The morphological features and expression of TLR4 and CD117 in chronic cystitis and resistant overactive bladder in women

Demura T.A., Teterina T.A., Apolikhina I.A., Kogan E.A., Efremov G.D., Glybochko P.V., Sukhikh G.T.

Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow; I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow; Research Institute of Urology, Ministry of Health of Russia, Moscow
Objective. To compare the clinical, morphological, and immunohistochemical characteristics of resistant overactive bladder (OAB) and chronic cystitis in reproductive-aged and perimenopausal women.
Subject and methods. Sixteen bladder wall biopsy specimens obtained from women with clinically verified chronic cystitis during standard cystoscopy with bladder wall biopsy and 14 from those with OAB. The patients’ mean age was 40.6±10.4 years. In the group of patients with OAB and chronic cystitis, the mean age was 38.0±5.4 and 41.8±2.3 years, respectively. The biopsy specimens were morphologically examined and immunohistochemical markers (CD177 and TLR4) were studied.
Results. The morphological examination of the biopsy specimens in the group of clinically verified cystitis, they generally displayed the surface layers of the bladder mucosa covered with the laminated squamous epithelium (LSE) with the signs of atrophy; the underlying stroma showed diffuse lymphoplasmacytic infiltration, sclerosis, hyaline degeneration of vessel walls, and hyperemia of muscle fibers. In the OAB group, there was an excellent histological pattern: the bladder mucosa was covered by the multirowed epithelium (MRE) or LSE hyperkeratosis; the submucosal layer exhibited edema, sclerosis, thin-walled vessels, focal inflammatory infiltration, as well as there was focal hypertrophy of muscle fibers. The investigation revealed significant differences in the magnitude of some morphological parameters: atrophy of the epithelium and that of the muscular layer were more pronounced in patients with chronic cystitis (p < 0.001), stromal edema (p < 0.06), and muscle layer hypertrophy (p < 0.001) in the OAB group.
In the evaluation of the immunohistochemical expression of TLR4, the latter was as brown staining of epithelial cytoplasm, inflammatory cell infiltrate and in the cell cytoplasm of the vascular endothelium. Evaluation of CD117 expression in the stromal inflammatory infiltrate showed the high cellular accumulation of the marker in both groups; however, there was a tendency towards the higher expression of the marker.
Conclusion. The findings strengthen the hypothesis that OAB is inflammatory in genesis. Furthermore, analysis of the immunohistochemical expression of CD177 has shown that the stromal inflammatory infiltrate cells have high concentrations of the marker in the OAB and chronic cystitis group. This confirms the theory that due to pacemaker function, it is precisely these cells that provide spontaneous myogenic activity of their surrounding smooth muscle cells and give rise to their hypertrophy.

Keywords

TLR4

В современном здравоохранении проблема нарушения акта мочеиспускания – одна из актуальных и социально значимых. Известно, что среди женщин в возрасте 20–40 лет в 25–30% случаев встречаются неосложненные инфекции мочевыводящих путей, причем в 85% острых и 60% хронических рецидивирующих циститов выявляется E. сoli [1]. Среди женщин, впервые перенесших острый цистит, у 24% рецидив происходит через 6 месяцев, а более чем у 50% – в течение 1 года [2]. В крупных популяционных исследованиях выявлена распространенность гиперактивного мочевого пузыря (ГМП), которая составила 15–20% среди женщин и около 6% среди взрослых девочек (15–20 лет) [3]; распространенность ГМП среди женской популяции США составила в 2003 г. более 20%.

Слизистая мочевого пузыря часто колонизируется уропатогенными микроорганизмами, такими как E. сoli, вирулентность которой обусловлена способностью связываться посредством фимбрий с гликосфинголипидами/гликопротеинами, находящимися на поверхности уроэпителиальных клеток слизистой. В исследованиях последних лет показано, что фимбрии играют двоякую роль во взаимодействии макроорганизма и E. coli: с одной стороны, они способствуют прикреплению и дальнейшей репликации бактерий, а с другой – образующиеся при адгезии с оболочкой уроэпителиальной клетки-комплексы запускают иммунный ответ посредством toll-like receptor 4 (TLR4) [4].

Рathogen-associated molecular patterns (PAMPs), продуцирующиеся при внедрении E. coli, являющейся причиной неосложненных инфекций мочевыводящих путей в 70–90% случаев, распознаются несколькими видами TLR, включая TLR 1, 2, 4, 5, 6 и 11 [5–7]. Известно, что в организме человека некоторые штаммы E. сoli могут размножаться, не вызывая воспалительную реакцию, вследствие чего развивается бессимптомная бактериурия (ББУ) [8]. Таким образом, низкий уровень экспрессии TLR4 на уроэпителиальных клетках ассоциирован с развитием пиелонефрита, рецидивирующего цистита и ББУ [9].

В некоторых исследованиях показано, что помимо уроэпителия, в распознавании липополисахаридов бактериальных клеток при ББУ активно участвуют также TLR4 клеток миелоидного происхождения, в частности, нейтрофилы. B. Ragnarsdottir и соавт. [10] и A. Smithson и соавт. [11] показали, что сниженный уровень экспрессии TLR4 и CXCR1 нейтрофилов коррелирует с развитием пиелонефрита, рецидивирующего цистита и ББУ у детей и женщин в пременопаузе.

Этиология и патогенез ГМП остаются не изученными. В последнее время накапливается все больше данных об инфекционном генезе рефрактерного ГМП, характеризующегося сохранением его симптомов после проведения пациенткой лечения более чем двумя М-холиноблокаторами с тренировкой мочевого пузыря в течение более чем 1 года [12]. Впервые в исследовании R.K. Khasriya и соавт. [13], а затем другими исследователями было выявлено, что внутриклеточная бактериальная колонизация может быть причиной ГМП. Рядом авторов при изучении биоптатов мочевого пузыря, взятых у пациентов с ГМП, были также выявлены признаки воспаления. Следовательно, у части больных с симптомами резистентного ГМП воспалительные изменения детрузора при отсутствии инфекции мочевого тракта могут являться патогенетическим звеном развития данного заболевания.

В последнее время в литературе появились данные о существовании в мочевых путях популяции клеток, способных к спонтанным колебаниям мембранного потенциала, а именно особых интерстициальных клеток (ИК), имеющих нейрогенное происхождение и мигрирующих в процессе онтогенеза в висцеральные органы [14]. ИК несут нейрональный маркер – Kit-рецептор тирозинкиназы (CD117+) и маркер клеток мезенхимального происхождения виментин [14–16], что используется для идентификации этих клеток в тканях разных органов. Исследования последних лет показали, что ИК помимо желудочно-кишечного тракта обнаруживаются в мускулатуре многих органов – миокарде, фаллопиевых трубах, желчном пузыре, поджелудочной железе [14, 17], а также в органах мочеполовой системы – в почечной лоханке и мочеточнике, мочевом пузыре, уретре, предстательной железе, кавернозных телах полового члена. В связи с этим была выдвинута гипотеза, предполагающая, что именно эти клетки за счет пейсмейкерной функции обеспечивают спонтанную миогенную активность окружающих их гладкомышечных клеток [14, 18, 19]. Амплитуда их ритмических сокращений ниже, чем амплитуда сокращений, инициирующих мочеиспускание, и составляет 5–12% [14]. До недавнего времени роль спонтанной ритмической активности практически не учитывалась, поскольку ее физиологическая функция была неясной, и новые данные позволили предположить, что спонтанная ритмическая активность мочевого пузыря является механизмом регуляции его тонуса и может участвовать в передаче информации в центральную нервную систему о степени наполненности мочевого пузыря [14, 20].

Результатом наличия многих пейсмейкерных зон в детрузоре и не координированности их активности являются низкоамплитудные сокращения отдельных групп гладкомышечных клеток, формирующие тонус детрузора, что проявляется в симптомах ГМП.

Целью нашей работы стало выявление морфологических особенностей и изучение экспрессии TLR4 и CD117 при резистентном ГМП и хроническом цистите у женщин репродуктивного возраста и в перименопаузе.

Материал и методы исследования

Исследование выполнено на биоптатах задней стенки мочевого пузыря и перешеечной области, взятых у женщин в ходе цистоуретроскопии с биопсией стенки мочевого пузыря в ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России совместно с ФГБУ НИИ урологии Минздрава России. Исследовано 30 биоптатов, из них 16 получены от пациенток с диагнозом хронический рецидивирующий цистит и 14 – от пациенток с резистентным ГМП (табл. 1).

Критериями отбора для исследования были: возраст пациенток от 18 до 55 лет; наличие симптомов ГМП: поллакиурия (мочеиспускание более 8 раз в день), ноктурия (более 1 мочеиспускания за ночь) в течение более 3 месяцев; наличие у пациентки как минимум 3 ургентных позывов к мочеиспусканию с недержанием мочи или без него (степень 3 или 4) в течение 3 дней по данным дневника мочеиспусканий; объем остаточной мочи не более 30 мл; диагноз ГМП, подтвержденный комбинированным уродинамическим исследованием; наличие в анамнезе неэффективного лечения М-холиноблокаторами (не менее 2 препаратов в течение не менее 3 месяцев); смешанный тип недержания мочи с преобладанием ургентного компонента; пациентки с хроническим рецидивирующим циститом (не менее 2 эпизодов обострения в 6 месяцев или 3 эпизода в год).

Средний возраст пациенток составил 40,6±10,4 года. В группе больных ГМП средний возраст составил 38,0±5,4 года, с хроническим циститом – 41,8±2,3 года. Отсутствие достоверных различий по возрасту (p=0,45) позволило провести корректное сравнение указанных морфологических характеристик.

1. Морфологические методы исследования

Материал фиксировали в 10% нейтральном формалине с фосфатным буфером, обрабатывали в аппарате гистологической проводки тканей фирмы «Pool Scientific Instruments» (Швейцария) и заливали в парафин. Суммарное время фиксации, проводки и заливки материала, как правило, не превышало 48 ч. Затем готовились серийные парафиновые срезы (не менее 12 серийных срезов) толщиной 4–5 микрон. Срезы фиксировали на предметные стекла, покрытые адгезивом (полилизин) и инкубировали в термостате при 37 оС в течение 12 ч. Далее срезы депарафинировали и обезвоживали в батарее из 3 ксилолов, 2 абсолютных спиртов, 2 95% спиртов, 80 и 70% спирта и дистиллированной воды. По стеклу от каждого случая окрашивали гематоксилин-эозином и толуидиновым синим (для выявления тучных клеток).

2. Иммуногистохимические методы исследования

Проводились на депарафинированных срезах толщиной 4–5 мкм, расположенных на стеклах, покрытых APES-слоем (A. Janice, 1983). Неокрашенные срезы от каждого случая обрабатывались с помощью стандартного метода иммуногистохимии. В качестве первичных антител использовались моноклональные и поликлональные антитела к CD117, с-kit (YR145) (Cell Marque, 1:100), toll-like receptor 4 (TLR4) (Abbiotec, 1:100).

Оценка интенсивности реакции для TLR4 проводилась по 6-балльной системе: 2 балла – до 20% окрашенных клеток; 4 балла – от 20 до 40% окрашенных клеток; 6 баллов – более 40% окрашенных клеток, а для CD117 – по проценту окрашенных клеток в 5 полях зрения на увеличении 40, что необходимо для более точной оценки экспрессии маркера.

Статистический анализ данных проводили с помощью программ Statistica 10.0 (StatSoft) и Sigma Stat 3.5 (Systat Sowtware Inc.). Вычисляли среднее и стандартную ошибку среднего, а также медианы и межквартильный размах. Межгрупповые сравнения проводили с помощью U-теста Манна–Уитни и критерия Пирсона. Проводили также корреляционный анализ по методу Спирмена. Различия считали статистически значимыми при достигнутом уровне значимости p≤0,05.

Результаты исследования

В ходе морфологического исследования полученных биоптатов были получены характерные патоморфологические особенности представленных нозологий: в группе с клинически подтвержденным циститом биоптаты, как правило, представлены поверхностными слоями слизистой мочевого пузыря, с плоскоклеточной метаплазией в виде многослойного плоского эпителия (МПЭ), с признаками атрофии, в подлежащей строме – диффузная лимфоплазмоцитарная инфильтрация, склероз, гиалиноз стенок сосудов, полнокровие и атрофия мышечных волокон (рис. 1 в, г см. на вклейке). В группе пациенток с ГМП наблюдалась отличная гистологическая картина – биоптаты чаще были представлены поверхностными слоями слизистой мочевого пузыря, покрытой с многорядным эпителием (МРЭ) или метаплазированным МПЭ с гиперкератозом, в подслизистом слое – отек, склероз, тонкостенные сосуды, очаговая воспалительная инфильтрация, а также отмечалась очаговая гипертрофия мышечных волокон (рис. 1 а, б).

Исследование выявило значимые различия в выраженности некоторых морфологических параметров. Так, атрофия эпителия и атрофия мышечного слоя были более выражены у больных хроническим циститом, отек стромы и гипертрофия мышечного слоя – в группе с ГМП (p<0,05).

Межгрупповые сравнения, проведенные с помощью критерия χ2, также выявили статистически значимые различия в частоте обнаружения атрофии эпителия и мышечного слоя при хроническом цистите, отека стромы и гипертрофии мышечного слоя при ГМП (p<0,05).

При оценке иммуногистохимической экспрессии TLR4 маркер выявлялся в виде коричневого окрашивания цитоплазмы эпителия, клеток воспалительного инфильтрата и в цитоплазме клеток эндотелия сосудов (рис. 2 а, б см. на вклейке). В связи с тем, что в группе с хроническим циститом при морфологическом исследовании биоптатов чаще выявлялась плоскоклеточная метаплазия с высокой экспрессией TLR4, а при ГМП – многорядный эпителий, также с высокой экспрессией рецептора, следует оценивать общую экспрессию маркера в эпителии в группах, которая значимо не различалась.

Клетки воспалительного инфильтрата также экспрессировали TLR4 (лимфоциты, макрофаги, лейкоциты и др.) в большом количестве в обеих группах, однако статистически значимых различий по группам не выявлено (рис. 3). Однако наличие экспрессии TLR4 в клетках эндотелия сосудов отмечено в основном в группе с хроническим циститом, что, возможно, отражает интенсивность воспалительной реакции в группе данных пациентов.

При иммуногистохимической оценке экспрессии CD117 было обнаружено коричневое окрашивание цитоплазмы клеток стромы и воспалительного инфильтрата (рис. 2 в, г см. на вклейке). Следует отдельно отметить, что толуидиновым синим CD117 положительные клетки не окрашивались, что позволило нам дифференцировать пейсмейкерные и тучные клетки.

При оценке экспрессии CD117 в воспалительном инфильтрате в строме отмечено высокое накопление маркера в клетках в обеих группах, однако при ГМП отмечается тенденция к более высокой экспрессии маркера, особенно в клетках стромы, что, вероятно, является следствием наличия большего количества клеток с пейсмейкерной активностью в стенке мочевого пузыря при данной патологии (рис. 4). Таким образом, нами выявлены морфологические особенности ГМП в виде гипертрофии гладкомышечных клеток и, напротив, атрофия при хроническом цистите и иммуногистохимические особенности – более высокая экспрессии CD117 при ГМП.

Корреляционный анализ объединенных данных обеих групп позволил выявить общие для них характеристики протекания патологических процессов. Интересно, что интенсивность экспрессии TLR4 в эндотелии обнаруживает положительную корреляцию средней силы с атрофией мышц (r=0,812) и отрицательную – с гипертрофией мышц (r=– 0,812).

Интенсивность экспрессии TLR4 в многорядном эпителии в группе пациенток с хроническим циститом не обнаруживала статистически значимой корреляции с атрофией мышц, а с гипертрофией мышц корреляция была положительной (r=0,828).

Обсуждение

В проведенном нами исследовании продемонстрировано, что, несмотря на похожую симптоматику при хроническом цистите и ГМП: учащенное мочеиспускание (более 8 раз в день и более 2 раз за ночь), ургентные позывы к мочеиспусканию, малые или средние объемы мочи при мочеиспускании, дискомфорт во время акта мочеиспускания и др., гистологическая картина отличается. Так, многорядный эпителий наиболее часто встречался в биоптатах стенки мочевого пузыря, полученных от пациенток с подтвержденным ГМП, в то время как плоскоклеточная метаплазия более характерна для хронического цистита; атрофия эпителия и атрофия мышечного слоя были более выражены у больных хроническим циститом, отек стромы и гипертрофия мышечного слоя – в группе ГМП. Тем не менее, в обеих группах отмечались характерные признаки воспалительного процесса: выраженная лимфоплазмоцитарная инфильтрация стромы, гиалиноз и полнокровие сосудов, отек стромы и склероз.

При иммуногистохимической оценке степени экспрессии TLR4 в слизистой мочевого пузыря значимых отличий между группами не выявлено, что, вероятно, связано с наличием общего патологического процесса в тканях – воспаления. Так как TLR4 обеспечивают врожденный иммунитет путем распознавания химических структур, синтезируемых микроорганизмами, а также эндогенных лигандов, образующихся при повреждении собственных тканей организма [20], они являются первыми сигнальными молекулами, распознающими лиганды микроорганизмов и координирующими иммунный ответ слизистой оболочки женского урогенитального тракта [21]. Связывание TLR4 c лигандом приводит к выработке цитокинов и антимикробных пептидов, что опосредуется внутриклеточной передачей сигнала двумя возможными путями. Первый путь связан с включением адаптерного белка MyD88 (белок первичного ответа миелоидной дифференцировки 88), который активирует ядерный транскрипционный фактор NF-kB, инициирующий в ядре транскрипцию генов провоспалительных цитокинов и антимикробных пептидов. Кроме того, TLR 4 способны запускать иммунный ответ по MyD88-независимому пути. Он осуществляется посредством адаптерного белка, индуцирующего интерферон-1β (Toll/ИЛ-1 domain containing adaptor inducing interferon-1β, TRIF), что приводит к фосфорилированию интерферон-регулирующего фактора-3 (IRF-3) [22]. Альтернативный путь стимулирует выработку интерферонов I типа и активацию интерферон-индуцируемых генов [23, 24].

Таким образом, мы пришли к выводу о схожести этиопатогенетического характера обоих заболеваний, в основе которого, очевидно, лежит воспалительный процесс различной степени выраженности, чем объясняется наличие экспрессии TLR4 в клетках эндотелия сосудов в группе с хроническим циститом, что, возможно, отражает большую интенсивность воспалительной реакции в группе данных пациентов.

Кроме того, при анализе иммуногистохимической экспрессии CD117 в клетках воспалительного инфильтрата стромы обнаружена высокая концентрация маркера в группе ГМП и хронического цистита, что подтверждает теорию о том, что именно эти клетки за счет пейсмейкерной функции обеспечивают спонтанную миогенную активность окружающих их гладкомышечных клеток, приводящую к их гипертрофии. Помимо этого, данный факт объясняет и отличия в клинической картине: например, при хроническом цистите ургентные позывы и поллакиурия чаще отмечаются при обострении заболевания, в то время как при ГМП данная симптоматика носит относительно стойкий постоянный характер. Эти отличия, по-видимому, связаны с наличием большего количества клеток с пейсмейкерной активностью при ГМП ввиду обнаруженной нами более выраженной тенденции к высокой экспрессии CD117, чем при хроническом цистите. Очевидно, данные клетки при хроническом цистите вне обострения неактивны, что косвенно подтверждается при гистологическом исследовании выявлением атрофии мышечных клеток.

Заключение

Гипертрофия мышечных клеток и высокая концентрация CD117+ клеток в слизистой стенки мочевого пузыря при ГМП, возможно, являются следствием гиперактивности пейсмейкерных клеток, которая возникла в результате воспаления в слизистой, что подтверждается также высокой экспрессией TLR4.

При хроническом цистите отмечается атрофия мышечных клеток в стенке мочевого пузыря и более выраженный склероз, что является следствием длительно протекающего хронического воспалительного процесса.

Полученные данные подтверждают гипотезу о воспалительном генезе ГМП, что может быть использовано для оптимизации тактики лечения таких пациенток.

Однако данное исследование проведено на малом количестве материала и носит пилотный характер, поэтому необходимо проведение дальнейших научно-исследовательских работ в этом направлении.

References

  1. Sivick K.E., Mobley H.L. Waging war against uropathogenic Escherichia coli: winning back the urinary tract (minireview). Infect. Immun. 2010; 78(2): 568–85.
  2. Haylen B.T., de Ridder D., Freeman R.M., Swift S.E., Berghmans B., Lee J. et al. An International Urogynecological Association (IUGA)/ International Continence Society (ICS) joint report on the terminology for female pelvic floor dysfunction. Neurourol. Urodyn. 2010; 29(1): 4–20.
  3. Irwin D.E., Milsom I., Hunskaar S., Reilly K., Kopp Z., Herschorn S. еt al. Population – based survey of urinary incontinence, overactive bladder and other lower urinary tract symptoms in five countries: results of EPIC study. Eur. Urol. 2006; 50(6): 1306–14; discussion 1314–5.
  4. Apolihina I.A., Glybochko P.V., Teterina T.A. Geneticheskaya predraspolozhennost k razvitiyu neoslozhnennyih infektsiy mochevyivodyaschih putey i refrakternogo giperaktivnogo mochevogo puzyirya u zhenschin. Eksperimentalnaya i klinicheskaya urologiya. 2012; 4: 14–21.
  5. Beutler B., Jiang Z., Georgel P., Crozat K., Croker B., Rutschmann S. et al. Genetic analysis of host resistance: Toll-like receptor signaling and immunity at large. Annu. Rev. Immunol. 2006; 24: 353–89.
  6. Akira S., Uematsu S., Takeuchi O. Pathogen recognition and innate immunity. 2006; 124: 783–801.
  7. Medzhitov R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response. Nature. 2007; 449: 819–26.
  8. Fischer H., Yamamoto M., Hoebe K., Akira S., Beutler B., Svanborg C. Mechanism of pathogen specific TLR4 activation in the mucosa: fimbriae, recognition receptors and adaptor protein selection. Eur. J. Immunol. 2006; 36(2): 267–77.
  9. Karoly E., Fekete A., Banki N.F., Szebeni B., Vannay A., Szabo A.J. et al. Heat shock protein 72 (HSPA1B) gene polymorphism and Toll-like receptor (TLR) 4 mutation are associated with increased risk of urinary tract infection in children. Pediatr. Res. 2007; 61(3): 371–4.
  10. Ragnarsdóttir B., Samuelsson M., Gustafsson M.C., Leijonhufvud I., Karpman D., Svanborg C. Reduced toll-like receptor 4 expression in children with asymptomatic bacteriuria. J. Infect. Dis. 2007; 196(3): 475–84.
  11. Smithson A., Sarrias M.R., Barcelo J., Suarez B., Horcajada J.P., Soto S.M. et al. Expression of interleukin–8 receptors (CXCR1 and CXCR2) in premenopausal women with reccurent urinary tract infections. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2005; 12(12): 1358–63.
  12. Alışkan H.E., Colakoğlu S., Turunç T., Demiroğlu Y.Z. Evaluation of the ChromID ESBL agar for the detection of ESBL – positive Enterobacteriaceae and vancomycin-resistant enterococcus isolates from urine cultures. Mikrobiyol. Bul. 2012; 46(1): 17–25.
  13. Khasriya R.K., Ismail S., Wilson M., Malonee–Lee J. A new aethiology for OAB: intracellular bacterial colonization of urothelial cells. Int. J. Urogynecol. 2011; 22(Suppl.1): 141–2.
  14. Kirpatovskiy V.I., Frolova E.V., Nadtochiy O.N. Spontannaya ritmicheskaya aktivnost organov mochepolovoy sistemyi: rol interstitsialnyih kletok, biologicheskaya znachimost, patofiziologicheskie aspektyi. Eksperimentalnaya i klinicheskaya urologiya. 2012; 2: 70–7.
  15. Bradling A.F., McCloskey K.D. Mechanisms of disease: specialized interstitial cells of the urinary tract – an assessment of current knowledge. Nat. Clin. Pract. Urol. 2005; 2(11): 546–54.
  16. Kaligin M.S., Gumerova A.A., Titova M.A., Gazizov I.M., Smetannikova T.S., Andreeva D.I., Kiyasov A.P. Ekspressiya retseptora faktora stvolovyih kletok (c-kit) v hode razvitiya vnutrennih organov cheloveka. Morfologicheskie vedomosti. 2008; 1(1–2): 63–6.
  17. Danelyan L.G., Gebhart R., Bunyatyan G.K. Ekspressiya kislogo glialnogo belka fibrillyarnogo belka v endokarde, interstitsialnyih kletkah serdtsa, podobnyih kletkam Kahalya, i perivaskulyarnyih strukturah selezenki. Neyrohimiya. 2008; 25(4): 327–30.
  18. Hashitani H., Fukuta H., Takano H., Klemm M., Suzuki H. Origin and propagation of spontaneous excitation in smooth muscle of guinea pig urinary bladder. J. Physiol. 2001; 530: 273–86.
  19. Sergeant G.P., Hollywood M.A., McCloskey K.D., McHale N.G., Thornbury K.D. Role of IP3 in modulation of spontaneous activity in pacemaker cells of rabbit urethra. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2001; 280(5): C1349–56.
  20. Lagou M., Drake M.J., Markerink-Van Ittersum M., De Vente J., Gillespie J.I. Interstitial cells and phase activity in the isolated mouse bladder. Br. J. Urol. Int. 2006; 98: 643–50.
  21. Nasu K., Narahara Н. Pattern recognition via toll-like receptor system in the human female reproductive tract. Mediators Inflamm. 2010; 2010: 976024.
  22. Akira S., Hoshinо K. Myeloid differentiation factor 88-dependent and independent pathways in toll-like receptor signaling. J. Infect. Dis. 2003; 187 (2): 356–63.
  23. Ahmatova N.K., Kiselevskiy M.V. Vrozhdennyiy immunitet: protivoopuholevyiy i protivoinfektsionnyiy. M.: Prakticheskaya Meditsina; 2008. 255 s.
  24. Lebedeva O.P., Kalutskiy P.V., Pahomov S.P., Churnosov M.I., Karpov P.A., Samborskaya N.I. Toll-podobnyie retseptoryi zhenskogo reproduktivnogo trakta i ih ligandyi. Immunopatologiya, allergologiya, infektologiya. 2012; 1: 19–26.

 

About the Authors

Demura Tatiana Aleksandrovna, associate professor, PhD, Senior Researcher of the 1st Pathology department, Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail: uursula90@gmail.com
Teterina Tatiana Aleksandrovna, Graduate at the Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79856451478. E-mail: palpebra@inbox.ru
Apolikhina Inna Anatolievna, professor, PhD, MD, Head of Gynecological rehabilitation department and one – day clinic at the Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74957351055. E-mail: apolikhina@inbox.ru
Kogan Evgenia Aleksandrovna, professor, PhD, MD, Head of the 1st Pathology department at the Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail: koganev@gmail.com
Efremov Gennadiy Dmitrievich, Head of the Laboratory of Pathological Anatomy at the Research Institute of Urology, Ministry of Health of Russia. 105425, Russia, Moscow, 3-ya Parkovaya str. 51 bld. 4. Tel.: +79164961746. E-mail: efremov.gen@yandex.ru
Glybochko Petr Vitalievich, professor, PhD, MD, Rector of the 2I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, corresponding member of RAMS. 119997, Russia, Moscow, Trubetskaya str. 8 bld. 2. Tel.: +74992480553
Sukhikh Gennadiy Tikhonovich, professor, PhD, MD, Head of the Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Head of the obstetrician, gynecological, perinatological and reproductive department at the I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Academician of the RAMS, professor, PhD, MD. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954381800. E-mail: g_sukhikh@oparina4.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.