Clinical and cost-effectiveness analysis of preimplantation genetic screening in patients of late reproductive age

Dolgushina N.V., Korotchenko O.E., Beik E.P., Abdurakhmanova N.F., Ilyina E.O., Kulakova E.V.

1 Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia 2 M.V. Lomonosov Moscow State University, Moscow 119192, Lomonosovskiy prospect 31, Russia 3 Deparment of Obstetrics, Gynecology, Perinatology, and Reproductology, Institute of Professional Education, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of Russia
Objective. To evaluate the clinical cost-effectiveness of preimplantation genetic screening (PGS) in patients of late reproductive age in in vitro fertilization programs (IVF).
Subjects and methods. The prospective cohort study included 85 childless couples of late reproductive age, who were divided into groups according to the use of PGS on 3 and 5 days. To search for the least cost-based and maximally effective (birth of a euploid child) procedure, IVF and IVF/PGS using comparative genomic hybridization (CGH) on day 5 were compared by a decision-making analysis.
Results. Odds ratio (OR) for the onset of pregnancy due to PGS by CGH used on day 5 in the group of patients aged 40 years and older was 3.6 (95% CI, 0.9; 14.1). OR for live births due to PGS by CGH used on day 5 day in the same group was 4.7 (95% CI, 1.1; 19.1). The mean per-live-birth cost of IVF was 754,060 rubles and that of IVF/PGS was 495,797.8 rubles. The per-live-birth cost of treatment by IVF/PGS for infertility was 34% less than that of IVF treatment.
Conclusion. The use of IVF/PGS in patients aged 40 years and older leads to an increase in clinical pregnancy and live birth rates. IVF with PGS using CGH in this patient group is a clinical and cost-effective treatment. The findings support the view that PGS is an important step to plan pregnancy in women of late reproductive age.

Keywords

infertility
aneuploidy
assisted reproductive technologies (ART)
preimplantation genetic screening (PGS)
whole-genome hybridization
late reproductive age
cost-effectiveness analysis

Репродуктивным (фертильным) возрастом женщины называется период, в течение которого она способна к вынашиванию и рождению ребенка (от 15 до 49 лет), в котором отдельно выделяется поздний репродуктивный возраст (ПРВ) (после 35–37 лет). В настоящее время проблема бесплодия у женщин ПРВ является крайне актуальной во всем мире: средний возраст первородящих женщин неуклонно увеличивается, кроме того, возрастает потребность в применении вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ).

Пациентки ПРВ имеют ряд особенностей, усложняющих реализацию репродуктивной функции, по сравнению с пациентками раннего репродуктивного возраста. Во-первых, у женщин старше 35 лет происходит постепенное снижение овариального резерва [1].

После 40 лет скорость атрезии фолликулов увеличивается вдвое [1]. Во-вторых, эта группа женщин, как правило, имеет отягощенный гинекологический анамнез (наружный генитальный эндометриоз, миому матки, гиперплазию эндометрия, оперативные вмешательства на органах малого таза и др.). В-третьих, даже при сохранном овариальном резерве у пациенток старше 35 лет увеличивается риск анеуплоидии ооцитов и, как следствие, эмбрионов, что также снижает вероятность наступления беременности [2, 3].

Одним из наиболее современных методов лечения бесплодия является экстракорпоральное оплодотворение (ЭКО). Однако в группе пациенток ПРВ эффективность ВРТ не превышает 10%, а вероятность наступления беременности снижается на 4,7% из расчета на каждый год жизни женщины старше 30 лет [4].

Преимплантационный генетический скрининг (ПГС) является методом, предотвращающим перенос эмбрионов с аномальным числом хромосом (анеуплодии и числовое нарушение кариотипа). Благодаря этому методу диагностики возможно производить отбор эуплоидных эмбрионов, что, в свою очередь, приведет к увеличению частоты наступления беременности, уменьшению репродуктивных потерь и снижению риска рождения детей с генетическими нарушениями. Несмотря на предполагаемые преимущества от использования ПГС в группе пациенток ПРВ, на сегодняшний день данные об эффективности ПГС у данной категории пациенток противоречивы [5, 6]. Кроме того, высокая стоимость данного метода ограничивает его применение в рутинной клинической практике.

Цель исследования – оценить клиническую и клинико-экономическую эффективность ПГС у пациенток ПРВ.

Материал и методы исследования

В проспективное когортное исследование были включено 85 супружеских пар с бесплодием, обратившихся для лечения бесплодия методами ЭКО в период 2015–2017 гг., с отсутствием противопоказаний к проведению ЭКО и подписанным информированным согласием на участие в исследовании. Критериями включения стали нормальный кариотип обоих супругов и возраст пациентки 40 лет и старше (собственные данные, пороговый возраст анеуплоидии эмбрионов в программе ВРТ). Критериями исключения стало использование донорских гамет или суррогатного материнства, а также развитие осложнений ЭКО в изучаемом цикле.

Пациенты были стратифицированы на две группы: группу 1 составили 32 пациентки, которым была проведена программа ЭКО с ПГС. Группа 1 была стратифицирована на 2 подгруппы в зависимости от вида ПГС: группа 1а – пациентки, которым проводили ПГС методом флуоресцентной гибридизации in situ (FISH)/полногеномной гибридизации (CGH) на 3-и сутки (n=21), группа 1б – пациентки, которым проводили ПГС методом CGH на 5-е сутки (n=11). Группу 2 составили 53 пациентки, которым была проведена программа ЭКО без использования ПГС.

Перед включением в протокол ЭКО все женщины были обследованы согласно Приказу Минздрава России от 30.08.12 №107н «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), противопоказаниях и показаниях к их применению» [7].

Стимуляция функции яичников проводилась с применением рекомбинантного фолликулостимулирующего гормона (рФСГ) или комбинированного препарата рФСГ и лютеинизирующего гормона, и назначением антагонистов гонадотропин-рилизинг-гормона. Триггер овуляции вводился при наличии лидирующих фолликулов диаметром 17 мм и более. В качестве триггера использовали препарат агониста гонадотропин-рилизинг гормона в дозе 0,2 мг. Трансвагинальная пункция яичников осуществлялась через 36 часов после введения триггера овуляции. Оплодотворение ооцитов у всех пациенток осуществлялось методом интрацитоплазматической инъекции сперматозоида в ооцит (ИКСИ).

Морфологическую оценку эмбрионов проводили на 3-и и 5-е сутки после трансвагинальной пункции согласно классификации Gardner и соавт. [8]. Биопсию бластомеров в группе 1а проводили на третий день культивирования эмбрионов in vitro (через 72 часа после аспирации фолликулов), если в эмбрионе визуализировалось как минимум шесть бластомеров. Биопсии подвергали один бластомер. Биопсию осуществляли с помощью микроманипулятора Narishiga (Япония), а для рассечения блестящей оболочки использовали лазерную пушку Fertilase (Германия). Для аспирации бластомера использовали микропипетку Cook (Австралия). Пациенткам в группе 1б биопсию клеток трофоэктодермы бластоцисты проводили на 5–6-й день культивирования эмбрионов in vitro. Хетчинг эмбриона, предшествующий биопсии, проводили на 4–5-й день культивирования эмбрионов с использованием лазерной пушки. Забор клеток с использованием микроманипулятора и подготовку клеток для CGH проводили согласно принятым в рутинной практике методикам [9].

Подготовку ядра для гибридизации in situ проводили согласно протоколу, рекомендуемому фирмой-производителем. Анализ препаратов после процедуры FISH проводили с помощью флуоресцентного микроскопа Axioplan 2 фирмы Zeiss при увеличении 100Х10, оборудованным соответствующим набором фильтров (Orange, Green, Aqua, Blue, Gold). Процедура ПГС методом CGH проводилась с использованием оборудования фирмы Agilent (США). Полногеномную амплификацию ДНК исследуемых бластомеров проводили с помощью набора PicoPlex SingleCell WGA Kit (Rubicon Genomics, США). Качество и количество полученной в ходе амплификации ДНК контролировали с помощью 1,2 агарозного электрофореза. Мечение ампликонов проводили с помощью набора Sure Print G 3 8 х 60 KCGH (Aglient, США), гибридизовали 16 часов, после чего проводили отмывку и сканирование на сканере биологических чипов SureScanMicroarrayScanner. Интерпретацию полученных результатов проводили с помощью программного продукта Agilent CytoGenomics 2.5.8.1.

Все бластоцисты хорошего качества подвергались криоконсервации у пациенток в обеих группах, во всех случаях перенос эмбрионов осуществляли в «криоциклах».

Подготовка эндометрия для переноса криоконсервированных эмбрионов проводилась с использованием циклической гормональной терапии (эстрадиола валерат в дозе 8 мг/сутки с 4–5-го дня менструального цикла, микронизированный прогестерон 400–600 мг/сутки с 15–16-го дня менструального цикла). Перенос эмбрионов осуществляли на 20–21-й день цикла, размораживание эмбрионов осуществляли согласно принятым в клинической практике протоколам.

При наличии подъема уровня сывороточного хорионического гонадотропина через 14 дней после переноса эмбрионов в полость матки регистрировали биохимическую беременность, а при визуализации плодного яйца в полости матки через 21 день после переноса эмбрионов – клиническую беременность.

Для статистического анализа использовался пакет статистических программ Statistica 10 (США). Статистический анализ проводился с применением χ2-теста для сравнения категориальных переменных, t-теста для сравнения средних показателей. Мерой ассоциации для сравнения бинарных данных были отношение шансов (ОШ) с 95% доверительным интервалом (95% ДИ). Корреляционный анализ проводился с использованием непараметрического корреляционного критерия Спирмена. Различия между статистическими величинами считали статистически значимыми при уровне достоверности р<0,05. Анализ затраты-эффективность ПГС был проведен с помощью программы TreeAge Pro Inc (США). Была построена модель принятия решений.

Исследование было одобрено комиссией по этике ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.

Результаты исследования

При оценке клинико-анамнестических характеристик групп сравнения отмечено, что средний возраст и средний индекс массы тела пациенток не имели статически значимых различий. Особенности менструальной функции, гинекологической и соматической заболеваемости пациенток также не различались в группах сравнения. Среднее число беременностей в анамнезе было выше у пациенток группы 1 и составило 4,3±3,0 в группе 1 по сравнению с 2,3±2,1 в группе 2 (р=0,0034). При оценке особенностей протокола овариальной стимуляции значимых различий получено не было (табл. 1).

В группе 1 было получено 179 зрелых ооцитов (в среднем 5,9±3,6 на 1 пациентку), в группе 2 – 314 ооцитов (в среднем 5,6±3,7 на 1 пациентку) (р=0,0023). Все ооциты были оплодотворены методом ИКСИ, частота оплодотворения не различалась между группами. Среднее число бластоцист не различалось между группами (табл. 2).

У пациенток, которым проводили ПГС на 5-е сутки (группа 1б), было зарегистрировано значимо больше клинических беременностей (5 случаев, 45,4%) по сравнению с пациентками, которым проводили ПГС на 3-и сутки (группа 1а, 1 случай, 4,7%), и теми, кому ПГС не проводили (группа 2, 10 случаев, 18,8%) (р=0,0200). Живорождение было зарегистрировано у 5 пациенток (45,4%) группы 1б, 1 пациентки (4,7%) группы 1а и 8 пациенток (15,1%) группы 2 (р=0,0117).

Таким образом, единственным эффективным методом для повышения результативности программ ВРТ стал ПГС методом CGH на 5-е сутки. Напротив, применение ПГС на 3-и сутки снижало эффективность программ ВРТ. ОШ наступления беременности при применении ПГС методом CGH на 5-е сутки в группе пациенток в возрасте 40 лет и старше составило 3,6 (95% ДИ 0,9; 14,1). ОШ живорождения при применении ПГС методом CGH на 5-е сутки в группе пациенток в возрасте 40 лет и старше составило 4,7 (95% ДИ 1,1; 19,1).

На втором этапе исследования был проведен анализ клинико-экономической эффективности ПГС методом CGH на 5-е сутки у пациенток ПРВ. Была создана модель принятия решений (TreeAge Pro Inc), в которой было проведено сравнение 2 стратегий: рутинного ЭКО и ЭКО с ПГС методом CGH у бесплодных пациенток ПРВ для определения минимальной стоимости одного живорождения на одного пациента, проходящего вышеуказанное лечение бесплодия.

В анализе были учтены только прямые затраты на проведение ЭКО и ЭКО/ПГС, то есть непосредственная стоимость медицинских услуг. Стоимость ЭКО в свежем цикле рассчитывалась как норматив финансовых затрат на 1 случай применения процедуры за счет средств обязательного медицинского страхования в 2016 году [10]. Стоимость ПГС рассчитывалась по прайсу ФГБУ НЦАГиП им. В.И. Кулакова Минздрава России и включала стоимость биопсии эмбриона и подготовки бластомеров для ПГС методом СGH для 4 эмбрионов (среднее число эмбрионов у пациенток в возрасте 40 лет и старше; собственные данные).

Вероятность живорождения при применении одного цикла ЭКО у пациенток ПРВ составила 15% по сравнению с 45% для пациенток ПРВ при применении одного цикла ЭКО/ПГС. Средняя стоимость лечения методом ЭКО составила 113 109 руб. по сравнению со 223 109 руб. при лечении методом ЭКО/ПГС.

Средняя стоимость лечения методом ЭКО для одного живорождения составила 754 060 руб., при лечении методом ЭКО/ПГС – 495 797,8 руб. Стоимость лечения бесплодия методом ЭКО/ПГС в расчете на одно живорождение была на 34% меньше по сравнению со стоимостью лечения бесплодия методом ЭКО (табл. 3).

Показатель приращения затрат (инкрементный показатель соотношения стоимости и эффективности – ICER) на ведение пациентки ПРВ при назначении или не назначении ПГС составил 258 262,2 руб. Показатель ICER означает, что для достижения дополнительного 1% эффективности (то есть 1% случаев живорождения) при отсутствии проведения ПГС как более эффективной методики требуется дополнительное вложение 258 262,2 руб.

Обсуждение

В настоящее время проблема восстановления фертильности у женщин ПРВ находится в эпицентре внимания врачей во всем мире. Программа ЭКО является одним из наиболее современных методов лечения бесплодия. При этом возраст является одним из основных факторов, влияющих на эффективность программ ВРТ. В связи с тем, что доля первородящих женщин ПРВ стремительно увеличивается с каждым годом, возрастает потребность в изучении методов, позволяющих повысить эффективность ВРТ у данной категории пациенток. Таким методом в настоящее время является ПГС, позволяющий производить отбор эуплоидных эмбрионов, тем самым повышая частоту наступления беременности. Несмотря на большое количество исследований в данной области, вопрос о необходимости проведения ПГС в данной группе пациенток остается предметом дискуссии.

В результате проведенного исследования установлено, что ПГС методом CGH на 5-е сутки в группе пациенток в возрасте 40 лет и старше увеличивает шансы наступления беременности в 3,6 раза и живорождения в 4,7 раза, что делает данный метод наиболее эффективным в циклах ЭКО/ПГС. Похожие результаты были получены в исследовании F. Ubaldi и соавт.: несмотря на то, что доля эуплоидных эмбрионов у пациенток в возрасте 44 лет и старше не превышала 14%, частота живорождения в расчете на перенос эмбриона составила 57,1% [11].

Интересно отметить, что проведение ПГС на 3-и сутки, напротив, снижало эффективность ВРТ. Полученные данные согласуются с исследованием S. Debrock и соавт., в котором применение ПГС методом FISH не влияло на эффективность ВРТ у пациенток 35 лет и старше [12]. В мета-анализе S. Mastenbroek и соавт. применение ПГС аналогичным способом не влияло на эффективность ВРТ в общей популяции пациенток, но снижало частоту живорождения в группе пациенток позднего возраста [13]. Неэффективность ПГС с изучением дробящегося эмбриона может быть связана с мозаицизмом, а также с потенциальной способностью эмбриона к самокоррекции [14]. Некоторые авторы также не исключают прямого негативного воздействия биопсии на эмбрион [13]. Необходимо учитывать, что в большинстве исследований эффективности ПГС на 3-и сутки генетическое исследование проводилось методом FISH, а значит, анализу подвергались ограниченное число хромосом, что также могло оказать влияние на полученные результаты.

На втором этапе исследования был проведен анализ затраты-эффективность ЭКО с ПГС методом CGH на 5-е сутки у пациенток ПРВ. ЭКО/ПГС является более клинико-экономически эффективным методом лечения бесплодия у пациенток ≥40 лет. Для достижения одного дополнительного процента живорождения в программах ВРТ в случае применения ПГС методом CGH на 5-е сутки культивирования эмбрионов происходит экономия 258 262,2 рублей по сравнению с отсутствием проведения ПГС. Противоположные результаты получены в исследовании J. Mersereau и соавт.:

ЭКО/ПГС не являлся клинико-экономически выгодной стратегией в подгруппах пациенток различного возраста [15]. Следует отметить, что в данной работе ПГС проводили методом FISH, что могло оказывать влияние как на стоимость, так и на эффективность метода.

Заключение

Суммируя все вышеизложенное, в данном исследовании показано, что у пациенток в возрасте 40 лет и старше, которым проводили ПГС методом CGH при биопсии бластоцисты, возрастала частота наступления клинической беременности и живорождения. Проведение ЭКО с ПГС методом CGH в данной группе пациенток является клинико-экономически выгодной стратегией. Полученные результаты подтверждают точку зрения, что ПГС является важным этапом при планировании беременности у пациенток ПРВ.

Supplementary Materials

  1. Table 1. Clinical and anamnestic data of patients
  2. Table 2. Parameters of oogenesis and early embryogenesis in comparison groups
  3. Table 3. The main results of the treatment of infertility by IVF patients later hisreproductive age and th

References

1. Мишиева Н.Г. Бесплодие у женщин позднего репродуктивного возраста: принципы диагностики и лечения в зависимости от овариального резерва: автореф. дисс. … д-ра мед. наук. М.; 2008. [Mishieva N.G. Infertility in women of late reproductive age: the principles of diagnosis and treatment, depending on the ovarian reserve: the author’s abstract. diss. ... Dr. med. sciences. Moscow; 2008. (in Russian)]

2. Schoolcraft W.B., Katz-Jaffe M.G., Stevens J., Rawlins M., Munne S. Preimplantation aneuploidy testing for infertile patients of advanced maternal age: a randomized prospective trial. Fertil. Steril. 2009; 92(1): 157-62. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.05.029

3. Handyside A.H., Montag M., Magli M.C., Repping S., Harper J., Schmutzler A. et al. Multiple meiotic errors caused by predivision of chromatids in women of advanced maternal age undergoing in vitro fertilisation. Eur. J. Hum. Genet. 2012; 20(7): 742-7. Available at: http://dx.doi.org/10.1038/ejhg.2011.272

4. Bukulmez O., Arici A. Assessment of ovarian reserve. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2004; 16(3): 231-7.

5. Gleicher N., Kushnir V.A., Barad D.H. Preimplantation genetic screening (PGS) still in search of a clinical application : a systematic review. Reprod. Biol. Endocrinol. 2014; 12(1): 10-8.

6. Keltz M.D., Vega M., Sirota I., Lederman M., Moshier E.L., Gonzales E., Stein D. Pre implantation Genetic Screening (PGS) with Comparative Genomic Hybridization (CGH) following day 3 single cell blastomere biopsy markedly improves IVF outcomes while lowering multiple pregnancies and miscarriages. J. Assist. Reprod. Genet. 2013; 30(10): 1333-9.

7. Приказ Минздрава России №107н От 30 Августа 2013 г. “О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению”. Доступно по: https://www.rosminzdrav.ru/documents/6787-Prikaz-Minzdrava-Rossii-107n- [Order of the Russian Ministry of Health No.107n dated August 30, 2013 “On the order of use of assisted reproductive technologies, contraindications and limitations to their use.” Available for: https://www.rosminzdrav.ru/documents/6787-Prikaz-Minzdrava-Rossii-107n- (in Russian)]

8. Gardner D., Schoolcraft W.B. Culture and transfer of human blastocysts. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 1999; 11(3): 307-11.

9. Schoolcraft W.B., Fragouli E., Stevens J., Munne S., Katz-Jaffe M.G., Wells D. Clinical application of comprehensive chromosomal screening at the blastocyst stage. Fertil. Steril. 2010; 94(5): 1700-6. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.10.015

10. Постановление Правительства РФ от 18.10.2013 N 932 (ред. от 29.05.2014) “О программе государственных гарантий бесплатного оказания гражданам медицинской помощи на 2014 год и на плановый период 2015 и 2016 годов.” [Decree of the Government of the Russian Federation No. 932 of October 18, 2013 (Edited on May 29, 2014) “On the program of state guarantees of free medical assistance to citizens for 2014 and for the planning period of 2015 and 2016.” (in Russian)]

11. Ubaldi F.M., Cimadomo D., Capalbo A., Vaiarelli A., Buffo L., Trabucco E. et al. Preimplantation genetic diagnosis for aneuploidy testing in women older than 44 years: A multicenter experience. Fertil. Steril. 2017; 107(5): 1173-80. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.03.007

12. Debrock S., Melotte C., Spiessens C., Peeraer K., Vanneste E., Meeuwis L. et al. Preimplantation genetic screening for aneuploidy of embryos after in vitro fertilization in women aged at least 35 years: a prospective randomized trial. Fertil. Steril. 2010; 93(2): 364-73. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.10.072

13. Mastenbroek S., Twisk M., Van der Veen F., Repping S. Preimplantation genetic screening: a systematic review and meta-analysis of RCTs. Hum. Reprod. Update. 2011; 17(4): 454-66.

14. Barbash-Hazan S., Frumkin T., Malcov M., Yaron Y., Cohen T., Azem F. et al. Preimplantation aneuploid embryos undergo self-correction in correlation with their developmental potential. Fertil. Steril. 2009; 92(3): 890-6. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.07.1761

15. Mersereau J.E., Plunkett B.A., Cedars M.I. Preimplantation genetic screening in older women: a cost-effectiveness analysis. Fertil. Steril. 2008; 90(3): 592-8.

Received 09.06.2017

Accepted 23.06.2017

About the Authors

Dolgushina Nataliya Vitalievna, M.D., Ph.D., M.P.H., Head of R&D Department,
Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia; professor of the Deparment of Obstetrics, Gynecology, Perinatology, and Reproductology, Institute of Professional Education, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954384977. E-mail: n_dolgushina@oparina4.ru
Korotchenko Olga Eugenievna, M.D., Post-graduate student, Department of assistive technologies in infertility treatment, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail: okorotchenko@mail.ru
Beyk Ekaterina P., Post-graduate student, Department of assistive technologies in infertility treatment, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +79050343333. E-mail: Ekaterina.beyk@mail.ru
Abdurakhmanova Nigora Farukhovna, M.D., Post-graduate student, Department of assistive technologies in infertility treatment, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail: abd.nigora@yandex.ru
Il`ina Ekaterina Olegovna, undergraduate, Faculty of Fundamental Medicine, MSU. 119192, Russia, Moscow, Lomonosovskiy prospect 31. E-mail: ekaterina.ilina1994@mail.ru
Kulakova Elena Vladimirovna, M.D., Ph.D., senior researcher, Department of assistive technologies in infertility treatment, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. E-mail: e_kulakova@oparina4.ru

For citations: Dolgushina N.V., Korotchenko O.E., Beik E.P., Abdurakhmanova N.F., Ilyina E.O., Kulakova E.V. Clinical and cost-effectiveness analysis of preimplantation genetic screening in patients of late reproductive age. Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2017; (11): 56-61. (in Russian)
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.11.56-61

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.