Gut and genital microbiota in endometriosis

Chernukha G.E., Pronina V.A., Priputnevich T.V.

Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation, Moscow, Russia
Endometriosis is a hormone-dependent disease associated with the development of chronic inflammation. The prevalence of this disease does not tend to decrease. The absence of a unified generally accepted theory on the origin of endometriosis is the basis for continuing investigations aimed at searching for possible mechanisms for the development of the disease in order to improve the principles of diagnosis and therapy of this pathological process. One of the theories of endometriosis is the hypothesis of bacterial infection, in which the bacterial endotoxin lipopolysaccharide is supposed to be a triggering factor for the onset and progression of endometriosis. Current data indicate that changes in the composition of gut microbiota and/or different stages of the female reproductive tract can be used prognostically as a tool for diagnosing the disease, whereas a number of microorganisms can be marker for assessing its form and prevalence. This review considers the present-day ideas on the relationship between the gut and genital microbiotas and endometriosis, on possible mechanisms and diagnostic approaches to this pathological condition.
Conclusion: To study the composition of the microbiota seems to be a fairly new and very promising area from both scientific and practical point of view.

Keywords

endometriosis
microorganisms
microbiome
microbiota
gut microbiota
genital microbiota
lipopolysaccharide
16S rRNA gene sequencing

С современных позиций эндометриоз рассматривают, как доброкачественное эстрогензависимое заболевание, ассоциированное с развитием хронического воспалительного процесса, характеризующееся обнаружением за пределами полости матки ткани, подобной по структуре и функциям эндометрию [1, 2]. Частота распространенности данной патологии в мире достигает 10% среди женщин репродуктивного возраста, среди пациенток с бесплодием – 50%. При этом сохраняется тенденция к росту новых случаев выявления данного заболевания [3, 4]. Эндометриоз характеризуется широким спектром клинических проявлений, среди которых доминирует дисменорея, хроническая тазовая боль и бесплодие. Нередко наблюдаются ациклические боли, диспареуния, дисхезия и ряд других неспецифичных симптомов [5–7]. Помимо гинекологических симптомов, у многих пациенток с эндометриозом встречаются желудочно-кишечные проявления, среди которых наиболее распространенными являются вздутие живота, тошнота, запор, диарея и рвота [8]. При этом, по данным литературы, локализация и распространенность эндометриоидных поражений часто не связаны с тяжестью клинических проявлений, в ряде случаев наблюдается бессимптомное течение при наличии обширного процесса [9]. Многообразие, неспецифичность симптомов, а также недостаточная информативность неинвазивных методов диагностики заболевания приводят к задержке постановки диагноза в среднем на 7–8 лет [10]. Ранее лапароскопия с гистологическим исследованием образцов ткани, полученных во время операции, рекомендовалась в качестве «золотого стандарта» диагностики эндометриоза [11, 12]. В настоящее время этот вопрос пересматривается, и визуальные методы исследования ставятся первоочередными в алгоритме диагностики заболевания [13–16]. Согласно Европейским клиническим рекомендациям по эндометриозу 2022 г., лапароскопию следует проводить в случае не информативности визуальных методов диагностики или в тех случаях, когда эмпирическое лечение оказалось неэффективным или его назначение не целесообразно [16]. Следует также принимать во внимание данные зарубежных и отечественных исследований, свидетельствующие о возрастании риска развития тяжелых форм эндометриоза после повторных оперативных вмешательств [17–19]. Отсутствие послеоперационной гормонотерапии увеличивает вероятность рецидива заболевания почти в 5 раз и может в будущем приводить к возникновению более интенсивного болевого синдрома и распространенного патологического процесса [20]. Все это говорит о необходимости совершенствования алгоритмов диагностики заболевания, в том числе – с учетом патогенетических механизмов формирования эндометриоза.

Следует отметить, что этиология и патогенез эндометриоза до сих пор остаются предметом научных дискуссий, несмотря на существование более 10 теорий его возникновения. Наиболее признанной гипотезой является теория Sampson J.A. о ретро­градной менструации, переносе фрагментов эндометрия через фаллопиевы трубы в брюшную полость с последующей их имплантацией вне полости матки [21]. Достаточно убедительным доказательством данной гипотезы является факт характерного анатомического распределения эндометриоидных очагов. Поражения, как правило, асимметричны, что можно объяснить влиянием силы тяжести, анатомией брюшной полости и перитонеальным течением менструальной крови (МК) по часовой стрелке [21–23]. Однако, имплантационная теория Sampson J.A. не объясняет в полной мере всех случаев возникновения заболевания. Например, экстрагенитальные локализации эндометриоза (в головном мозге, печени, легких и др.) или клинические случаи гистологически-подтвержденного эндометриоза у мужчин [24, 25]. Известно также, что ретроградная менструация наблюдается у 80% женщин репродуктивного возраста, а распространенность эндометриоза составляет лишь около 10% [26]. В связи с этим были предложены и другие пути возникновения заболевания. В последнее время широко обсуждается роль генетических или эпигенетических нарушений, приводящих к изменениям в клетках эндометрия, в стволовых клетках или клетках костного мозга. Влиянием генетических и эпигенетических факторов пытаются объяснить наличие эндометриоз-ассоциированного бесплодия и ряд иммунологических изменений [27]. Предполагается, что рост поражений является клональным и вариабельным, но самоограничивающимся, вероятно, из-за фиброза, который нередко наблюдается вокруг очагов эндометриоза. Полагают, что его инициация возникает тогда, когда количество наследственных и приобретенных изменений превышает некое пороговое значение. Существует даже точка зрения, что эндометриоз можно рассматривать не как одно прогрессирующее и рецидивирующее заболевание, а как множество заболеваний с разным клиническим проявлением: перитонеальный, кистозный (эндометриомы) или глубокий эндометриоз [27, 28]. Окислительный стресс и микроокружение верхних половых путей и брюшной полости, предположительно, могут способствовать прогрессированию эндометриоза [29]. Не исключена также роль резистентности тканей к прогестерону в генезе заболевания [30]. Предлагаются и другие гипотезы: дизонтогенетическая теория, или теория мюллериоза, миграции стволовых клеток в эктопические участки, теория лимфатической диссеминации и ряд других [31–33].

Одной из обсуждаемых сегодня теорий возникновения эндометриоза является гипотеза бактериального заражения, которая впервые была предложена группой исследователей из Японии в 2010 г. [34]. Одним из оснований для выдвижения данной концепции послужило более раннее исследование Bailey M.T. и Coe C.L., проведенное на макаках-резус, где были обнаружены различия в составе микробиоты обезьян с эндометриозом по сравнению со здоровыми контрольными животными. Отмечалось значительное снижение количества бактерий рода Lactobacillus [F (1,14)=6,09, P<0,05] и статистически значимое увеличение грамотрицательных аэробов и факультативных анаэробов [F (1,14)=8,69, P<0,01]. Хотя конкретный механизм влияния кишечной микробиоты на эндометриоидные поражения обнаружен не был, авторами было высказано предположение, что секреция медиаторов воспаления может способствовать изменению бактериального состава в кишечнике [35]. На основании этих данных Khan K.N. et al. выдвинули гипотезу, что ряд грамотрицательных бактерий, в частности – Escherichia coli, путем прямой восходящей миграции из влагалища, способны контаминировать МК и «инфицировать» стенку матки. Аргументом послужило их исследование, где было выявлено значительное увеличение количества колониеобразующих единиц Escherichia coli в менструальной крови, а также повышение уровня бактериального эндотоксина, липополисахарида (ЛПС), в МК и перитонеальной жидкости (ПЖ) у пациенток основной группы по сравнению с контрольной группой (МК 285,5±64,5 пг/мл против 114,9±17,0 пг/мл [P<0,01]; ПЖ 71,5±9,2 пг/мл против 43,3±9,8 пг/мл [P<0,001]. Во-первых, бактериальный эндотоксин, посредством Toll-подобных рецепторов 4 типа (TLR-4), стимулировал выработку провоспалительных цитокинов и факторов роста. Концентрации HGF (Hepatocyte Growth Factor), VEGF (Vascular endothelial growth factor), IL-6 (Interleukin-6) и TNF-α (tumor necrosis factor alpha) были значительно выше в культуральной среде Escherichia coli, обработанных ЛПС (P<0,05). Во-вторых, ЛПС может увеличивать пролиферацию эпителиальных и стромальных клеток эутопического и эктопического эндометрия у женщин с эндометриозом. Об этом свидетельствовало усиление роста клеток эндометрия в ответ на ЛПС и устранение ЛПС-опосредованных эффектов антителами против TLR-4 (P<0,05). Предполагается, что TLR-4 в будущем могут рассматриваться как терапевтическая мишень заболевания [34]. Однако, авторы не исключают, что источником ЛПС может служить не только восходящая миграция Escherichia coli из влагалища, но и транслокация кишечной палочки или бактериального эндотоксина из кишечника через энтероциты [36, 37]. Достоверная взаи­мо­связь эндометриоза с рядом заболеваний, имеющих воспалительную природу, которая описана в многочис­ленных научных работах, может служить одним из возможных доказательств данной теории.

Желудочно-кишечный тракт (ЖКТ) представляет собой сложную экосистему взаимодействия пищевых молекул, клеток слизистой оболочки кишечника, клеток иммунной системы и микроорганизмов [38]. Немаловажным является тот факт, что микробиота ЖКТ – это динамичная среда, которая обладает метаболическим потенциалом, а кишечный микробиом, имея в 150 раз больше генов, чем содержится в геноме человека, кодирует огромное количество ферментов, которые опосредуют различные метаболические пути, включая биосинтез основных витаминов, расщепление сложных неперевариваемых полисахаридов, конъюгацию эстрогенов [39–42]. Доказательства роли кишечных бактерий в метаболизме эстрогенов получены несколько десятилетий назад. В своем исследовании коллектив ученых из Швеции еще в 1969 г. продемонстрировал, что стерильные крысы практически не выделяют свободные формы стероидных гормонов с фекалиями, в отличие от обычных крыс с заселенным микроорганизмами кишечником [43]. В последние десятилетия увеличивается количество научных публикаций о том, что в микробиоме кишечника существует эстроболом – совокупность генов кишечных бактерий, обладающих способностью опосредованно метаболизировать эстрогены в кишечнике [44]. Анализ микробных геномов показал, что бактерии рода Bacteroides, Bifidobacterium, Escherichia, Lactobacillus и некоторые другие микроорганизмы способны секретировать β-глюкуронидазу. Этот фермент деконъюгирует эстрогены в просвете кишечника, превращая их в активные формы. Увеличение реабсорбции несвязанных «активных» эстрогенов через стенку кишечника приводит к более высоким уровням их в сыворотке крови и, как следствие, к избыточному воздействию на α (альфа) и β (бета) эстрогеновые рецепторы (ERα и ERβ) тканей-мишеней [45]. Таким образом, дисбиотический микробиом кишечника, способствующий деконъюгации эстрогенов, может создавать эндогенную гиперэстрогению, способную индуцировать развитие или прогрессирование эстроген-зависимых заболеваний, к числу которых относится эндометриоз [46]. Роль эстроболома и бактерий, секретирующих β-глюкуронидазу, при эндометриозе в настоящее время является предметом научных дискуссий. Необходимы дальнейшие исследования, направленные на изучение активности β-глюкуронидазы у женщин с эндометриозом, чтобы подтвердить роль эстроболома в патогенезе заболевания.

К настоящему времени опубликован ряд научных исследований, выполненных на моделях животных и на людях, в которых тестировалась гипотеза взаимосвязи между эндометриозом и изменением состава микробиоты. Актуальным остается вопрос изучения двунаправленного эффекта между микробиомом и эндометриозом. С одной стороны, при эндометриозе развивается хроническая воспалительная реакция, активация иммунных клеток, что может приводить к изменению микробного состава. С другой стороны, не исключено влияние микробиоты на развитие и прогрессирование эндометриоза [47]. В проспективном исследовании на мышах Yuan M. et al. воспроизводили модель эндометриоза человека путем внутрибрюшинной инъекции животным тканей эндометрия. На 42-й день наблюдения были обнаружены различия в составе микробиоты кишечника у мышей с эндометриозом, по сравнению с группой контроля. Несмотря на полученное сходство α-разнообразия состава кишечной микробиоты обеих групп, были обнаружены различия на уровне вида (β-разнообразие). У мышей с эндометриозом наблюдались признаки дисбиоза кишечника в виде двухкратного повышения соотношения бактерий типа Firmicutes к Bacteroidetes в сравнение с группой контроля, а также увеличение количества бактерий рода Bifidobacterium (тип Actinobacteria) в основной группе, роль которых в патогенезе эндометриоза на сегодняшний день не ясна [48]. Женщины с эндометриозом и желудочно-кишечными симптомами имели более низкое содержание бактерий в классе Clostridia (тип Firmicutes), более низкое содержание бактерий рода Odoribacter (тип Bacteroidetes) и более высокое – Prevotella (тип Bacteroidetes), по сравнению с пациентками без желудочно-кишечных симптомов. Обнаружена взаимосвязь между увеличением числа бактерий рода Prevotella и такими симптомами, как запор (p=0,014), вздутие живота и метеоризм (p=0,016), тошнота и рвота (p=0,017) [49]. Бактерии семейства Prevotellaceae (род Prevotella, род Alloprevotella) были неоднократно определены как превалирующий таксон у женщин с эндометриозом [47, 49, 50]. Полученные данные могут служить основанием для продолжения исследований, направленных на поиск связи между составом микробиоты кишечника и эндометриозом.

На сегодняшний день достоверным является тот факт, что верхние отделы женского репродуктивного тракта, как и кишечник, не являются стерильными [51, 52]. Перед исследователями встает вопрос, позволяет ли оценка видового состава микроорганизмов цервикальной слизи или кишечного содержимого судить о микробиоте полости матки или брюшной полости [53]? Для ответа на этот вопрос проводилась сравнительная оценка состава микробиоты кишечника, цервикального канала и ПЖ методом секвенирования гена 16 S рибосомной рибонуклеиновой кислоты (16S рРНК) у пациенток с гистологически подтвержденным эндометриозом по сравнению с группой контроля. Результаты исследования показали, что качественный и количественный состав микробиоты кишечника и ПЖ пациенток с эндометриозом значительно отличались от таковых в группе контроля, в то время как в микробиоте цервикального канала различий не было выявлено. Наблюдалось снижение α- и β-разнообразия кишечной микробиоты у пациенток основной группы по сравнению с контрольной [49]. Эти данные согласуются с работами других авторов. В шведском исследовании α-разнообразие образцов кала было значительно выше в группе контроля по сравнению с основной группой женщин с эндометриозом (p=4,9e-05). Различия в численности 12 родов, принадлежащих к классам Bacilli, Bacteroidia, Clostridia, Coriobacteriia и Gammaproteobacteria, обнаружены между пациентками обеих групп [49]. Китайские исследователи также установили снижение α-разнообразия кишечной микробиоты и более высокое соотношение бактерий типов Firmicutes к Bacteroidetes у пациенток с эндометриозом, что согласуется с описанными ранее данными, изложенными в исследовании на мышиной модели [48, 50]. Что касается ПЖ, не было выявлено межгрупповых различий по видовому разнообразию [54]. Авторы предположили, что одним из возможных объяснений этому может быть то, что мезотелиальные клетки брюшины непрерывно продуцируют ПЖ с последующей ее реабсорбцией. Это способствует очищению ее от патогенов, попадающих в брюшную полость восходящим путем из нижних отделов женского репродуктивного тракта, что приводит к формированию достаточно стабильной микросреды [55, 56]. Наряду с этим, имеются данные исследований о наличии различий в составе ПЖ [57]. Как уже указывалось в исследовании Huang L. et al., различий в составе образцов цервикальной слизи между двумя группами пациенток обнаружено не было [54]. Однако, в работе Chang C.Y. et al. было установлено, что у пациенток с эндометриозом, имеющих более выраженную клиническую симптоматику, отмечалось достоверное снижение α- и β-разнообразия микробиоты шейки матки. Увеличение количества бактерий типа Firmicutes и снижение Actinobacteria и Bacteroidetes в цервикальной слизи пациенток основной группы позволяло дифференцировать их от группы контроля [58]. Более ранняя работа с аналогичным дизайном исследования показала увеличение количества бактерий семейства Enterobacteriaceae и рода Streptococcus в отделяемом цервикального канала пациенток с эндометриозом по сравнению с контролем (P<0,05 для каждого) [59]. Ata B. et al. обнаружили полное отсутствие бактерий рода Atopobium и Sneathia и значительное повышение количества Alloprevotella (p<0,01) в эндоцервикальных образцах пациенток с эндометриозом [47]. Это может являться маркером доброкачественного процесса [47], поскольку ранее наличие бактерий вида Atopobium vaginae и Porphyromonas spp. в сочетании с высоким pH влагалища рассматривали, как предикторы развития рака эндометрия [60].

На основании степени выраженности межвидового разнообразия микробиомного состава можно предположить о наличии или отсутствии патологии. Наряду с межвидовым разнообразием микробиоты, продолжается поиск маркерных микроорганизмов при доброкачественных процессах. Исследователи пытаются найти ответ на вопрос, может ли присутствие одного или отсутствие другого вида микроорганизмов быть значимым этиологическим фактором возникновения патологии и потенциальной терапевтической мишенью заболевания [47]. Huang L. et al. в своем исследовании выявили ассоциацию эндометриоза с более низким количеством бактерий семейства Lachnospiraceae рода Ruminococcus в кишечнике [54]. Ранее было обнаружено, что Ruminococcus obeum (семейство Lachnospiraceae) способствуют увеличению концентрации в толстом кишечнике пропионата, вида короткоцепочечных жирных кислот, обладающих защитным эффектом на стенку кишечника, а Ruminococcus faecis участвует в биосинтезе бутирата, другой короткоцепочечной жирной кислоты, которая снижает проницаемость кишечной стенки и оказывает противовоспалительный эффект [61]. На основании этого авторами было сделано предположение, что снижение количества бактерий семейства Lachnospiraceae (род Ruminococcus) при эндометриозе приводит к уменьшению концентрации защитных метаболитов в кишечнике, что может способствовать развитию заболевания [54]. В ПЖ у пациенток с эндометриозом было выявлено повышение количества бактерий семейства Pseudomonadaceae (род Pseudomonas) [54]. Известно, что бактерии Pseudomonas aeruginosa способны опосредованно повышать активность арилсульфатазы – фермента, участвующего в стероидогенезе. В частности, происходит превращение метаболита эстрона сульфата в более активную форму – эстрон [62]. Кроме того, бактерии рода Pseudomonas являются грамотрицательными микроорганизмами, способными высвобождать ЛПС [34]. Все это может приводить к возникновению локальной гиперэстрогении в брюшной полости, повышенной пролиферации клеток эктопического эндометрия и прогрессированию эндометриоза [34, 63]. Таким образом, снижение количества бактерий рода Ruminococcus в кишечнике и повышение Pseudomonas в ПЖ могут быть потенциальными биомаркерами эндометриоза [54]. Несмотря на очевидную целесообразность изучения состава ПЖ при эндометриозе [54, 57], многие исследователи сходятся во мнении, что диагностическая значимость образцов кала схожа или превосходит таковую ПЖ [54]. Учитывая сопоставимость информативности микробного состава ПЖ и кишечного содержимого по данным литературы, можно сделать заключение в пользу оценки кишечной микробиоты, как не сложного и доступного метода для клинической практики.

Немаловажным и перспективным является также поиск «маркерных» микроорганизмов, на основании определения которых можно было бы предположить о форме эндометриоза и степени его распространения. Исследования в этом направлении малочисленны. Есть данные о более высокой численности Lachnobacterium, принадлежащих к классу Clostridia, и Adlercreutzia, принадлежащих к классу Coriobacteriia, у женщин с изолированными эндометриомами яичников, по сравнению с пациентками, с сочетанием нескольких форм эндометриоза [49]. Результаты другого исследования показали, что в образцах ПЖ наблюдалось достоверное увеличение количества бактерий рода Acinetobacter, Pseudomonas, Streptococcus и Enhydrobacter и снижение количества Propionibacterium, Actinomyces и Rothia в группе эндометриоза по сравнению с контролем (p<0,05) [64]. Интересные данные, в дальнейшем послужившие основой для обсуждения в ряде других работ, получены в исследовании Ata B. et al. в 2019 г. Несмотря на ограниченную выборку пациенток, у нескольких женщин с эндометриозом обнаружено повышение соотношения Escherichia/Shigella в образцах кала, в то время как, ни у одной пациентки из группы контроля подобного не наблюдалось. В дальнейшем, у этой категории пациенток был выявлен колоректальный эндометриоз, требующий сегментарной резекции толстой кишки [47]. Особенности микробиомного состава пациенток с глубоким эндометриозом проявлялись увеличением количества бактерий типа Tenericutes, Spirochaetae и ряда других микроорганизмов [58]. В рамках обсервационного перекрестного пилотного исследования по изучению состава кишечной и влагалищной микробиоты при различных стадиях эндометриоза было обнаружено увеличение относительной численности в МК бактерий рода Anaerococcus (тип Firmicutes), у пациенток с эндометриозом 3–4 стадии по классификации rASRM (revised American Society for Reproductive Medicine) по сравнению с пациентками с 1–2 стадией заболевания [65]. Некоторые различия количественного и качественного состава микробиоты при разных стадиях заболевания были выявлены и в другом исследовании [58]. И хотя предварительные данные указывают на различия микроорганизмов при разных стадиях заболевания, необходимо продолжать исследования в этой области, возможно, с использованием большей выборки пациенток.

Заключение

Анализ данных литературы позволяет сделать заключение, что высокая частота эндометриоза, неспецифичность его симптомов, отсутствие информативных неинвазивных методов диагностики ранних стадий заболевания, а также недостаточная эффективность хирургических и медикаментозных методов лечения, указывает на важность проблемы и необходимость проведения научных исследований, направленных на ее решение. Большинство имеющихся на сегодняшний день данных указывает, что состав микробиоты у пациенток с эндометриозом отличается от здоровых женщин. Однако, не следует исключать, что эти различия могут быть связаны с регионом проживания, этнической принадлежностью, пищевыми привычками, характеристиками макроокружения и рядом других внешних факторов. Перспективным является изучение микробиома различных областей, обнаружение «маркерных» микроорганизмов различных форм и стадий заболевания, что особенно актуально для пациенток с перитонеальной формой эндометриоза, которая наиболее сложно диагностируется визуальными методами исследования. Таким образом, изучение состава микробиоты представляется достаточно новым и весьма перспективным направлением, как с научных, так и с точки зрения практических позиций.

References

  1. Giudice L.C., Kao L.C. Endometriosis. Lancet. 2004; 364(9447): 1789-99. https://dx.doi.org/10.1016/s0140-6736(04)17403-5.
  2. Kennedy S., Bergqvist A., Chapron C., D'Hooghe T., Dunselman G., Greb R. et al. ESHRE guideline for the diagnosis and treatment of endometriosis. Hum. Reprod. 2005; 20(10): 2698-2704. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dei135.
  3. Giudice L.C. Endometriosis. N. Engl. J. Med. 2010; 362(25): 2389-98.https://dx.doi.org/1010.1056/nejmcp1000274.
  4. Meuleman C., Vandenabeele B., Fieuws S., Spiessens C., Timmerman D., D’Hooghe T. High prevalence of endometriosis in infertile women with normal ovulation and normospermic partners. Fertil. Steril. 2009; 92(1): 68-74.https://dx.doi.org/ 10.1016/j.fertnstert.2008.04.056.
  5. Fuldeore M.J., Soliman A.M. Prevalence and symptomatic burden of diagnosed endometriosis in the United States: National estimates from a cross-sectional survey of 59,411 women. Gynecol. Obstet. Invest. 2016; 82(5): 453-61. https://dx.doi.org/10.1159/000452660.
  6. Fauconnier A., Chapron C., Dubuisson J.-B., Vieira M., Dousset B., Bréart G. Relation between pain symptoms and the anatomic location of deep infiltrating endometriosis. Fertil. Steril. 2002; 78(4): 719-26. https://dx.doi.org/10.1016/s0015-0282(02)03331-9.
  7. Ballard K., Seaman H., de Vries C., Wright J. Can symptomatology help in the diagnosis of endometriosis? Findings from a national case-control study-Part 1. BJOG. 2008; 115(11): 1382-91. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2008.01878.x.
  8. Maroun P., Cooper M.J.W., Reid G.D., Keirse M.J.N.C. Relevance of gastrointestinal symptoms in endometriosis. Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2009; 49(4): 411-4. https://dx.doi.org/10.1111/j.1479-828X.2009.01030.x.
  9. Vercellini P., Fedele L., Aimi G., Pietropaolo G., Consonni D., Crosignani P.G. Association between endometriosis stage, lesion type, patient characteristics and severity of pelvic pain symptoms: a multivariate analysis of over 1000 patients. Hum. Reprod. 2006; 22(1): 266-71. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del339.
  10. Greene R., Stratton P., Cleary S.D., Ballweg M.L., Sinaii N. Diagnostic experience among 4,334 women reporting surgically diagnosed endometriosis. Fertil. Steril. 2009; 91: 32-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.11.020.
  11. Johnson N.P., Hummelshoj L.; World Endometriosis Society Montpellier Consortium. Consensus on current management of endometriosis. Hum. Reprod. 2013; 28(6): 1552-68. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det050.
  12. Dunselman G.A., Vermeulen N., Becker C., Calhaz-Jorge C., D'Hooghe T., De Bie B. et al. ESHRE guideline: management of women with endometriosis. Hum. Reprod. 2014; 29(3): 400-12. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det457.
  13. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Эндометриоз. Клинические рекомендации М.; 2020. [Ministry of Health of the Russian Federation. Endometriosis. Clinical recommendations. M.; 2020. (in Russian)]. Available at: https://www.medkirov.ru/docs/id/2B8FCC-2020/$File/%D0%AD%D0%BD%D0%B4%D0%BE%D0%BC%D0%B5%D1%82%D1%80%D0%B8%D0%BE%D0%B7.pdf
  14. RANZCOG. Australian clinical guideline on the diagnosis and management of endometriosis. 2021. Available at: https://ranzcog.edu.au/RANZCOG_SITE/media/RANZCOG-MEDIA/Women%27s%20Health/Statement%20and%20guidelines/Clinical%20-%20Gynaecology/Endometriosis-clinical-practice-guideline.pdf?ext=.pdf
  15. Collinet P., Fritel X., Revel-Delhom C., Ballester M., Bolze P.A., Borghese B. et al. Management of endometriosis. CNGOF/HAS clinical practice guidelines – Short version. J. Gynecol. Obstet. Hum. Reprod. 2018; 47(7): 265-74.https://dx.doi.org/10.1016/j.jogoh.2018.06.003.
  16. ESHRE Endometriosis Guideline Group. ESHRE guideline: endometriosis. Hum. Reprod. Open. 2022; 2022(2): hoac009. https://dx.doi.org/10.1093/hropen/hoac009.
  17. Nirgianakis K., Ma L., McKinnon B., Mueller M.D. Recurrence patterns after surgery in patients with different endometriosis subtypes: A Long-Term Hospital-Based Cohort Study. J. Clin. Med. 2020; 9(2): 496.https://dx.doi.org/10.3390/jcm9020496.
  18. Sibiude J., Santulli P., MArcellin L., Borghese B., Dousset B., Chapron C. Association of history of surgery for endometriosis with severity of deeply infiltrating endometriosis. Obstet. Gynecol. 2014; 124(4): 709-17.https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000000464.
  19. Муфтайдинова Ш.К., Файзуллин Л.З., Чупрынин В.Д, Русейкин Н.С., Смольнова Т.Ю., Буралкина Н.А. Клинико-диагностические аспекты глубокого инфильтративного эндометриоза (диагностика, лечение, рецидивы). Гинекология. 2021; 23(4): 307-13. [Muftaidinova Sh.K., Faizullin L.Z., Chuprynin V.D., Ruseikin N.S., Smolnova T.Iu., Buralkina N.A. Clinical and diagnostic aspects of deep infiltrative endometriosis (diagnosis, treatment, reccurence). Gynecology. 2021; 23(4): 307-13. (in Russian)].https://dx.doi.org/10.26442/20795696.2021.4.201040.
  20. Yela D.A., Vitale S.G., Vizotto M.P., Benetti‐Pinto C.L. Risk factors for recurrence of deep infiltrating endometriosis after surgical treatment. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2021; 47(8): 2713-9. https://dx.doi.org/10.1111/jog.14837.
  21. Sampson J.A. Peritoneal endometriosis due to premenstrual dissemination of endometrial tissue into the peritoneal cavity. Am. J. Obstet. Gynecol.1927; 14: 422-69.
  22. Chapron C., Bricou A., Chopin N., Borghese B., Dousset B., Vacher-Lavenu M.-C. et al. Deeply infiltrating endometriosis: pathogenetic implications of the anatomical distribution. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2006; 21(7): 1839-45. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del079.
  23. Bricou A., Batt R. E., Chapron C. Peritoneal fluid flow influences anatomical distribution of endometriotic lesions: why Sampson seems to be right. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2008; 138(2): 127-34. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2008.01.014.
  24. Samani E.N., Mamillapalli R., Li F., Mutlu L., Hufnagel D., Krikun G., Taylor H.S. Micrometastasis of endometriosis to distant organs in a murine model. Oncotarget. 2019; 10(23): 2282-91. https://dx.doi.org/10.18632/oncotarget.16889.
  25. Rei C., Williams T., Feloney M. Endometriosis in a man as a rare source of abdominal pain: A case report and review of the literature. Case Rep. Obstet. Gynecol. 2018; 2018: 2083121. https://dx.doi.org/10.1155/2018/2083121.
  26. Schenken R.S., Barbieri R.L., Eckler K. Endometriosis: pathogenesis, clinical features, and diagnosis. UpToDate; 2019.
  27. Koninckx P.R., Ussia A., Adamyan L., Wattiez A., Gomel V., Martin D.C. Pathogenesis of endometriosis: the genetic/epigenetic theory. Fertil. Steril. 2019; 111(2): 327-39. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.10.013.
  28. Koninckx P.R., Fernandes R., Ussia A., Schindler L., Wattiez A., Al-Suwaidi S. et al. Pathogenesis based diagnosis and treatment of endometriosis. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2021; 12: 745548. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2021.745548.
  29. Defrere S., Gonzalez-Ramos R., Lousse J.C., Colette S., Donnez O., Donnez J., Langendonckt A.V. Insights into iron and nuclear factor-kappa B (NF-kappaB) involvement in chronic inflammatory processes in peritoneal endometriosis. Histol. Histopathol. 2011; 26(8): 1083-92. https://dx.doi.org/10.14670/HH-26.1083.
  30. Koninckx P.R., Ussia A., Adamian L., Gomel V., Martin D.C. Peritoneal fluid progesterone and progesterone resistance in superficial endometriosis lesions. Hum. Reprod. 2022; 37(2): 203-11. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deab258.
  31. Batt R.E., Yeh J. Mullerianosis: four developmental (embryonic) mullerian diseases. Reprod. Sci. 2013; 20(9): 1030-7. https://dx.doi.org/10.1177/1933719112472736.
  32. Hufnagel D., Li F., Cosar E., Krikun G., Taylor H.S. The role of stem cells in the etiology and pathophysiology of endometriosis. Semin. Reprod. Med. 2015; 33(5): 333-40. https://dx.doi.org/10.1055/s-0035-1564609.
  33. Jerman L.F., Hey-Cunningham A.J. The role of the lymphatic system in endometriosis: a comprehensive review of the literature. Biol. Reprod. 2015; 92(3): 64. https://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.114.124313.
  34. Khan K.N., Kitajima M., Hiraki K., Yamaguchi N., Katamine S., Matsuyama T., Masuzaki H. Escherichia coli contamination of menstrual blood and effect of bacterial endotoxin on endometriosis. Fertil. Steril. 2010; 94(7): 2860-3.e3. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.04.053.
  35. Bailey M.T., Coe C.L. Endometriosis is associated with an altered profile of intestinal microflora in female rhesus monkeys. Hum. Reprod. 2002; 17(7): 1704-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/17.7.1704.
  36. Deitch E.A., Ma W.J., Ma L., Berg R., Specian R.D. Endotoxin-induced bacterial translocation: a study of mechanisms. Surgery. 1989; 106(2): 292-300.
  37. Alexander J.W., Boyce S.T., Babcock G.F., Gianotti L., Peck M.D., Dunn D.L., Pyles T., Childress C.P., Ash S.K. The process of microbial translocation. Ann. Surg. 1990; 212(4): 496-511. https://dx.doi.org/10.1097/00000658-199010000-00012.
  38. Neish A.S. Microbes in gastrointestinal health and disease. Gastroenterology. 2009; 136(1): 65-80. https://dx.doi.org/10.1053/j.gastro.2008.10.080.
  39. Flint H.J., Scott K.P., Duncan S.H., Louis P., Forano E. Microbial degradation of complex carbohydrates in the gut. Gut Microbes. 2012; 3(4): 289-306.https://dx.doi.org/10.4161/gmic.19897.
  40. LeBlanc J.G., Milani C., de Giori G.S., Sesma F., van Sinderen D., Ventura M. Bacteria as vitamin suppliers to their host: a gut microbiota perspective. Curr. Opin. Biotechnol. 2013; 24(2): 160-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.copbio.2012.08.005.
  41. Koh A., De Vadder F., Kovatcheva-Datchary P., Bäckhed F. From dietary fiber to host physiology: short-chain fatty acids as key bacterial metabolites. Cell. 2016; 165(6): 1332-45. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2016.05.041.
  42. Raftogianis R., Creveling C., Weinshilboum R., Weisz J. Estrogen metabolism by conjugation. J. Natl. Cancer Inst. Monogr. 2000; (27): 113-24.https://dx.doi.org/10.1093/oxfordjournals.jncimonographs.a024234.
  43. Eriksson H., Gustafsson J.A., Sjovall J. Steroids in germfree and conventional rats. Free steroids in faeces from conventional rats. Eur. J. Biochem. 1969; 9(2): 286-90.
  44. Plottel C.S., Blaser M.J. Microbiome and malignancy. Cell Host Microbe. 2011; 10(4): 324-35. https://dx.doi.org/10.1016/j.chom.2011.10.003.
  45. Kwa M., Plottel C.S., Blaser M.J., Adams S. The intestinal microbiome and estrogen receptor-positive female breast cancer. J. Natl. Cancer Inst. 2016; 108(8): djw02. https://dx.doi.org/10.1093/jnci/djw029.
  46. Baker J.M., Al-Nakkash L., Herbst-Kralovetz M.M. Estrogen–gut microbiome axis: physiological and clinical implications. Maturitas. 2017; 103: 45-53. https://dx.doi.org/10.1016/j.maturitas.2017.06.025.
  47. Ata B., Yildiz S., Turkgeldi E., Brocal V.P., Dinleyici E.C., Moya A., Urman B. The Endobiota Study: Comparison of vaginal, cervical and gut microbiota between women with stage 3/4 endometriosis and healthy controls. Sci. Rep. 2019; 9(1): 2204. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-019-39700-6.
  48. Yuan M., Li D., Zhang Z., Sun H., An M., Wang G. Endometriosis induces gut microbiota alterations in mice. Hum. Reprod. 2018; 33(4): 607-16.https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dex372.
  49. Svensson A., Brunkwall L., Roth B., Orho-Melander M., Ohlsson, B. Associations between endometriosis and gut microbiota. Reprod. Sci. 2021; 28(8): 2367-77. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00506-5.
  50. Shan J., Ni Z., Cheng W., Zhou L., Zhai D., Sun S., Yu, C. Gut microbiota imbalance and its correlations with hormone and inflammatory factors in patients with stage 3/4 endometriosis. Arch. Gynecol. Obstet. 2021; 304(5): 1363-73. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-021-06057-z.
  51. Chen C., Song X., Wei W., Zhong H., Dai J., Lan Z. et al. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nat. Commun. 2017; 8(1): 875. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-017-00901-0.
  52. Кебурия Л.К., Смольникова В.Ю., Припутневич Т.В. Муравьева В.В. Микробиота полости матки и ее влияние на репродуктивные исходы. Акушерство и гинекология. 2019; 2: 22-7. [Keburia L.K., Smolnikova V.Yu., Priputnevich T.V., Muravyeva V.V. Uterine microbiota and its effect on reproductive outcomes. Obstetrics and Gynecology. 2019; 2: 22-7. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.2.22-27.
  53. Кебурия Л.К., Смольникова В.Ю., Припутневич Т.В. Муравьева В.В., Трофимов Д.Ю., Шубина Е.C., Кочеткова Т.О. Микробиота полости матки и неудачи имплантации. Есть ли связь? Акушерство и гинекология. 2021; 7: 133-43. [Keburiya L.K., Smol’nikova V.Yu., Priputnevich T.V., Murav’eva V.V., Trofimov D.Yu., Shubina E.S., Kochetkova T.O. Uterine microbiota and implantation failure: is there a link? Obstetrics and Gynecology. 2021; 7: 133-43. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.7.133-143.
  54. Huang L., Liu B., Liu Z., Feng W., Liu M., Wang Y. et al. Gut microbiota exceeds cervical microbiota for early diagnosis of ndometriosis. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2021; 11: 788836. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2021.788836.
  55. Blackburn S.C., Stanton M.P. Anatomy and physiology of the peritoneum. Semin. Pediatr. Surg. 2014; 23(6): 326-30. https://dx.doi.org/10.1053/j.sempedsurg.2014.06.002.
  56. Capobianco A., Cottone L., Monno A., Manfredi A.A., Rovere-Querini P. The peritoneum: healing, immunity, and diseases. J. Pathol. 2017; 243(2): 137-47. https://dx.doi.org/10.1002/path.4942.
  57. Yuan W., Wu Y., Chai X., Wu X. The colonized microbiota composition in the peritoneal fluid in women with endometriosis. Arch. Gynecol. Obstet. 2022; 305(6): 1573-80. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-021-06338-7.
  58. Chang C.Y., Chiang A.J., Lai M.T., Yan M.J., Tseng C.C., Lo L.C. et al. A more diverse cervical microbiome associates with better clinical outcomes in patients with endometriosis: A pilot study. Biomedicines. 2022; 10(1): 174.https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines10010174.
  59. Akiyama K., Nishioka K., Khan K. N., Tanaka Y., Mori T., Nakaya T., Kitawaki J. Molecular detection of microbial colonization in cervical mucus of women with and without endometriosis. Am. J. Reprod. Immunol. 2019; 82(2): e13147. https://dx.doi.org/10.1111/aji.13147.
  60. Walther-António M.R.S., Chen J., Multinu F., Hokenstad A., Distad T.J., Cheek E.H. et al. Potential contribution of the uterine microbiome in the development of endometrial cancer. Genome Med. 2016; 8: 122.https://dx.doi.org/10.1186/s13073-016-0368-y.
  61. Jin M., Kalainy S., Baskota N., Chiang D., Deehan E.C., McDougall C. et al. Faecal microbiota from patients with cirrhosis has a low capacity to ferment non-digestible carbohydrates into short-chain fatty acids. Liver Int. 2019; 39(8): 1437-47. https://dx.doi.org/10.1111/liv.1410.
  62. Uduwela D.R., Pabis A., Stevenson B.J., Kamerlin S.C.L., McLeod M.D. Enhancing the steroid sulfatase activity of the arylsulfatase from pseudomonas aeruginosa. ACS Catalysis. 2018; 8: 8902-14. https://dx.doi.org/10.1021/acscatal.8b02905.
  63. Huhtinen K., Desai R., Ståhle M., Salminen A., Handelsman D.J., Perheentupa A., Poutanen M. Endometrial and endometriotic concentrations of estrone and estradiol are determined by local metabolism rather than circulating levels. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2012; 97(11): 4228-35. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2012-1154.
  64. Lee S.R., Lee J.C., Kim S.H., Oh Y.S., Chae H.D., Seo H., Kang C.S., Shin T.S. Altered composition of microbiota in women with ovarian endometrioma: microbiome analyses of extracellular vesicles in the peritoneal fluid. Int. J. Mol. Sci. 2021; 22(9): 4608. https://dx.doi.org/10.3390/ijms22094608.
  65. Perrotta A.R., Borrelli G.M., Martins C.O., Kallas E.G., Sanabani S.S., Griffith L.G. et al. The vaginal microbiome as a tool to predict rASRM stage of disease in endometriosis: A pilot study. Reprod. Sci. 2020; 27(4): 1064-73. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-019-00113-5.

Received 11.04.2022

Accepted 10.06.2022

About the Authors

Galina E. Chernukha, Dr. Med. Sci., Professor, Chief Researcher, obstetrician-gynecologist at the Department of Gynecological Endocrinology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russian Federation, +7(985)999-60-00, c-galina1@yandex.ru,
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Veronika A. Pronina, obstetrician-gynecologist, PhD student, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology,
Ministry of Health of Russian Federation, +7(916)025-86-26, ver22595@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-4566-4065, 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Tatiana V. Priputnevich, Dr. Med. Sci., Associate Professor, Director of the Institute of microbiology, antimicrobial therapy and epidemiology, Academician V.I. Kulakov National Medical Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russian Federation, +7(910)414-56-16, priput1@gmail.com,
117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin str., 4.
Corresponding author: Galina E. Chernukha, c-galina1@yandex.ru

Authors' contributions: Pronina V.A., Chernukha G.E. – material collection and processing; writing the text; Chernukha G.E., Priputnevich T.V. – editing.
Conflicts of interest: The authors declare that there are no possible conflicts of interest.
Funding: The investigation has been conducted within the research “Elaboration of an integrated approach to diagnosing hormone-related diseases and endometrial functional disorders on the basis of a microbiota study” 122020900123-4.
For citation: Chernukha G.E., Pronina V.A., Priputnevich T.V.
Gut and genital microbiota in endometriosis.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2022; 8: 22-29 (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.8.22-29

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.