The role of bacterial contamination in the development of endometriosis

Smolnova T.Yu., Dmitrieva I.E., Pavlovich S.V., Chuprynin V.D., Priputnevich T.V.

1) Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia
The current concepts of the etiology and mechanisms of endometriosis, including the new theory of bacterial contamination, are analyzed. The review includes data from foreign and Russian articles published in the PubMed, UpToDate and eLibrary databases over the past 10 years. Antimicrobial peptide (AMP), in particular secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) and β-defensin, are elements of the local line of epithelial defense against an infectious agent. Their level in the endometrium and other tissues of the female genital tract decreases during menstruation under cyclic hormonal fluctuations, which increases the risk of bacterial contamination of menstrual blood and genital tract tissues. In addition, a change in AMP secretion may play a role in the implantation of endometrioid heterotopias through the influence on the synthesis and activity of matrix metalloproteinases and transcription nuclear factor kappa B (NF-κB). As the disease progresses, there are elevated levels of SLPI and β-defensins. AMPs are present in virtually all human epithelial tissues; and a decrease in their secretion by epithelial cells is one of the components in the development of common forms of endometriosis. The results of ongoing studies confirm the role of AMP as a trigger in the development of endometriosis, which exacerbates bacterial contamination during menstruation and forms a vicious circle in the pathogenesis of common forms of endometriosis.

Keywords

endometriosis
common forms of endometriosis
Escherichia coli
antimicrobial peptides
secretory protease inhibitor
β-defensins
infertility

Эндометриоз — это хроническое заболевание, при котором за пределами полости матки наблюдается доброкачественное разрастание ткани, по морфологическим и функциональным свойствам подобной эндометрию [1].

По данным разных авторов, эндометриоз встречается у 10–15% женщин репродуктивного возраста [1, 2]. Клинически эндометриоз органов малого таза и брюшной полости проявляется альгодисменореей, диспауренией, бесплодием и т.д., частота которых достигает 33–80% [1, 2], что нарушает качество жизни пациентки. Эндометриоз – вторая по значимости после ановуляции причина бесплодия, по данным ВОЗ [2, 3]. Все перечисленное обусловливает актуальность изучения проблемы и требует поиска новых подходов к диагностике, тактике лечения заболевания.

В настоящее время существует семь основных теорий причин и механизмов развития эндометриоза.

Наиболее ранняя теория возникновения эндометриоза – это имплантационная теория, выдвинутая Sampson J.A. в 1920-е гг. [4].

Согласно этой теории, клетки отторгнувшегося во время менструации эндометрия попадают в брюшную полость через фаллопиевы трубы и способны имплантироваться в ткани органов малого таза и брюшину. Помимо этого, вместе со зрелыми клетками эндометрия в брюшную полость могут попадать и популяции взрослых стволовых клеток [5].

Однако имплантационная теория не могла полностью удовлетворить исследователей, так как известны случаи обнаружения эндометриоза у неменструирующих пациенток [6], а также тот факт, что ретроградный заброс крови в брюшную полость во время менструации в норме встречается не менее чем у 90% женщин, но не у всех развивается эндометриоз [2].

Диссеминационная теория предполагает, что клетки эндометрия могут диссеминировать в другие органы вместе с кровью или лимфой, а также ятрогенным путем во время операций на матке [2, 7]. Эта теория находит подтверждение в исследовании, в котором железистые и стромальные клетки эндометрия были обнаружены в лимфатических узлах малого таза у больных эндометриозом [7], а также в эксперименте с индуцированным эндометриозом у обезьян [8].

Следующая теория – теория метаплазии, которая предполагает способность мезотелиальных клеток брюшины перерождаться в железистые и стромальные клетки, подобные клеткам эндометрия [2]. Этой теорией может быть объяснен эндометриоз у женщин с агенезией матки [6].

Согласно четвертой эмбриологической (дизонтогенетической) теории, клетки эктопического эндометрия могут развиваться из клеток мюллерова протока, оставшихся в других тканях после миграции [2]. Помимо клеток мюллерова протока, в качестве возможного источника перерождения указываются стволовые и прогениторные клетки костного мозга [9].

Среди современных теорий можно отметить генетическую и эпигенетическую теории, предполагающие наличие генетических и эпигенетических дефектов клеток, а также возможность наследственной передачи этих дефектов [10]. Эти теории подтверждаются случаями развития эндометриоза еще до менархе; изменения могут детерминировать тяжелое течение и рецидивирование эндометриоза.

В последние десятилетия опубликован ряд исследований, характеризующих развитие эндометриоза с позиции иммунологических нарушений [11, 12]. Были обнаружены увеличение количества активированных перитонеальных макрофагов с повышенной выработкой фибронектина [11] и сниженная цитотоксичность NK-клеток по отношению к клеткам эндометрия при эндометриозе [12].

Стоит упомянуть и о концепции Crain D.A. и соавт. (2009 г.), согласно которой в основе развития эндометриоза лежит репрограммирование нормальных эндометриоидных клеток под воздействием каких-либо внешних стимулов (химические вещества, эндокринные факторы, изменения иммунного статуса) [13].

Концепция роли бактериальной контаминации у пациенток с эндометриозом

Идея о бактериальной контаминации как о факторе развития эндометриоза была высказана еще в 2008 г., когда Kodati V.L. и соавт. было сделано предположение о роли бактерий рода Shigella и подобных микроорганизмов в развитии заболевания [14].

В 2018 г. Khan K.N. и соавт. была предложена новая концепция о возрастании роли бактериальной контаминации у пациенток с эндометриозом на фоне снижения экспрессии антимикробных пептидов (АМП) в эпителии во время менструации [15].

АМП – это короткие полипептиды, состоящие из 12–50 аминокислотных остатков, обладающие антимикробной (антибактериальной) активностью. АМП вырабатываются многоклеточными растительными и животными организмами (гусеница шелкопряда, лягушка, семя редьки, ячмень, пшеница и т.д.) и у человека. К числу АМП относятся: лизоцим, ингибиторы протеаз и т.д. Молекулы АМП, как правило, положительно заряжены, что помогает им взаимодействовать с отрицательно заряженными мембранами бактерий. Снижение АПМ может служить дополнительной предпосылкой к усилению контаминации микроорганизмами, в том числе во время менструации.

В 1986 г. в секреторных клетках эпителия женского полового тракта был обнаружен секреторный ингибитор протеазы человека (Secretory leukocyte Protease Inhibitor, SLPI), который обладает ингибиторной активностью по отношению к сериновым протеазам (трипсину, хемотрипсину, гранулоцитарным и печеночным эластазам, катепсину G и химазам тучных клеток) [16]. Подавляя активность указанных протеаз, SLPI защищает эпителий половых органов от разрушения эндогенными протеолитическими ферментами [16]. Экспрессия SLPI была выявлена в эпителиальных клетках влагалища, эндо- и экзоцервикса, а также в эндометрии и маточных трубах [15, 17, 18].

Помимо антипротеазного механизма, SLPI подавляет рост патогенных микроорганизмов и обладает бактерицидным действием по отношению к Escherichia coli, Staphylococcus aureus и Candida albicans [19, 20]. Именно постоянная выработка SLPI в эндометрии, согласно результатам исследований King A.E. и соавт., обеспечивает постоянный противомикробный барьер [21]. На основании этого авторами было сделано предположение о том, что сочетание этих двух факторов может играть немаловажную роль в развитии эндометриоза.

SLPI также был обнаружен в эпителии почек, бронхов, поджелудочной железы, кишечника и кожи [22–25], и снижением его экспрессии могут быть объяснены распространенные формы эндометриоза других органов и этиопатогенез глубокого инфильтративного эндометриоза (толстокишечного) и эндометриоза послеоперационных рубцов [17, 22–25].

Вследствие снижения концентрации АМП в тканях женского полового тракта в сочетании с увеличением контаминации E. сoli может запускаться весь каскад механизмов, конечным итогом которого является «хроническое воспаление» с изменением проницаемости гистиоцитарных барьеров, что и облегчает инвазию эктопических клеток эндометрия [15].

Имеются указания на противовоспалительное действие SLPI, в основе которого лежит его способность подавлять активность лейкоцитарной эластазы и катепсина G [16], синтез простагландинов и металлопротеиназы моноцитами [26], а также активность провоспалительного фактора транскрипции NF-kB [27].

Еще в 1994 г. в исследованиях Chegini и соавт. [28] показано, что у пациенток с эндометриозом выявлена повышенная активация трансформирующего фактора роста β-1, что приводит к повышению экспрессии матриксных металлопротеиназ (ММР) [29] и, как следствие, к деградации соединительной ткани, что и облегчает инвазию клеток эндометрия [30].

В более поздних исследованиях подтверждена повышенная экспрессия ММР-1, -3, -5, -7 и -9 в эктопическом эндометрии, а также ММР-1, -2, -3, -4, -5, -7, -9 и -10 – в эутопическом эндометрии [31–33], по сравнению со здоровыми женщинами. Роль ММР в развитии эндометриоза кажется вероятной, т.к. экспериментально было доказано, что тканевые ингибиторы металлопротеиназы подавляют активность ММР в очагах эндометриоза [30, 33].

Также в экспериментах установлено, что синтез ММР и их активность (в частности, ММР-2 и -9) значительно усиливаются в присутствии бактериального липополисахарида, полученного от E. coli [34], а также самих E. coli [35].

Таким образом, сниженный уровень SLPI является значимым фактором в запуске тканевых процессов, облегчающих инвазию клеток эндометрия.

SLPI, как ингибитору протеаз, принадлежит и другая роль в развитии и поддержании патологического процесса.

Известно, что экспрессия SLPI в эпителиальных клетках эндометрия достигает своего максимума во время фазы секреции менструального цикла, что свидетельствует о влиянии прогестерона на его уровень [17]. Также на активность SLPI влияет соотношение эстрадиола и прогестерона [15].

Исследованиями Sallenave в 1994 г. доказано, что липополисахарид, экстрагированный из Е. coli, стимулирует выработку SLPI как хемоаттрактант [36]. SLPI является белком быстрого реагирования и действует в основном до момента активации более медленного клеточного звена иммунитета [21].

У пациенток с эндометриозом выявлена повышенная экспрессия SPLI как в очагах эндометриоза, так и в перитонеальной жидкости [37]. Исходя из того, что в эктопическом эндометрии и в клетках капсулы эндометриоидных кист яичников наблюдалась повышенная экспрессия MMP [31, 32], а SLPI способен подавлять синтез MMP путем подавления простагландин-эндопероксид-синтазы-2 (prostaglandin-endoperoxide-synthase 2, PGHS2) [30], можно утверждать, что уровень SLPI повышается у некоторых пациенток, снижая скорость прогрессии эндометриоза [37]. Помимо этого, SLPI может повышать устойчивость ткани к инвазии эндометриоидных клеток, действуя как ингибитор протеаз [37]. Таким образом, повышение экспрессии SLPI должно противодействовать разрушению экстрацеллюлярного матрикса и инвазии эндометриоидных клеток, а его снижение, возможно, играет роль в процессе имплантации эндометриоидных гетеротопий.

В теории бактериальной контаминации, помимо SLPI, значительное внимание уделяется такому АМП, как β-дефензин. β-Дефензины открыты в 1960-х годах, присутствуют в лейкоцитах и эпителиоцитах кожи, слизистых оболочек дыхательных путей, мочеполового и желудочно-кишечного тракта и обеспечивают неоксидативную иммунную защиту организма [38].

β-Дефензины представляют собой положительно заряженные белковые молекулы с тремя парами дисульфидных связей (С1-С5, С2-С4 и С3-С6). Связываясь с фосфолипидами отрицательно заряженной мембраны патогенных организмов, они соединяются в димеры и мультимеры, нарушая структуру мембраны с формированием дефектов мембраны, напоминающих поры. Формируется трансмембранный микроканал. Из-за образования трансмембранных каналов происходит деполяризация клеточной мембраны, как следствие – потеря протоплазматических ионов и вход в клетку избыточного количества воды с развитием осмотического шока. При высокой концентрации молекул дефензина они также способны вызывать лизис клеточной мембраны и ее мицеллизацию. Кроме того, молекулы дефензинов могут попадать внутрь бактериальной клетки путем макропиноцитоза и блокировать синтез белков, нуклеиновых кислот, ферментативную активность клетки и репарацию клеточной стенки.

Из трех видов дефензинов (α, β и θ) только α- и β-дефензины присутствуют в организме человека: α-дефензины присутствуют в нейтрофилах, NK-клетках, Т-лимфоцитах, макрофагах и клетках Панета, β-дефензины – в эпителиальных тканях организма [38]. Дефензины обладают широким спектром антимикробной активности; в дыхательных путях, почках, ротовой полости и мочеполовом тракте наблюдается постоянный фоновый синтез дефензинов [39]. In vitro доказана антимикробная активность человеческих β-дефензинов к Staphylococcus aureus, Escherichia coli [40, 41] и Pseudomonas aeruginosa [42]. Таким образом, β-дефензины являются естественным антибактериальным барьером эпителиальных тканей во всем организме.

В эндометрии уровень дефензинов изменяется при появлении антигенных детерминант инфекционных агентов (липополисахарида, липотейхоевой кислоты бактерий) или в ответ на повреждение эпителиального барьера и выделение медиаторов воспаления (γ-интерферон, интерлейкин-1, фактор некроза опухолей-α) [21]. Происходит активация Toll-подобных рецепторов эпителиоцитов с последующей активацией МАРК-каскада (mitogen-activated protein kinase — митоген-активируемая протеинкиназа), а также связывание медиаторов воспаления с рецепторами с активацией фактора транскрипции NF-kB, что и ведет к синтезу дефензинов.

Дефензины способны не только напрямую воздействовать на патогенные микроорганизмы, но и оказывать иммуномодулирующее действие на систему приобретенного иммунитета, стимулируя продукцию IgA и IgG. Они являются хемоаттрактантами для моноцитов, Т-лимфоцитов и дендритных клеток [43, 44]. Стимулируют выброс гистамина тучными клетками, участвуют в опсонизации (адсорбции на поверхности чужеродных микроорганизмов антител и факторов комплемента, усиливающих фагоцитоз и синтез цитокинов лейкоцитами), активации системы комплемента и заживлении ран [45].

Дефензины, так же как и другие АМП (кателицидины и гистатины), возникли как система быстрого реагирования на патоген, срабатывающая до того, как на место инфицирования прибудут клеточные элементы иммунитета. Высокая скорость реагирования позволяет противостоять быстроделящимся бактериям [25].

Секреция β-дефензинов происходит в ответ на активацию Toll- и Nod-подобных рецепторов компонентами микроорганизмов [46]. Кроме того, уровень β-дефензинов изменяется в соответствии с фазами менструального цикла, снижаясь во время менструации [47].

Обнаружено, что в секреторную фазу в эндометрии обнаруживается повышенная экспрессия преимущественно человеческих бета-дефензина-3 и -1 (Human Beta Defensin, HBD) [48, 49], в то время как в пролиферативную фазу цикла максимально выражена экспрессия HBD4 [47], а во время менструации – HBD2 [48].

При этом в эндометрии женщин, принимавших оральные контрацептивы, экспрессия дефензинов изменена – наблюдается снижение HBD1 и -2 в секреторную и менструальную фазы [48], значительное снижение HBD3 и практически полное отсутствие HBD4 [47] Более того, добавление прогестерона подавляет секрецию одного из β-дефензинов (HBD3) даже in vitro [48]. Эти данные свидетельствуют об ухудшении местного иммунитета эндометрия при изменении гормонального баланса, в том числе в менструальную и раннюю пролиферативную фазы цикла.

У пациенток с эндометриозом уровень β-дефензинов в эктопическом и эутопическом эндометрии повышен. Повышение уровня β-дефензинов было ассоциировано с такими заболеваниями, как бактериальный вагиноз, воспалительные заболевания органов малого таза, эндометрит [25]. Было показано, что повышение уровня дефензина, а также других АМП, в том числе и SLPI, является положительным прогностическим фактором развития послеродового эндометрита [49]. Учитывая, что β-дефензины выделяются в ответ на повреждение эпителиального барьера, а также в присутствии компонентов микробной стенки чужеродных микроорганизмов, можно предположить, что повышение уровня дефензинов у пациенток с эндометриозом является следствием нарушения местного иммунитета [50].

Заключение

АМП являются местной линией защиты эпителия от инфекционного агента. Поэтому при появлении патогена в эпителиальной ткани ожидаемо закономерное изменение уровня АМП.

Уровень SLPI и β-дефензинов в эндометрии и других тканях женского полового тракта снижается во время менструации под влиянием циклических гормональных колебаний. Исходя из этого, можно предположить, что данный процесс у предрасположенных женщин повышает вероятность бактериальной контаминации менструальной крови и тканей полового тракта.

У пациенток с глубокими инфильтративными формами эндометриоза риск повторных оперативных вмешательств увеличен; при этом возрастает число послеоперационных осложнений, и эти осложнения имеют преимущественно гнойно-воспалительный характер. Данный факт может рассматриваться как свидетельство в пользу персистенции в очагах эндометриоза бактериальной микрофлоры.

Выявлена корреляция между активацией ММР при инвазии эндометриоидных клеток в ткани и нарушением синтеза АМП в тканях. Повышение уровня ММР вызывает деградацию экстрацеллюлярного матрикса и облегчает инвазию, при этом SLPI подавляет активность ММР. Снижение синтеза SLPI эпителиальными клетками может играть роль в процессе имплантации эндометриоидных гетеротопий.

Повышение уровня SLPI в тканях эндометрия, яичников и в перитонеальной жидкости у пациенток с длительным течением эндометриоза может свидетельствовать о возрастающей устойчивости тканей к инвазии эндометриоидных клеток.

Таким образом, сниженная экспрессия АМП (таких как SLPI и β-дефензины) в эндометрии может способствовать бактериальной контаминациии менструальной жидкости и в дальнейшем – инвазии эндометриоидных гетеротопий.

References

  1. Dunselman G.A., Vermeulen N., Becker C., Calhaz-Jorge C., D’Hooghe T., De Bie B., Heikinheimo O., Horne A.W., Kiesel L., Nap A., Prentice A., Saridogan E., Soriano D., Nelen W.; European Society of Human Reproduction and Embryology. ESHRE guideline: management of women with endometriosis. Hum Reprod. 2014; 29(3): 400–12. doi: 10.1093/humrep/det457.
  2. Schenken R.S., Barbieri R.L., Eckler K. Endometriosis: Pathogenesis, clinical features, and diagnosis. UpToDate. 2019.
  3. Kuohung W., Hornstein M.D., Barbieri R.L., Eckler K. Causes of female infertility. UpToDate .2017.
  4. Sampson J.A. Metastatic or Embolic Endometriosis, due to the Menstrual Dissemination of Endometrial Tissue into the Venous Circulation. Am J Pathol. 1927; 3(2): 93–110.43. PMCID: PMC1931779
  5. Fauser B.C., Diedrich K., Bouchard P., Domínguez F., Matzuk M., Franks S., Hamamah S., Simón C., Devroey P., Ezcurra D., Howles C.M.; Evian Annual Reproduction (EVAR) Workshop Group 2010. Contemporary genetic technologies and female reproduction. Hum Reprod Update. 2011; 17(6): 829–47. doi: 10.1093/humupd/dmr033.
  6. Konrad L., Dietze R., Kudipudi P.K., Horne F., Meinhold-Heerlein I. Endometriosis in MRKH Cases as a Proof for the Coelomic Metaplasia Hypothesis? Reproduction. 2019; pii: REP-19-0106. doi: 10.1530/REP-19-0106
  7. Moore J.G., Binstock M.A., Growdon W.A. The clinical implications of retroperitoneal endometriosis. Am J Obstet Gynecol. 1988;158(6 Pt 1):1291–8. doi: 10.1016/0002-9378(88)90359-6
  8. Hey-Cunningham A.J., Fazleabas A.T., Braundmeier A.G., Markham R., Fraser I.S., Berbic M. Endometrial stromal cells and immune cell populations within lymph nodes in a nonhuman primate model of endometriosis. Reprod Sci. 2011; 18(8):747–54. doi: 10.1177/1933719110397210.
  9. Sasson I.E., Taylor H.S. Stem cells and the pathogenesis of endometriosis. Ann N Y Acad Sci. 2008;1127:106–15. doi: 10.1196/annals.1434.014
  10. Koninckx P.R., Ussia A., Adamyan L., Wattiez A., Gomel V., Martin D.C. Pathogenesis of endometriosis: the genetic/epigenetic theory. Fertil Steril. 2019;111(2):327–340. doi: 10.1016/j.fertnstert.2018.10.013
  11. Xie Q., He H., Wu Y.H., Zou L.J., She X.L., Xia X.M., Wu X.Q. Eutopic endometrium from patients with endometriosis modulates the expression of CD36 and SIRP-α in macrophages. J Obstet Gynaecol Res. 2019; 45(5):1045–7. doi: 10.1111/jog.13938
  12. Oosterlynck D.J., Cornillie F.J., Waer M., Vandeputte M., Koninckx P.R. Women with endometriosis show a defect in natural killer activity resulting in a decreased cytotoxicity to autologous endometrium. Fertil Steril. 1991; 56(1): 45–51.doi: 10.1016/s0015-0282(16)54414-8
  13. Crain D.A., Janssen S.J., Edwards T.M., Heindel J., Ho S.M., Hunt P., Iguchi T., Juul A., McLachlan J.A., Schwartz J., Skakkebaek N., Soto A.M., Swan S., Walker C., Woodruff T.K., Woodruff T.J., Giudice L.C., Guillette L.J. Jr. Female reproductive disorders: the roles of endocrine-disrupting compounds and developmental timing. Fertil Steril. 2008; 90(4): 911–40. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.08.067.
  14. Kodati V.L., Govindan S., Movva S., Ponnala S., Hasan Q. Role of Shigella infection in endometriosis: a novel hypothesis. Med Hypotheses. 2008; 70(2): 239–43. doi: 10.1016/j.mehy.2007.06.012
  15. Khan K.N., Fujishita A., Hiraki K., Kitajima M., Nakashima M., Fushiki S., Kitawaki J. Bacterial contamination hypothesis: a new concept in endometriosis. Reprod Med Biol. 2018;17(2):125–133. doi: 10.1002/rmb2.12083
  16. Thompson R.C., Ohlsson K. Isolation, properties, and complete amino acid sequence of human secretory leukocyte protease inhibitor, a potent inhibitor of leukocyte elastase. Proc Natl Acad Sci U S A. 1986; 83(18): 6692–6.doi: 10.1073/pnas.83.18.6692
  17. King A.E., Critchley H.O., Kelly R.W. Presence of secretory leukocyte protease inhibitor in human endometrium and first trimester decidua suggests an antibacterial protective role. Mol Hum Reprod. 2000; 6(2): 191–6. doi: 10.1093/molehr/6.2.191
  18. Wira C.R., Fahey J.V., Rodriguez-Garcia M., Shen Z., Patel M.V. Regulation of mucosal immunity in the female reproductive tract: the role of sex hormones in immune protection against sexually transmitted pathogens. Am J Reprod Immunol. 2014; 72(2): 236–58. doi: 10.1111/aji.12252
  19. Hiemstra P.S., Maassen R.J., Stolk J., Heinzel-Wieland R., Steffens G.J., Dijkman J.H. Antibacterial activity of antileukoprotease. Infect Immun. 1996; 64(11): 4520–4. PMCID: PMC174407
  20. Wira C.R., Ghosh M., Smith J.M., Shen L., Connor R.I., Sundstrom P., Frechette G.M., Hill E.T., Fahey J.V. Epithelial cell secretions from the human female reproductive tract inhibit sexually transmitted pathogens and Candida albicans but not Lactobacillus. Mucosal Immunol. 2011; 4(3): 335–42. doi: 10.1038/mi.2010.72
  21. King A.E., Fleming D.C., Critchley H.O., Kelly R.W. Regulation of natural antibiotic expression by inflammatory mediators and mimics of infection in human endometrial epithelial cells. Mol Hum Reprod. 2002; 8(4): 341–9.doi: 10.1093/molehr/8.4.341
  22. Ohlsson S., Ljungkrantz I., Ohlsson K., Segelmark M., Wieslander J. Novel distribution of the secretory leucocyte proteinase inhibitor in kidney. Mediators Inflamm. 2001; 10(6): 347–50. doi: 10.1080/09629350120102389
  23. Ganesan S., Comstock A.T., Sajjan U.S. Barrier function of airway tract epithelium. Tissue Barriers. 2013;1(4): e24997. doi: 10.4161/tisb.24997.
  24. Si-Tahar M., Merlin D., Sitaraman S., Madara J.L. Constitutive and regulated secretion of secretory leukocyte proteinase inhibitor by human intestinal epithelial cells. Gastroenterology. 2000;118(6):1061–71.doi: 10.1016/s0016-5085(00)70359-3
  25. Gallo R.L., Nizet, V.. Endogenous production of antimicrobial peptides in innate immunity and human disease. Current Allergy and Asthma Reports, 2003; 3(5):402–409. doi: 10.1007/s11882-003-0074-x
  26. Zhang Y., DeWitt D.L., McNeely T.B., Wahl S.M., Wahl L.M. Secretory leukocyte protease inhibitor suppresses the production of monocyte prostaglandin H synthase-2, prostaglandin E2, and matrix metalloproteinases. J Clin Invest. 1997; 99(5): 894–900. doi: 10.1172/JCI119254
  27. Matsuba S., Yabe-Wada T., Takeda K., Sato T., Suyama M., Takai T., Kikuchi T., Nukiwa T., Nakamura A. Identification of Secretory Leukoprotease Inhibitor As an Endogenous Negative Regulator in Allergic Effector Cells. Front Immunol. 2017; 8: 1538. doi: 10.3389/fimmu.2017.01538
  28. Chegini N., Gold L.I., Williams R.S. Localization of transforming growth factor beta isoforms TGF-beta 1, TGF-beta 2, and TGF-beta 3 in surgically induced endometriosis in the rat. Obstet Gynecol. 1994; 83: 455–461. PMID: 8127541
  29. Young V.J., Brown J.K., Saunders P.T., Duncan W.C., Horne A.W. The peritoneum is both source and target of TGF-β in women with endometriosis. PLoS One. 2014; 9(9): e106773. doi: 10.1371/journal.pone.0106773
  30. Bruner K.L., Eisenberg E., Gorstein F., Osteen K.G. Progesterone and transforming growth factor-beta coordinately regulate suppression of endometrial matrix metalloproteinases in a model of experimental endometriosis. Steroids. 1999; 64(9): 648–53. doi: 10.1016/s0039-128x(99)00048-3
  31. Зайратьянц О.В., Адамян Л.В., Манукян Л.М., Калинин Д.В., Арсланян К.Н. Экспрессия моэзина, p21-активированной киназы 4 (PAK 4), матриксных металлопротеиназ (ММР 2, ММР 9) и CD34в эутопическом и эктопическом эндометрии при аденомиозе. Архив патологии. 2018; 80(6):14–21. [Zayratyants O.V., Adamyan L.V., Manukyan L.M., Kalinin D.V., Arslanyan K.N.The expression of moesin, p21-activated kinase 4 (PAK 4), matrix metalloproteinases (MMP 2, MMP 9), and CD34 in the eutopic and ectopic endometrium in adenomyosis. Archive of Pathology/Arkhiv Patologii. 2018; 80(6): 14. (in Russian)]. doi:10.17116/patol20188006114
  32. Адамян Л.В., Азнаурова Я.Б., Осипова А.А. Сравнительная характеристика эутопического эндометрия при эндометриозе и в отсутствие данного заболевания. Проблемы репродукции. 2018; 24(3): 10–15. [Adamyan L.V., Aznaurova Ya.B., Osipova A.A. Comparative analysis of eutopic endometrium from women with and without endometriosis. Russian Journal of Human Reproduction/Problemy reproduktsii. 2018; 24(3): 10–15. (in Russian)]. doi:10.17116/repro201824310
  33. Bruner K.L., Matrisian L.M., Rodgers W.H., Gorstein F., Osteen K.G. Suppression of matrix metalloproteinases inhibits establishment of ectopic lesions by human endometrium in nude mice. J Clin Invest. 1997; 99(12): 2851–7. doi:10.1172/JCI119478
  34. Cui N., Wang H., Long Y., Su L., Liu D. Dexamethasone Suppressed LPS-Induced Matrix Metalloproteinase and Its Effect on Endothelial Glycocalyx Shedding. Mediators Inflamm. 2015; 2015: 912726. doi: 10.1155/2015/912726
  35. Zaga-Clavellina V., Garcia-Lopez G., Flores-Pliego A., Merchant-Larios H., Vadillo-Ortega F. In vitro secretion and activity profiles of matrix metalloproteinases, MMP-9 and MMP-2, in human term extra-placental membranes after exposure to Escherichia coli. Reprod Biol Endocrinol. 2011; 9:13. doi:10.1186/1477-7827-9-13
  36. Sallenave J.M., Shulmann J., Crossley J., Jordana M., Gauldie J. Regulation of secretory leukocyte proteinase inhibitor (SLPI) and elastase-specific inhibitor (ESI/elafin) in human airway epithelial cells by cytokines and neutrophilic enzymes. Am J Respir Cell Mol Biol. 1994;11(6):733–41. doi: 10.1165/ajrcmb.11.6.7946401
  37. Suzumori N., Sato M., Yoneda T., Ozaki Y., Takagi H., Suzumori K. Expression of secretory leukocyte protease inhibitor in women with endometriosis. Fertil Steril. 1999; 72(5): 857–67. doi: 10.1016/s0015-0282(99)00381-7
  38. Ganz T. Defensins: antimicrobial peptides of innate immunity. Nat Rev Immunol. 2003; 3(9):710–20. doi: 10.1038/nri1180
  39. Gallo R.L., Nizet V. Endogenous production of antimicrobial peptides in innate immunity and human disease. Curr Allergy Asthma Rep. 2003; 3(5): 402–9. DOI: 10.1007/s11882-003-0074-x
  40. Selsted M.E., Tang Y.Q., Morris W.L., McGuire P.A., Novotny M.J., Smith W., Henschen A.H., Cullor J.S. Purification, primary structures, and antibacterial activities of beta-defensins, a new family of antimicrobial peptides from bovine neutrophils. J Biol Chem. 1996; 271(27): 16430. doi: 10.1074/jbc.271.27.16430
  41. Valore E.V., Park C.H., Quayle A.J., Wiles K.R., McCray P.B. Jr., Ganz T. Human beta-defensin-1: an antimicrobial peptide of urogenital tissues. J Clin Invest. 1998;101(8): 1633–42. doi: 10.1172/JCI1861
  42. Harder J., Bartels J., Christophers E., Schroder J.M. Isolation and characterization of human beta -defensin-3, a novel human inducible peptide antibiotic. J Biol Chem. 2001; 276(8): 5707–13. doi: 10.1074/jbc.M008557200
  43. Yang D., Chertov O., Bykovskaia S.N., Chen Q., Buffo M.J., Shogan J., Anderson M., Schröder J.M., Wang J.M., Howard O.M., Oppenheim J.J. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6. Science. 1999; 286(5439): 525–8. doi: 10.1126/science.286.5439.525
  44. García J.R., Jaumann F., Schulz S., Krause A., Rodríguez-Jiménez J., Forssmann U., Adermann K., Klüver E., Vogelmeier C., Becker D., Hedrich R., Forssmann W.G., Bals R. Identification of a novel, multifunctional beta-defensin (human beta-defensin 3) with specific antimicrobial activity. Its interaction with plasma membranes of Xenopus oocytes and the induction of macrophage chemoattraction. Cell Tissue Res. 2001; 306(2): 257–64. https://doi.org/10.1007/s004410100433
  45. Gupta S., Bhatia G., Sharma A., Saxena S. Host defense peptides: An insight into the antimicrobial world. J Oral Maxillofac Pathol. 2018; 22(2): 239–44. doi:10.4103/jomfp.JOMFP_113_16
  46. Hazlett L., Wu M. Defensins in innate immunity. Cell Tissue Res. 2011; 343(1):175–88. doi:10.1007/s00441-010-1022-4
  47. King A.E., Fleming D.C., Critchley H.O., Kelly R.W. Differential expression of the natural antimicrobials, beta-defensins 3 and 4, in human endometrium. J Reprod Immunol. 2003; 59(1):1–16. doi: 10.1016/s0165-0378(02)00083-9
  48. Fleming D.C., King A.E., Williams A.R., Critchley H.O., Kelly R.W. Hormonal contraception can suppress natural antimicrobial gene transcription in human endometrium. Fertil Steril. 2003; 79(4): 856–63. doi: 10.1016/s0015-0282(02)04930-0
  49. Каримова Г.Н. Совершенствование клинико-лабораторных подходов к прогнозированию, диагностике и тактике лечения пациенток с послеродовым эндометритом: дисс. ... кандидата медицинских наук: 14.01.01. Место защиты: Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова, 2017. [Karimova G.N. Improving the clinical and laboratory approaches to predicting, diagnosing and treating patients with postpartum endometritis: a dissertation ... of a candidate of medical sciences: 14.01.01. Place of protection: Scientific Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology. Academician V.I. Kulakova, 2017. (in Russian)]
  50. Чупрынин В.Д., Смольнова Т.Ю., Мельников М.В., Чурсин В.В., Чурсин Д.В. Осложнения хирургического лечения колоректального эндометриоза у пациенток репродуктивного возраста. Материалы конгресса «Новые технологии в диагностике и лечениигинекологических заболеваний». М.: МЕДИ Экспо, 2018; 166–167. [Chuprynin V.D., Smolnova T.Yu., Melnikov M.V., Chursin V.V., Chursin D.V. Complications of surgical treatment of colorectal endometriosis in reproductive age patients. Materials of Congress «New technologies for diagnosis and treatment of gynecologic diseases». M.: MEDI Expo, 2018; 166–167. (in Russian)]. ISBN 978–5–906484–37–6

Received 03.10.2019

Accepted 04.10.2019

About the Authors

Tatiana Yu. Smolnova, MD., senior associate of the Surgery department of the V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynaecology and Perinatology. Tel.: 8 (926) 310-80-90. Email: smoltat@list.ru
Akademika Oparina street, 4, Moscow, Russia, 117997.
Irina E. Dmitrieva, 1st year PhD candidate of the V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynaecology and Perinatology. Tel.: +7 (916)089-08-09.
Email: nika06@inbox.ru
Akademika Oparina street, 4, Moscow, Russia, 117997.
Stanislav V. Pavlovich, PhD/Med, scientific secretary and senior associate of the Pathologic Pregnancy department of the V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynaecology and Perinatology, associate professor of the Obstetrics, Gynaecology and Perinatology academic department of the Postgraduate Professional Medical Studies faculty of the I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University). Tel.: +7 (916)189-37-18. Email: s_pavlovich@oparina4.ru
Akademika Oparina street, 4, Moscow, Russia, 117997.
Vladimir D. Chuprynin, PhD/Med, head of the Surgery department of the V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynaecology and Perinatology
Tel.:+7 (495)438-78-33. Email:v_chuprynin@oparina4.ru.
Akademika Oparina street, 4, Moscow, Russia, 117997.
Tatiana V. Priputnevich, MD, head of the Microbiology, Clinical Pharmacology and Epidemiology department of the V.I. Kulakov National Medical Research Center
for Obstetrics, Gynaecology and Perinatology.Tel.: +7(910)414-56-16. Email:priput1@gmail.com
Akademika Oparina street, 4, Moscow, Russia, 117997.

For citation: Smolnova T.Yu., Dmitrieva I.E., Pavlovich S.V., Chuprynin V.D., Priputnevich T.V. The role of bacterial contamination in the development of endometriosis.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and gynecology. 2020; 1: 47-53. (In Russian).
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.1.47-53

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.