ISSN 0300-9092 (Print)
ISSN 2412-5679 (Online)

Missed opportunities for improving the effectiveness of in vitro fertilization programs in patients with diminished ovarian reserve

Krylova E.I., Pogosyan M.T.

Academician V.I. Kulakov National Medical Research Centre for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia

Improving the effectiveness of in vitro fertilization (IVF) programs in patients with diminished ovarian reserve is an essential issue for modern reproductive medicine. One of the options to achieve better treatment results is to determine the most favorable period for the beginning of ovarian stimulation, to modify the protocol of gonadotropin administration and the choice of the day for follicle puncture, taking into account the characteristics of the reproductive system of a woman with diminished ovarian reserve, short follicular phase, and early ovulation. The analysis of literature data shows that the attention of researchers is mainly focused on modification of ovarian stimulation protocols in patients with diminished ovarian reserve and poor response to gonadotropin administration, however, it is necessary to study further the size of the dominant follicle on the day of injecting the ovulation trigger for final oocyte maturation. It is presumed that choosing the most favorable period for ovarian stimulation may be crucial for patients with diminished ovarian reserve. It is useful to define the prognostic criteria for more or less successful IVF cycles, which may include hormonal and ultrasound characteristics of ovarian reserve and their combined effect at the beginning of the follicular phase.
Conclusion: The hidden reserve of increasing the effectiveness of IVF programs in patients with diminished ovarian reserve, poor response to ovarian stimulation and low pregnancy rate may include adaptation of trigger for oocyte maturation to the size of the dominant follicle, which is smaller than usual, as well as a prediction of a more successful IVF cycle on the basis of reliable markers.  

Authors’ contributions: Krylova E.I., Pogosyan M.T. – review of the publications on the subject of the article, analysis of the obtained data, writing the text of the article.
Conflicts of interest: The authors declare no possible conflicts of interest.
Funding: The study was conducted without sponsorship.
For citation: Krylova E.I., Pogosyan M.T. Missed opportunities for improving the effectiveness of in vitro fertilization programs in patients with diminished ovarian reserve.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2024; (6): 13-18 (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2024.106

Keywords

diminished ovarian reserve
ovarian stimulation
IVF
poor ovarian response
advanced reproductive age
infertility

Бесплодием страдают 10–15% пар во всем мире; считается, что нарушения репродуктивной системы женщины занимают 40–60% в структуре причин бесплодия [1, 2]. Не вызывает сомнения тот факт, что методы вспомогательной репродукции являются основными способами достижения беременности при всех формах бесплодия, особенно в случаях снижения овариального резерва, что требует реализации фертильности в короткие сроки [3, 4].

Согласно Болонским критериям, сниженный овариальный резерв определяется низким уровнем антимюллерова гормона (АМГ<0,5–1,1 нг/мл), снижением количества антральных фолликулов (менее 5) и/или повышенным уровнем фолликулостимулирующего гормона (ФСГ>10 мМЕ/мл) у женщин репродуктивного возраста [5]. В программах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО), по разным данным, сниженный овариальный резерв встречается у 10–30% пациенток, что сопряжено с низкой частотой достижения беременности [6, 7].

В этой связи повышение эффективности программ ЭКО у данного контингента больных является актуальной задачей современной вспомогательной репродукции. Одним из вариантов улучшения результатов лечения могут быть определение наиболее благоприятного периода начала стимуляции яичников, модификация протокола введения гонадотропинов и выбора дня пункции фолликулов с учетом особенностей функционирования репродуктивной системы женщины при сниженном овариальном резерве, укороченной фолликулярной фазе, ранней овуляции [8].

Согласно гайдлайну Европейского общества репродукции человека и эмбриологии (ESHRE) по стимуляции яичников, размер преовуляторного фолликула, при котором вводят триггер овуляции, варьирует в довольно широком диапазоне – от 16 до 22 мм [9]. Данная рекомендация составлена на основании результатов систематического обзора и метаанализа Chen Y. et al., однако все включенные исследования были проведены в популяции пациенток с нормальным овариальным резервом [10].

Есть мнение, что рекомендуемый ESHRE размер фолликула на момент введения триггера не может применяться ко всем группам пациентов, особенно в случаях сниженного овариального резерва, когда возможно вводить триггер овуляции при меньших размерах фолликула [11].

Стимуляция яичников у пациенток со сниженным овариальным резервом

Физиологически процесс старения яичников характеризуется укорочением фолликулярной фазы и продолжительности цикла [8]. Анализ динамики роста фолликула в естественном менструальном цикле показал, что уже в раннюю фолликулярную фазу (2–3-й день цикла) у женщин позднего репродуктивного возраста обнаруживается фолликул большего размера, по сравнению с женщинами молодого возраста, имеющими, как правило, на этот день цикла пул равных антральных фолликулов. Далее происходит быстрый рост крупного фолликула, который у женщин старше 35 лет, по-видимому, замедляется к середине цикла, и к моменту овуляции у них наблюдается меньший размер доминантного фолликула (приблизительно 15,2 мм) [12].

В пилотном исследовании Wu Y.G. et al. запускали окончательное созревание ооцитов у женщин (в возрасте от 41 до 43 лет), когда ведущий фолликул достигал размера 16 мм (ранняя группа), и сравнивали результаты пациентов того же возраста с введением триггера при размере доминантного фолликула 19–21 мм (поздняя группа). В ранней группе было меньше атретичных и больше незрелых ооцитов, но все же наблюдалось увеличение количества эмбрионов хорошего качества (все результаты статистически значимы) по сравнению с поздней триггерной группой. Кроме того, выявлена тенденция к улучшению результатов в отношении клинической беременности при раннем введении триггера овуляции [13].

Оптимальный размер фолликула в этой популяции пациентов становится дилеммой: фолликулы, «слишком маленькие», могут дать незрелые ооциты

(GV/MI), а «слишком большие» фолликулы – «перезрелые» ооциты, в обоих случаях неспособные к оплодотворению [14]. Рекомендуемый ESHRE размер фолликула для извлечения ооцитов от 16 до 22 мм основан на исследованиях, в которых результаты сравнивались в соответствии с «ранним» и «поздним» введением триггера [9]. Отсрочка окончательного созревания ооцитов подразумевает дальнейший рост фолликула с повышением преовуляторной концентрации прогестерона [15], что, как известно, отрицательно влияет на частоту наступления беременности в циклах переноса свежих эмбрионов [16].

В циклах у женщин с сохранным овариальным резервом, у которых размеры фолликулов измерялись в день трансвагинальной пункции (триг­герный критерий: как минимум два фолликула ≥18 мм), снижение шансов на зрелость и оплодо­творение ооцитов наблюдалось с уменьшением размеров преовуляторных фолликулов. Тем не менее есть наблюдения, что зрелые ооциты, пригодные для оплодотворения, и эмбрионы хорошего качества могут быть получены из небольших фолликулов [17]. Более того, ожидание увеличения размера фолликула увеличивает риск преждевременной овуляции [14].

Данные, собранные в ходе ретроспективного исследования Lawrenz B. et al., продемонстрировали, что введение триггера для окончательного созревания ооцитов при размере фолликула ≤15 мм у женщин со сниженным овариальным резервом снижает вероятность преждевременной овуляции. Количество извлеченных ооцитов было одинаковым для фолликулов размером более или менее 15 мм. Оптимальные показатели зрелости наблюдались при размерах доминантного фолликула на момент введения триггера от 13 до 17 мм. Аналогичный процент бластуляции наблюдался во всех группах. Беременность закончилась живорождением у двух пациенток из группы введения триггера овуляции при размере доминантного фолликула всего 12 мм. Эти результаты позволяют предположить, что оптимальная триггерная стратегия у женщин со значительно сниженным овариальным резервом заслуживает дальнейшего изучения [11].

Существуют рекомендации для проведения программ ЭКО у таких пациенток в рамках естественного цикла (ЕЦ)/модифицированного ЕЦ/мягкой стимуляции яичников [18]. Данная стратегия лечения является более удобной для пациента и экономически эффективной, по сравнению с традиционной стимуляцией яичников, поскольку сокращает продолжительность стимуляции и общую дозу гонадотропинов [19].

Tian Т. et al. в своем исследовании продемонстрировали, что фолликулы большого размера (≥18 мм) не улучшают лабораторные показатели и исходы беременности после ЭКО в ЕЦ у женщин со сниженным овариальным резервом. Напротив, частота оплодотворения 2PN в группе фолликулов ≥18 мм была значительно ниже, чем в группе 16–17 мм. Эти результаты позволяют предположить, что для данной группы пациенток размер фолликула 16–17 мм может быть более подходящей конечной точкой для мониторинга фолликулов, чем размер ≥18 мм [20]. Имеются также данные о том, что комбинация ЭКО и дозревания ооцитов in vitro (in vitro maturation, IVM) повышает вероятность наступления беременности при ЭКО в ЕЦ на 36% по сравнению с забором ооцитов только из доминантного фолликула [21].

Обоснованием IVM+ЭКО является извлечение незрелых ооцитов из небольших фолликулов до того, как они утратят свою способность к развитию [22]. В этом контексте эмпирически было установлено оптимальное время для сбора ооцитов, когда доминантный фолликул достигает диаметра 12–14 мм, то есть примерно на 10-й день менструального цикла [23].

Имеющиеся протоколы стимуляции яичников при сниженном овариальном резерве

Существуют данные, что в течение одного менструального цикла происходит несколько волн рекрутирования фолликулов [24]. Это соответствует теории волнообразного фолликулогенеза [25, 26]. Используя эту концепцию, были разработаны новые подходы к стимуляции яичников у женщин со сниженным овариальным резервом: стимуляция в лютеиновую фазу, протоколы случайного старта (random start) и двойной стимуляции (DuoStim) [27–29]. Несколько исследований показали, что ооциты, извлеченные в результате стимуляции в лютеиновую фазу, обладают достаточной компетентностью для получения эмбрионов хорошего качества [30–32]. Кроме того, сообщалось о значительно большем количестве ооцитов, собранных в результате стимуляции в лютеиновую фазу, по сравнению с фолликулярной фазой цикла [31, 33, 34].

Протокол DuoStim изначально был разработан для пациенток с плохим прогнозом ответа на стимуляцию для увеличения количества ооцитов в течение короткого периода времени, что теоретически могло улучшить репродуктивные результаты в течение менструального цикла [35]. Действительно, существует положительная корреляция между кумулятивной частотой живорождения и количеством полученных ооцитов [36]. Стратегия двойной стимуляции увеличивает количество не только полученных ооцитов, но и бластоцист хорошего качества [35], что может быть особенно актуально для пациентов с плохим ответом на стимуляцию [31, 37].

Анализ данных литературы показывает, что внимание исследователей в основном сосредоточено на модификации протоколов стимуляции яичников при сниженном овариальном резерве и «бедном» ответе на введение гонадотропинов, но размер доминантного фолликула в день введения триггера овуляции для финального созревания ооцитов требует дальнейшего изучения. Достаточно противоречивы мнения специалистов относительно качества ооцитов, извлеченных при различных размерах преовуляторного фолликула у пациенток со сниженной функцией яичников. Некоторые авторы считают, что получение незрелых ооцитов и дозревание их in vitro может способствовать получению эмбрионов более высокого качества, т.к. незрелые ооциты не подвергаются неблагоприятным эпигенетическим воздействиям вследствие их ускоренного роста и быстрого перехода в гонадотропин- зависимую фазу цикла [22].

Межцикловая вариабельность количества и качества пула антральных фолликулов в гонадотропин-зависимой фазе менструального цикла

Понятие межцикловой вариабельности пула антральных фолликулов в большей степени базируется на клинической практике [38] и не имеет убедительных доказательств в научной литературе. Тем не менее каждый практикующий врач знает, что одна и та же женщина при повторных стимуляциях яичников в программах ЭКО может по-разному отвечать на введение гонадотропинов, несмотря на аналогичные препараты и их дозы. Это зависит, по всей видимости, от количества и качества пула сформированных антральных фолликулов [39]. В то же время при нормальных показателях овариального резерва эти различия не столь очевидны, вследствие достаточного количества получаемых зрелых ооцитов и бластоцист.

Имеются данные, что наличие 5 и более антральных фолликулов при ультразвуковом исследовании в раннюю фолликулярную фазу является более значимым предиктором эффективности проведения программы ЭКО, чем уровень АМГ≥1,2 нг/мл. При недостаточном количестве антральных фолликулов, даже если уровень АМГ соответствует нормальным значениям, число полученных ооцитов и частота наступления беременности снижаются [40, 41]. При этом, в отличие от уровня АМГ, который достаточно стабилен, количество антральных фолликулов, визуализируемых в яичниках в раннюю фолликулярную фазу, варьирует в разных менструальных циклах. Сопряженными гормональными параметрами с числом антральных фолликулов могут быть значения ФСГ и эстрадиола.

Предполагается, что выбор наиболее благоприятного периода для стимуляции яичников может иметь решающее значение для пациенток со сниженным овариальным резервом. Представляется полезным определение прогностических критериев более и менее успешного цикла ЭКО, которые могут включать в себя гормональные, ультразвуковые характеристики овариального резерва и их взаимное сочетание на начало фолликулярной фазы.

Заключение

У женщин старшего репродуктивного возраста со сниженным овариальным резервом ооциты, вероятно, созревают раньше, что представляет собой возрастное изменение, которое клинически отражается в ускорении роста фолликулов и укорочении менструального цикла.

Неиспользованным резервом повышения эффективности программ ЭКО у пациенток со сниженными параметрами овариального резерва, «бедным» ответом на стимуляцию яичников и низкой частотой наступления беременности могут быть адаптация введения триггера созревания ооцитов при «меньшем, чем обычно», размере доминантного фолликула, а также прогнозирование на основании достоверных маркеров более успешного цикла ЭКО.

References

  1. Mascarenhas M.N., Flaxman S.R., Boerma T., Vanderpoel S., Stevens G.A. National, regional, and global trends in infertility prevalence since 1990: a systematic analysis of 277 health surveys. PLoS Med. 2012; 9(12): e1001356. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pmed.1001356.
  2. Carson S.A., Kallen A.N. Diagnosis and management of infertility: a review. JAMA. 2021; 326(1): 65-76. https://dx.doi.org/10.1001/jama.2021.4788.
  3. Grisendi V., Mastellari E., La Marca A. Ovarian reserve markers to identify poor responders in the context of Poseidon classification. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2019; 8(10): 281. https://dx.doi.org/10. 3389/fendo.2019.00281.
  4. Hornstein M.D. State of the ART: Assisted reproductive technologies in the United States. Reprod. Sci. 2016; 23(12): 1630-3. https://dx.doi.org/10.1177/1933719116667227.
  5. Ferraretti A.P., La Marca A., Fauser B.C., Tarlatzis B., Nargund G., Gianaroli L. ESHRE consensus on the definition of ‘poor response’ to ovarian stimulation for in vitro fertilization: the Bologna criteria. Hum. Reprod. 2011; 26(7): 1616-24. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/der092.
  6. Laqqan M.M., Yassin M.M. Investigation of the predictive factors of diminished ovarian reserve in women aged less than 40 years and undergoing ICSI cycle. Reprod. Sci. 2023; 30(3): 873-82. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-022-01055-1.
  7. Devine K., Mumford S.L., Wu M., DeCherney A.H., Hill M.J., Propst A. Diminished ovarian reserve in the United States assisted reproductive technology population: diagnostic trends among 181,536 cycles from the Society for Assisted Reproductive Technology Clinic Outcomes Reporting System. Fertil. Steril. 2015; 104(3): 612-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.05.017.
  8. Harris B.S., Steiner A.Z., Jukic A.M. Ovarian reserve biomarkers and menstrual cycle length in a prospective cohort study. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2021; 106(9): e3748-59. https://dx.doi.org/10.1210/clinem/dgab204.
  9. Bosch E., Broer S., Griesinger G., Grynberg M.,Humaidan P., Kolibianakis E. et al.; The ESHRE Guideline Group on Ovarian Stimulation. ESHRE guideline: ovarian stimulation for IVF/ICSI. Hum. Reprod. Open. 2020; 2020(2): hoaa009. https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoaa009.
  10. Chen Y., Zhang Y., Hu M., Liu X., Qi H. Timing of human chorionic gonadotropin (hCG) hormone administration in IVF/ICSI protocols using GnRH agonist or antagonists: a systematic review and meta-analysis. Gynecol. Endocrinol. 2014; 30(6): 431-7. https://dx.doi.org/10.3109/09513590.2014.895984.
  11. Lawrenz B., Kalafat E., Ata B., Melado L., Del Gallego R., Elkhatib I. et al. Do women with severely diminished ovarian reserve undergoing modified natural cycles benefit from earlier trigger at smaller follicle size? Ultrasound Obstet. Gynecol. 2024 Feb 13. https://dx.doi.org/10.1002/uog.27611.
  12. Santoro N., Isaac B., Neal-Perry G., Adel T., Weingart L., Nussbaum A. et al. Impaired folliculogenesis and ovulation in older reproductive aged women. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2003; 88(11): 5502-9. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2002-021839.
  13. Wu Y.G., Barad D.H., Kushnir V.A., Lazzaroni E., Wang Q., Albertini D.F. et al. Aging-related premature luteinization of granulosa cells is avoided by early oocyte retrieval. J. Endocrinol. 2015; 226(3): 167-80. https://dx.doi.org/10.1530/JOE-15-0246.
  14. Ectors F.J., Vanderzwalmen P., Van Hoeck J., Nijs M., Verhaegen G., Delvigne A. et al. Relationship of human follicular diameter with oocyte fertilization and development after in-vitro fertilization or intracytoplasmic sperm injection. Hum. Reprod. 1997; 12(9): 2002-5. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/12.9.2002.
  15. Schneyer A.L., Fujiwara T., Fox J., Welt C.K., Adams J., Messerlian G.M. et al. Dynamic changes in the intrafollicular inhibin/activin/follistatin axis during human follicular development: relationship to circulating hormone concentrations. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000; 85(9): 3319-30. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.85.9.6767.
  16. Venetis C.A., Kolibianakis E.M., Bosdou J.K., Tarlatzis B.C. Progesterone elevation and probability of pregnancy after IVF: a systematic review and meta-analysis of over 60 000 cycles. Hum. Reprod. Update. 2013; 19(5): 433-57. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmt014.
  17. Rosen M.P., Shen S., Dobson A.T., Rinaudo P.F., McCulloch C.E., Cedars M.I. A quantitative assessment of follicle size on oocyte developmental competence. Fertil. Steril. 2008; 90(3): 684-90. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.02.011.
  18. Di Guardo F., Blockeel C., De Vos M., Palumbo M., Christoforidis N., Tournaye H. et al. Poor ovarian response and the possible role of natural and modified natural cycles. Clin. Med. Insights Reprod. Health. 2022; 16: 263349412110620. https://dx.doi.org/10.1177/26334941211062026.
  19. Datta A.K., Maheshwari A., Felix N., Campbell S., Nargund G. Mild versus conventional ovarian stimulation for IVF in poor responders: a systematic review and meta-analysis. Reprod. Biomed. Online. 2020; 41: 225-38. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2020.03.005.
  20. Tian T., Li Y., Lv J., Chen L., Wang Y., Yang R. et al. The potential influence of follicle diameter on natural cycle in vitro fertilization among women with diminished ovarian reserve: a retrospective cohort study. J. Ovarian Res. 2023; 16(1): 195. https:/dx./doi.org/10.1186/s13048-023-01281-4.
  21. Tang-Pedersen M., Westergaard L.G., Erb K., Mikkelsen A.L. Combination of IVF and IVM in naturally cycling women. Reprod. Biomed. Online. 2012; 24: 47-53. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2011.10.005.
  22. Lim K.S., Chae SJ., Choo C.W., Ku Y.H., Lee H.J., Hur C.Y. et al. In vitro maturation: clinical applications. Clin. Exp. Reprod. Med. 2013; 40(4): 143-7. https://dx.doi.org/10.5653/cerm.2013.40.4.143.
  23. Son W.Y., Chung J.T., Herrero B., Dean N., Demirtas E., Holzer H. et al. Selection of the optimal day for oocyte retrieval based on the diameter of the dominant follicle in hCG-primed in vitro maturation cycles. Hum. Reprod. 2008; 23: 2680-25. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/den332.
  24. Соколова Ю.В., Мартиросян Я.О., Назаренко Т.А., Бирюкова А.М., Хубаева Д.Г., Краснова В.Г. Молекулярно-биологические основы внутрияичникового фолликулогенеза, созревания и рекрутинга фолликулов. Акушерство и гинекология. 2022; 1: 22-30. [Sokolova Yu.V., Martirosyan Ya.O., Nazarenko T.A., Biryukova A.M., Khubaeva D.G., Krasnova V.G. Molecular biological bases for intraovarian folliculogenesis, follicular maturation and recruitment. Obstetrics and Gynecology. 2022; (1): 22-30. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.1.22-30.
  25. Baerwald A.R., Adams G.P., Pierson R.A. Ovarian antral folliculogenesis during the human menstrual cycle: a review. Hum. Reprod. Update. 2012; 18(1): 73-91. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmr039.
  26. Vanden Brink H., Chizen D., Hale G., Baerwald A. Age-related changes in major ovarian follicular wave dynamics during the human menstrual cycle. Menopause. 2013; 20(12): 1243-54. https://dx.doi.org/10.1097/GME.0b013e31828cfb62.
  27. von Wolff M., Thaler C.J., Frambach T., Zeeb C., Lawrenz B., Popovici R.M. et al. Ovarian stimulation to cryopreserve fertilized oocytes in cancer patients can be started in the luteal phase. Fertil. Steril. 2009; 92(4): 1360-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.08.011.
  28. Vaiarelli A., Venturella R., Vizziello D., Bulletti F., Ubaldi F.M. Dual ovarian stimulation and random start in assisted reproductive technologies: from ovarian biology to clinical application. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2017; 29(3): 153-9. https://dx.doi.org/10.1097/GCO.0000000000000365.
  29. Назаренко Т.А., Мартиросян Я.О., Бирюкова А.М., Джанашвили Л.Г., Иванец Т.Ю., Сухова Ю.В. Опыт стимуляции яичников в режиме «random-start» протоколов для сохранения репродуктивного материала онкологических больных. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 52-8. [Nazarenko T.A., Martirosyan Ya.O., Biryukova A.M., Dzhanashvili L.G., Ivanets T.Yu., Sukhova Yu.V. Experience in random-start ovarian stimulation for preserving reproductive material of cancer patients. Obstetrics and Gynecology. 2020; (4): 52-8. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.4.52-58.
  30. Bentov Y., Esfandiari N., Gokturk A., Burstein E., Fainaru O., Casper R.F. An ongoing pregnancy from two waves of follicles developing during a long follicular phase of the same cycle. Fertil. Steril. 2010; 94(1): 350.e8-11. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.12.033.
  31. Kuang Y., Chen Q., Hong Q., Lyu Q., Ai A., Fu Y. et al. Double stimulations during the follicular and luteal phases of poor responders in IVF/ICSI programmes (Shanghai protocol). Reprod. Biomed. Online. 2014, 29(6): 684-91. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2014.08.009.
  32. Kuang Y., Hong Q., Chen Q., Lyu Q., Ai A., Fu Y. et al. Luteal-phase ovarian stimulation is feasible for producing competent oocytes in women undergoing in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection treatment, with optimal pregnancy outcomes in frozen-thawed embryo transfer cycles. Fertil. Steril. 2014; 101(1): 105-11. https:/dx./doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.09.007.
  33. Vaiarelli A., Cimadomo D., Trabucco E., Vallefuoco R., Buffo L., Dusi L. et al. Double stimulation in the same ovarian cycle (DuoStim) to maximize the number of oocytes retrieved from poor prognosis patients: a multicenter experience and SWOT analysis. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2018; 9: 317. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2018.00317.
  34. Liu C., Jiang H., Zhang W., Yin H. Double ovarian stimulation during the follicular and luteal phase in women 38 years: a retrospective case-control study. Reprod. Biomed. Online. 2017; 35(6): 678-84. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2017.08.019.
  35. Ubaldi F.M., Capalbo A., Vaiarelli A., Cimadomo D., Colamaria S., Alviggi C. et al. Follicular versus luteal phase ovarian stimulation during the same menstrual cycle (DuoStim) ina reduced ovarian reserve population results in a similar euploid blastocyst formation rate: new insight in ovarian reserve exploitation. Fertil. Steril. 2016; 105(6): 1488-95.e1. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2016.03.002.
  36. Polyzos N.P., Drakopoulos P., Parra J., Pellicer A., Santos-Ribeiro S., Tournaye H. et al. Cumulative live birth rates according to the number of oocytes retrieved after the first ovarian stimulation for in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection: a multicenter multinational analysis including 15,000 women. Fertil. Steril. 2018; 110(4): 661-70.e1. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.04.039.
  37. Tsampras N., Gould D., Fitzgerald C.T. Double ovarian stimulation (DuoStim) protocol for fertility preservation in female oncology patients. Hum. Fertil. (Camb). 2017; 20(4): 248-53. https://ddx.oi.org/10.1080/14647273.2017.1287433.
  38. Subirá J., Alberola-Rubio J., Núñez MJ., Escrivá A.M., Pellicer A., Montañana V. et al. Inter-cycle and inter-observer variability of the antral follicle count in routine clinical practice. Gynecol. Endocrinol. 2017; 33(7): 515-8. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2017.1291614.
  39. Mutlu M.F., Erdem M., Erdem A., Yildiz S., Mutlu I., Arisoy O. et al. Antral follicle count determines poor ovarian response better than anti-Müllerian hormone but age is the only predictor for live birth in in vitro fertilization cycles. J. Assist. Reprod. Genet. 2013; 30: 657-65. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-013-9975-3.
  40. Zhang Y., Xu Y., Xue Q., Shang J., Yang X., Shan X. et al. Discordance between antral follicle counts and anti-Müllerian hormone levels in women undergoing in vitro fertilization. Reprod. Biol. Endocrinol. 2019; 17(1): 51. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-019-0497-4.
  41. Hochberg A., Dahan M.H., Yarali H., Vuong L.N., Esteves S.C. Significance of serum AMH and antral follicle count discrepancy for the prediction of ovarian stimulation response in Poseidon criteria patients. J. Assist. Reprod. Genet. 2024; 41(3): 717-26. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-024-03050-8.

Received 24.04.2024

Accepted 04.06.2024

About the Authors

Ekaterina I. Krylova, Resident, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology, Perinatology, Ministry of Health of Russia,
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4, kr.katrin00@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-0220-0474
Mariam T. Pogosyan, MD, PhD student, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4, mariam-pogosyan@yandex.ru, https://orcid.org/0009-0002-0772-2367

Similar Articles