Female genital microbiota: health, pathology, ways of correction

Punchenko O.E., Bereznitskaya E.A., Ermolenko E.I.

1) I.I. Mechnikov North-Western State Medical University, Ministry of Health of Russian Federation, Saint Petersburg, Russia; 2) Institute of Experimental Medicine, Saint Petersburg, Russia
The health of the female reproductive sphere correlates with its inhabiting microbiota. Lactobacilli, which dominate over all other representatives of microorganisms in the vagina of a healthy woman of reproductive age, provide colonization resistance, protect against non-communicable diseases of the reproductive sphere, and affect fertility and the physiological course of pregnancy. In turn, the species and quantitative composition of Lactobacilli depends on the hormonal background, race, age, bad habits of a woman, and the intake of hormonal and antimicrobial drugs. Bacterial vaginosis is one of the most common pathologies in gynecology. The signal for its onset may be an increase in the number of L. iners and a change in the morphology of Lactobacilli. In addition to traditional methods based on the collection of history data and morphological pattern, molecular genetic methods are used to diagnose vaginosis. Treatment policy for women includes the prescription of antimicrobial drugs, hormones, probiotics, and bacteriophages. Monotherapy with antibacterial drugs is ineffective in 30-60% of cases and requires repeated treatment. Several multistrain probiotics may be less effective than a single strain probiotic.
Conclusion. The use of probiotics both intravaginally and orally causes a change in mucosal immunity, which not only contributes to the correction of normal biota, but also prevents premature delivery, including in pregnant women with gestational diabetes. A new direction in this treatment is vaginal microbiota transplantation that meets the requirements of personalized therapy.

Keywords

vaginal microbiome
correction of dysbiosis

Lactobacillus – это род неспорообразующих грамположительных палочек, населяющих слизистые ротовой полости, желудочно-кишечного и мочеполового тракта. Представители рода Lactobacillus в составе отделяемого половых путей женщин половозрелого возраста в норме имеют численное преимущество перед остальными бактериями и микроскопическими грибами рода Candida [1]. Лактобациллы влагалища отличаются от лактобацилл желудочно-кишечного тракта как в видовом отношении, так и зависимостью от гормонального уровня. Превалирование молочнокислых бактерий приводит к тому, что рН биотопа находится в пределах 3,8–4,5, что отличает человека от теплокровных животных, у которых молочнокислые бактерии составляют всего 1% нормобиоты. Кислотно-щелочному балансу отводится основная роль в защите женских половых органов от транзиторной микробиоты, в том числе и той, которая попадает с эякулятом [2]. Долгое время считалось, что у всех женщин одинаковый уровень рН во влагалище, пока не было проведено исследование, в котором выяснили, что для африканских и испанских женщин характерен рН выше 4,5. Эти цифры коррелируют с эпидемиологическими данными о более высокой частоте инфицирования их при половом контакте [3].

Нормобиота влагалища и репродуктивных органов женщины

У Lactobacillus spp. имеются адгезины для связывания с фибронектином эпителиальных клеток, что помогает бактериям заселять организм сразу после рождения. Утилизируя гликоген, лактобациллы продуцируют молочную кислоту, рН понижается, а у бактерий повышается способность связывания с фибронектином. Эстрогены, активно образующиеся при половом созревании, способствуют пролиферации клеток эпителия влагалища и продукции внутриклеточного гликогена, а также влияют на плотность рецепторов эпителиальных клеток, связывающихся с лактобациллами [2]. Прогестерон вызывает цитолиз влагалищных эпителиоцитов, и выделяющийся гликоген утилизируется бактериями с образованием молочной кислоты. Таким образом, количество Lactobacillus spp. увеличивается, и они начинают преобладать над остальными микроорганизмами [1]. Другие бактерии, такие как Atopobium, Megasphaera и Leptotrichia, также могут способствовать снижению рН при ферментации глюкозы. Помимо бактерий, молочная кислота продуцируется клетками вагинального эпителия под контролем эстрогенов [4].

Доказано большое разнообразие бактерий, населяющих репродуктивные органы в норме и при патологии [5]. Поиск микроорганизмов, встречающихся в матке при различных гинекологических заболеваниях, проводился во многих странах (табл. 1).

19-1.jpg (106 KB)

Обнаружено большое разнообразие микробиоты эндометрия, что позволило выделить две группы женщин, в том числе с нормально протекающей беременностью: с доминированием лактобацилл и других родов, когда Lactobacillus spp. составляют менее 90% всех бактерий. Особенности микробиоты генитального тракта и плаценты представлены в таблице 2.

20-1.jpg (123 KB)

Все проведенные исследования объединяет небольшая выборка по сравнению с работами по исследованию микробиоты влагалища.

При более подробном изучении бактерий влагалища выяснилось, что Lactobacillus spp. – не единственные его резидентные представители. Обнаружено более 250 видов бактерий из нескольких десятков родов [8]. В период фертильности чаще других Lactobacillus spp. встречаются в ассоциации с Bifidobacterium spp. [1], а в пременопаузе – с другими анаэробными бактериями родов Prevotella, Dialister, Atopobium, Gardnerella и Megasphaera [9]. Среди представителей рода Lactobacillus описано более 120 видов. Обычно у женщины доминирующим является один, реже два вида, среди которых наиболее часто встречаются L. crispatus, L. gasseri, L. jensenii и L. iners [8, 10].

Роль лактобацилл

Роль лактобацилл многообразна. Для выживания в аэробных условиях они образуют перекись водорода, которая обладает ингибирующим влиянием на другие резидентные бактерии и вирусы. Бактерии рода Lactobacillus, продуцируя лектины и стимулируя иммунную систему, играют важную роль в колонизационной резистентности. Некоторые из них продуцируют бактериоцины, биосурфактанты и коаггрегирующие молекулы для ингибиции адгезии патогенов [2]. Так, бактериоцинпозитивные штаммы L. acidophilus и L. rhamnosus, выделенные у детей раннего возраста, проявили выраженную антагонистическую активность в отношении бактериальных клеток Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis и Clostridium perfringens. Антагонистическая активность бактерий L. paracasei, как и L. plantarum ST23LD и ST341LD, продуцирующих бактериоцин B-217 и плантарицины, соответственно проявлялась в отношении S. aureus, Streptococcus pneumoniae, Enterococcus faecalis, E. coli, Bacillus cereus, Salmonella spp., Pseudomonas aeruginosa. Плантарицин низкой молекулярной массы (1558 Да), синтезируемый бактериями L. plantarum Lp31, был активен в отношении тест-культур Listeria monocytogenes, S. aureus, B. cereus и Pseudomonas spp. L. fermentum в опыте препятствовала колонизации 108 КОЕ E. coli. У L. helveticus HY7801 отмечена наибольшая способность к ингибиции грибов рода Candida, как in vivo, так и в культуре клеток HeLa [4, 11].

Большое значение имеет опосредованное действие лактобацилл на физиологические функции организма, в том числе на фертильность и течение беременности. Например, бактероиды, фузобактерии, а также анаэробные стрептококки и гарднереллы продуцируют фосфолипазу А2, которая активирует продукцию простагландинов. У беременных женщин бактериальные протеазы и липазы могут воздействовать на хориоамниотическую мембрану, приводя к ее разрыву и инициации преждевременных родов [2]. Ингибируя рост указанных бактерий и предотвращая продукцию ими перечисленных ферментов и метаболитов, лактобациллы способствуют физиологическому течению беременности. Положительный эффект лактобацилл доказан для успешного экстракорпорального оплодотворения. Но в этом вопросе данные противоречивы, и не всегда авторами учитываются сопутствующие факторы, такие как возраст, гормональный фон, эндокринная патология [12].

Данные по изучению антагонистической активности лактобацилл in vitro иногда расходятся с экспериментальными данными in vivo. Например, при изучении влияния лактобацилл на уровень колонизации влагалища стрептококком группы В (СГВ) в одном исследовании эффекта от приема пробиотического штамма не обнаружили, и у женщин, принимающих плацебо, был такой же уровень СГВ, как и у принимающих пробиотик в течение 3–4 недель [13]. В то же время у 30% женщин, принимающих пробиотический штамм RC-14/GR-1 перорально в течение 14 дней, отмечена обратная связь между возрастанием концентрации лактобацилл и уменьшением численности СГВ. Но назначение того же препарата в виде тампонов успеха не имело [14]. Это еще раз показывает, что нельзя рассматривать бактерии «по отдельности», без учета их естественных мест обитания. Так, биотопом для СГВ является прямая кишка, поэтому пероральное назначение пробиотиков в течение длительного времени представляется более целесообразным.

Интересны данные по изучению колонизационной резистентности лактобацилл по отношению к патогенным бактериям. L. crispatus может обладать защитным эффектом в отношении гонококков и хламидий. И наоборот, в отсутствие лактобацилл диагностируются инфекции, вызванные Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium и Neisseria gonorrhoeae [15].

На рисунке представлены данные, полученные при анализе более 20 000 образцов биоматериала жительниц Санкт-Петербурга, обратившихся к гинекологу при вагинитах. Обратная корреляция между наличием патогенных микроорганизмов и лактобацилл доказывала их способность обеспечивать колонизационную резистентность, препятствуя размножению многих условно-патогенных и патогенных микроорганизмов. Важное значение имеет видовая специфичность Lactobacillus spp. L. casei, L. delbrueckii, L. fermentum, L. rhamnosus никогда не сочетались с патогенными бактериями; в то время как L. crispatus и L. jensenii встречались вместе с возбудителями инфекций, передающихся половым путем (ИППП) [10].

Долгое время нормобиотой влагалища считались четыре вида лактобацилл – L. crispatus, L. jensenii, L. gasseri и L. iners, к которым позже добавили G. vaginalis [16, 17]. На сегодняшний день описано пять вариантов микробиоты здоровой половозрелой женщины. Доминирующие виды лактобацилл при разных типах влагалищной микробиоты и их роль представлены в таблице 3.

21-1.jpg (229 KB)

Дисбиоз: причины и последствия

Женская вагинальная микробиота пластична, подвержена циклическим изменениям и может оказывать как физиологический, так и патологический эффект. Увеличение количества L. iners может быть сигналом к началу вагиноза; такая женщина более подвержена риску заражения хламидиозом. У самой L. iners описаны факторы вирулентности, такие как инеролизин, холестеринзависимый цитолизин – энзим, формирующий поры в клетках эпителия, активность которого была повышена у шестой части женщин с вагинозом. Бактериальный вагиноз, ассоциированный с IV типом, встречается у 12% женщин в Австралии и в странах Африки [15, 19]. Слишком большое количество лактобацилл или удлиненные лактобациллы с атипичной морфологией могут вызвать зуд и дизурию. Такой «цитолитический вагиноз», или «лактобациллез», напоминает по клиническим проявлениям кандидоз и требует проведения дифференциальной диагностики [8].

В 1955 г. H. Gardner и C. Dukes открыли Haemophilus vaginalis, позже переименованную в G. vaginalis, а состояние, которое она вызывает, было названо бактериальным вагинозом. Оно проявляется увеличением содержания в урогенитальном тракте женщин G. vaginalis и представителей родов Atopobium spp., Megasphaera spp., Anaerococcus, Peptoniphilus, Prevotella, а также L. iners, микоплазм и уреаплазм [15].

Бактериальный вагиноз – самая часто встречающаяся патология у женщин (19–24%) на сегодняшний день, в том числе он диагностируется у пятой части беременных. [12]. В то же время около 20% беременных женщин в Германии и половина небеременных женщин с микроскопической картиной бактериального вагиноза не имеют жалоб и клинических проявлений [8], хотя риски развития осложнений не зависят от клинической картины вагиноза.

В качестве одной из причин размножения условно-патогенной микробиоты рассматривают снижение количества лактобацилл из-за вирулентных фагов [1]. На фоне снижения количества лактобацилл размножение Gardnerella, Atopobium, Eggerthella, Leptotrichia/Sneathia и Prevotella приводит к развитию бактериального вагиноза и цервицита [21]. Неблагоприятными периодами в плане снижения количества облигатной бактериальной микробиоты является препубертатный и постменопаузальный возраст. В эти периоды снижается количество гликогена, ухудшается рецепция лактобактерий к влагалищному эпителию, значение рН становится нейтральным, что приводит к преобладанию облигатных анаэробов. Вероятным пусковым механизмом этого может быть низкий уровень эстрогенов [1]. В менопаузе количество вырабатываемого эстрогена снижается, что приводит к развитию патологических изменений в эпителии влагалища в виде атрофии. У таких женщин часто имеется колонизация энтерококком; в 50% встречается A. vaginae, а также Prevotella, Porphyromonas, Peptoniphilus, Bacillus. Иногда чувствительность микроскопического метода с окраской по Граму может оказаться недостаточной, и микроорганизмы не визуализируются [9, 18]. Вредные привычки, например, курение, также способствуют развитию вагиноза. Peptostreptococcus и Veillonella достоверно чаще встречаются у курящих [19]; у 28% отмечен высокий уровень гарднерелл и/или A. vaginae [16]. У 5% некурящих и 40% курящих женщин выявлены маркеры дисбиоза при окраске мазков по Граму [18, 22].

Преждевременные роды являются распространенной акушерской патологией. Они случаются в 5–9% случаев беременности в Европе и в 13% в США. Риск преждевременных родов при дисбиозе в два раза выше, чем у женщин с нормобиотой. Кроме того, женщины имеют более высокий риск прерывания первой беременности во II триместре, когда влагалищная микробиота содержит небольшое количество лактобацилл, или они вообще отсутствуют при микроскопии мазков [12]. Лечение антимикробными препаратами, несмотря на исчезновение клинических симптомов, не предотвращает преждевременные роды [13, 23]. Совершенно противоположные данные были получены в другом исследовании: прием клиндамицина беременными женщинами с дисбиозом, выявленным до 16–20 недель беременности, на 80% сократил количество преждевременных родов [20]. У женщин с трубной беременностью и другими нарушениями беременности достоверно чаще встречаются бактерии, ассоциированные с вагинозом [24]. Вагиноз напрямую коррелирует с высоким уровнем инфицированности вирусами папилломы человека (ВПЧ), в том числе и с высоким онкогенным риском ВПЧ-16 и ВПЧ-18 [19]. Женщины из Южной Африки в большей степени подвержены заражению ВИЧ, что связывают с особенностями нормобиоты и более высоким уровнем распространения бактериального вагиноза [3, 25].

Коррекция дисбиоза

Для лечения бактериального вагиноза традиционно используют антимикробную терапию. Но прием метронидазола и клиндамицина может сопровождаться побочными эффектами, к которым относится и дисбиоз. К тому же после лечения метронидазолом часто наблюдают рецидивы: у 30% женщин симптомы возвращаются через 3 месяца, а у 60% – через полгода после окончания терапии [8]. У 76% повторнолеченных женщин терапия оказывается неэффективной из-за резистентности бактерий. В качестве альтернативы предложено лечение фагами [26, 27].

Так как лактобациллы проявляют зависимость от эстрогенов, то одним из способов лечения дисбиоза является заместительная гормональная терапия [9, 19, 28]. Однако самым перспективным является назначение пробиотиков: микробиоту удалось восстановить в течение 5 дней с помощью L. acidophilus GLA-14 и L. rhamnosus HN001, комбинированными с лактоферрином в качестве адъюванта [29]. В состав пробиотиков добавляют штаммы Streptococcus thermophilus, Propionibacterium acidilactici LN23. Прием пробиотика, состоящего из одного-двух видов лактобацилл, может оказаться более эффективным [22, 27, 30, 31]. Большое влияние на выводы научной работы оказывает организация процесса. Так, в одном из исследований при оральном назначении L. rhamnosus GR-1 и L. reuteri RC-14 в течение 60 дней был отмечен положительный эффект, но так как женщины принимали препарат без контроля, а опрос проводился по телефону, то нормализация микробиоты всего у 14% женщин вызывает сомнение [23]. Перспективным направлением является комбинация пробиотического штамма с гормонами. Совместное применение эстрогена в дозе 0,03 мг с L. acidophilus оказалось достаточно эффективным: исследование с применением плацебо и комбинированного препарата показало, что через 6 месяцев восстановился состав микробиоты до уровня пременопаузы [9].

Новым направлением в лечении дисбиоза является пересадка влагалищных бактерий от здорового донора женщинам с рецидивирующим вагинозом. У четырех из пяти женщин отмечено стойкое улучшение в течение 5–21 месяцев наблюдения, что подтверждалось отсутствием жалоб, клинических проявлений и критериями Amsel. Однако ремиссия у трех пациентов потребовала повторной пересадки микробиоты и смены донора [32]. Возможно, что перед трансплантацией микробиоты надо не только убедиться в безопасности метода как в инфекционном, так и в иммунологическом отношении, но и подобрать донора с генетически близкими лактобациллами. Можно использовать микробиоту самой женщины, но есть риск, что в случае качественного нарушения лактобацилл они окажутся неэффективными после пересадки, ведь количественное преобладание не гарантирует выполнения всех функций нормобиоты. Идея трансплантации микробиоты не нова и пришла в гинекологию из гастроэнтерологии. Реализовать пересадку возможно двумя путями: культивирование донорских бактерий на питательных средах или непосредственная пересадка влагалищного секрета после центрифугирования [33]. Вариант с предварительным накоплением представляется более безопасным в плане передачи инфекционных агентов, таких как ВПЧ или ВИЧ; бактерии можно хранить длительное время и повторять трансплантацию при необходимости.

Появляется возможность создания банков образцов из кишечника и влагалища для использования в качестве материала для гомологичных и аутологичных трансплантаций и выделения штаммов аутопробиотиков. Также возможны подбор пробиотиков c учетом антибактериальной и/или антивирусной активности, иммуномодулирующего эффекта, адгезивности к влагалищному эпителию, создание аутопробиотиков на основе таких облигатных представителей микробиоты влагалища, как L. reuteri, L. rhamnosus и L. acidophilus для персонифицированной терапии вагинитов и коррекции дисбиотических состояний. Несмотря на огромное количество научных публикаций, посвященных использованию пробиотиков в акушерской и гинекологической практике, результаты этих работ противоречивы, часто встречаются повторы одного и того же исследования. Начиная с 1992 г., опубликованы результаты не более 100 оригинальных исследований, хотя количество публикаций составляет несколько тысяч. И даже эти исследования, проведенные по всем правилам, противоречат друг другу. Это объясняется различиями, связанными с используемыми пробиотическими штаммами и с длительностью и способом их приема.

Не получено достоверных данных, что монотерапия пробиотиками более эффективна, чем антибиотиками или гормонами, или что комбинация пробиотика с антибиотиком или гормоном более эффективна, чем традиционное лечение [27, 34, 35]. Восстановление количества лактобацилл должно проводиться комплексно, с учетом микроэкологии влагалища [36], типа микробиоты, которые отличаются у женщин разного возраста и рас, степени нарушения гомеостаза. Очевидно, что пробиотики должны назначаться только по показаниям после комплексного обследования, включающего применение современных методов микробиологии.

Заключение

Классический микроскопический метод не может определить принадлежность женщины к одному из пяти типов по влагалищной микробиоте. Он не позволяет исключить ошибки в идентификации бактерий: так, L. iners и G. vaginalis морфологически очень похожи. В этой области требуются дополнительные исследования для разработки персонифицированной терапии.

References

  1. Рищук С.В., Пунченко О.Е., Малышева А.А. Эндогенная микробиота влагалища и ее регуляция. Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. 2013; 4: 9. [Rischuk S.V., Punchenko O.E., Malysheva A.A. Endogenous vaginal microbiota and its regulation. BONTS UrO RAS. 2013;4: 9. (in Russian)]. https://cyberleninka.ru/article/n/endogennaya-mikrobiota-vlagalischa-i-eyo-regulyatsiya.
  2. Рищук С.В., Татарова Н.А., Айрапетян М.С. Эндогенная микробиота влагалища. Диагностика и принципы лечения эндогенной инфекции. Гинекология. 2014; 16(5): 31-40. [Rischuk S.V., Tatarova N.A., Airapetyan M.S. Endogenous vaginal microbiota. Diagnostics and principles of treatment of endogenous infection. Gynecology. 2014; 16(5): 31-40. (in Russian)].
  3. Godha K., Tucker K.М., Biehl С., Archer D.F., Mirkin S. Human vaginal pH and microbiota: an update. Gynecol. Endocrinol. 2018; 34(6): 451-5. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2017.1407753.
  4. Witkin S., Linhares I. Why do Lactobacilli dominate the human vaginal microbiota? BJOG. 2016; 124(4): 606-11. https://dx.doi.org/10.1111/1471-0528.14390.
  5. Chen C., Song X., Wei W., Zhong H., Dai J., Lan Z. et al. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nat. Commun. 2017; 8(1): 1-11. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-017-00901-0.
  6. Peric A., Weiss J., Vulliemoz N., Baud D., Stojanov M. Bacterial colonization of the female upper genital tract. Int. J. Mol. Sci. 2019; 20(14): 3405.
  7. Чаплин А.В., Ребриков Д.В., Болдырева М.Н. Микробиом человека. Вестник Российского государственного медицинского университета. 2017; 2: 5-13. [Chaplin A.V., Rebrikov D.V., Boldyreva M.N. Human microbiome. Bulletin of the Russian State Medical University. 2017; 2: 5-13. (in Russian)].
  8. Mendling W. Vaginal microbiota. Adv. Exp. Med. Biol. 2016; 902: 83-93. https://dx.doi.org/10.1007/978-3-319-31248-4_6.
  9. Muhleisen A., Herbst-Kralovetz M. Menopause and the vaginal microbiome. Maturitas. 2016; 91: 42-50. https://dx.doi.org/10.1016/j.maturitas.2016.05.015.
  10. Корноухова Л.А., Пунченко О.Е. Повышение диагностической ценности лабораторного исследования при диагностике влагалищных инфекций. Инфекционные болезни. 2014; 12(1): 149. [Kornoukhova L.A., Punchenko O.E. Increasing the diagnostic value of laboratory research in the diagnosis of vaginal infections. Infectious diseases. 2014; 12(1): 149. (in Russian)].
  11. Petrova M.I., Lievens E., Malik S., Imholz N., Lebeer S. Lactobacillus species as biomarkers and agents that can promote various aspects of vaginal health. Front. Physiol. 2015; 6: 81. https://dx.doi.org/10.3389/fphys.2015.00081.
  12. Singer M., Borg M., Ouburg S., Morre S.A. The relation of the vaginal microbiota to early pregnancy development during in vitro fertilization treatment – A meta-analysis. J. Gynecol. Obstet. Hum. Reprod. 2019; 48(4): 223‐9. https://dx.doi.org/10.1016/j.jogoh.2019.01.007.
  13. Buggio L., Somigliana E., Borghi A., Vercellini P. Probiotics and vaginal microecology: fact or fancy? BMC Women Health. 2019; 19(1): 25-31. https://dx.doi.org/10.1186/s12905-019-0723-4.
  14. Olsen P., Williamson M., Traynor V., Georgiou C. The impact of oral probiotics on vaginal group B streptococcal colonisation rates in pregnant women: A pilot randomised control study. Women and Birth. 2018; 31(1): 31-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.wombi.2017.06.012.
  15. Kroon S., Ravel J., Huston W. Cervicovaginal microbiota, women's health, and reproductive outcomes. Fertil. Steril. 2018; 110(3): 327-36. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.06.036.
  16. Haahr T., Jensen J., Thomsen L., Duus L., Rygaard K., Humaidan P. Abnormal vaginal microbiota may be associated with poor reproductive outcomes: a prospective study in IVF patients. Hum. Reprod. 2016; 31(4): 795-803. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew026.
  17. Ворошилина Е.С., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В., Тищенко Н.А., Зорников Д.Л. Преобладание Lactobacillus iners в микробиоценозе влагалища женщин с умеренным дисбиозом ассоциировано с наличием клинических признаков инфекционно-воспалительной патологии влагалища. Вестник Российского государственного медицинского университета. 2017; 2: 47-51. [Voroshilina E.S., Plotko E.E., Khayutin L.V., Tishchenko N.A., Zornikov D.L. The predominance of Lactobacillus iners in the vaginal microbiocenosis of women with moderate dysbiosis is associated with the presence of clinical signs of an infectious and inflammatory pathology of the vagina. Bulletin of the Russian State Medical University. 2017; 2: 47-51. (in Russian)].
  18. Brotman R.M., Shardell M.D., Gajer P., Sharma E., Mongodin E.F., Ravel J. et al. Association between the vaginal microbiota, menopause status, and signs of vulvovaginal atrophy. Menopause. 2018; 25(11): 1321-30. https://dx.doi.org/10.1097/GME.0000000000001236.
  19. Kyrgiou M., Mitra A., Moscicki A. Does the vaginal microbiota play a role in the development of cervical cancer? Transl. Res. 2017; 179: 168-82. https://dx.doi.org/10.1016/j.trsl.2016.07.004.
  20. Peelen M., Luef B., Lamont R., Millianod I., Jensene J.S., Limpenset J. et al. The influence of the vaginal microbiota on preterm birth: A systematic review and recommendations for a minimum dataset for future research. Placenta. 2019; 79: 30‐9. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2019.03.011.
  21. Ling Z., Liu X., Chen X., Zhu H., Nelson K.E., Xia Y., Li L., Xiang C. Diversity of cervicovaginal microbiota associated with female lower genital tract infections. Microb. Ecol. 2011; 61(3):704-14. https://dx.doi.org/10.1007/s00248-011-9813-z.
  22. Brotman R., He X., Gajer P., Sharma E., Mongodin E.F., Ravel J. et al. Association between cigarette smoking and the vaginal microbiota: a pilot study. BMC Infect. Dis. 2014; 28(14): 471-82. https://dx.doi.org/10.1186/1471-2334-14-471.
  23. Gille C., Böer B., Marschal M., Urschitz M.S., Heinecke V., Hund V. et al. Effect of probiotics on vaginal health in pregnancy. EFFPRO, a randomized controlled trial. Am. J. Obstet. Gynecol. 2016; 215(5): 608-15. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2016.06.021.
  24. Smith S., Ravel J. The vaginal microbiota, host defence and reproductive physiology. J. Physiol. 2016; 595(2): 451-63. https://dx.doi.org/10.1113/JP271694.
  25. Eastment M.C., McClelland R.S. Vaginal microbiota and susceptibility to HIV. AIDS. 2018; 32(6): 687-98. https://dx.doi.org/10.1097/QAD.0000000000001768.
  26. Javed A., Parvaiz F., Manzoor S. Bacterial vaginosis: An insight into the prevalence, alternative treatments regimen and it's associated resistance patterns. Microb. Pathog. 2019; 127: 21-30. https://dx.doi.org/10.1016/j.micpath.2018.11.046.
  27. Li C., Wang T., Li Y., Zhang T., Wang Q., Heet J. et al. Probiotics for the treatment of women with bacterial vaginosis: A systematic review and meta-analysis of randomized clinical trials. Eur. J. Pharmacol. 2019; 864: 172660. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172660.
  28. Bassis C.M., Allsworth J.E., Wahl H.N., Sack D.E., Young V.B., Bell J.D. Effects of intrauterine contraception on the vaginal microbiota. Contraception. 2017; 96(3): 189-95. https://dx.doi.org/10.1016/j.contraception.2017.05.017.
  29. Russo R., Karadja E., De Seta F. Evidence-based mixture containing Lactobacillus strains and lactoferrin to prevent recurrent bacterial vaginosis: a double blind, placebo controlled, randomised clinical trial. Benef. Microbes. 2019; 10 (1): 19-26. https://dx.doi.org/10.3920/BM2018.0075.
  30. Homayouni A., Bastani P., Ziyadi S., Mohammad-Alizadeh-Charandabi S., Ghalibaf M., Mortazavian A.M., Mehrabany E.V. Effects of probiotics on the recurrence of bacterial vaginosis: a review. J. Low. Genit. Tract Dis. 2014; 18(1): 79-86. https://dx.doi.org/10.1097/LGT.0b013e31829156ec.
  31. Kirihara N., Kamitomo M., Tabira T., Hashimoto T., Taniguchi H., Maeda T. Effect of probiotics on perinatal outcome in patients at high risk of preterm birth. Obstet. Gynaecol. Res. 2017; 44(2): 241-7. https://dx.doi.org/10.1111/jog.13497.
  32. Lev-Sagie A., Goldman-Wohl D., Cohen Y., Dori-Bachash M., Leshem A., Mor U. et al. Vaginal microbiome transplantation in women with intractable bacterial vaginosis. Nat. Med. 25(10):1500-4. https://dx.doi.org/10.1038/s41591-019-0600-6.
  33. Ma D., Chen Y., Chen T. Vaginal microbiota transplantation for the treatment of bacterial vaginosis: a conceptual analysis. FEMS Microbiol. Lett. 2019; 366(4): fnz025. https://dx.doi.org/10.1093/femsle/fnz025.
  34. Hanson L., VandeVusse L., Jerm´e M., Abad C.L., Safdar N. Probiotics for treatment and prevention of urogenital infections in women: a systematic review. J. Midwifery Women’s Health. 2016; 61(3): 339-55. https://dx.doi.org/10.1111/jmwh.12472.
  35. Jarde A., Lewis-Mikhael A., Moayyedi P., Stearns J.C., Collins S.M., Beyene J., McDonald S.D. Pregnancy outcomes in women taking probiotics or prebiotics: a systematic review and meta-analysis. BMC Pregnancy Childbirth. 2018; 18(1):14. https://dx.doi.org/10.1186/s12884-017-1629-5.
  36. Радзинский В.Е., Ордиянц И.М., Побединская О.С., Буянова Н.В. Современные аспекты коррекции дисбиотических нарушений в гинекологической практике. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2013; 2: 72-5. [Radzinsky V.E., Ordiyants I.M., Pobedinskaya O.S. et al. Modern aspects of correction of dysbiotic disorders in gynecological practice. Obstetrics and Gynecology: News. Opinions. Training. 2013; 2: 72-5. (in Russian)].
  37. Калинкина О.Б., Tезиков Ю.В., Липатов И.С., Аравина О.Р. Исследование микробиоты урогенитального тракта и кишечника у женщин с III–IV стадиями эндометриоза яичников. Пермский медицинский журнал. 2020; 37(1): 14-21. [Kalinkina O.B., Tezikov Yu.V., Lipatov I.S., Aravina O.R. Study of the microbiota of the urogenital tract and intestines in women with stages III–IV ovarian endometriosis. Perm Medical Journal. 2020; 37(1): 14-21. (in Russian)].

Received 12.08.2020

Accepted 01.02.2021

About the Authors

Olga E. Punchenko, PhD, Associate Professor at the Department of Medical Microbiology, I.I. Mechnikov North-Western State Medical University, Ministry of Health
of Russia; senior researcher of the Laboratory of Biomedical Microecology, Institute of experimental medicine. Tel.: +7(921)872-12-56. E-mail: Olga.Punchenko@szgmu.ru.
191015, Russia, Saint-Petersburg, Kirochnaya str., 41; 197376, Russia, Saint-Petersburg, Acad. Pavlov str., 12.
Elena A. Bereznitskaia, student, I.I. Mechnikov North-Western State Medical University, Ministry of Health of Russia. Tel.: +7(812)303-50-00.
E-mail: predawnpiper@gmail.com. 191015, Russia, Saint-Petersburg, Kirochnaya str., 41.
Elena I. Ermolenko, Dr. Med. Sci, Head of the Laboratory of Biomedical Microecology, Institute of experimental medicine. Tel.: +7(953)341-26-25.
E-mail: Lermolenko1@yandex.ru. 197376, Russia, Saint-Petersburg, Acad. Pavlov str., 12.

For citation: Punchenko O.E., Bereznitskaya E.A., Ermolenko E.I. Female genital microbiota: health, pathology, ways of correction.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2021; 3: 18-24 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.3.18-24

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.