The level of VEGFA mRNA as a marker for chronic endometritis during the window of implantation

Tabolova V.K., Korneeva I.E., Donnikov A.E., Burmenskaya O.V.

Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia
Objective. To elaborate diagnostic criteria for chronic endometritis by the mRNA expression profile in the endometrium during the implantation window.
Subjects and methods. Thirty-three patients with tuboperitoneal infertility were examined and divided into 2 groups: 1) 15 women, whose histological examination of endometrial scrapings in the proliferation phase revealed plasma cells; 2) 18 women, in whom no plasma cells were detected. The endometrial mRNA expression for 39 genes (markers for growth factors, cytokines, surface markers for immune system cells, matrix metalloproteinases, homeobox genes, transcription factors, estrogen and progesterone receptors) during the window of implantation was analyzed.
Results. The mid-secretory phase expression of VEGFA mRNA with a sensitivity of 64% and a specificity of 89% was associated with the presence of plasmocytes in Phase 1 of the menstrual cycle. The mid-secretory phase endometrium in the presence of plasmocytes showed increases in VEGFA mRNA by 1.7 times, VEGFA189 by 2.4 times, IGFBP1 by 16.6%, and CD68 by 2 times and also a 1.5-fold reduction in IL-2 mRNA expression compared with the patients having no plasmocytes.
Conclusion. The findings allowed the authors to elaborate diagnostic criteria for chronic endometritis in the mid-secretory phase by the VEGFA mRNA level during the window of implantation.

Keywords

chronic endometritis
infertility
endometrial pathology
gene expression
VEGFA
diagnosis

В ряде исследований последних лет продемонстрировано, что морфофункциональное состояние эндометрия вносит существенный вклад в эффективность программ экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) [1–5]. В структуре причин женского бесплодия частота приобретенной внутриматочной патологии составляет около 50% [1, 6]. Хронический эндометрит (ХЭ) занимает первое место в структуре патологических изменений эндометрия, его распространенность у женщин с бесплодием варьирует от 2,8 до 68% [4, 7]. У пациенток с неудачными попытками ЭКО и переноса эмбриона в анамнезе частота ХЭ по разным данным составляет от 30 до 60% [7–9].

Известно, что для диагностики ХЭ проводят гистологическое исследование соскоба эндометрия на 7–10-й день менструального цикла, и ведущим критерием при этом является наличие плазматических клеток. Большинство морфологов подчеркивают обязательное выявление в строме эндометрия даже единичных плазматических клеток, которые, по их мнению, в здоровой ткани эндометрия не содержатся. В то же время выявление очаговой лимфо-лейкоцитарной инфильтрации, эозинофилов, очагового фиброза стромы, склеротических изменений стенок спиральных артерий являются лишь косвенными признаками ХЭ [10–14]. Для оценки рецептивности эндометрия исследуется биоптат эндометрия в среднюю стадию фазы секреции [15].

На данном этапе развития науки совершенствуются иммуногистохимические (ИГХ) и молекулярно-генетические критерии диагностики ХЭ. Учитывая повышенный интерес исследователей в последнее десятилетие к оценке «имплантационного эндометрия» у пациенток с бесплодием, актуальным является поиск возможных диагностических критериев ХЭ именно в этот короткий временной промежуток [11, 13, 16–18].

Принимая во внимание ведущую роль ХЭ в структуре патологии эндометрия при бесплодии, а также трудности диагностики данного заболевания, представляется актуальным дальнейший поиск универсальных маркеров которые позволяли бы при одном заборе соскоба (или биоптата) эндометрия выявить наличие воспаления в эндометрии, оценить состояние рецепторного аппарата, а также служить основой для разработки тактики прегравидарной подготовки.

Цель исследования: разработать критерии диагностики ХЭ по профилю экспрессии матричной РНК (мРНК) в эндометрии в период «окна имплантации».

Материал и методы исследования

В соответствии с целью исследования было об­сле­довано 33 женщины с трубно-перитонеальным бес­плодием (ТПБ), планирующих реализацию репро­дуктивной функции в программе ЭКО, обра­тив­шихся в отделение сохранения и восста­новления репродуктивной функции ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России. Критерии включения: ТПБ, возраст не более 37 лет; овуляторный мен­струальный цикл; наличие диагностических ульт­развуковых критериев ХЭ (повышение эхоген­ности эндометрия, расширение полости матки, неров­ный контур эндометрия, неоднородная эхоструктура эндометрия), 2 безуспешные попытки ЭКО в анамнезе. Критерии исключения: толщина эндометрия менее 7 мм в период предполагаемого «имплантационного окна», противопоказания для проведения программы ЭКО и переноса эмбриона, гинекологические заболевания: миома матки, эндометриоз.

Для выявления мРНК генов в среднюю стадию фазу секреции, ассоциированных с ХЭ, всем 33 пациенткам в 1-ю фазу менструльного цикла были проведены гистероскопия и диагностическое выскабливание эндометрия, а также пайпель-биопсия в день предполагаемого «окна имплантации» следующего менструального цикла.

Гистероскопию выполняли с помощью жесткого 5-миллиметрового гистероскопа фирмы Karl Storz (Германия) по общепринятой методике. Для инстилляции жидкости с целью регуляции скорости потока и давления использовали аппарат HAMEUO ENDOMAT, Karl Storz. Под гистероскопическим контролем проводили диагностическое выскабливание эндометрия.

В зависимости от результатов гистологического исследования были сформированы две группы: 1-я группа (основная) из 15 пациенток, у которых при гистологическом исследовании соскобов эндометрия в фазе пролиферации обнаружены плазматические клетки; 2-я группа (сравнения) из 18 женщин, у которых плазматические клетки не были обнаружены.

Биопсию эндометрия проводили в амбулаторных условиях в день менструального цикла ЛГ+7, который определяли с помощью мочевого теста Clear Blue («Unipath Ltd», Великобритания), основанного на определении пика ЛГ в моче. С помощью аспирационной кюретки Pipelle de Cornier («LaboratorieC.C.D.», Франция) получали биоптат эндометрия, который был поделен на 2 части: для гистологического и молекулярно-генетического исследования. Гистологическое исследование проводилось в 1-м патологоанатомическом отделении ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России в соответствии с современными стандартами, изложенными в фундаментальных руководствах [19].

Материалы биоптатов эндометрия для молекулярно-генетического исследования помещали в пробирки со средой для стабилизации РНК (лизирующий растовор из комплекта реагентов «Проба-НК», ООО «НПО ДНК-Технология», Россия). В биоптатах энометрия проанализирован уровень экспрессии 39 мРНК генов (маркеров ростовых факторов: протеин, связывающий инсулиноподобный фактор роста (IGFBP)1, IGFBP2, IGFBP3, IGFBP4, сосудисто-эндотелиальный фактор роста (VEGF)A (общий и изоформа 189), гепаринсвязывающий эпидермальный фактор роста (HBEGF), инсулиноподобный фактор роста (IGF)2; цитокинов: интерлейкины (IL)1B, IL2, IL6, IL8, IL10, IL12A, IL15, IL18, лейкемия-ингибирующий фактор (LIF) и его рецптор LIFR, фактор некроза опухоли (TNF)A, трансформирующий фактор роста (TGF)B1), поверхностных маркеров клеток иммунной системы: CD45, CD56, CD68; матриксных металлопротеиназ: ММР2, ММР7, ММР8, ММР9, ММР11; генов гомеобокса: HOXA10, HOXA11, MSX1; циклооксигеназы PTGS2; эстрогенового ESR1 и прогестеронового PGR рецепторов; маркеров транскрипционных факторов: AREG, OSM; BCL2, BAX, PTEN).

Оценку уровня экспрессии мРНК проводили с помощью количественной полимеразной цепной реакции с предварительной стадией обратной транскрипции (ОТ-ПЦР) в режиме реального времени («ДНК-Технология», Россия). Реакция амплификации проводилась с помощью детектирующего амплификата ДТ-96 («ДНК-Технология», Россия).

Нормировка уровня экпрессии генов выполнена с использованием метода сравнения индикаторных циклов (метод Δ∆Cp) по четырем референсным генам HPRT1, TBP, B2M, GUSB. В качестве меры центральной тенденции выбрана медиана (Me), а в качестве интервальной оценки – верхний (L) и нижний квартили (H). Для оценки значимости межгрупповых различий применялся. U-критерий Вилкоксона–Манна–Уитни для несвязанных совокупностей. При сравнении эффективности диагностики в разные фазы менструального цикла использовали U-критерий Вилкоксона–Манна–Уитни для связанных совокупностей.

При оценке множественного влияния факторов на исход использовался метод математического моделирования путем построении бинарной логистической регрессионной модели путем обрат­ной селекции. Оценка качества полученных моделей проводилась с помощью ROC-анализа. При этом рассчитывалась площадь под кривой (AUC), характе­ризующая эффективность модели. Для каждого значения AUC рассчитывался 95% доверительный интервал (CI). Для установления порогового значения (уровень cut-off) проводился пересмотр значений исследуемого параметра от максимального до минимального. Для каждого значения проводилось разделение групп с определением чувствительности и специфичности. Критерием выбора порогового значения выбрано требование максимальной суммарной чувствительности и специфичности модели.

Результаты исследования

Средний возраст женщин варьировал от 24 до 37 лет, составляя в среднем 33±3,4 года. Длительность бесплодия колебалась от 2 до 18 лет и составила в среднем 5,9±3,4 года. Все пациентки имели сохраненный овариальный резерв и овуляторный менструальный цикл. Средняя толщина эндометрия у обследованных пациенток в день предполагаемого «окна имплантации» (ЛГ+7) составила 10,2±2,2 см.

При проведнии гистероскопии у 21 (63,6%) пациентки из 33 были выявлены очаги гиперемии, неравномерная толщина и неравномерная окраска слизистой полости матки – у 14 (42,4%) и 9 (27,3%) женщин соответственно, усиленный сосудистый рисунок – у 7 (21,2%) пациенток. Сочетание 2 гистероскопических признаков ХЭ было отмечено у 22 (66,7%) женщин, трех – у 13 (39,4%), четырех – у 4 (12,1%) женщин. То есть, гистероскопические признаки ХЭ были выявлены у 23 (69,7%) из 33 женщин.

При гистологическом исследовании соскобов эндометрия плазматические клетки были обнаружены у 15 (45,5%) из 33 пациенток, склероз стромы – у всех 33 женщин, лимфоидная инфильтрация стромы – у 31 (93,9%), сочетание склероза стромы и лимфоидной инфильтрации – у 31 женщины (93,9%) (табл. 1). Таким образом, по результатам гистологического исследования в 1-ю фазу менструального цикла ХЭ был верифицирован по наличию плазматических клеток у каждой второй пациентки. У 18 (56,3%) женщин плазматические клетки отсутствовали.

Для сравнительной оценки диагностической значимости морфологического исследования эндометрия в разные фазы менструального цикла было проведено сравнение частоты выявления признаков ХЭ. У всех 33 пациенток, которым проводили гистероскопию и диагностическое выскабливание в первую фазу цикла, были проанализированы данные гистологического исследования материала, полученного при пайпель-биопсии эндометрия, проведенной во 2-ю фазу следующего менструального цикла (день ЛГ+7).

Данные, представленные в табл. 1, демонстрируют, что результаты гистологического исследования у одних и тех же пациенток в первую и во вторую фазы менструального цикла достоверно различались между собой. Так, в 33 образцах соскобов эндометрия первой фазы менструального цикла плазматические клетки, являющиеся ведущим критерием диагностики ХЭ, были выявлены у 15 пациенток (45,5%). Однако во 2-ю фазу менструального цикла (день ЛГ+7) плазматические клетки присутствовали лишь у 3 женщин (9,1%), (р=1,8×10-3). Чувствительность гистологического исследования во вторую фазу составила всего 20%. Склероз стромы был выявлен у всех 33 пациенток в пролиферативной фазе цикла, в то время как во 2-й фазе менструального цикла – только у 20 женщин (60,6%) (р=5,6×10-5). Лимфоидная инфильтрация диагностирована у 31 (93,9%) женщины в фазу пролиферации и лишь у 13 (39,4%) – в фазу секреции (р=3,5×10-6). Таким образом, морфологические признаки ХЭ в стадию пролиферации выявлялись достоверно чаще, чем в стадию средней секреции (р<0,05). Полученные нами данные продемонстрировали неэффективность гистологического исследования в период «окна имплантации».

Очевидно, для одновременной оценки параметров имплантационного эндометрия и выявления признаков ХЭ во второй фазе менструального цикла необходимы дополнительные диагностические тесты. Использование таких тестов является немаловажным в подготовке пациенток с бесплодием к программе ЭКО, так как позволяет существенно снизить количество инвазивных диагностических процедур и уменьшить длительность обследования.

На следующем этапе работы были использованы молекулярно-генетические методы исследования. Были сформированы две подгруппы в зависимости от результатов гистологического исследования в фазу пролиферации:

  • 1-я подгруппа из 15 пациенток, у которых при гистологическом исследовании соскобов эндометрия в фазе пролиферации обнаружены плазматические клетки, что соответствовало «полному морфологическому комплексу ХЭ»;
  • 2-я подгруппа из 18 женщин, у которых при гистологическом исследовании соскобов эндометрия в фазе пролиферации плазматические клетки не были обнаружены, что соответствовало «неполному морфологическому комплексу ХЭ».

Анализ экспрессии мРНК 39 генов показал, что уровень экспрессии мРНК только 4 генов (ростовых факторов: VEGFA, VEGFA189, IGFBP1 и цитокина IL2) у пациенток с плазмоцитами достоверно различался с уровнем экспрессии мРНК генов при их отсутствии (табл. 2).

Для оценки диагностической значимости молекулярно-генетических маркеров в биоптатах эндометрия при ХЭ был проведен многофакторный регрессионный анализ, по результатам которого был выбран единственный независимый информативный маркер VEGFA, позволяющий диагностировать наличие ХЭ во 2-ю фазу цикла.

Согласно проведенному ROC-анализу, высокий уровень экспрессии мРНК VEGFA ассоциирован с наличием плазматических клеток в 1-й фазе менструального цикла. Пороговым значением выбран уровень экспрессии, равный 0,250. Площадь под кривой составила 0,778 (0,612–0,943). Чувствительность и специфичность модели в области порогового значения составили 64 и 89% соответственно.

Обсуждение

При проведнии гистероскопии признаки ХЭ были выявлены у 23 (69,7%) из 33 женщин. При этом по данным гистологического исследования в 1-ю фазу менструального цикла ХЭ был верифицирован по наличию плазматических клеток у каждой второй пациентки. У 18 (56,3%) женщин плазматические клетки отсутствовали.

Полученные нами данные согласуются с результатами ретроспективного исследования E. Cicinelli и соавт. 2014 года, в котором изучали распространенность ХЭ у пациенток с неудачными попытками ЭКО в анамнезе. Из 106 обследованных пациенток явления ХЭ по данным гистероскопии были выявлены у 70 женщин (66%), по данным культурального исследования из полости матки – у 48 женщин (45 %) и только у 61 (57,5%) женщины диагноз ХЭ был подтвержден при гистологическом исследовании. У 36 пациенток с неудачными попытками ЭКО ХЭ выявлен не был [17].

Аналогичные данные были получены Rui Yang и соавт. в 2014 году при сравнении гистологического и гистероскопического методов исследования для выявления патологических изменений полости матки и эндометрия у пациенток с неудачными попытками ЭКО. При обследовании 202 пациенток явления ХЭ по данным гистероскопии (микрополипы, гиперемия, неравномерная толщина и неравномерная окраска слизистой полости матки) были выявлены в 63,3% случаев, в то время как, согласно гистологическим критериям, ХЭ был выявлен только в 43,6% случаев. Чувствительность и специфичность гистероскопии составила 35,2 и 67,5% соответственно [20].

Анализ экспрессии мРНК 39 генов в эндометрии в среднюю стадию фазы секреции показал, что уровень мРНК только 4 генов (ростовых факторов: VEGFA, VEGFA189, IGFBP1 и цитокина IL2) у пациенток с плазмоцитами достоверно различался с уровнем мРНК генов при их отсутствии. Кроме того, согласно проведенному ROC-анализу, высокий уровень экспрессии мРНК VEGFA ассоциирован с наличием плазматических клеток в 1-й фазе менструального цикла.

Сходные данные были получены И.Б. Манухиным и соавт. в 2014 году при ИГХ исследовании параметров имплантационного эндометрия при ХЭ. Авторами выявлено, что воспалительные изменения в эндометрии характеризовались высоким уровнем VEGF. При этом наибольшая экспрессия наблюдалась на 5–7-й день менструального цикла, а наименьшая – на 19–21-й. Интенсивность экспрессии VEGF в первой и второй фазах менструального цикла превышала аналогичные показатели пациенток контрольной группы [2].

Наши результаты согласуются и с данными, полученными в исследовании А.В. Шуршалиной (2007 г.), в котором проанализированы морфологические и ИГХ особенности эндометрия при ХЭ с использованием панели из 12 маркеров по сравнению с неизмененным эндометрием. Было выявлено статистически значимое повышение маркера ангиогенеза VEGF в 9,5 раза (р<0,001) и число макрофагов CD68 в 2 раза (р<0,001), по сравнению с контрольной группой. Кроме того, корреляционный анализ выявил связь между CD138 (маркер плазматических клеток) и VEGF (r=0,84; р<0,001). Было выявлено повышение более чем в 4 раза регулятора воспалительного процесса фактора роста TNFα, а также числа больших гранулярных лимфоцитов CD56 по сравнению с контрольной группой (р<0,05), что, по мнению авторов, может являться причиной нарушения имплантации [16]. В нашем исследовании также прослежено повышение мРНК генов TNFα и CD56 у пациенток с ХЭ, однако статистически значимых различий выявлено не было. Важно отметить, что биопсия эндометрия в исследовании А.В. Шуршалиной проводилась на 7–10-й день менструального цикла.

Так же, как и в нашем исследовании, C. Di Pietro и соавт. в 2013 году сравнивали во время «окна имплантации» в эндометрии профиль экспрессии из 25 генов, кодирующих белки, которые участвуют в воспалительной реакции, пролиферации и апоптозе, с помощью ОТ-ПЦ в режиме реального времени. Исследование показало, что у пациенток с ХЭ значительно изменена экспрессия генов, кодирующих провоспалительные цитокины, факторы роста и процессы апоптоза. Так, экспрессия IGFBP1, BCL2 и BAX была повышена, а экспрессия IL11, CC14, IGF1 и каспазы (CASP)8 – снижена [18]. В нашем исследовании уровень экспрессии мРНК гена IGFBP1 также был повышен в 16,6 раза (р=0,032) у пациенток с ХЭ, однако статистически значимые различия в уровне экспрессии мРНК генов BCL2 и BAX между группами нами выявлены не были.

Выводы

  1. Для эндометрия средней стадии фазы секреции при наличии плазмоцитов характерно увеличение мРНК VEGFA в 1,7 раза, VEGFA189 – в 2,4 раза, IGFBP1 – в 16,6 раза, CD68 – в 2 раза, а также снижение экспрессии мРНК гена IL2 в 1,5 раза по сравнению с пациентками, у которых плазмоциты отсутствуют.
  2. Экспрессия мРНК гена VEGFA (>0,250) в среднюю стадию фазы секреции ассоциирована с наличием ХЭ (чувствительность 64%, специфичность 89%).

Supplementary Materials

  1. Table 1. Comparison of the results characteristic of endometrial biopsies histology in phase 1 and 2 of the menstrual cycle (n = 33)
  2. Table 2. Comparative characteristic of mRNA gene expression in endometrial biopsies in phase of medium secretion (n = 33)

References

1. Корнеева И.Е. Роль эндометрия в неудачах реализации репродуктивной функции. Проблемы репродукции. 2010; 2: 16-20. [Korneeva I.E. The role of the endometrium in the failure of the realization of reproductive function. Problemy reproduktsii. 2010; 2: 16-20. (in Russian)]

2. Манухин И.Б., Гогсадзе И.Г., Гогсадзе Л.Г., Пономарева Ю.Н. Перспективы использования комплексной оценки клинико-морфологических данных в диагностике и предгравидарной подготовке пациенток с хроническим эндометритом. Акушерство и гинекология. 2014; 9: 98-102. [Manukhin I.B., Gogsadze I.G., Gogsadze L.G., Ponomareva Yu.N. Promises for the comprehensive assessment of clinical and morphological data in the diagnosis and pregravid preparation of patients with chronic endometritis. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2014; 9: 98-102. (in Russian)]

3. Шуршалина А.В. Хронический эндометрит: современные взгляды на проблему. Consilium medicum. 2011; 13(6): 36-9. [Shurshalina A.V. Chronic endometritis: modern views on the problem. Consilium medicum. 2011; 13 (6): 36-9. (in Russian)]

4. Johnston-MacAnanny E.B., Hartnett J., Engmann L.L., Nulsen J.C., Sanders M.M., Benadiva C.A. Chronic endometritis is a frequent finding in women with recurrent implantation failure after in vitro fertilization. Fertil. Steril. 2010; 93(2): 437-41.

5. Park H.J., Kim Y.S., Yoon T.K., Lee W.S. Chronic endometritis and infertility. Clin. Exp. Reprod. Med. 2016; 43(4): 185-92.

6. Рудакова Е.Б., Давыдов П.В., Давыдов В.В. Диагностика внутриматочной патологии при подготовке к экстракорпоральному оплодотворению. Лечащий врач. 2015; 1: 83-6. [Rudakova E.B., Davydov P.V., Davydov V.V. Diagnosis of intrauterine pathology in preparation for in vitro fertilization. Lechaschiy vrach. 2015; 1: 83-6. (in Russian)]

7. Cicinelli E., Resta L., Nicoletti R., Zappimbulso V., Tartagni M., Saliani N. Endometrial micropolyps at fluid hysteroscopy suggest the existence of chronic endometritis. Hum. Reprod. 2005; 20(5): 1386-9.

8. Кулаков В.И., Леонов Б.В., Кузьмичев Л.Н. Лечение женского и мужского бесплодия. Вспомогательные репродуктивные технологии. М.: МИА; 2005. 592c. [Kulakov V.I., Leonov B.V., Kuzmichev L.N. Treatment of female and male infertility. Auxiliary reproductive technologies. Moscow: MIA; 2005. 592p. (in Russian)]

9. Bouet P.E., El Hachem H., Monceau E., Gariepy G., Kadoch I.J., Sylvestre C. Chronic endometritis in women with recurrent pregnancy loss and recurrent implantation failure: prevalence and role of office hysteroscopy and immunohistochemistry in diagnosis. Fertil. Steril. 2016; 105: 106-10.

10. Chen Y.O., Fang R.L., Luo Y.N., Luo C.Q. Analysis of the diagnostic value of CD138 for chronic endometritis, the risk factors for the pathogenesis of chronic endometritis and the effect of chronic endometritis on pregnancy: a cohort study. BMC Womens Health. 2016; 16(1): 60.

11. Adegboyega P.A., Pei Y., McLarty J. Relationship between eosinophils and chronic endometritis. Hum. Pathol. 2010; 41(1): 33-7.

12. Kitaya K., Yasuo T. Immunohistochemistrical and clinicopathological characterization of chronic endometritis. Am. J. Reprod. Immunol. 2011; 66(5): 410-5.

13. Kitaya K., Yasuo T. Inter-observer and intra-observer variability in immunohistochemical detection of endometrial stromal plasmacytes in chronic endometritis. Exp. Ther. Med. 2013; 5(2): 485-8.

14. Matteo M., Cicinelli E., Greco P., Massenzio F., Baldini D., Falagario T. et al. Abnormal pattern of lymphocyte subpopulations in the endometrium of infertile women with chronic endometritis. Am. J. Reprod. Immunol. 2009; 61(5): 322-9.

15. Шуршалина А.В., Демура Т.А. Морфо-функциональные перестройки эндометрия в «окно имплантации». Акушерство и гинекология. 2011; 7-2: 9-13. [Shurshalina A.V., Demura T.A. Morphofunctional rearrangements of the endometrium during the implantation window. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2011; 7-2: 9-13. (in Russian)]

16. Шуршалина А.В. Хронический эндометрит у женщин с патологией репродуктивной функции: автореф. дисс. … д-ра мед. наук. М.; 2007. [Shurshalina A.V. Chronic endometritis in women with pathology of reproductive function: author’s abstract. diss. ... Dr. med. sciences. Moscow; 2007. (in Russian)]

17. Cicinelli E., Matteo M., Tinelli R., Lepera A., Alfonso R., Indraccolo U. et al. Prevalence of chronic endometritis in repeated unexplained implantation failure and the IVF success rate after antibiotic therapy. Hum. Reprod. 2015; 30(2): 323-30.

18. Di Pietro C., Cicinelli E., Guglielmino M.R., Ragusa M., Farina M., Palumbo M.A., Cianci A. Altered transcriptional regulation of cytokines, growth factors, and apoptotic proteins in the endometrium of infertile women with chronic endometritis. Am. J. Reprod. Immunol. 2013;69(5): 509-17.

19. Кондриков Н.И. Патология матки. Иллюстрированное руководство. М.: Практическая медицина; 2008. 334c. [Kondrikov N.I. Pathology of the uterus. Illustrated manual. Мoscow: Practical medicine; 2008. 334c. (in Russian)]

20. Yang R., Du X., Wang Y., Song X., Yang Y., Qiao J. The hysteroscopy and histological diagnosis and treatment value of chronic endometritis in recurrent implantation failure patients. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(6):1363-9.

Received 08.02.2017

Accepted 17.02.2017

About the Authors

Tabolova V.K., graduate students Department of Fertility Preservation and Restoration, Research Centre of Obstetrics, Gynaecology and Perinatology,
Minostry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Oparin str. 4. Tel.: +79188275828. E-mail: v.tabolova@mail.ru
Korneeva I.E., MD, PhD, senior researcher, Department of Fertility Preservation and Restoration, Research Centre of Obstetrics, Gynaecology and Perinatology,
Minostry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Oparin str. 4. Tel.: +79035939748. E-mail: irina.korneeva@inbox.ru
Donnikov A.E., Ph. D. scientist of the laboratory of molecular genetics methods, Research Centre of Obstetrics, Gynaecology and Perinatology, Minostry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Oparin str. 4. Tel.: +74954381183. E-mail: donnikov@dna-technology.ru
Bourmenskaya O.V., Ph.D. scientist of the laboratory of molecular genetics methods, Research Centre of Obstetrics, Gynaecology and Perinatology,
Minostry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Oparin str. 4. Tel.: +79167531709. E-mail: bourmenska@mail.ru

For citations: Tabolova V.K., Korneeva I.E., Donnikov A.E., Burmenskaya O.V. The level of VEGFA mRNA as a marker for chronic endometritis during the window of implantation. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2017; (10): 62-8. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.10.62-68

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.