Determination of the blood level of mitochondrial DNA for the prediction of pregnancy complication

Skripnichenko Yu.P., Baranov I.I., Vysokikh M.Yu.

1 Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia; 2 Diagnostic Center Five, Moscow Healthcare Department, Moscow, Russia; 3 A.N. Belozersky Institute of Physicochemical Biology, Moscow State University, Moscow, Russia
Background. Mitochondria play an important role in the regulation of cellular energy metabolism. During pregnancy, there is a higher mitochondrial functional activity, while at the same time with increased mitochondrial energy generation, there is an elevated production of reactive oxygen species and nitrogen, which is attended by a compensatory rise in the activity of antioxidant protection. In contrast, mitochondrial dysfunctions varying in nature lead to uncontrolled oxidative stress (OS) that damages cells and tissues, which is considered to be one of the leading factors for the pathogenesis of pregnancy complications, such as premature birth (PB), preeclampsia (PE), and fetal growth retardation (FGR). Based on the fact that pregnancy is associated with progressive OS, even in case of its physiological course, it has been suggested that changes in the number of mitochondrial DNA (mtDNA) copies in the blood of pregnant women can serve as a biological marker for the degree of OS induction and for the increased risk of this or that complication during pregnancy.
Objective. To determine plasma mtDNA level in women during physiological and complicated pregnancy.
Subjects and methods. The course of pregnancy and the outcomes of labor were analyzed in 142 were analyzed. According to the results of the analysis, all the examinees were divided into 4 groups: 1) women with physiological pregnancy (PP); 2) those with PB; 3) those with pregnancy complicated by PE; 4) those with pregnancy complicated by FGR. The plasma amount of mtDNA was determined by real-time polymerase chain reaction (PCR). The number of PCR products in the reaction was estimated by the Ct value that was defined as the nth cycle of the reaction, at which fluorescence reaches a predetermined threshold value. The amount of a PCR product of the target gene (mtDNA D-loop) was normalized relative to that of a PCR product of the nuclear β2-microglobulin gene. The copy number of mtDNA was expressed in the standard units 2(-ΔС).
Results and discussion. In complicated pregnancy, the level of mtDNA was found to be higher just in the first trimester. The amount of mtDNA was increased by 49% in pregnant women diagnosed with FGR (p < 0.01), by 48% in those with PB (p < 0.01), and by 25% in those who developed PE (p < 0.05) versus those with PP. The relative level of mtDNA was 153±32, 292±69, 205±84, and 299±101 in the PP, PB, PE, and FGR groups, respectively. ROC analysis showed that the sensitivity and specificity of the assay of blood mtDNA levels in pregnant women in the first trimester in the diagnosis of PB was 100% and 91%, respectively; those in that of PE and FGR were 71% and 64% and 83% and 90%, respectively. The blood mtDNA threshold values associated with an increased risk of PB, PE, and FGR were determined to be 2(-ΔС) ≥209, 2(-ΔС) ≥158, and 2(-ΔС) ≥221, respectively.
Conclusion. The determination of plasma mtDNA levels in the first trimester of pregnancy allows identification of a group of women at an increased risk for PB, PE, and FGR.

Keywords

physiological pregnancy
premature birth
preeclampsia
fetal growth retardation
pregnancy complications
mitochondria
mitochondrial DNA

Окислительный стресс (ОС) определяют как дисбаланс между продукцией активных форм кислорода (АФК) и азота (АФА) и их утилизацией системой антиоксидантной защиты. Основным источником продукции АФК и АФА в клетке являются митохондрии. Митохондрии играют важную роль в регуляции энергетического метаболизма клетки, поддержании внутриклеточного кальциевого гомеостаза, запуске процессов апоптоза, а также в продукции АФК и АФА, выполняющих сигнальную функцию [1]. Во время беременности функциональная активность митохондрий повышается, так как к функции обеспечения энергией организма матери, добавляется функция обеспечения трансплацентарного переноса от матери к развивающемуся плоду питательных веществ и продуктов метаболизма в обратную сторону. Одновременно с повышением продукции энергии митохондриями во время беременности, повышается продукция АФК и АФА митохондриями, что сопровождается компенсаторным повышением активности антиоксидантной защиты. Такое состояние сбалансированного изменения окислительно-восстановительного статуса организма характерно для физиологического течения беременности и необходимо для нормальной плацентации и дальнейшего формирования плода [2]. Однако митохонд­риальные дисфункции различной природы приводят к неконтролируемому ОС, повреждающему клетки и ткани, что рассматривается как один из ведущих факторов патогенеза таких осложнений беременности, как преждевременные роды (ПР), преэклампсия (ПЭ) и синдром задержки роста плода (СЗРП) [3–8].

Митохондрии содержат в своем составе несколько копий собственной митохондриальной ДНК (мтДНК). Хотя количество мтДНК положительно коррелирует с количеством и размером митохондрий, оно также может изменяться не только при смене энергетических потребностей клетки, но и при усилении ОС и под действием других патологических факторов [9, 10]. В отличие от ядерной ДНК – мтДНК более подвержена повреждениям, в том числе в результате повышенной продукции АФК, поскольку имеет кольцевую структуру, не содержит интроны и другие некодирующие последовательности (в ядерной ДНК около 90% последовательности не несет информацию) и не защищена гистонам; кроме того система репарации мтДНК значительно менее эффективна. Накапливающиеся нарушение в структуре мтДНК провоцирует первичную митохондриальную дисфункцию, приводящую к снижению уровня АТФ в клетке и еще большему увеличению продукции АФК и АФА, обуславливая, тем самым, нарушение работы целых тканей и органов [11–17]. В некоторых экспериментальных работах и клинических исследованиях было показано, что изменение содержания мтДНК в крови положительно коррелирует с таковым в других тканях и может в определенной степени отражать процессы, происходящие в других тканях организма [18]. На основании того, что беременность связана с возрастающим ОС даже в случае физиологического ее течения, возникло предположение, что изменение количества копий мтДНК в разных тканях и в крови беременной женщины в том числе может служить биологическим маркером степени индукции ОС и повышения риска возникновения того или иного осложнения гестации. Так, Qiu с соавт. (2012) в ретроспективном исследовании показали, что риск развития ПЭ положительно коррелирует с количеством копий мтДНК в крови матери [19].

Поскольку вопрос раннего прогнозирования и, как следствие, своевременной коррекции осложнений гестации по-прежнему является очень актуальным в повседневной акушерской практике, более подробное исследование изменений количества мтДНК в крови беременных женщин представляет несомненный интерес.

Целью исследования стало определение числа копий мтДНК в плазме крови женщин при физиологическом и осложненном течении беременности.

Материал и методы исследования

Проанализировано течение беременности и исходы родов у 142 женщин, наблюдавшихся в женской консультации и обследованных в I триместре. В зависимости от результатов анализа характера течения беременности и исхода родов сформировано 4 группы: 1-я – женщины с физиологическим течением беременности (ФБ; отсутствие осложнений беременности, родоразрешение в сроке от 37 до 40 недель гестации); 2-я – женщины с ПР (родоразрешение в сроке от 22 до 37 недель гестации); 3-я – женщины c беременностью, осложненной ПЭ (согласно критериям ВОЗ развитие ПЭ на сроке гестации >20 недель); 4-я – женщины с беременностью, осложненной СЗРП (отставание размеров плода от гестационного срока, масса плода при рождении ниже десятого процентиля для данного срока гестации).

Общие критерии включения в исследование: наблюдение и обследование в I триместре; одноплодная беременность, наступившая самопроизвольно без использования методов вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ); информированное согласие пациентки на вступление в исследование.

Критерии исключения из исследования: отказ пациентки от участия в исследовании или добровольное желание прекратить его; женщины, обратившиеся в женскую консультацию во II или III триместре и не обследованные в I триместре; многоплодная беременность; беременность, наступившая с использованием методов ВРТ; прерывание беременности в сроке до 22 недель или антенатальная гибель плода; тяжелая психосоматическая патология.

Содержание мтДНК измеряли в плазме крови. Общую ДНК, содержащуюся в образце крови, экстрагировали с использованием набора реактивов ПРОБА-НК (ДНК-технологии, Россия), согласно инструкции фирмы-производителя. Количество выделенной ДНК в каждой пробе измеряли на спектрофотометре DS-11 (Novex, США). Количество мтДНК определяли в плазме крови методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени. Количество ПЦР-продуктов целевого гена – участка D-петли мтДНК (mtDNA D-loop), нормировали на количество ПЦР-продукта ядерного гена – β2-микроглобулина. В реакцию брали 100 нг общей ДНК, каждую пробу анализировали в трех повторностях. Количество ПЦР-продуктов в реакции оценивали по значению Ct, определяемому как n-й цикл реакции, при котором флюоресценция достигает установленного порогового значения. Значения относительной экспрессии, отражающей копийность мтДНК, выражали в условных единицах 2(-ΔС) [12, 20–22].

Статистическая обработка данных выполнена с использованием пакета прикладных программ SPSS Statistics 22.0. При расчетах использовали Т-критерий для независимых выборок, однофакторный дисперсионный анализ, критерий U Манна–Уитни для независимых выборок. Связь между изучаемыми показателями оценивали по результатам корреляционного анализа с использованием вычисления коэффициента корреляции Пирсона. Для оценки чувствительности и специфичности проводили ROC-анализ. Статистически значимыми считались отличия при р<0,05.

Результаты и обсуждение

По результатам анализа характера течения беременности и ее исхода группу с ФБ составили 105 женщин, с ПР – 14 женщин, с ПЭ – 12 женщин, с СЗРП – 11 женщин.

Возраст беременных в группах варьировал от 17 до 43 лет (средний возраст – 28,4±5,0 года). Средний возраст женщин в группе с ФБ составил 28,6±5,2 года, в группе с ПР – 27,4±4,7 года, в группе с ПЭ – 28,5±5,2 года, в группе с СЗРП – 27,5±4,1 года. Средняя масса тела пациенток в группе с ФБ – 63,4±10,5 кг, в группе с ПР – 69,2±2,8 кг, в группе с ПЭ – 81,2±21,4 кг, в группе с СЗРП – 58,1±5,1 кг.

Результаты определения относительного числа копий мтДНК в крови пациенток в I триместре беременности представлены в таблице и на рис. 1.

При сравнении групп с ФБ и ПР отмечено значимое увеличение (на 48%) содержания мтДНК в группе с ПР (р<0,01). Результаты ROC-анализа свидетельствуют о том, что увеличение среднего показателя копийности мтДНК 2(-ΔС)≥209 в крови женщин в I триместре беременности свидетельствует о повышенном риске ПР (рис. 2А). Площадь под кривой (AUC) равна 0,961, чувствительность метода составляет 100%, специфичность – 91%.

При сравнении групп ПР и ПЭ также выявлено значимое повышение (на 30%) уровня мтДНК в группе с ПР (р<0,05, рис. 1). При сравнении групп ПР и СЗРП не выявлено статистически значимых различий между группами по количеству мтДНК (р>0,05, рис. 1).

При сравнении группы ПЭ с ФБ обнаружено значимое увеличение уровня мтДНК на 25% (р<0,05). По результатам ROC-анализа пороговым значением повышения риска развития ПЭ является мтДНК 2(-ΔС)≥158. Чувствительность метода – 71%, специфичность – 64%, площадь под кривой равна 0,702 (рис. 2Б). Полученные нами результаты согласуются с работой Qiu с соавт., где они показали, что у беременных женщин с ПЭ уровень мтДНК в цельной крови был выше (средний показатель копийности составил 271,5) по сравнению с группой контроля (средний показатель копийности – 239,3) [19].

Ту же направленность изменений, что и в группах ПР и ПЭ, наблюдали при сравнении групп СЗРП и ФБ – достоверное повышение (на 49%) количества мтДНК в крови в группе СЗРП (р<0,01). По результатам ROC-анализа пороговое значение количества мтДНК – 2(-ΔС)≥221, чувствительность метода – 83%, специфичность – 90%, AUC=0,832 (рис. 2В).

При сравнении групп СЗРП и ПЭ обнаружено, что при СЗРП количество мтДНК в крови было выше на 31% (р<0,05, рис. 1). Схожие данные, повышение мтДНК у беременных с СЗРП также получены в работах Colleoni с соавт. (2010) и Mandò с соавторами (2014) [20, 23]. Не выявлено статистически значимых различий между группами с ПР и СЗРП (р>0,05).

Заключение

Одновременно с повышением эффективности энергопродукции митохондриями, которое в норме происходит при беременности, повышается продукция свободных радикалов, в частности АФК и АФА. Избыточное образование свободных радикалов на фоне недостаточной работы антиоксидантных систем, наблюдаемое при патологическом течении беременности, оказывает повреждающее воздействие на клетки и ткани, в результате чего в кровь может попадать большее количество мтДНК. В нашей работе при сравнении группы с ФБ и групп с осложненной беременностью мы показали, что повышение уровня мтДНК в крови в I триместре положительно коррелирует с развитием осложнений гестации и позволяет выделить женщин с возможным риском развития ПР, ПЭ и СЗРП. Остается не выясненным вопрос, предшествует ли наблюдаемое повышение уровня мтДНК в крови развитию патологии, носит ли оно компенсаторный характер или является следствием протекающих патологических процессов. Однако такое изменение количества копий мтДНК доступно для определения и представляет интерес в качестве возможного маркера развития осложнений гестации, поскольку вопрос раннего выявления и своевременного проведения комплекса профилактических мероприятий остается актуальным в акушерской практике.

Supplementary Materials

  1. Table. The level of mtDNA in the blood of women in the first trimester of pregnancy
  2. Fig . 1. Mean mtDNA level in the blood of patients
  3. Fig . 2. ROC curve of the average level of mtDNA in the group (A) - with preterm labor, (B) - with preeclampsia and (B) - with Indra ohm fetal growth retardation compared with women with aphysiological pregnancy

References

1. Palikaras K., Daskalaki I., Markaki M., Tavernarakis N. Mitophagy and age-related pathologies: Development of new therapeutics by targeting mitochondrial turnover. Pharmacol. Ther. 2017; 178: 157-74.

2. Wu F., Tian F.J., Lin Y. Oxidative stress in placenta: health and diseases. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 293271.

3. Мартусевич А.К., Карузин К.А. Окислительный стресс и его роль в формировании дизадаптации и патологии. Биорадикалы и антиоксиданты. 2015; 2(2): 5-14. [Martusevich A.K., Karuzin K.A. Oxidative stress and its role in the formation of disadaptation and pathology. Bioradikaly i antioksidanty. 2015; 2(2): 5-14. (in Russian)]

4. D’Souza V., Chavan-Gautam P., Joshi S. Counteracting oxidative stress in pregnancy through modulation of maternal micronutrients and omega-3 fatty acids Curr. Med. Chem. 2013; 20(37): 4777-83.

5. Duhig K., Chappell L.C., Shennan A.H. Oxidative stress in pregnancy and reproduction. Obstet. Med. 2016; 9(3): 113-6.

6. Genc H., Uzun H., Benian A., Simsek G., Gelisgen R., Madazli R., Güralp O. Evaluation of oxidative stress markers in first trimester for assessment of preeclampsia risk. Arch. Gynecol. Obstet. 2011; 284(6):1367-73.

7. Ghaebi M., Nouri M., Ghasemzadeh A., Farzadi L., Jadidi-Niaragh F., Ahmadi M., Yousefi M. Immune regulatory network in successful pregnancy and reproductive failures. Biomed. Pharmacother. 2017; 88: 61-73.

8. Janssen B.G., Gyselaers W., Byun H.M., Roels H.A., Cuypers A., Baccarelli A.A., Nawrot T.S. Placental mitochondrial DNA and CYP1A1 gene methylation as molecular signatures for tobacco smoke exposure in pregnant women and the relevance for birth weight. J. Transl. Med. 2017; 15(1): 5.

9. Clay Montier L.L., Deng J.J., Bai Y. Number matters: control of mammalian mitochondrial DNA copy number. J. Genet. Genomics. 2009; 36(3): 125-31.

10. Lee H.C., Wei Y.H. Mitochondrial role in life and death of the cell. J. Biomed. Sci. 2000; 7(1): 2-15.

11. Кулида Л.В., Майсина А.И., Перетятко Л.П. Роль митохондриальной дисфункции в развитии патологии плаценты. Мать и дитя в Кузбассе. 2014; 2: 28-31. [Kulida L.V., Maysina A.I., Peretyatko L.P. The role of mitochondrial dysfunction in the development of placental pathology. Mother and child in Kuzbass. 2014; 2: 28-31. (in Russian)]

12. Burnham P., Kim M.S., Agbor-Enoh S., Luikart H., Valantine H.A., Khush K.K., De Vlaminck I. Single-stranded DNA library preparation uncovers the origin and diversity of ultrashort cell-free DNA in plasma. Sci. Rep. 2016; 6:е27859.

13. Holland O., Dekker Nitert M., Gallo L.A., Vejzovic M., Fisher J.J., Perkins A.V. Placental mitochondrial function and structure in gestational disorders. Placenta. 2017; 54: 2-9.

14. Rudov A., Balduini W., Carloni S., Perrone S., Buonocore G., Albertini M.C. Involvement of miRNAs in placental alterations mediated by oxidative stress. Oxid. Med. Cell. Longev. 2014; 2014: е103068.

15. Valero T. Mitochondrial biogenesis: pharmacological approaches. Curr. Pharm. Des. 2014; 20(35): 5507-9.

16. Vyssokikh M.Y., Antonenko Y.N., Lyamzaev K.G., Rokitskaya T.I., Skulachev V.P. Methodology for use of mitochondria-targeted cations in the field of oxidative stress-related research. Methods Mol. Biol. 2015; 1265: 149-59.

17. Wu Y.T., Wu S.B., Wei Y.H. Metabolic reprogramming of human cells in response to oxidative stress: implications in the pathophysiology and therapy of mitochondrial diseases. Curr. Pharm. Des. 2014; 20(35):5510-6.

18. Kuznetsova T., Knez J. Peripheral blood mitochondrial DNA and myocardial function. Adv. Exp. Med. Biol. 2017; 982:347-58.

19. Qiu C., Hevner K., Enquobahrie D.A., Williams M.A. A case-control study of maternal blood mitochondrial DNA copy number and preeclampsia risk. Int. J. Mol. Epidemiol. Genet. 2012; 3(3): 237-44.

20. Colleoni F., Lattuada D., Garretto A., Massari M., Mandò C., Somigliana E., Cetin I. Maternal blood mitochondrial DNA content during normal and intrauterine growth restricted (IUGR) pregnancy. Obstet. Gynecol. 2010; 203(4): 365. e1-6.

21. Hernandez S., Moren C., Catalán-García M., Lopez M., Guitart-Mampel M., Coll O. et al. Mitochondrial toxicity and caspase activation in HIV pregnant women. J. Cell. Mol. Med. 2017; 21(1): 26-34.

22. Williams M.A., Sanchez S.E., Ananth C.V., Hevner K., Qiu C., Enquobahrie D.A. Maternal blood mitochondrial DNA copy number and placental abruption risk: results from a preliminary study. Int. J. Mol. Epidemiol. Genet. 2013;4(2): 120-7.

23. Mandò C., De Palma C., Stampalija T., Anelli G.M., Figus M., Novielli C. et al. Placental mitochondrial content and function in intrauterine growth restriction and preeclampsia. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2014;306(4): E404-13.

Received 09.06.2017

Accepted 23.06.2017

About the Authors

Skripnichenko Yuliya Petrovna, Post-graduate student, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology.
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954389492. E-mail: wonder_julia@mail.ru
Baranov Igor Ivanovich, M.D., Ph.D., Professor, the head of organizational and methodical department of the service of the scientific-organizational supply,
Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954389492. E-mail: i_baranov@oparina4.ru
Vyssokikh Mikhail Yurievich, PhD, Head of mitochondrial medicine research group, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology.
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954387633 E-mail: m_vysokikh@oparina4.ru

For citations: Skripnichenko Yu.P., Baranov I.I., Vysokikh M.Yu. Determination of the blood level of mitochondrial DNA for the prediction of pregnancy complication. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2018; (2): 44-9. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2018.2.44-49

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.