Clinical and molecular genetic determinants of the development of gestational diabetes mellitus

Khodzhaeva Z.S., Snetkova N.V., Klimenchenko N.I., Abramova M.E., Degtyareva E.I., Donnikov A.E.

Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow
The molecular mechanisms of the pathogenesis of gestational diabetes mellitus (GDM) remain insufficiently studied, which is largely determined by its heterogeneous nature. The paper reviews the data available in the current literature on studies of the molecular genetic determinants of the development of gestational diabetes mellitus. It describes predictors for GDM, their relationship to obstetric and neonatal outcomes, as well as associations with other types of diabetes and with the risk of their development.
Conclusion. Further investigations are needed to identify virtually significant molecular genetic biomarkers for GDM.

Keywords

gestational diabetes mellitus
pregnancy
genetics
diabetic fetopathy
fetal macrosomia
oral glucose tolerance test
insulin resistance

Гипергликемия во время беременности отмечается в 14% среди европейской популяции женщин, в 16% она связана с различными видами диабета, а в 84% – ассоциирована с гестационным сахарным диабетом (ГСД) [1].

ГСД – это гетерогенная группа заболеваний, впервые выявленных во время беременности и характеризующихся гипергликемией, не соответствующей критериям манифестного сахарного диабета (СД). Данное определение подразумевает наличие различных патологических состояний, в том числе, вероятно, имевших место до наступления беременности, доминирующим клинико-лабораторным проявлением которых является гипергликемия, влияющая не только на течение и исходы беременности, но и на качество последующей жизни женщины и ее ребенка. Именно поэтому ВОЗ и ФИГО выделили гипергликемию во время беременности в категорию особо важных нозологических состояний с длительным «шлейфом» неблагоприятных последствий для женщины, составляющих биологическую основу развития заболеваний у ее ребенка во взрослом возрасте.

В 2013 году ВОЗ рекомендовала гипергликемию, впервые выявленную во время беременности, классифицировать как «сахарный диабет при беременности» или «Гестационный сахарный диабет» [2].

ГСД – классический гетерогенный большой акушерский синдром с вовлечением генетических, эпигенетических и других факторов, что подтверждается вариабельностью частоты этого заболевания (4–20%) в зависимости от расово-этнической принадлежности популяции. Так, при относительно невысокой частоте у европейских женщин она достигает 10% среди азиаток-жительниц Южной Азии и Среднего Востока [3].

Согласно данным Государственного регистра СД, распространенность ГСД в России составляет 8–9%, в то время как, по данным международных исследований около 17% всех беременностей осложняется ГСД, и наблюдается тенденция к росту заболеваемости [4].

В настоящее время ГСД остается одной из самых социально и демографически значимых проблем течения и исходов беременностей. СД, впервые выявленный во время беременности, вызывает серьезные краткосрочные и долгосрочные осложнения у матери, плода или новорожденного [5, 6]. Кроме того, ГСД является фактором риска развития ожирения, СД 2-го типа и сердечно-сосудистых заболеваний у матери и ее потомства в будущем [7].

В соответствии с общепринятыми стандартами, диагноз ГСД, как правило, устанавливается после 24 недель гестации на основании орального глюкозотолерантного теста (ОГТТ) [8]. Но, в то же время, существует мнение, что в ряде случаев ГСД протекает без явных клинических признаков и относительной гипергликемии, что затрудняет его своевременную диагностику.

Учитывая многообразие механизмов развития ГСД, большой интерес представляет изучение полиморфизмов различных групп генов, экспрессия которых способствует трансформации гестационной гипергликемии в другие виды диабета, либо подтверждает наличие предшествующего беременности диабета.

Физиологическая инсулинорезистентность в определенной степени необходима для формирования и нормального функционирования фетоплацентарного кровотока. Но гиперинсулинемия при ГСД, которая развивается, несмотря на гипертрофию и гиперплазию β-клеток островков Лангерганса поджелудочной железы, является следствием генетических полиморфизмов и эпигенетических нарушений. Сходство механизмов развития инсулинорезистентности при СД 2-го типа и ГСД инициировало исследования, направленные на поиск связи между нарушением инсулинпродуцирующей функции β-клеток поджелудочной железы у беременных и изменением продукции гормонов желудочно-кишечного тракта (инкретинов), целью которого явилось изучение механизмов гестационного нарушения гомеостаза глюкозы.

Выделяют следующие основные группы генов-кандидатов, ответственных за развитие ГСД:

Гены, связанные с секрецией инсулина

  1. Ген входящих калиевых каналов, подсемейство J, наименование 11 (KCNJ11). Нарушение структуры данного белка приводит к снижению выброса инсулина при повышении концентрации глюкозы. В одном исследовании показана связь между локусом rs5219 (минорный вариант которого приводит к замене E23K в гене KCNJ11) с биохимическими маркерами гликемического статуса и инсулинорезистентности при ГСД [9]. Нарушение секреции инсулина в ответ на повышение уровня гликемии обусловлено дисфункцией АТФ-зависимых К-каналов вследствие активирующих мутаций в генах KCNJ11 и ABCC8. Функциональные дефекты панкреатических β-клеток возникают в результате активирующих мутаций в гене KCNJ11. Большинство таких пациентов могут быть успешно компенсированы на фоне назначения пероральной сахароснижающей терапии
  2. Т-клеточный транскрипционный фактор 7(TCF7L2), кодирующий ядерный рецептор р-катерина, активатора Wnt – сигнального пути. Этот ген регулирует гомеостаз глюкозы. При скрининговом исследовании различных популяций четырех локусных полиморфизмов (rs7903146, rs4506565, rs7901695, и rs12255372) гена TCF7L2 была выявлена ассоциация аллеля rs7903146 Т гена фактора транскрипции TCF7L2, участвующего в каноническом β-катенинзависимом сигнальном пути Wnt и регулирующего пролиферацию β-клеток поджелудочной железы с ГСД [10–12]. Аллель Т ассоциируется со снижением продукции инсулина [13] и изменением печеночного глюконеогенеза [14]. С активацией сигнального пути Wnt в панкреатических клетках связывают положительный терапевтический эффект глюкагоноподобного пептида-1 и его синтетического агониста [15]. Наличие аллеля rs7903146 T гена фактора транскрипции TCF7L2 повышает риск развития СД 2-го типа в 1,45 раза у гетерозиготных носителей и в 2,41 раза – в гомозиготном варианте [16].
  3. Ген калиевого канала подсемейства Q член 1 (KCNQ1) играет роль в секреции инсулина, а варианты KCNQ1 связаны со снижением секреции инсулина и повышенной восприимчивостью к СД 2-го типа. Два варианта, rs2237895 и rs2237892, были исследованы в разных популяциях в четырех исследованиях. В обоих вариантах аллель C ассоциировался с повышенным риском развития ГСД. [17].

Гены, связанные с передачей инсулинового сигнала

Субстрат 1 рецептора инсулина (IRS1) представляет собой белок, который играет ключевую роль в передаче сигналов от рецепторов инсулина и инсулиноподобного фактора роста-1 к внутриклеточным путям, которые связаны с инсулиновым ответом и риском развития СД 2-го типа [18]. Два генетических аллеля rs1801278 и rs7578326 в гене IRS1 были исследованы во время ГСД. Для аллеля rs1801278 ген Т был связан с повышенным риском ГСД [19] в популяции Саудовской Аравии, но не в российской популяции [20], в то время как аллель rs7578326 гена G был связан со сниженным риском развития ГСД в австро-венгерской популяции [21]. Как указывалось ранее, эти противоречивые результаты могут быть связаны с различиями между популяцией и методом генотипирования.

Ген IGF2 содержит инструкции по созданию белка, называемого инсулиноподобным фактором роста 2 (IGF2). Этот белок играет важную роль в росте плода. Исследования показывают, что IGF2 способствует росту и делению (пролиферации) клеток во многих различных тканях. Но, в то же время, ген IGF2 активно участвует в развитии плода и менее активен после рождения. А полиморфные изменения в генах, интерпретируемых у плода, особенно в области IGF2 / INS, вносят небольшой, но значительный вклад в риск повышения концентрации глюкозы в материнской крови на поздних сроках беременности [22]. Также имеются исследования, что IGF2 является ключевым фактором, определяющим рост плода, а также метаболические нарушения у женщин с ГСД [23, 24].

Ген INSR – белок, называемый рецептором инсулина, который содержится во многих типах клеток. Выявлена корреляция между аллелем rs1366600 данного гена и третьей пробой (через 2 часа) уровня глюкозы в плазме при проведении ОГТТ [25]. Возможно развитие моногенного диабета в связи с нарушением чувствительности к инсулину.

Ген рецептора мелатонина 1В (MTNR1B) – кодирует один из рецепторов данного гормона, который, помимо прочего, участвует в регуляции циркадных ритмов передачи сигналов инсулина и метаболизма глюкозы [26]. При скрининговом исследовании выявлена связь аллеля rs10830963 гена MTNR1B с повышенным риском развития ГСД в некоторых европейских популяциях [11, 21, 27]. Также имелись сообщения о связи генотипов локусов маркеров СД 2-го типа: rs10830963 и rs1387153 гена MTNR1B, с повышенным риском развития ГСД на 62% и 38% соответственно [11, 28]. Ранее было показано, что варианты полиморфного гена MTNR1B, в частности аллель G rs10830963, связаны с повышением концентрации глюкозы натощак и снижением функции β-клеток у европейцев [29].

Гены, участвующие в регуляции углеводного и липидного обмена

Гамма-рецепторы, активируемые пероксисомным пролифератором (PPARG). Ген PPARG экспрессируется в адипоцитах и ​​кодирует ядерный транскрипционный фактор, играющий главную роль в дифференцировке и функционировании адипоцитов и, возможно, участвует в развитии моногенного диабета. Связь между аллелем rs1801282 гена PPARG и риском ГСД была предметом не одного исследования, проведенных среди нескольких зарубежных когорт [30, 31]. Однако, никакой достоверной связи аллеля G гена rs1801282 и вероятности развития ГСД обнаружено не было [32].

Адипонектин (ADIPOQ) является белком, регулирующим уровень глюкозы и липидный метаболизм [33]. В исследовании Feng Y.и соавт. выявлена корреляция между полиморфизмом гена ADIPOQ в аллеле rs2241766, развитием ГСД и возрастом пациентки. Также было выяснено, что не только генетический фон является фактором риска развития ГСД, но также и прибавка массы тела более чем на 10 кг до 24 недели беременности [34]. При исследовании ассоциации полиморфного гена адипонектина 45T/G с ГСД, диагностированным согласно новым критериям IADPSG, были выявлены значительно более высокие показатели макросомии, гипогликемии новорожденных и асфиксии при носительстве генотипа TG GG, по сравнению с генотипом ТТ после корректировки потенциальных факторов, влияющих на результаты беременности [35]. Имеются данные об ассоциации аллеля rs266729 G гена и аллеля rs2241766 G гена ADIPOQ с ГСД в различных популяциях [35, 36].

Ген FTO (fat mass and obesity associated) кодирует белок FTO, вовлеченный в энергетический обмен и влияющий на метаболизм (обмен веществ) в целом. Доказана связь с метаболическим синдромом и полиморфизмом данного гена [37]. Ген FTO кодирует альфа-кетоглютарат зависимую диоксигеназу, которая играет роль в развитии и функционировании адипоцитов [38]. Ни одно из исследований аллелей rs8050136 и rs1421085 гена FTO не выявило связи между этими полиморфными аллелями и ГСД. Возможно, это связано с этническими различиями и методами генотипирования [39–41].

Гены, ассоциированные с развитием MODY-диабета

Глюкокиназа (GCK) и регулятор глюкокиназы (GCKR) играют критическую роль в процессинге глюкозы в печени [42]. Мутация этого гена – одна из причин MODY-диабета (Моди-диабет), который часто впервые выявляется во время беременности как ГСД. Связь локуса rs1799884 (также известного как 230G/A) гена GCK с риском возникновения ГСД широко изучалась, однако результаты были противоречивыми [43, 44]. Последующие исследования с обширной выборкой пациентов подтвердили взаимосвязь аллели Т локуса rs1799884 с повышенным риском ГСД [45]. Два варианта, rs1799884 и rs4607517, в гене GCK были изучены для ГСД. Для минорного аллеля rs1799884, сообщаемого как T [20] или A [46], были найдены связи с повышенным риском ГСД. Tarnowski et al. также показали тенденцию к значительной ассоциации между аллелем Т и риском ГСД в польской популяции [15]. Внутри гена GCKR аллель rs780094 С ассоциирован с повышенным риском ГСД в малайской, европейской, американской и бразильской популяциях [47–49]. Аллель C был повышен у женщин с ГСД в польской популяции, но результаты не были статистически значимыми из-за малой выборки.

HNF1A ядерный фактор гепатоцитов 4а описан в литературе, как фактор риска для СД 2-го типа и демонстрирует аутосомно-доминантный тип наследования, связанный со снижением функции β-клеток. Дефекты в этом гене являются причиной развития диабета у молодых – тип 3 (MODY3). MODY1, вызванный мутациями HNF4A, может парадоксальным образом вызывать гиперинсулинемическую гипогликемию и макросомию у новорожденных, что указывает на то, что выявление этих случаев также является клинически важным [50]. Установлено, что диабет, диагностированный у носителей гетерозиготной мутации T130I в гене HNF1A, был связан со стрессовыми ситуациями в более раннем возрасте и тесно связан с ГСД [51].

Роль других генов, связанных с гестационным сахарным диабетом

  1. Регуляторная белковая субъединица CDK5 (CDKAL I). Функция данного гена до конца не изучена, но связь между аллелем rs7754840 гена CDKALI и риском возникновения ГСД была изучена в исследовании, проведенном в популяциях Восточной Азии. Выявлено, что аллель С rs7754840 гена была связана с возникновением ГСД [52]; в более позднем исследовании не показано четкой взаимосвязи [53]. Следует отметить, что была обнаружена связь данного полиморфного гена CDKAL1 с темпами роста плода при рождении, а именно, отмечалась тенденция к снижению веса при рождении. Также указывается явная связь с развитием СД 2-го типа в будущем, поэтому можно предположить, что более низкий вес при рождении и СД 2-го типа могут представлять собой различные выражения одного и того же генотипа [15].
  2. Ген IL-18 (интерлейкин-18) – является провоспалительным цитокином. Синтезируется в основном макрофагами. Считается, что изменения различных медиаторов воспаления являются факторами риска, приводящими к развитию ГСД. Имеются данные об ассоциации аллелей rs187238 и rs1946518 полиморфного гена IL-18 с повышенной гестационной прибавкой массы тела [54].

Данные об участии некоторых генов в развитии ГСД, а также СД 2-го типа, изучены недостаточно. Так, в одном из проспективных исследований было выявлено, что уровень гена ADAMTS-9 значительно ниже у беременных с ГСД [55–57].

Другим важным аспектом разбираемой проблемы является изучение прогностической роли молекулярно-генетических маркеров в предикации эффективности инсулинотерапии при ГСД. Так, имеются данные о том, что полиморфный ген СОХ-2 аллель rs6681231 связан с повышенным риском развития ГСД и необходимостью в дальнейшем назначения инсулинотерапии, также как и связь генотипа ТТ аллеля rs1799983 полиморфизма NOS3 с назначением инсулинотерапии женщинам с ГСД [58].

Методом полногеномного анализа ассоциаций (GWAS) также установлены связи ГСД с рядом ранее изученных генетических локусов и идентифицированы новые гены предрасположенности к ГСД и СД 2-го типа. Полученные впоследствии обнадеживающие результаты полногеномного метилирования ДНК, так же, как и результаты GWAS, требуют более детальных исследований [59, 60] Кроме того, необходимы исследования по выявлению молекулярных различий между генетической архитектурой ГСД и СД 2-го типа с целью разработки профилактических стратегий [61].

Молекулярные детерминанты формирования макросомии плода выявили определенные генные ассоциации. Установлено, что вариант адипонектина, унаследованного по материнской линии может быть важным предиктором роста плода и веса при рождении, независимо от индекса массы тела и резистентности к инсулину [62]. По результатам крупнейшего обзора, в котором участвовало 86577 женщин, были выявлены материнские полиморфизмы генов в 10 локусах (MTNR1B, HMGA2, SH2B3, KCNAB1, L3MBTL3, GCK, EBF1, TCF7L2, ACTL9, CYP3A7), ассоциированные с массой тела плода при рождении [63].

Предметом научного поиска является изучение микроРНК, как предиктора макросомии плода, что может иметь практическое значение. МикроРНК представляет собой небольшую некодирующую молекулу РНК, которая функционирует в регуляции экспрессии генов путем нацеливания микроРНК на ее стабильность и/или трансляцию. Однако, информации о профиле микроРНК плазмы у пациентов с ГСД во втором и третьих триместрах, когда проявляется расстройство метаболизма глюкозы, недостаточно. Дерегулирование экспрессии микроРНК связано с ГСД; таким образом, эти молекулы могут представлять потенциальные ранние диагностические биомаркеры из-за их высокой стабильности в биологических жидкостях и доступности из материнской крови на протяжении всей беременности [64]. Поэтому глубокое понимание функций микроРНК может улучшить знания об этиологии и патогенезе ГСД и его осложнениях. Литературные данные указывают на важную роль микроРНК в патогенезе ГСД. Немногочисленные исследования были в основном сосредоточены на экспрессии циркулирующих микроРНК при СД 1-го и 2-го типов.

При проведении исследования по оценке связи микроРНК с ГСД был выявлен набор дерегулированных микроРНК (miR-508-3p, miR-27a, miR-9, miR-137, miR-92a, miR-33a, miR-30d, miR-362-5p и miR-502 -5p), который в совокупности нацелен на ключевые гены, участвующие в сигнальном каскаде экспрессии рецептора эпидермального фактора роста (EGFR). Это подчеркивает их потенциальное участие в индукции макросомии плода при ГСД [65]. В недавнем исследовании при изучении связи микроРНК и ГСД, подтвержденном ОГТТ, была выявлена повышенная экспрессия отдельных микроРНК, особенно miR-195-5p в плазме при ГСД [66].

При исследовании Zhu et al., оценивавших экспрессию микроРНК методом секвенирования, было показано, что уровень пяти микроРНК (miR-16-5p, miR-17-5p, miR-19a-3p, miR-19b-3p и miR-20a-5p) повышается в плазме женщин с ГСД, по сравнению с группой контроля. Основные мишени этих микроРНК были связаны с резистентностью к инсулину и аномальной беременностью [67].

В другом недавнем исследовании Cao et al. не обнаружил существенных различий в экспрессии miR-19a-3p и miR-19b-3p между пациентами с ГСД и группой контроля, тогда как для miR-16-5p, miR-17-5p и miR-20a-5p было показано прогрессивное повышение их уровня представленности в плазме женщин с ГСД на 16–19, 20-й и 24–28-й неделе беременности. Тем самым доказано, что данные микроРНК являются возможными потенциальными диагностическими биомаркерами ГСД [68]. Тем не менее, роль этих регулирующих микроРНК в патогенезе ГСД требует дальнейшего уточнения.

Недавний систематический обзор продемонстрировал необходимость разработки послеродовых рекомендаций по образу жизни с целью снижения вероятности возникновения СД 2-го типа в будущем [69].

Понимание роли предикции развития ГСД, формирования макросомии плода, выяснение возможности прогнозирования гипергликемии в последующем, в частности, развития СД 2-го типа, расширят наши представления о большом акушерском синдроме, называемым ГСД, и позволят разработать индивидуализированную тактику ведения пациенток вне и во время беременности.

Заключение

Данный обзор подчеркивает необходимость изучения клинико-молекулярно-генетических предикторов, влияющих на течение беременности и акушерские и неонатальные исходы для их дальнейшей оптимизации и индивидуализации. Поиск генетических маркеров ГСД является перспективным для выявления беременных группы высокого риска развития ГСД на ранних сроках беременности. Решение этой проблемы позволит проводить эффективные профилактические мероприятия, а в случае ГСД давать объективную оценку прогрессирования заболевания, оптимизировать коррекцию нарушений углеводного обмена и исходы, как для беременной, так и для новорожденного.

Совершенствование подходов молекулярно-генетического анализа и внедрение эффективных и достаточно экономичных методов полногеномного секвенирования открывает новые возможности для изучения молекулярных механизмов развития ГСД и выявления индивидуальных особенностей этиологии и патогенеза этого заболевания, что играет ключевую роль в разработке эффективных персонализированных методов профилактики и лечения этого частого осложнения беременности.

References

  1. Hod M., Kapur A., Sacks D.A., Hadar E., Agarwal M., Di Renzo G.C. et al. The International Federation of Gynecology and Obstetrics (FIGO) Initiative on gestational diabetes mellitus: A pragmatic guide for diagnosis, management, and care. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2015; 131(Suppl. 3): S173-211.
  2. ВОЗ. Диагностические критерии и классификация гипергликемии, впервые выявленной при беременности. Женева: Всемирная организация здравоохранения; 2013. [WHO. Diagnostic criteria and classification of hyperglycemia, first identified during pregnancy. Geneva: World Health Organization; 2013. (in Russian)].
  3. Kharroubi A.T., Darwish H.M. Diabetes mellitus: The epidemic of the century. World J. Diabetes. 2015; 6(6): 850-67.
  4. Webber J., Charlton M., Johns N. Diabetes in pregnancy: management of diabetes and its complications from preconception to the postnatal period (NG3). Br. J. Diabetes. 2015; 15(3): 107-11.
  5. Mackeen A.D., Lott M. Gestational diabetes. In: Berghella V., ed. Maternal-fetal evidence based guidelines. 3rd ed. CRC Press; 2017: ch 5.
  6. Ornoy A., Reece E.A., Pavlinkova G., Kappen C., Miller R.K. Effect of maternal diabetes on the embryo, fetus, and children: congenital anomalies, genetic and epigenetic changes and developmental outcomes. Birth Defects Res. C Embryo Today. 2015; 105(1): 53-72.
  7. Бурумкулова Ф.Ф., Петрухин В.А. Гестационный сахарный диабет: вчера, сегодня, завтра. Терапевтический архив. 2014; 86(10): 109-15. [Burumkulova F.F. , Petrukhin V.A. Gestational diabetes: yesterday, today, tomorrow. Therapeutic archive. 2014; 86 (10): 109-15. (in Russian)].
  8. Дедов И.И., Сухих Г.Т., Краснопольский В.И., ред. Гестационный сахарный диабет: диагностика, лечение и послеродовое наблюдение. Клинические рекомендации (протокол). М.; 2014. [Grandfathers I.I., Sukhikh G.T., Krasnopolsky V.I., ed. Gestational diabetes mellitus: diagnosis, treatment and postpartum observation. Clinical recommendations (protocol). M .; 2014. (in Russian)].
  9. Lenin M., Ramasamy R., Kulkarani S., Ghose S., Srinivasan A.R.S. Association of KCNJ11(RS5219) gene polymorphism with biochemical markers of glycemic status and insulin resistance in gestational diabetes mellitus. Meta Gene. 2018; 16: 134-8.
  10. Huopio H., Hakkarainen H., Pääkkönen M., Kuulasmaa T., Heinonen S., Laakso M. Association of risk variants for type 2 diabetes and hyperglycemia with gestational diabetes. Eur. J. Endocrinol. 2013; 169(3): 291-7.
  11. Ding M., Chavarro J., Olsen S., Lin Y., Ley S.H., Bao W. et al. Genetic variants of gestational diabetes mellitus: A study of 112 SNPs among 8722 women in two independent populations. Diabetologia. 2018; 61(8): 1758-68.
  12. Franzago M., Fraticelli F., Marchetti D., Celentano C., Liberati M., Stuppia L., Vitacolonna E. Nutrigenetic variants and cardio-metabolic risk in women with or without gestational diabetes. Diabetes Res. Clin. Pract. 2018; 137: 64-71.
  13. Nobrega M.A. TCF7L2 and Glucose metabolism: time to look beyond the pancreas. Diabetes. 2013; 62(3): 706-8.
  14. Pilgaard K., Jensen C.B., Schou J.H., Lyssenko V., Wegner L., Brøns C. et al. The T allele of rs7903146 TCF7L2 is associated with impaired insulinotropic action of incretin hormones, reduced 24 h profiles of plasma insulin and glucagon, and increased hepatic glucose production in young healthy men. Diabetologia. 2009; 52(7): 1298-307.
  15. Tarnowski M., Wieczorek A., Dziedziejko V., Safranow K., Ustianowski P., Celewicz Z., Pawlik A. IL16 and IL18 gene polymorphisms in women with gestational diabetes. Ginekol. Pol. 2017; 88(5): 249-54.
  16. Guinan K.J. Worldwide distribution of type 2 diabetes-associated TCF7L2 SNPs: evidence for stratification in Europe. Biochem. Genet. 2012; 50(3-4): 159-79.
  17. Ao D., Wang H.J., Wang L.F., Song J.Y., Yang H.X., Wang Y. The rs2237892 polymorphism in KCNQ1 influences gestational diabetes mellitus and glucose levels: A case-control study and meta-analysis. PLoS One. 2015; 10(6): e0128901.
  18. Tian C., Chang H., La X., Li J.A. Wushenziye formula improves skeletal muscle insulin resistance in type 2 diabetes mellitus via PTP1B-IRS1-Akt-GLUT4 signaling pathway. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2017; 2017: 4393529.
  19. Alharbi K.K., Khan I.A., Abotalib Z., Al-Hakeem M.M. Insulin receptor substrate-1 (IRS-1) Gly927Arg: Correlation with gestational diabetes mellitus in Saudi women. Biomed. Res. Int. 2014; 2014:146695.
  20. Popova P.V., Klyushina A.A., Vasilyeva L.B., Tkachuk A.S., Bolotko Y.A., Gerasimov A.S. et al. Effect of gene-lifestyle interaction on gestational diabetes risk. Oncotarget. 2017; 8(67): 112024-35.
  21. Rosta K., Al-Aissa Z., Hadarits O., Harreiter J., Nádasdi A., Kelemen F. et al. Association study with 77 SNPs confirms the robust role for the rs10830963/G of MTNR1B variant and identifies two novel associations in gestational diabetes mellitus development. PLoS One. 2017; 12(1):e0169781.
  22. Petry C.J., Mooslehner K., Prentice P., Hayes M.G., Nodzenski M., Scholtens D.M. et al. Associations between a fetal imprinted gene allele score and late pregnancy maternal glucose concentrations. Diabetes Metab. 2017; 43(4): 323-31.
  23. White V., Jawerbaum A., Mazzucco M.B., Gauster M., Desoye G., Hiden U. IGF2 stimulates fetal growth in a sex- and organ-dependent manner. Pediatr. Res. 2018; 83(1-1): 183-9.
  24. Su R., Wang C., Feng H., Lin L., Liu X., Wei Y. Alteration in expression and methylation of IGF2/H19 in placenta and umbilical cord blood are associated with macrosomia exposed to intrauterine hyperglycemia. PLoS One. 2016; 11(2): e0148399.
  25. Wang X., Li W., Ma L., Ping F., Liu J., Wu X. et al. Investigation of miRNA-binding site variants and risk of gestational diabetes mellitus in Chinese pregnant women. Acta Diabetol. 2017; 54(3): 309-16.
  26. Sun H., Wang X., Chen J., Gusdon A.M., Song K., Li L., Qu S. Melatonin Treatment improves insulin resistance and pigmentation in obese patients with acanthosis nigricans. Int. J. Endocrinol. 2018; 2018:2304746.
  27. Tarnowski M., Malinowski D., Safranow K., Dziedziejko V., Pawlik A. MTNR1A and MTNR1B gene polymorphisms in women with gestational diabetes. Gynecol. Endocrinol. 2017; 33(5): 395-8.
  28. Huopio H., Cederberg H. Association of risk variants for type 2 diabetes and hyperglycemia with gestational diabetes. Eur. J. Endocrinol. 2013; 169(3): 291-7.
  29. Prokopenko I., Langenberg C., Florez J.C., Saxena R., Soranzo N., Thorleifsson G. et al. Variants in MTNR1B influence fasting glucose levels. Nat. Genet. 2009; 41: 77-81.
  30. Pappa K.I., Gazouli M., Economou K., Daskalakis G., Anastasiou E., Anagnou N.P., Antsaklis A. Gestational diabetes mellitus shares polymorphisms of genes associated with insulin resistance and type 2 diabetes in the Greek population. Gynecol. Endocrinol. 2011; 27(4): 267-72.
  31. Heude B., Pelloux V., Forhan A., Bedel J.F., Lacorte J.M., Clement K., Charles M.A. Association of the Pro12Ala and C1431 T varisnts of PPARgamma and their haplotypes with susceptibility to gestational diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2011; 96(10): E1656-60.
  32. Mao H., Li Q., Gao S. Meta-analysis of the relationship between common type 2 diabetes risk gene variants with gestational diabetes mellitus. PLoS One. 2012; 7(9): e45882.
  33. Bao W., Baecker A., Song Y., Kiely M., Liu S., Zhang C. Adipokine levels during the first or early second trimester of pregnancy and subsequent risk of gestational diabetes mellitus: A systematic review. Metabolism. 2015; 64(6): 756-64.
  34. Feng Y ., Jiang C.D., Chang A.M., Shi Y., Gao J., Zhu L., Zhang Z . Interactions among insulin resistance, inflammation factors, obesity-related gene polymorphisms, environmental risk factors, and diet in the development of gestational diabetes mellitus. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2019; 32(2): 339-47.
  35. Han Y., Zheng Y.L., Fan Y.P., Liu M.H., Lu X.Y., Tao Q. Association of adiponectin gene polymorphism 45TG with gestational diabetes mellitus diagnosed on the new IADPSG criteria, plasma adiponectin levels and adverse pregnancy outcomes. Clin. Exp. Med. 201; 15(1): 47-53.
  36. Pawlik A., Teler J., Maciejewska A., Sawczuk M., Safranow K., Dziedziejko V. Adiponectin and leptin gene polymorphisms in women with gestational diabetes mellitus. J. Assist. Reprod. Genet. 2017; 34(4): 511-6.
  37. Wang H., Dong S., Xu H., Qian J., Yang J. Genetic variants in FTO associated with metabolic syndrome: A meta- and gene-based analysis. Mol. Biol. Rep. 2012; 39(5): 5691-8.
  38. Merkestein M., Sellayah D. Role of FTO in adipocyte development and function: recent insights. Int. J. Endocrinol. 2015; 2015: 521381.
  39. De Melo S.F., Frigeri H.R., dos Santos-Weiss I.C.R., Réa R.R., de Souza E.M., Alberton D. Polymorphisms in FTO and TCF7L2 genes of Euro-Brazilian women with gestational diabetes. Clin. Biochem. 2015; 48(16-17): 1064-7.
  40. Anghebem-Oliveira M.I., Martins B.R., Alberton D., de Souza Ramos E.A., Picheth G., Rego F.G.M. Type 2 diabetes-associated genetic variants of FTO, LEPR, PPARg, and TCF7l2 in gestational diabetes in a Brazilian population. Arch. Endocrinol. Metab. 2017; 61(3): 238-48.
  41. Saucedo R., Valencia J., Gutierrez C., Basurto L., Hernandez M., Puello E. et al. Gene variants in the FTO gene are associated with adiponectin and TNF-alpha levels in gestational diabetes mellitus. Diabetol. Metab. Syndr. 2017; 9: 32.
  42. Iynedjian P.B. Molecular physiology of mammalian glucokinase. Cell. Mol. Life Sci. 2009; 66(1): 27-42.
  43. Santos I.C., Frigeri H.R., Rea R.R., Almeida A.C., Souza E.M., Pedrosa F.O. et al. The glucokinase gene promoter polymorphism −30G>A (rs1799884) is associated with fasting glucose in healthy pregnant women but not with gestational diabetes. Clin. Chim. Acta. 2010; 411(11-12): 892-3.
  44. Gjesing A.P., Rui G., Lauenborg J., Have C.T., Hollensted M., Andersson E. et al. High prevalence of diabetes-predisposing variants in MODY genes among Danish women with gestational diabetes mellitus. J. Endocr. Soc. 2017; 1(6): 681-90.
  45. Freathy R.M., Hayes M.G., Urbanek M., Lowe L.P., Lee H., Ackerman C. et al. Hyperglycemia and Adverse Pregnancy Outcome (HAPO) study: common genetic variants in GCK and TCF7L2 are associated with fasting and postchallenge glucose levels in pregnancy and with the new consensus definition of gestational diabetes mellitus from the International Association of Diabetes and Pregnancy Study Groups. Diabetes. 2010;59(10): 2682-9.
  46. Han X., Cui H., Chen X., Xie W., Chang Y. Association of the glucokinase gene promoter polymorphism -30G > A (rs1799884) with gestational diabetes mellitus susceptibility: A case-control study and meta-analysis. Arch. Gynecol. Obstet. 2015; 292(2): 291-8.
  47. Stuebe A., Wise A., Nguyen T., Herring A., North K., Siega-Riz A. Maternal genotype and gestational diabetes. Am. J. Perinatol. 2013; 31(1): 69-76.
  48. Anghebem-Oliveira M.I., Webber S., Alberton D., de Souza E.M., Klassen G., Picheth G., Rego F.G.D.M. The GCKR gene polymorphism rs780094 is a risk factor for gestational diabetes in a Brazilian population. J. Clin. Lab. Anal. 2017; 31(2): e22035.
  49. Jamalpour S., Zain S.M., Mosavat M., Mohamed Z., Omar S.Z. A case-control study and meta-analysis confirm glucokinase regulatory gene rs780094 is a risk factor for gestational diabetes mellitus. Gene. 2018; 650: 34-40.
  50. Kleinberger J.W., Maloney K.A., Pollin T.I. The genetic architecture of diabetes in pregnancy: implications for clinical practice. Am. J. Perinatol. 2016; 33(13): 1319-26.
  51. Cieza-Borrella C., Díaz-Soto G., Martínez-Pino I., Puig-Domingo M., González-Sarmiento R. Early-onset type 2 diabetes mellitus is associated to HNF4A T130I polymorphism in families of central Spain. J. Investig. Med. 2014; 62(8): 968-74.
  52. Kwak S.H., Kim S.H., Cho Y.M., Go M.J., Cho Y.S., Choi S.H. et al. A genome-wide association study of gestational diabetes mellitus in Korean women. Diabetes. 2012; 61(2): 531-41.
  53. Ju H., Lin R., Yuan Z., Sun Y., Zeng L., Su Z., Jin L. No association detected between seven common variants in the CDKAL1 gene and gestational glycemic traits. Mol. Cell. Probes. 2017; 34: 64-7.
  54. Sun X.F., Xiao X.H., Zhang Z.X., Liu Y., Xu T., Zhu X.L. et al. Positive association between type 2 diabetes risk alleles near CDKAL1 and reduced birthweight in Chinese Han individuals. Chin. Med. J. 2015; 128(14): 1873-8.
  55. Artunc-Ulkumen B., Ulucay S., Pala H.G., Cam S. Maternal serum ADAMTS-9 levels in gestational diabetes: a pilot study. J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2017; 30(12): 1442-5.
  56. Franzago M., Fraticelli F., Marchetti D., Celentano C., Liberati M., Stuppia L., Vitacolonna E. Nutrigenetic variants and cardio-metabolic risk in women with or without gestational diabetes. Diabetes Res. Clin. Pract. 2018; 137: 64-71.
  57. Cheng Y ., Ma Y., Peng T., Wang J., Lin R., Cheng HD. Genotype discrepancy between maternal and fetal Pro12Ala polymorphism of PPARG2 gene and its association with gestational diabetes mellitus. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2010; 45(3): 170-3.
  58. Tarnowski M., Tkacz M., Dziedziejko V., Safranow K., Pawlik A. COX2 and NOS3 gene polymorphisms in women with gestational diabetes. J. Gene Med. 2017; 19(8): e2959.
  59. Kang J., Lee C.N., Li H.Y., Hsu K.H., Lin S.Y. Genome-wide DNA methylation variation in maternal and cord blood of gestational diabetes population. Diabetes Res. Clin. Pract. 2017; 132: 127-36.
  60. Wu P., Farrell W.E., Haworth K.E., Emes R.D., Kitchen M.O., Glossop J.R. et al. Maternal genome-wide DNA methylation profiling in gestational diabetes shows distinctive disease-associated changes relative to matched healthy pregnancies. Epigenetics. 2018; 13: 122-8.
  61. Lowe W.L., Scholtens D.M., Sandler V., Hayes M.G. Genetics of gestational diabetes mellitus and maternal metabolism. Curr. Diab. Rep. 2016; 16(2): 15.
  62. Lekva T., Roland M.C.P., Michelsen A.E., Friis C.M., Aukrust P., Bollerslev J. et al. Large reduction in adiponectin during pregnancy is associated with large-for-gestational-age newborns. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2017; 102(7): 2552-9.
  63. Beaumont R.N., Warrington N.M., Cavadino A., Tyrrell J., Nodzenski M., Horikoshi M. et al. Genome-wide association study of offspring birth weight in 86 577 women identifies five novel loci and highlights maternal genetic effects that are independent of fetal genetics. Hum. Mol. Genet. 2018;27(4): 742-56.
  64. Iljas J.D., Guanzon D., Elfeky O., Rice G.E., Salomon C. Review: Bio-compartmentalization of microRNAs in exosomes during gestational diabetes mellitus. Placenta. 2017; 54: 76-82.
  65. Li J., Song L., Zhou L., Wu J., Sheng C., Chen H. et al. A microRNA signature in gestational diabetes mellitus associated with risk of macrosomia. Cell. Physiol. Biochem. 2015; 37(1): 243-52.
  66. Tagoma A., Alnek K., Kirss A., Uibo R., Haller-Kikkatalo K. MicroRNA profiling of second trimester maternal plasma shows upregulation of miR-195-5p in patients with gestational diabetes. Gene. 2018; 672: 137-42.
  67. Zhu Y., Tian F., Li H., Zhou Y., Lu J., Ge Q. Profiling maternal plasma microRNA expression in early pregnancy to predict gestational diabetes mellitus. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2015; 130(1): 49-53.
  68. Cao Y.L., Jia Y.J., Xing B.H. , Shi D.D., Dong XJ. Plasma microRNA-16-5p, -17-5p and -20a-5p: Novel diagnostic biomarkers for gestational diabetes mellitus. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2017; 43(6): 974-91.
  69. Shek N.W., Ngai C.S., Lee C.P., Chan J.Y., Lao T.T. Lifestyle modifications in the development of diabetes mellitus and metabolic syndrome in Chinese women who had gestational diabetes mellitus: a randomized interventional trial. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(2): 319-27.

Received 14.09.2018

Accepted 21.09.2018

About the Authors

Khodzhaeva, Zulfiya S., MD, professor, head of the 1st Department of Patology of Pregnancy, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954380788. E-mail: zkhodjaeva@mail.ru
Snetkova, Nina V., postgraduate student, 1st Department of Pathology of Pregnancy, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +749543806741. E-mail: n_snetkova@mail.ru
Abramova, Mariya E., clinical intern, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov
Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +749543806741. E-mail: n_snetkova@mail.ru
Klimenchenko, Natalia I., senior researcher, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov
Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail:n_klimenchenko@oparina4.ru
Degtyareva, Elena I., PhD, Outpatient Department, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954387700. E-mail: e_degtyareva@oparina4.ru
Donnikov, Andrey E., PhD, head of the Department of Laboratory and Genetic Methods, National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology named after Academician V.I. Kulakov Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954387700. E-mail: a_donnikov@oparina4.ru

For citation: Khodzhaeva Z.S., Snetkova N.V., Klimenchenko N.I., Abramova M.E., Degtyareva E.I., Donnikov A.E. Clinical and molecular genetic determinants of the development of gestational diabetes mellitus. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology.2019; (4): 18-24. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.4.18-24

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.