Phenotypic and functional characteristics of NK cells in pregnancy

Mikhaylova V.A., Selkov S.A., Sokolov D.I.

D.O. Ott Research Institute of Obstetrics and Gynecology, North-Western Branch of the Russian Academy of Medical Science, Saint Petersburg
The review considers an update on the functional characteristics of natural killer (NK) cells and their involvement in the mechanisms of the physiological course of pregnancy and the formation of placental tissue. It also discusses NK cell functional impairments in gestosis and miscarriage.

Keywords

NK cells
adhesion molecules
receptors
pregnancy

NK-клетки относятся к врожденному звену иммунитета, им не требуется предварительной сенсибилизации для осуществления защитных функций. При беременности NK-клетки мигрируют в ткань матки, где участвуют в регуляции формирования и развития ткани плаценты. € ‚ƒ„…

…Особенности функциональных характеристик NK-клеток

Морфологически NK-клетки представляют собой большие гранулярные CD3-негативные лимфоциты, экспрессирующие поверхностную молекулу CD56. В настоящее время по характеру экспрессии поверхностных маркеров NK-клетки можно подразделить на 48 различных популяций. Однако традиционно среди NK-клеток выделяют две группы: CD3– CD16bright CD56dim и CD3– CD16dim CD56bright. Большинство NK-клеток периферической крови слабо экспрессируют CD56 и интенсивно экспрессируют CD16 (CD16bright CD56dim). Для этих клеток характерно наличие большого количества лизосомальных гранул, содержащих гранзимы и перфорины. Другие популяции NK-клеток периферической крови экспрессируют CD56, но слабо или совсем не экспрессируют молекулы CD16 (CD16dim CD56bright и CD16–CD56bright). Популяции CD16dim CD56bright и CD16–CD56bright обладают регуляторными свойствами, однако под воздействием цитокинов свойства и функции этих NK-клеток могут изменяться. Так, интерлейкин (IL)-2 модулирует как фенотип, так и цитотоксическую функцию
NK-клеток: в экспериментах in vitro при стимуляции IL-2 CD16dim CD56bright NK-клеток уровень цитотоксичности этой популяции NK-клеток становился сходным с уровнем цитотоксичности СD16bright CD56dim NK-клеток.

Дифференцировка разных популяций NK-клеток происходит из общего предшественника лимфоидных клеток под воздействием цитокина IL-15, продуцируемого стромальными клетками костного мозга [2]. На начальных этапах дифференцировки гемопоэтические стволовые клетки приобретают фенотип CD34bright CD122+ (IL-2Rβ+ IL-15Rβ+) CD56– и в ответ на стимуляцию IL-15 развиваются в зрелые NK-клетки. Такой путь дифференцировки характерен для преобладающих в периферической крови CD16bright CD56dim NK-клеток. В лимфатических узлах основной пул стволовых клеток составляют клетки-предшественники с фенотипом CD34dim, конститутивно экспрессирующие CD45RA,
L-селектин, LFA-1 (lymphocyte function-associated antigen-1), β7-интегрин и высокоаффинный рецептор к IL-2 – IL-2Rαβγ. Эти гемопоэтические стволовые клетки, мигрировавшие в лимфатические узлы из костного мозга, могут дифференцироваться в CD16dim CD56bright NK-клетки после стимуляции IL-2 или IL-15 [14]. При этом клетки с фенотипом CD34dim CD45RA+β7high не являются предшественниками CD56dim NK-клеток, что дает основание говорить о двух независимых путях дифференцировки NK-клеток. Однако после стимуляции IL-2 CD16dim CD56bright NK-клетки лимфатических узлов могут приобретать фенотип CD16bright CD56dim и проявлять цитотоксические свойства [12]. По другим
данным, CD16bright CD56dim NK-клетки в ткани при воздействии на них IL-12 могут изменять свой
фенотип на CD16dim CD56bright [24]. Таким образом, дифференцировка основной популяции NK-клеток периферической крови (CD16bright CD56dim) происходит в костном мозге, в дальнейшем под воздействием IL-12 в ткани они могут приобретать фенотип CD16dim CD56bright. Дифференцировка CD16dim CD56bright NK-клеток также происходит в костном мозге, однако более точный фенотип предшественников этой популяции NK-клеток еще предстоит уточнить. Основным же путем образования CD16dim CD56bright NK-клеток является их дифференцировка из клеток-предшественников в лимфатических узлах (рисунок, см. на вклейке).

При связывании NK-клеток с клеткой-мишенью образуется иммунологический синапс. В случае если клетка-мишень является вирусинфицированной или опухолевой, формируется межклеточный комплекс, передающий активационный сигнал NK-клетке. Формирование иммунологического синапса и запуск дальнейших реакций представляют собой процесс, включающий взаимодействия адгезионных молекул [21], С-лектиноподобных рецепторов, рецепторов KIR NK-клеток [31] с лигандами на клетках-мишенях. Контакт NK-клетки с клеткой-мишенью вызывает агрегацию фибриллярного актина, талина и других белков цитоскелета [21], что приводит к высвобождению перфоринов и гранзимов. При контакте NK-клетки с клеткой-мишенью, несущей на своей мембране MHC-I (major histocompatibility complex) с собственным клеточным пептидом, формируется ингибиторный иммунологический синапс, препятствующий активации NK-клетки. Экспрессия большинства MHC-I специфичных рецепторов на NK-клетках клоноспецифична: для NK-клеток характерна экспрессия как минимум одного ингибирующего рецептора, при этом активационные рецепторы NK-клетка может не экспрессировать [5]. В табл. 1 приведены данные о рецепторах NK-клеток и их лигандах на мембране клеток-мишеней. Следует отметить, что в настоящее время значительная часть лигандов рецепторов NK-клеток не выявлена.

Таблица 1. Поверхностные молекулы NK-клеток. „

Роль NK-клеток при физиологическом течении беременности ‚†‡ €‡

NK-клетки, присутствующие в эндометрии матки, играют важную роль в процессе имплантации и в
дальнейшем развитии беременности. В течение пролиферативной фазы менструального цикла NK-клетки матки представляют собой небольшую популяцию клеток. Однако их количество в эндометрии значительно возрастает в секреторную фазу цикла [34]. После имплантации зародыша в ходе децидуализации эндометрий матки претерпевает значительные изменения, одно из которых –
появление большого количества децидуальных NK-клеток с фенотипом CD3—CD56bright, составляющих до 70% всех лимфоцитов, присутствующих в децидуальной ткани, и примерно 30% всех клеток децидуальной ткани [2]. Для NK-клеток матки характерна высокая экспрессия CD56 и низкая экспрессия CD16. Лишь небольшое количество NK-клеток являются CD56dim [34]. По некоторым данным, CD3—CD56bright NK-клетки присутствуют в большом количестве в слизистой оболочке матки
еще до имплантации. В случае наступления беременности NK-клетки матки аккумулируются вокруг
клеток трофобласта, а максимальное их содержание совпадает с периодом инвазии трофобласта [5].

В настоящее время дискуссионным остается вопрос о процессе образования и пополнения пула NK-клеток матки при беременности. CD16dim CD56bright NK-клетки периферической крови и децидуальной ткани экспрессируют хемокиновый рецептор CXCR3 (рецептор к CXCL10: IP-10 – γ-интерферониндуцибельному протеину) и CXCR4, лигандом которого является SDF-1 (Stromal cell-derived factor-1) (CXCL12) [15, 39]. При этом для CD16dim CD56bright NK-клеток при беременности характерно увеличение как количества клеток, экпрессирующих CXCR4, так и интенсивности его экспрессии на этих клетках. Для децидуальной ткани в отличие от стромы ворсин хориона характерна экспрессия хемокинов CXCL12 (лиганд CXCR4) и CXCL10 (лиганд CXCR3). Кроме того, клетки экстравиллезного трофобласта также экспрессируют CXCL12 [15, 39]. In vitro клетки стромы матки и децидуальные эндотелиальные клетки в I тримеcтре беременности экспрессируют мРНК CXCL10 (IP-10). В экспериментах in vitro показано, что CD16dim CD56bright NK-клетки периферической крови при стимуляции CXCL10 (IP-10) мигрируют через монослой децидуальных эндотелиальных клеток и клетки стромы матки [8]. При культивировании CD16bright CD56dim NK-клеток в присутствии супернатантов, полученных после культивирования стромальных клеток матки, наблюдается снижение экспрессии NK-клетками CD16 и изменение их фенотипа с CD16bright на CD16dim. Смену фенотипа NK-клеток вызывает цитокин трансформирующий фактор роста β (TGF-β –Transforming growth factor), продуцируемый децидуальными клетками. Также в децидуальной ткани обнаружены гемопоэтические стволовые клетки, которые при культивировании в присутствии IL-15 и фактора стволовых клеток SCF (stem cell factor) приобретают фенотип CD16–CD56bright децидуальных NK-клеток [18].

Ранее установлено, что NK-клетки экспрессируют такие адгезионные молекулы, как LFA-1 [6], Mac-1 [21], PECAM-1 (platelet-endothelial cell adhesion molecule 1) [38]. Лиганды к адгезионным молекулам NK-клеток выявлены на эндотелиальных клетках и клетках трофобласта (табл. 2).

Таблица 2. Экспрессия адгезионных молекул NK-клетками и их лигандов на клетках эндотелия и трофобласта.

Экспрессия молекул адгезии опосредует как миграцию NK-клеток в децидуальную ткань из периферической крови, так и взаимодействие NK-клеток с клетками трофобласта. Таким образом, пул
NK-клеток матки формируется в начале I триместра беременности за счет миграции NK-клеток
из периферической крови. Клетки стромы матки, эндотелиальные клетки децидуальной оболочки
и клетки трофобласта за счет секреции хемокинов контролируют хемотаксис NK-клеток с фенотипом CD16dim CD56bright из периферической крови. Пополнение пула NK-клеток матки может происходить за счет CD16bright CD56dim NK-клеток периферической крови. Под воздействием цитокинов CD16bright CD56dim NK-клетки изменяют свой фенотип на CD16dim CD56bright и приобретают свойства, характерные для CD16dim CD56bright NK-клеток. Затем увеличение количества CD16dim CD56bright
NK-клеток в децидуальной ткани может происходить за счет пролиферации in situ.

Клетки плода несут антигены как матери, так и отца, что может вызывать активацию NK-клеток матки. Возникновение толерантности иммунной системы матери к антигенам плода объясняют взаимодействием рецепторов децидуальных лимфоцитов с молекулами локуса HLA-G, экспрессированных на клетках трофобласта. Лигандами для молекул локуса HLA-G являются рецепторы ILT и KIR2DL4 NK-клеток. Взаимодействие этих рецепторов с молекулами локуса HLA(human leukocyte antigen) –G препятствует активации цитотоксической функции NK-клеток. Однако блокирование рецептора KIR2DL4 NK-клеток с помощью специфичных антител не приводит к проявлению цитотоксических свойств децидуальных NK-клеток по отношению к клеткам трофобласта [5]. Следовательно, лиганд-рецепторные взаимодействия клеток трофобласта и NK-клеток не сводятся исключительно к ингибированию цитотоксичности последних.

Имплантация и нормальное развитие беременности во многом зависят и от продуцируемых децидуальными NK-клетками цитокинов. Беременность сопровождается повышенной секрецией интерферона-γ (IFN-γ) NK-клетками. Связывание молекулы локуса HLA-G, экспрессированной на клетках трофобласта, и рецептора KIR2DL4 NK-клеток стимулирует секрецию IFN-γ NK-клетками при одновременном ингибировании их цитотоксической активности в отношении клеток трофобласта [36]. В экспериментах in vivo показано, что при взаимодействии рецептора NKG2D NK-клеток с лигандом RAET1 (retinoic acid early transcript 1) клеток трофобласта также индуцируется секреция IFN-γ NK-клетками [7]. IFN-γ способствует формированию ткани плаценты, снижая миграцию клеток трофобласта и обеспечивая их скопление вблизи спиральных артерий [17]. При воздействии на эндотелиальные клетки IFN-γ индуцирует экспрессию и секрецию молекул локуса HLA-E эндотелиальными клетками, что препятствует их лизису NK-клетками [9].

Неотъемлемой частью физиологического развития беременности является апоптоз клеток трофобласта при формировании и перестройках ткани плаценты. Запуск процесса апоптоза индуцируется лигандрецепторными взаимодействиями TRAIL/TRAIL-R и Fas/FasL. Для клеток трофобласта характерна экспрессия Fas, FasL и рецепторов TRAIL – TRAIL-R1 и TRAIL-R2. NK-клетки матки экспрессируют FasL, при связывании которого с Fas происходит индукция их гибели. Также для NK-клеток характерна экспрессия TRAIL, который при связывании с рецептором может индуцировать гибель клеток трофобласта. В целом апоптоз клеток децидуальной оболочки и плаценты в норме при беременности носит ограниченный характер: большинство клеток трофобласта не подвергается апоптозу за счет ингибиторов апоптоза – FLIP (fice-like inhibitory protein) и XIAP (X-linked inhibitor of apoptosis), препятствующих проведению внутриклеточного сигнала от Fas [33]. Кроме того, под воздействием IL-15, цитокина, присутствующего в ткани плаценты при физиологическом течении беременности, NK-клетки экспрессируют рецепторы TRAIL-R2 и TRAIL-R3 [26] и, таким образом, могут сами подвергаться апоптозу в случае активации и угрозы нормальному развитию беременности.

NK-клетки матки оказывают иммуномодулирующее действие на клетки плаценты за счет продукции гликоделина и галектина-1. Гликоделин и галектин-1 обладают подавляющими иммунный ответ свойствами и влияют на цитокиновую сеть плаценты. Они уменьшают продукцию фактора некроза
опухоли α (TNF-α – tumor necrosis factor), IL-2 и IFN-γ Т-лимфоцитами, локализованными в эндометрии, а также снижают продукцию IL-12 активированными макрофагами, что способствует индукции иммунной толерантности в отношении плода.

Для децидуальных NK-клеток показана высокая экспрессия MIP-1a, GM-CSF, колониестимулирующего фактора-1 по сравнению с CD16dim CD56bright NK-клетками периферической крови. Также NK-клетки матки продуцируют ангиопоэтин-2 и плацентарный фактор роста (PlGF – placental growth factor) [24]. В экспериментах in vitro при стимуляции NK-клеток антителами к рецепторам KIR2DL4 в течение 2 ч после стимуляции возрастает транскрипция генов IL-1β, IL-8, MIP-3α, а затем генов IL-6, IL-12β и IL-23α [30]. При физиологической беременности в децидуальной ткани присутствуют растворимые молекулы HLA-G трофобласта. При связывании с ними рецепторов KIR2DL4 NK-клетки экспрессируют IL-1β и IFN-γ, стимулируют продукцию фактора роста эндотелия сосудов (VEGF – Vascular endothelial growth factor) клетками трофобласта и таким образом способствуют ангиогенезу и повышают жизнеспособность клеток плаценты [30]. Кроме того, NK-клетки продуцируют IL-8 и IP-10, цитокины, способствующие инвазии трофобласта [20]. Таким образом, NK-клетки матки оказывают значительное влияние на процессы формирования ткани плаценты. Изменение функционального состояния NK-клеток может приводить к нарушению формирования ткани плаценты и развитию таких патологий беременности, как невынашивание беременности и гестоз.

Гестоз – одно из наиболее опасных осложнений беременности, эта патология развивается после
20-й недели беременности и является причиной заболеваемости и смертности беременных женщин
[1]. В настоящее время гестоз рассматривают как полиэтиологичное заболевание, характеризующееся нарушением иммунной адаптации в системе мать–плод. Одной из причин нарушения толерантности иммунной системы матери к плоду при гестозе является недостаточная экспрессия молекулы локуса HLA-G на клетках трофобласта. В этом случае не происходит связывания молекулы HLA-G с рецептором KIR2DL4 на NK-клетках, цитотоксическая активность децидуальных NK-клеток не подавляется и вследствие этого развивается местная воспалительная реакция [1]. В исследовании фенотипа NK-клеток матки у беременных с гестозом установлено, что количество CD3—CD16+ NK-клеток возрастает в периферической крови при гестозе по сравнению с таковым при физиологическом течении беременности [4, 5]. В ткани плаценты при гестозе также значительно увеличивается количество продуцируемого NK-клетками IFN-γ при одновременном снижении продукции IL-10 клетками плаценты [3]. Это приводит к преобладанию провоспалительных цитокинов в плаценте и активации клеток иммунной системы матери в отношении антигенов плода и развитию гестоза. В норме индукции иммунной толерантности при беременности способствует экспрессируемая дендритными клетками и макрофагами плаценты индоламин-2,3-диоксигеназа. Этот фермент препятствует активации Т-лимфоцитов и NK-клеток. При гестозе наблюдается снижение продукции этого фермента [32], что способствует активации NK-клеток матери и проявлению цитотоксической активности.

При гестозе наблюдается повышенная экспрессия FasL децидуальными лейкоцитами и, в частности, NK-клетками [25]. Связывание рецепторов Fas клеток трофобласта и FasL NK-клеток приводит к усиленной гибели клеток трофобласта, что в итоге приводит к нарушению формирования ткани пла-
центы. При физиологическом течении беременности индукции апоптоза клеток трофобласта препятствуют экспрессируемые трофобластом ингибиторы апоптоза IAP (inhibitors of apoptosis). В контроле их экспрессии участвуют белки митохондрий, например smac. При гестозе выявлено снижение экспрессии этого белка в клетках трофобласта [16], что свидетельствует о невозможности клеток трофобласта компенсировать апоптогенную активность NK-клеток. Беременность, осложненная гестозом, также сопровождается снижением концентрации IL-15 в ткани плаценты, что способствует
снижению экспрессии NK-клетками рецепторов TRAIL-R2 и TRAIL-R3 и также приводит к нарушению механизма защиты клеток трофобласта от цитотоксичеких эффектов NK-клеток.

Другой распространенной патологией беременности является привычное невынашивание. К развитию этой патологии могут приводить внутриутробная инфекция, нарушения эндокринной регуляции, анатомические особенности матки, нарушение иммунной толерантности в системе мать – плод. При этой патологии наблюдается достоверное увеличение количества CD16bright CD56dim NK-клеток в периферической крови [19] и в ткани плаценты [10], а также уменьшение количества CD16dim CD56bright NK-клеток в периферической крови [19]. Увеличение количества цитотоксических NK-клеток CD16bright CD56dim может способствовать индукции цитотоксических реакций в ткани плаценты. Так, для NK-клеток при невынашивании показано уменьшение экспрессии ингибиторных рецепторов KIR (KIR2DL2) [13]. При этом сниженная экспрессия молекул локуса HLA-G клетками плаценты, как и уменьшение экспрессии ингибиторных рецепторов NK-клетками, приводит к проявлению цитотоксических свойств децидуальных NK-клеток. Резкое увеличение количества NK-клеток в ткани матки на начальных стадиях развития беременности приводит к интенсификации ангиогенеза и нарушению формирования ткани плаценты, резкому повышению концентрации кислородных радикалов и как следствие невынашиванию беременности [29].

Суммируя приведенные выше данные литературы, необходимо отметить, что при физиологическом течении беременности NK-клетки мигрируют из периферической крови в ткань матки, где происходит изменение их фенотипа с цитотоксического (CD16bright CD56dim) на регуляторный (CD16dim CD56bright). При этом NK-клетки матки обладают сниженной цитотоксической активностью при сохранении способности к синтезу и секреции IFN-γ и других цитокинов. При физиологическом течении беременности NK-клетки остаются иммунологически толерантными в отношении клеток трофобласта и плаценты. При нарушении экспрессии клетками трофобласта неклассических молекул главного комплекса гистосовместимости HLA-G цитотоксическая активность NK-клеток матки не подавляется, что способствует индукции местной воспалительной реакции в ткани плаценты, нарушению формирования сосудистой сети плаценты за счет усиления апоптотической гибели клеток плаценты. Нарушение экспрессии NK-клетками рецепторов KIR, взаимодействующих с неклассическими молекулами локуса HLA I класса, при беременности приводит к усилению цитотоксической активности NK-клеток, что также способствует развитию таких осложнений беременности, как гестоз и привычное невынашивание.

References

1. Айламазян Э.К., Мозговая Е.В. Гестоз: теория и практика. ‒ М.: Медпресс-информ, 2008.
2. Заболевания иммунной системы: Диагностика и фармакотерапия/ Н.М.Калинина, С.Н. Шуленин, С.А. Кетлинский и др. ‒ М.: ЭКСМО, 2008.
3. Иммунологическая загадка беременности/ Н.Ю. Сотникова, Ю.С. Анциферова, А.В. Кудряшова и др. ‒ Иваново: МИК, 2005.
4. Сельков С.А., Павлов О.В. Плацентарные макрофаги. ‒ М.: Товарищество научных изданий КМК, 2007.
5. Соколов Д.И., Селютин А.В., Лесничая М.В. и др. Субпопуляционный состав лимфоцитов периферической крови беременных женщин с гестозом // Журн. акуш. и жен. бол. ‒ 2007. ‒ Т. 56, № 4. ‒ С. 17‒23.
6. Barber D. F., Faure M., Long E. O. LFA-1 сontributes an early signal for NK cell cytotoxicity // J. Immunol. ‒ 2004. ‒ Vol. 173. ‒ P. 3653–3659.
7. Carayannopoulos L.N., Barks J.L., Yokoyama W.M. et al. Murine trophoblast cells induce NK cell interferon-gamma production through KLRK1 // Biol. Reprod. ‒ 2010. ‒ Vol. 83. ‒ P. 404‒414.
8. Carlino C., Stabile H., Morrone S. et al. Recruitment of circulating NK cells through decidual tissues: a possible mechanism controlling NK cell accumulation in the uterus during early pregnancy // Blood. ‒ 2008. ‒ Vol. 111. ‒ P. 3108–3115.
9. Coupel S., Moreau A., Hamidou M. et al. Expression and release of soluble HLA–E is an immunoregulatory feature of endothelial cell activation // Blood. ‒ 2007. ‒ Vol. 109. ‒ P. 2806–2814.
10. Dosiou C., Giudice L.C. Natural killer cells in pregnancy and recurrent pregnancy loss: endocrine and immunologic perspectives // Endocr. Rev. ‒ 2005. ‒ Vol. 26, № 1. ‒P. 44–62.
11. Estefanía E., Flores R., Gomez-Lozano N. et al. Human KIR2DL5 is an inhibitory receptor expressed on the surface of NK and T lymphocyte subsets //J. Immunol. ‒ 2007. ‒ Vol. 178. ‒ P. 4402‒4410.
12. Ferlazzo G., Thomas D., Lin S.L. et al. The abundant NK cells in human secondary lymphoid tissues require activation to express killer cell Ig–like receptors and become cytolytic // J.
Immunol. ‒ 2004. ‒ Vol. 172. ‒ P. 1455–1462.
13. Flores A.C., Marcos C.Y., Paladino N. et al. KIR receptors and HLA-C in the maintenance of pregnancy // Tiss. Antigens. ‒ 2007. ‒ Vol. 69. ‒ P. 112‒113.
14. Freud A. G., Becknell B., Roychowdhury S. et al. A human CD34(+) subset resides in lymph nodes and differentiates into CD56 bright natural killer cells // Immunity. ‒ 2005. ‒ Vol. 22. ‒ P. 295–304.
15. Hanna J., Wald O., Goldman-Wohl D. et al. CXCL12 expression by invasive trophoblasts induces the specific migration of CD16– human natural killer cells // Blood. ‒ 2003. ‒ Vol. 102. ‒ P. 1569–1577.
16. Heazell A.E. P. Altered expression of regulators of caspase activity within trophoblast of normal pregnancies and pregnancies complicated by preeclampsia // Reprod. Sci. ‒ 2008. ‒ Vol. 15. ‒ P. 1034‒1043.
17. Hu Y., Dutz J.P., MacCalman C. D. et al. Decidual NK cells alter in vitro first trimester extravillous cytotrophoblast migration: a role for IFN–γ // J. Immunol. ‒ 2006. ‒Vol. 177. ‒ P. 8522–8530.
18. Keskin D.B., Allan D.S. J., Rybalov B. et al. TGFβ promotes conversion of CD16+ peripheral blood NK cells into CD16– NK cells with similarities to decidual NK cells // Proc.Natl. Acad. Sci. USA. ‒ 2007. ‒ Vol. 104, № 9. ‒ P. 3378–3383.
19. King K., Smith S., Chapman M. et al. Detailed analysis of peripheral blood natural killer (NK) cells in women with recurrent miscarriage // Hum. Reprod. ‒ 2010. ‒ Vol. 25, № 1. ‒ P. 52–58.
20. Kopcow H.D., Karumanchi S.A. Angiogenic factors and natural killer (NK) cells in the pathogenesis of preeclampsia // J. Reprod. Immunol. ‒ 2007. ‒ Vol. 76, № 1‒2. ‒ P. 23–29.
21. Krzewski K., Strominger J. L. The killer’s kiss: The many functions of NK cell immunological synapses // Curr. Opin. Cell Biol. ‒ 2008. ‒ Vol. 20, № 5. ‒ P. 597–605.
22. LeMaoult J., Zafaranloo K., Le Danff C. et al. HLA-G up-regulates ILT2, ILT3, ILT4, and KIR2DL4 in antigen
presenting cells, NK cells, and T cells // FASEB J. ‒ 2005. ‒ Vol. 24. ‒ P. 662‒664.
23. Liang S., Ristich V., Arase H. et al. Modulation of dendritic cell differentiation by HLA–G and ILT4 requires the IL–6—STAT3 signaling pathway // Proc.Natl.Acad.Sci. USA‒2008. ‒ Vol. 105, № 24. ‒ P. 8357–8362.
24. Loza M.J., Perussia B. The IL–12 signature: NK cell terminal CD56+high stage and effector functions // J. Immunol. ‒2004. ‒ Vol. 172. ‒ P. 88–96.
25. Minas V., Jeschke U., Kalantaridou S.N. et al. Abortion is associated with increased expression of FasL in decidual leukocytes and apoptosis of extravillous trophoblasts: a role for CRH and urocortin // Mol. Hum. Reprod. ‒ 2007. ‒ Vol. 13, № 9. ‒ P. 663‒674.
26. Mirandola P., Ponti C., Gobbi G. et al. Activated human NK and CD8+ T cells express both TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) and TRAIL receptors but are resistant to TRAIL-mediated cytotoxicity // Blood. ‒ 2004. ‒ Vol. 104, № 8. ‒ P.2418‒2424.
27. Moesta A. K., Norman P. J., Yawata M. et al. Synergistic polymorphism at two positions distal to the ligand-binding site makes KIR2DL2 a stronger receptor for HLA-C than KIR2DL3 // J. Immunol. ‒ 2008. ‒ Vol. 180. ‒P. 3969 –3979.
28. Morel E., Bellon T. HLA class I molecules regulate IFN-α production induced in NK cells by target cells, viral products, or immature dendritic cells through the inhibitory receptor ILT2/CD85j //J. Immunol. ‒ 2008. ‒ Vol. 181. ‒ P. 2368–2381.
29. Quenby S., Nik H., Innes B. et al. Uterine natural killer cells and angiogenesis in recurrent reproductive failure // Hum. Reprod. ‒ 2009. ‒ Vol. 24, № 1. ‒ P. 45‒54.
30. Rajagopalan S., Bryceson Y.T., Kuppusamy S.P. et al. Activation of NK cells by an endocytosed receptor for soluble HLA–G //PLoS Biol. ‒ 2006. ‒ Vol. 4, № 1. ‒ P. 70–86.
31. Roda–Navarro P., Vales-Gomez M., Chisholm S.E. et al. Transfer of NKG2D and MICB at the cytotoxic NK cell immune synapse correlates with a reduction in NK cell cytotoxic function // Proc.Natl.Acad.Sci. USA. ‒ 2006. ‒Vol. 103, № 30. ‒ P. 11258–11263.
32. Saito S., Shiozaki A., Nakashima A. et al. The role of the immune system in preeclampsia // Mol. Aspects Med. – 2007. – Vol.28. – P. 192–209.
33. Straszewski-Chavez S.L., Abrahams V. M., Funai E. F. et al. X-linked inhibitor of apoptosis (XIAP) confers human trophoblast cell resistance to Fas-mediated apoptosis // Mol. Hum. Reprod. ‒ 2004. ‒ Vol. 10, № 1. ‒ P. 33‒41.
34. Tabiasco J., Rabota M., Aguerre-Girr M. et al. Human decidual NK cells: unique phenotype and functional properties //Placenta. ‒ 2006. ‒ Vol. 27. ‒ P. S34–S39.
35. Tessmer M. S., Fugere C., Stevenaert F. et al. KLRG1 binds cadherins and preferentially associates with SHIP–1 // Int. Immunol. ‒ 2007. ‒ Vol. 19, № 4. ‒ P. 391–400.
36. Van der Meer A., Lukassen H.G.M., van Lierop M.J.C. et al. Membrane–bound HLA–G activates proliferation and interferon–g production by uterine natural killer cells // Mol. Hum. reprod. ‒ 2004. ‒ Vol. 10, № 3. ‒ P. 189–195.
37. Vitale M., Carlomagno S., Falco M. et al. Isolation of a novel KIR2DL3-specific mAb: comparative analysis of the surface distribution and function of KIR2DL2, KIR2DL3 and KIR2DS2 // Int. Immunol. ‒ 2004. ‒ Vol. 16, № 10. ‒ P. 1459–1466.
38. Woodfin A., Voisin M.-B., Nourshargh S. PECAM-1: a multifunctional molecule in inflammation and vascular biology // Arterioscler. Thromb.Vasc. Biol. ‒ 2007. ‒ Vol.27. ‒ P. 2514‒2523.
39. Wu X., Jin L.P., Yuan M.M. et al. Human first–trimester trophoblast cells recruit CD56 bright CD16– NK cells into decidua by way of expressing and secreting of CXCL12/stromal cell–derived factor 1 //J. Immunol. ‒ 2005. ‒Vol. 175. ‒ P. 61–68.
40. Yawata M., Yawata N., Draghi M. et al. Roles for HLA and KIR polymorphisms in natural killer cell repertoire selection and modulation of effector function // J. Exp. Med. ‒ 2006. ‒ Vol. 203, № 3. ‒ P. 633–645.

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.