логия»).

Количественная оценка биоценоза проводилась в абсолютных и в относительных показателях, которые рассчитывались программным обеспечением приборов для ПЦР-РВ (ДТ96, ДТ322) на основании номера «порогового» цикла. Количество ДНК искомого микроорганизма в образце выражалось в геном-эквивалентах (ГЭ), которое пропорционально количеству микроорганизма.

Статистический анализ

Статистическая обработка результатов проводилась при помощи методов параметрической и непараметрической статистики с использованием программного обеспечения SPSS24. Значимыми принимались различия при p≤0,05.

Результаты

Клиническая характеристика обследованных

Пациентки сформированных групп были сопоставимы по возрасту, паритету и анамнестическим данным. Не было выявлено статистически значимых различий в индексе массы тела, гинекологических и соматических заболеваниях (табл. 1).

153-1.jpg (129 KB)

Показаниями для проведения гистеросальпингографии и офисной гистероскопии у пациенток основной группы и группы сравнения были бесплодие неясного генеза у 18 (18/40, 45%) и 19 (19/40, 47,5%) (р=0,59), подозрение на полип эндометрия у 21 (21/40, 52,5%) и 17 (17/40, 42,5%) (р=0,08) и внутриматочные синехии у 1 (1/40, 2,5%) и 4 (4/40, 10%) (р=0,05) соответственно.

Результаты микробиологического исследования

При анализе результатов микробиологического исследования оценивалась общая бактериальная масса во влагалищном и в полости матки, качественный и количественный состав микрофлоры.

Показатель общей бактериальной массы во влагалище у пациенток обеих групп не имел статистически значимых различий и составил lg 6,3 и 6,2 ГЭ/образец (р=0,94) (табл. 2).

После проведения санирующей терапии у пациенток основной группы отмечено статистически значимое снижение общей бактериальной обсемененности влагалища до lg 4,8 (Q1–Q3: 4,4–5,05) (р=0,03) (рис. 1, табл. 3).

154-1.jpg (277 KB)

При использовании критерия Уилкоксона было установлено статистически значимое снижение ко­­личества всех изучаемых вагинальных бактерий по­-сле проведенного санирующего лечения (р<0,05), за исключением грибов рода Candida (р=0,068) (табл. 3).

Общая бактериальная масса в полости матки у пациенток основной группы составила lg 2,3 ГЭ/образец (Ме, IQR 2,05–2,95), а в группе сравнения – lg 4,8 ГЭ/образец (Ме, IQR 4,25–5,2). Была выявлена статистически значимая разница, демонстрирующая, что в группе с проведенной санацией влагалища количество бактерий в полости матки было в 2,1 раза меньше, чем в группе пациенток, которым терапия до процедуры не проводилась (р<0,001) (рис. 2).

При сравнении показателей бактериальной обсемененности полости матки с данными влагалищного биоценоза после проведенной санации были выявлены значимые различия. У 62,5% (25/40) пациенток в полости матки выявлялись только лактобактерии. У 37,5% (15/40) сохранялись представители условно-патогенной флоры в минимальных титрах с преобладанием лактобактерий. По сравнению с их концентрацией во влагалищном биотопе отмечено статистически значимое снижение количества Peptostreptococcus spp., Veilonella spp. и Mobiluncus spp. у 17,5% (7/40) пациенток (р=0,018), у 12,5% (5/40) – Staphylococcus spp. (р=0,043) и Atopobium vaginae (р=0,042), Streptococcus spp. – у 20% (8/40, р=0,012), Gardnerella vaginalis – у 27,5% (11/40, р=0,003) и представителей семейства Enterobacteriaceae – у 35,5% (15/40, р=0,01).

У пациенток группы сравнения состав биоценозов влагалища и полости матки был более разнообразным как по качественному, так и по количественному составу (рис. 3).

155-1.jpg (138 KB)

Анализ полученных результатов показал, что у пациенток группы сравнения в полости матки состав микробиоценоза был идентичен влагалищному по качественному составу. Количество Lactobacillus spp., Staphylococcus spp., Veilonella spp. и представителей семейства Enterobacteriaceae статистически значимо снижалось (р<0,001).

Сравнительное исследование состава микробиоценоза полости матки у пациенток сформированных групп выявило значимые различия (табл. 4).

156-1.jpg (121 KB)

Сравнение показателей биоценоза полости матки у пациенток сформированных групп показало, что после проведения санирующей терапии в полости матки статистически значимо в меньшем количестве встречались практически все изучаемые микроорганизмы, за исключением Lactobacillus spp. (р=0,605), Veilonella spp. (р=0,058) и Peptostreptococcus spp. (р=0,055) (рис. 4).

У всех пациенток основной группы биоценоз полости матки можно было охарактеризовать как лактобациллодоминирующий, так как 98% всех микроорганизмов были представлены Lactobacillus spp. В группе сравнения доминирующий лактобациллярный тип биоценоза был выявлен в 42,5% (17/40), в 57,5% (23/40) случаев был выявлен смешанный тип био­ценоза.

Корреляционная связь общей бактериальной массы во влагалище до и после терапии, оцененная с помощью критерия ранговой корреляции Спирмена, была статистически значима (р=0,03; rxy=0,63) и имела заметную тесноту по шкале Чеддока.

Были установлены статистически значимые прямые корреляционные связи общей бактериальной массы во влагалище после терапии с количеством в полости матки Lactobacillus spp. (rxy=0,514; p=0,02) и Gardnerella vaginalis (rxy=0,55; p=0,01). Все выявленные связи имели заметную тесноту по шкале Чеддока.

Обсуждение

В 2007 г. методом секвенирования гена 16S рРНК состав микробиоценоза полости матки был подробно описан [1, 2, 8]. В связи с близким анатомическим расположением влагалища биоценозы полости матки и влагалища в норме приближены по качественному составу, но различаются количественно [9]. Озвучивалось предположение, что трансцервикальный забор материала для изучения внутриматочной флоры не позволяет исключить контаминацию полости вагинальными бактериями и, соответственно, установить истинный состав микробиома. Однако исследования, выполненные путем забора материала из матки после гистерэктомии, подтвердили отсутствие значимых различий в качественном, но не в количественном составе биоценоза эндометрия при различных вариантах получения образцов (трансцервикально или трансабдоминально) [9, 10]. В проведенном нами исследовании даже после асептической обработки влагалища и влагалищной порции шейки матки, при проведении манипуляций не удалось исключить восходящую контаминацию полости матки бактериями из влагалища и цервикального канала. В ранее проведенных исследованиях были получены идентичные результаты [7]. У пациенток, которым исследование проводилось без предварительной санации, в полости матки микробиота была идентична вагинальной по качественному составу, а в группе женщин, которым проводилась санация, микрофлора преимущественно состояла из лактобактерий. В количественном эквиваленте показатели общей бактериальной массы в полости матки были в 2 раза ниже, чем у пациенток без предоперационной санации.

В норме в вагинальном и цервикальном микробиоме преобладают Lactobacillus spp., что определяет состав бактериальной флоры в полости матки и маточных трубах. Немаловажную роль в формировании нормоценоза влагалища и матки играет и микрофлора кишечника, обеспечивающая формирование резистентности слизистых к патогенным микроорганизмам и эффективность работы факторов врожденного и приобретенного иммунитета [11].

Исследование, проведенное Moreno I. et al., показало, что присутствие в полости матки бактерий рода Lactobacillus коррелирует отрицательно с появлением патогенных бактерий и положительно с комменсальными бактериями, отражая стабильность эндометриальной экосистемы [12, 13]. Также было показано, что отсутствие Lactobacillus sp. и наличие таких микроорганизмов, как Atopobium sp., Bifidobacterium sp., Chryseobacterium spp., Gardnerella sp., Streptococcus sp. или Klebsiella sp., в эндометриальной жидкости и/или в биопсии эндометрия связаны с неудачными репродуктивными исходами. Исследование показало, что дисбиотический профиль микрофлоры эндометрия, состоящий из Atopobium sp., Bifidobacterium sp., Chryseobacterium sp., Gardnerella sp., Haemophilus sp., Klebsiella sp., Neisseria sp., Staphylococcus sp., Streptococcus sp. был связан с низким уровнем вынашивания беременности и живорождения [12, 13].

В проведенном нами исследовании были получены схожие результаты. Состав вагинальной и внутриматочной микробиоты у пациенток группы сравнения характеризовался присутствием лактобактерий и разнообразных факультативных анаэробов. В основной группе преобладал доминирующий лактобациллярный тип внутриматочной микробиоты, а общее количество бактерий было в 2 раза меньше, чем в группе сравнения.

В настоящее время в основе развития большинства воспалительных заболеваний органов малого таза, в частности эндометрита, лежит проникновение возбудителей инфекции в полость матки восходящим путем из влагалища. Присутствие в ткани Streptococcus групп А и В, Staphylococcus, E. coli, Klebsiella pneumoniae, Enterococcus, Proteus, Peptostreptococcus, Bacteroides, Prevotella, Clostridium, Gardnerella vaginalis, Ureaplasma urealyticum, Corynebacterium, Pseudomonas aeruginosa, Mycoplasma spp., Saccharomyces и Candida spp. ассоциировано с риском развития острого и хронического воспаления [10, 12–14]. Исследователи пришли к выводу, что колебания в численности микроорганизмов в самом биоценозе матки также могут приводить к развитию патологических изменений.

Заключение

Проведение мероприятий, способствующих снижению показателей колонизации эпителия влагалища бактериальной флорой, ассоциировано со снижением риска внутриматочной контаминации при проведении гинекологических манипуляций. Проведенное нами исследование продемонстрировало, что применение профилактической предоперационной санации влагалища поликомпонентным препаратом «Тержинан» позволяет снизить общую бактериальную обсемененность влагалища и предотвратить избыточную контаминацию полости матки во время гинекологических манипуляций, что может быть важно для снижения риска развития и частоты постманипуляционных осложнений.

References

  1. Sobstyl M., Brecht P., Sobstyl A., Mertowska P., Grywalska E. The role of microbiota in the immunopathogenesis of endometrial cancer. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(10): 5756. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23105756.
  2. Baker J.M., Chase D.M., Herbst-Kralovetz M.M. Uterine microbiota: residents, tourists, or invaders? Front. Immunol. 2018; 9: 208. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2018.00208.
  3. Dominguez-Bello M.G., Godoy-Vitorino F., Knight R., Blaser M.J. Role of the microbiome in human development. Gut. 2019; 68(6): 1108-14.https://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2018-317503.
  4. Benner M., Ferwerda G., Joosten I., van der Molen R.G. How uterine microbiota might be responsible for a receptive, fertile endometrium. Hum. Reprod. Update. 2018; 24(4): 393-415. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmy012.
  5. Agostinis C., Mangogna A., Bossi F., Ricci G., Kishore U., Bulla R. Uterine immunity and microbiota: a shifting paradigm. Front. Immunol. 2019; 10: 2387. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2019.02387.
  6. Kitaya K., Takeuchi T., Mizuta S., Matsubayashi H., Ishikawa T. Endometritis: new time, new concepts. Fertil. Steril. 2018; 110(3): 344-50. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.04.012.
  7. Доброхотова Ю.Э., Боровкова Е.И., Зайдиева З.С., Романовская В.В., Нугуманова О.Р. Оценка целесообразности профилактической предоперационной санации влагалища для предотвращения контаминации полости матки влагалищной микрофлорой. Акушерство и гинекология. 2022; 8: 132-42. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.8.132-142. [Dobrokhotova Yu.E., Borovkova E.I., Zaidieva Z.S., Romanovskaya V.V., Nugumanova O.R. Assessing the feasibility of preoperative preventive vaginal cleansing to prevent contamination of the uterine cavity with vaginal microflora. Obstetrics and Gynecology. 2022; 8: 132-42. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.8.132-142.
  8. Kyono K., Hashimoto T., Nagai Y., Sakuraba Y. Analysis of endometrial microbiota by 16S ribosomal RNA gene sequencing among infertile patients: a single-center pilot study. Reprod. Med. Biol. 2018; 17(3): 297-306.https://dx.doi.org/10.1002/rmb2.12105.
  9. Medina-Bastidas D., Camacho-Arroyo I., García-Gómez E. Current findings in endometrial microbiome: impact on uterine diseases. Reproduction. 2022; 163(5): R81-R96. https://dx.doi.org/10.1530/REP-21-0120.
  10. Moreno I., Simon C. Relevance of assessing the uterine microbiota in infertility. Fertil. Steril. 2018; 110(3): 337-43. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.04.041.
  11. Krog M.C., Madsen M.E., Bliddal S., Bashir Z., Vexø L.E., Hartwell D. et al. The microbiome in reproductive health: protocol for a systems biology approach using a prospective, observational study design. Hum. Reprod. Open. 2022; 2022(2): hoac015. https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoac015.
  12. Moreno I., Franasiak J.M. Endometrial microbiota-new player in town. Fertil Steril. 2017; 108(1): 32-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.05.034.
  13. Moreno I., Cicinelli E., Garcia-Grau I., Gonzalez-Monfort M., Bau D., Vilella F. et al. The diagnosis of chronic endometritis in infertile asymptomatic women: a comparative study of histology, microbial cultures, hysteroscopy, and molecular microbiology. Am J Obstet Gynecol. 2018; 218(6): 602.e1-602.e16.https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2018.02.012.
  14. Singh N., Sethi A. Endometritis - diagnosis, treatment and its impact on fertility - a scoping review. JBRA Assis.t Reprod. 2022; 26(3): 538-46. https://dx.doi.org/10.5935/1518-0557.20220015.

Received 17.10.2022

Accepted 25.10.2022

About the Authors

Yulia E. Dobrokhotova, Dr. Med. Sci., Professor, Head of the Department of Obstetrics and Gynecology of the Faculty of Medicine, N.I. Pirogov RNRMU,
Ministry of Health of Russia, +7(495)722-63-99, pr.dobrohotova@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-7830-2290, 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str., 1.
Ekaterina I. Borovkova, Dr. Med. Sci., Associate Professor, Professor at the Department of Obstetrics and Gynecology, N.I. Pirogov RNRMU, Ministry of Health of Russia, +7(495)722-63-99, Katyanikitina@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-7140-262X, 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str., 1.
Marina V. Burdenko, PhD, Associate Professor at the Department of Obstetrics and Gynecology, N.I. Pirogov RNRMU, Ministry of Health of Russia, +7(495)722-63-99,
bmv-0306@rambler.ru, https://orcid.org/0000-0002-0304-4901, 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str., 1.
Zulya S. Zaidieva, PhD, Head of the Consultative and Diagnostic Department, Maternity Hospital at Moscow City Clinical Hospital No. 40, +7(903)788-39-95,
dr.zaydieva@mail.ru, 129301, Russia, Moscow, Taimyrskaya str., 6.
Diana S. Amiryan, 4th year student, Medical Faculty, N.I. Pirogov RNRMU, Ministry of Health of Russia, +7(495)722-63-99, diasha.am1234@gmail.com,
https://orcid.org/0000-0001-5005-1462, 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str., 1.
Elyzaveta Marakhovskaya, 4th year student, Medical Faculty, N.I. Pirogov RNRMU, Ministry of Health of Russia, +7(495)722-63-99, lizamarahovskay35@gmail.com,
https://orcid.org/0000-0001-7413-646X, 117997, Russia, Moscow, Ostrovityanova str., 1.

Authors’ contributions: Dobrokhotova Yu.E. – development of the design of the investigation; Borovkova E.I., Zaidieva Z.S., Burdenko M.V., Amiryan D.S., Marakhovskaya E. – material collection, writing the article, statistical analysis.
Conflicts of interest: The authors declare that there are no possible conflicts of interest.
Funding: The investigation has not been sponsored.
Ethical Approval: The investigation has been approved by the local Ethics Committee, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University, Ministry of Health of Russia.
Patient Consent for Publication: All patients provided informed consent for the publication of their data.
Authors' Data Sharing Statement: The data supporting the findings of this study are available on request from the corresponding author after approval from the principal investigator.
For citation: Dobrokhotova Yu.E., Borovkova E.I.,
Burdenko M.V., Zaidieva Z.S., Amiryan D.S., Marakhovskaya E.
Modifying the risk of ascending uterine cavity infection during gynecological procedures.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2022; 10: 150-158 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.10.150-158

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.