Choice of a locus to obtain biological material during examination of pregnant women for genital infections

Ivanova T.A., Gushchin A.E., Belova A.V., Astsaturova O.R., Nikonov A.P.

Central Research Institute of Epidemiology, Russian Inspectorate for the Protection of Consumer Rights and Human Welfare, Moscow, Russia; I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow, Russia
Objective: to comparatively estimate the informative value of testing the biological material from the cervix uteri and vagina for the diagnosis of vulvovaginal and cervical infection in pregnant women.
Subjects and methods. The investigation enrolled 677 pregnant women. The biological material taken from the cervical canal and vagina was examined using a real-time PCR assay.
Results. C. trachomatis was identified in the two loci in 100% of cases. Mycoplasma genitalium was detected only in the patients’ vagina. Ureaplasma parvum, Ureaplasma urealyticum, and Mycoplasma hominis were more frequently found in the vaginal samples.
Conclusion. The findings demonstrate that the biological material obtained from the vagina is of greater informative value than that from the cervical canal during examination of pregnant women for genital infections.

Keywords

genital infections
examination of pregnant women
vaginal smear
polymerase chain reaction

В настоящее время обследование беременных на наличие инфекционной патологии стало неотъемлемой частью ведения пациенток, в том числе при нормальном течении беременности и отсутствии клинической картины заболевания [1]. Это связано с тем, что инфекционный процесс, в том числе и бессимптомный, может составить угрозу нормальному течению беременности и привести к развитию таких осложнений, как самопроизвольный аборт, преждевременные роды, преждевременный разрыв плодных оболочек, хориоамнионит, инфицирование новорожденного, послеродовый эндометрит [1–3].

В существующих нормативных документах (приказы Минздрава России № 50 [4], № 808 [5]), регламентирующих обследование беременных женщин, отсутствует детализация процедуры проведения исследований: не указаны ни инфекционные агенты, ни методы обследования, ни процедура получения биологического материала. В связи с этим практикующие врачи опираются на методические и/или клинические рекомендации, а также собственный опыт при проведении подобных исследований [2, 6].

Традиционно у беременных женщин при обследовании на хламидийную и гонококковую инфекцию материал получают из цервикального канала [7]. Выбор локуса забора материала связан с тем, что Chlamydia trachomatis, как и Neisseria gonorrhoeae, проявляют тропность к цилиндрическому эпителию, выстилающему канал шейки матки [2, 6]. Однако необходимо учитывать, что процедура получения цервикального соскоба при беременности достаточно травматична, а также может приводить к развитию восходящей инфекции, и, соответственно, осложнений, перечисленных выше. В то же время как в европейских [8], так и в американских [1] руководствах появились указания на достаточную информативность исследования вагинального мазка.

Целью данного исследования стала сравнительная оценка информативности исследования биологического материала из шейки матки и влагалища для диагностики вульвовагинальной и цервикальной инфекции у беременных.

Материал и методы исследования

В исследование были включены 677 беременных женщин, обратившихся в Клинику акушерства и гинекологии им. В.Ф. Снегирева с 14.02.2008 по 27.05.2010. После сбора анамнеза и осмотра беременных производили забор биологического материала из цервикального канала и влагалища для исследования методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с целью обнаружения N. gonorrhoeae, C. trachomatis, Trichomonas vaginalis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma parvum, Ureaplasma urealyticum, Mycoplasma hominis. Для проведения ПЦР использовали наборы реагентов серийного производства «АмплиСенс – NG/CT/MG/TV – Мультипрайм-FL» и «АмплиСенс – Флороценоз – Микоплазмы – FL» (Производство ФБУН ЦНИИ эпидемиологии, Москва). Важно отметить, что набор реагентов «АмплиСенс – Флороценоз – Микоплазмы – FL» позволяет оценить концентрацию β-глобинового гена человека в биологическом материале. β-глобиновый ген содержится во всех клетках человека, в том числе и клетках эпителия урогенитального тракта. Это означает, что концентрация данного гена отражает количество клеток эпителия (цервикального или вагинального), попавших в пробирку с биоматериалом. Другими словами, β-глобиновый ген позволяет оценить качество получения биологического материала, что особенно важно при работе с внутриклеточными и мембранными
микроорганизмами, например микоплазмами.

После проведения ПЦР сравнивали результаты, полученные при тестировании цервикальных и ваги‑
нальных образцов. Для статистического анализа применяли программное обеспечение GraphPad Prism
(версия 4.00).

Результаты исследования и обсуждение

В исследуемой группе пациенток C. trachomatis была выявлена у 8 (1,2%), M. genitalium – у 5 (0,7%),
Neisseria gonorrhoeae и Trichomonas vaginalis обнаружены не были.

Важно отметить, что C. trachomatis у всех 8 пациенток обнаруживалась как в цервикальном канале, так и во влагалищном отделяемом. В российских методических рекомендациях по лабораторной диагностике урогенитальной хламидийной инфекции (2009) [2] мазок из влагалища (в том числе полученный самостоятельно) приведен как возможный материал для анализа методом ПЦР, в то время как в европейских рекомендациях 2010 г. [8] вагинальный мазок признан предпочтительным типом биологического материала для выявления C. trachomatis. Полученные данные согласуются с рекомендациями последних лет и подтверждают отсутствие необходимости получения цервикального соскоба для диагностики хламидийной инфекции.

M. genitalium в проведенном нами исследовании во всех 5 случаях выявлялась только в вагинальном
отделяемом пациенток, и ни в одном случае возбудитель не определялся в цервикальном канале. Для
этих пациенток был проведен анализ содержания β-глобинового гена человека в биологическом материале. Оказалось, что число клеток, полученных в цервикальном соскобе и вагинальном мазке, практически совпало. Таким образом, низкая чувствительность при исследовании цервикального материала не может быть объяснена меньшим количеством материала, полученного из цервикального канала. Ингибирования реакции также не наблюдалось ни в одном из образцов. Отдельно стоит отметить, что тест, используемый в данном исследовании, имеет высокую специфичность (100%) [9], т.е. получение ложноположительных результатов в вагинальном отделяемом практически исключено. Интересно отметить, что в исследовании Wroblewski и соавт. [10] исследование вагинального мазка также обеспечивало более высокую диагностическую чувствительность (по сравнению с цервикальным соскобом и первой порцией мочи) для выявления M. genitalium. Пациентки, во влагалище которых обнаруживается M. genitalium, имеют потенциал для передачи данного возбудителя своему партнеру (партнерам), в то время как «классическое» исследование соскоба из цервикального канала не позволило бы выявить у них эту инфекцию.

Таким образом, в проведенном исследовании не было выявлено пациенток, у которых исследование
материала из цервикального канала повышало бы чувствительность метода при выявлении инфекций,
передаваемых половым путем (ИППП).

Очевидно, что распространенность ИППП в исследуемой группе невысока. В связи с этим информативность двух типов биологического материала сравнивалась также на условно-патогенных
генитальных микоплазмах, которые значительно чаще обнаруживаются в урогенитальном тракте
пациенток [11].

U. parvum была выявлена у 240 (35,4%) пациенток в цервикальном канале и у 268 (39,6%) пациенток
в вагинальном мазке. Только у одной пациентки (0,1%) U. parvum была обнаружена в цервикальном
канале, но не обнаружена во влагалище; концентрация в данном образце составила менее 102 ГЭ/мл
(геномных эквивалентов в миллилитре образца). Концентрации U. parvum, выявляемые в вагинальном отделяемом, были выше таковых в цервикальных соскобах (медиана составила 1,6×105 ГЭ/мл и
3,1×104 ГЭ/мл соответственно) (рис. 1).

Концентрация U. parvum, U. Urealyticum, M. hominis в цервикальных и вагинальных образцах пациенток (вертикальными линиями показаны медианы)

Также стоит отметить, что концентрации, полученные в биологическом материале из двух локусов,
демонстрировали достоверную корреляцию между собой (p<0,0001) (рис. 2).

Рисунок 2. Соответствие концентрации генитальных микоплазм в цервикальных и вагинальных образцах пациенток в ГЭ/мл.

Отношение концентрации U. parvum во влагалище и цервикальном канале составило 3,78 (интерквартильный интервал 1,015–13,16).

U. urealyticum также чаще выявляли в вагинальных образцах (42 случая, 6,2%), чем в цервикальном материале (34, 5,0%). У 6 (0,9%) пациенток U. urealyticum выявлена только в цервикальном канале, из них у 5 (0,7%) концентрация не превышала 102 ГЭ/мл, у одной пациентки (0,1%) – 104 ГЭ/мл. Медианы концентраций составили 3,9×103 ГЭ/мл для материала из цервикального канала и 1,8×104 ГЭ/мл для материала из влагалища (рис. 1). M. hominis обнаруживали у 24 (3,5%) пациенток в
цервикальном соскобе и у 29 (4,3%) – в вагинальном отделяемом. Медиана выявляемых концентраций составила 7,95×104 ГЭ/мл для цервикального и 1,65×105 ГЭ/мл для вагинального материала (рис. 1).

Статистической достоверности при оценке корреляции получаемых значений концентрации во влагалище и цервикальном канале установлено не было (р=0,2878 для U. urealyticum; p=0,06 для M. hominis), что, вероятнее всего, связано с небольшим количеством положительных результатов (рис. 2).

Таким образом, в данной выборке исследование цервикального соскоба не позволяло выявить микроорганизмы, не обнаруживавшиеся во влагалищном отделяемом пациенток. Несмотря на то что как C. trachomatis, так и N. gonorrhoeae тропны к цилиндрическому эпителию, информативность вагинального мазка не уступает таковой для цервикального соскоба. Это связано с анатомоизиологической целостностью органов репродуктивного тракта женщины: эпителий цервикального канала с током слизи попадает во влагалище пациенток, в результате чего становится
возможным обнаружение цервикальных патогенов в вагинальном отделяемом (при использовании таких высокочувствительных методов, как ПЦР в реальном времени). Результаты проведенного исследования подтверждают это наблюдение для C. trachomatis. N. gonorrhoeae в данной работе не выявляли ни у одной из пациенток, однако мировой опыт позволяет говорить о том, что информативность исследования вагинального мазка достаточна для скринингового обследования беременных [12].

Как в нашей стране, так и во всем мире отсутствуют четкие рекомендации по выбору локуса для получения материала с целью выявления условно-патогенных генитальных микоплазм. Это связано с отсутствием выраженной тропности к определенному виду эпителия у данных микроорганизмов. Полученные результаты не только свидетельствуют о большей частоте выявления микоплазм во влагалище пациенток, но и показывают явную корреляцию концентраций, определяемых в цервикальном канале и влагалище пациенток. Это означает, что концентрация данных микроорганизмов во влагалищном отделяемом превышает концентрацию в цервикальном канале в 3,78 (1,015–13,16) раза. Другими словами, зная концентрацию микроорганизмов во влагалищном мазке, возможно рассчитать предположительную концентрацию выявляемых возбудителей в цервикальном канале.

Заключение

Полученные данные требуют расширенного изучения и подтверждения информативности биологического материала, полученного из влагалища, в группах беременных с более высокой распространенностью ИППП. Но уже на основании результатов проведенного исследования можно предположить, что со временем рутинное исследование материала из цервикального канала у беременных будет признано нецелесообразным, что позволит отказаться от данной инвазивной манипуляции при нормальном течении беременности.

References

1. Workowski K.A., Berman S.; Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Sexually transmitted diseases treatment guidelines, 2010. MMWR Recomm. Rep. 2010; 59(RR-12): 8-9.
2. Savicheva A.M., Shipicyna E.V., Sokolovskij E.V., Bashmakova M.A., Smirnova T.S., Krysanova A.A. i dr. Laboratornaja diagnostika urogenital'noj hlamidijnoj infekcii: Metodicheskie rekomendacii dlja vrachej. SPb.: Izd-vo N-L; 2009. 56s.
3. Nikonov A.P., Ascaturova O.R., Chilova R.A., Ishhenko A.I., Rafal'skij V.V. Infekcii v akusherstve i ginekologii: diagnostika i antimikrobnaja himioterapija: Posobie dlja vrachej. M.:PAGRI; 2006. 28s.
4. Prikaz Ministerstva zdravoohranenija Rossijskoj Federacii ot 10 fevralja 2003g. №50 «O sovershenstvovanii akushersko-ginekologicheskoj pomoshhi v ambulatorno-poliklinicheskih uchrezhdenijah». M.; 2003.
5. Prikaz Ministerstva zdravoohranenija Rossijskoj Federacii ot 2 oktjabrja 2009g. №808n «Ob utverzhdenii porjadka okazanija akushersko-ginekologicheskoj pomoshhi». M.; 2009.
6. Sokolovskij E.V., Savicheva A.M., Kisina V.I., Potekaev N.N., Domejka M., red. Gonokokkovaja infekcija. Vedenie bol'nyh: Rekomendacii dlja vrachej. SPb.: Foliant; 2008. 120s.
7. Karapetjan T.Je., Murav'eva V.V., Rumjanceva L.V. Hlamidioz i bakterial'nyj vaginoz u beremennyh. Ocenka klinicheskoj znachimosti novyh metodov jekspress-diagnostiki. V kn.: Materialy I Vserossijskogo ezhegodnogo kongressa po infekcionnym boleznjam. Moskva, 30 marta –1 aprelja 2009g. M.: CNIIJe; 2009: 90.
8. Lanjouw E., Ossewaarde J.M., Stary A., Boag F., Van der Meijden W.I. 2010 European guideline for the management of Chlamydia trachomatis infections. Int. J. STD AIDS. 2010; 21: 729-37.
9. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Dohn B., Benkovich A., Savicheva A., Sokolovsky E. et al. First evaluation of polymerase chain reaction assays used for diagnosis of Mycoplasma genitalium in Russia. J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol. 2009; 23(10): 1164–72.
10. Wroblewski J.K., Manhart L.E., Dickey K.A., Hudspeth M.K., Totten P.A. Comparison of transcription-mediated amplification and PCR assay results for various genital specimen types for detection of Mycoplasma genitalium. J. Clin. Microbiol. 2006; 44: 3306–12.
11. Prilepskaja V.N., Kisina V.I., Sokolovskij E.V., Savicheva A.M., Gomberg M.A., Gushhin A.E. i dr. K voprosu o roli genital'nyh mikoplazm v urogenital'noj patologii. Ginekologija. 2007; 9(1): 31-8.
12. Bignell C., Unemo M. 2012 European Guideline on the Diagnosis and Treatment of Gonorrhoea in Adults. http://www.iusti.org/regions/Europe/pdf/2012/Gonorrhoea_2012.pdf

About the Authors

Ivanova Tatiana
FBIS Central Research Institute for Epidemiology, Laboratory for Molecular Diagnostics of Reproductive Tract Infections, Junior researcher.
3a Novogireevskaya st., Moscow, Russia 111123
E-mail: Ivanovatatiana86@yandex.ru
Tel. 8 (495) 974-96-46, ext 1313 (office phone), 8(916) 154-70-67(mobile)
Alexander Guschin
FBIS Central Research Institute for Epidemiology, Laboratory for Molecular Diagnostics of Reproductive Tract Infections, Chief, PhD
3a Novogireevskaya st., Moscow, Russia 111123
E-mail:aguschin1965@pcr.ru
Tel. 8 (495) 974-96-46, ext 1122(office phone), 8(916) 144-05-56(mobile)

Anastasia Belova
I.M.Sechenov First Moscow State Medical University , Obstetrics and Gynecology Department, teaching assistant, PhD.
2 Elanskogo st., Moscow, Russia 119991
E-mail: nastyastar06@mail.ru
Tel.. 8(499)248-67-29 (office phone), 8(926)208-02-64 (mobile)

Olga Astsaturova
I.M.Sechenov First Moscow State Medical University , The V.F.Snegirev Obstetrics and Gynaecology Clinic, physician, PhD
2 Elanskogo st., Moscow, Russia 119991
E-mail: asts-olga@yandex.ru
Tel. 8(499)248-67-29(office phone), 8(903)7247440(mobile)

Andrei Nikonov
I.M.Sechenov First Moscow State Medical University , The V.F.Snegirev Obstetrics and Gynaecology Clinic, Chief of Obstetric Observational Department, PhD, Professor
2 Elanskogo st., Moscow, Russia 119991
E-mail:asts-olga@yandex.ru
Tel. 8 (499) 248-67-29(office phone), 8(495)364-89-85 (mobile)

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.