Investigation of the kinetics of protoporphyrin IX accumulation in vulvar tissues after oral administration of 5-aminolevulinic acid

Denisova E.D., Bulgakova N.N., Apolikhina I.A., Aslanyan K.O.

Academician V. I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health and Social Development of Russia, Moscow; Department of Obstetrics, Gynecology, Perinatology, and Reproductology, Faculty for Postgraduate Training of Physicians, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University, Moscow; A.M. Prokhorov General Physics Institute, Russian Academy of Sciences, Moscow
Objective: to study the kinetics of 5-aminolevulinic acid-induced protoporphyrin IX in the vulvar skin, mucosa, and condylomata acuminata (CA) of women after oral administration of alasens solution and to choose optimal time regimens for the fluorescence diagnosis and photodynamic therapy of vulvar CA.
Subjects and methods. The study covered 14 patients with CA. Alasens was orally given in a dose of 25 mg/kg body weight. A Spectr-Cluster computerized fluorescence spectral diagnostic system was used to measure spectra before and 1, 2, 3, 5, 7 hours after oral administration of alasens. To estimate tissue protoporphyrin accumulation, the authors employed the index Df that was determined from the integral intensity of the spectrum recorded in the area of the maximum protoporphyrin IX autofluorescence (620-660 nm) in reference to that (470-520nm). The mean values of Df in the vulvar skin, mucosa, and CA were calculated for each patient. The resultant mean values were used to estimate the mean values of Df for each time point in all the patients. The fluorescence contrast (Cf) of CA in the surrounding intact tissue was determined from the averaged (for all the patients) value of Df for CA with respect to that in intact tissue.
Results. Local fluorescence spectroscopy has shown that the optimal time for the fluorescence diagnosis of vulvar CA is 3 to 7 hours after use of alasens solution. Photodynamic therapy may be performed in the above period, by causing minimal damage to the surrounding intact tissues.

Keywords

fluorescence diagnosis
local fluorescence spectroscopy
5-aminolevulinic acid
protoporphyrin IX
vulvar condylomata acuminate

Известно, что кондиломы половых органов, вызываемыевирусомпапилломычеловека(ВПЧ), являются одним из самых распространенных в мире заболеваний, передающихся половым путем [1, 6]. Проблема их диагностики и лечения привлекает внимание исследователей различных специальностей многих стран ввиду высокой контагиозности и тенденции к распространению данного заболевания, а также способности ВПЧ инициировать злокачественные процессы нижних отделов половых путей женщины.

В настоящее время для лечения остроконечных кондилом (ОК) вульвы используют крио и лазерную терапию, радиоволновое и хирургическое иссечение, химиопрепараты и другие методы [1]. Однако их эффективность остается низкой, а частота рецидивирования – высокой [6]. Поэтому поиск и клиническая оценка эффективности новых методов лечения заболеваний наружных половых органов, обусловленных ВПЧ, остается актуальной проблемой гинекологии.

В связи с этим особый интерес представляют методы флуоресцентной диагностики (ФД) и фотодинамической терапии (ФДТ), которые широко применяются в последнее десятилетие для диагностики и лечения как онкологических, так и неонкологических заболеваний, в том числе в гинекологии [2, 9, 17]. Метод ФДТ основан на деструкции биологических тканей в результате взаимодействия светового излучения определенной длины волны и фотосенсибилизатора (ФС), предварительно введенного в организм пациента. В результате поглощения света молекулой ФС возникает серия фотофизических процессов, приводящих к образованию синглетного кислорода, крайне реактивного цитотоксического агента [4]. Мишенями фотодинамического воздействия являются непосредственно патологические клетки, сосудистая система патологического очага и окружающих тканей и иммунная система [9].

При системном введении ФС, применяемые в клинической практике, длительно задерживаются в патологических очагах (включая ткани злокачественных опухолей, очаги воспаления и клетки, инфицированные вирусом) и быстро выводятся из окружающей здоровой ткани [7]. Данный феномен, в сочетании со способностью ФС флуоресцировать в красной области спектра, лежит в основе метода ФД [7, 8]. Флуоресценция ФС позволяет также изучать кинетику их накопления и выведения в тканях in vivo и ex vivo, что крайне необходимо на стадии разработки метода ФДТ для лечения конкретной патологии для оптимизации времени проведения сеансов светового воздействия [10, 12].

При системном введении экзогенных ФС,ввиду их выраженной кожной фототоксичности, необходимо соблюдение светового режима, нанесение солнцезащитных средств и прием антиоксидантов [9]. Поэтому особое внимание уделяется разработке методов ФД и ФДТ с использованием 5-аминолевулиновой кислоты (5-АЛК) [2, 7, 17], которая является эндогенным соединением, одним из промежуточных продуктов синтеза гема. Ее избыточное введение в организм приводит к ингибированию последнего этапа синтеза гема и накоплению его предшественника – эндогенного протопорфирина IX, который обладает как фотосенсибилизирующими, так и флуоресцентными свойствами [7, 17]. При этом в патологических клетках индуцируется и накапливается больше протопорфирина IX, чем в окружающих нормальных тканях [7, 8, 11, 17].

Помимо эндогенного происхождения, большим преимуществом 5-АЛК является возможность ее местного применения в виде мазей, гелей и растворов, что позволяет избежать системного воздействия.

Клинические испытания ФД и ФДТ фоновых и предраковых заболеваний вульвы, влагалища и шейки матки при местном нанесении препаратов на основе 5-АЛК проводились как в нашей стране, так и за рубежом и представлены в ряде обзоров [2, 17]. Анализ публикаций показывает, что эффективность ФДТ во многом зависит от времени экспозиции 5-АЛК и ее биодоступности в тканях, поскольку оба фактора влияют на накопление 5-АЛК-индуцированного протопорфирина IX [11, 15–19]. Применение ФДТ при местном использовании мази 5-АЛК для лечения кератинизированных ОК вульвы оказалось
неэффективным в силу ограниченного проникновения индуктора в утолщенный поверхностный слой эпидермиса [15]. Однако можно предположить, что данное ограничение не выполняется при пероральном приеме 5-АЛК, поскольку в этом случае утолщенный эпидермис не препятствует накоплению ФС в ткани. Анализ отечественной и зарубежной литературы показал, что такие исследования ранее не проводились.

Как отмечалось ранее, при разработке методов ФДиФДТ ключевым моментом является изучение
кинетики накопления ФС как в нормальных, так и в патологических очагах. Это позволяет определить временнóй интервал, при котором содержание ФС в патологическом очаге максимально, а в окружающих нормальных тканях – минимально, т.е. имеет место максимальный флуоресцентный контраст между патологическим очагом и окружающими нормальными тканями.

В связи с этим целью данной работы было изучение кинетики накопления 5-АЛК-индуцированного протопорфирина IX в коже, слизистой оболочке и ОК вульвы у женщин после перорального приема раствора аласенса и выбор оптимальных временнeх режимов проведения ФД и ФДТ. Исследование проводили in vivo методом локальной флуоресцентной спектроскопии (ЛФС) [13, 14].

Материал и методы исследования

В исследовании приняли участие пациентки с ОК (n=14). Средний возраст пациенток составил 24±0,5 года. Каждая третья пациентка имела в анамнезе уреаплазмоз и кандидоз, у каждой второй пациентки имелась патология шейки матки (лейкоплакия, атипический эпителий, овули Наботи, цервикальная интраэпителиалная неоплазия).

В исследовании применяли препарат аласенс, который имеет в своем составе стандартную субстанцию 5-АЛК (ГНЦ РФ «НИОПИК», Москва), перорально в дозе 25 мг/кг массы тела.

Для проведения ЛФС использовали компьютеризованную спектрально-флуоресцентную диагностическую установку «Спектр-Кластер» (ООО «Кластер», ИОФ РАН, Москва). Измерения проводили с помощью волоконно-оптического диагностического катетера, выходная мощность возбуждающего лазерного излучения с конца катетера составляла не более 3 мВт. Для возбуждения флуоресценции использовали лазерное излучение с длиной волны 407 нм, которое попадает в полосу максимального поглощения порфиринов. Спектры регистрировали в диапазоне 420–750 нм, спектральное разрешение при использовании волоконно-оптического диагностического катетера составляло <5 нм.

Для проведения измерений волоконно-оптический диагностический катетер подводили к поверхности аногенитальной области. Спектры измеряли при контакте катетера с поверхностью ткани в участках визуально неизмененной кожи, слизистой оболочки вульвы и в ОК. Количество спектров, записываемых при каждом обследовании, зависело от числа визуализируемых кондилом и составляло от 15 до 40 (в среднем около 20). Спектры измеряли до приема аласенса и через 1, 2, 3, 5, 7 ч после его перорального приема.

Для оценки накопления протопорфирина IX в тканях использовали спектрально-флуоресцентный диагностический параметр D . Величину данного параметра определяли по отношению интегральной интенсивности регистрируемого спектра в области максимальной флуоресценции протопорфирина IX (620–660 нм) к таковой в области максимума аутофлуоресцентного изучения (470–520 нм). Данная методика оценки спектрально-флуоресцентных данных была разработана совместно МНИОИ им. П.А. Герцена и ИОФ им. А.М. Прохорова РАН для флуоресцентной диагностики ранних форм рака с использованием 5-АЛК [8, 14].

На установке «Спектр-«Кластер» величина параметра D автоматически рассчитывается в реальном режиме времени в каждой точке ткани и вносится в электронный протокол локальных измерений спектров. На основании протоколов исследования вычисляли среднее значение параметра Df в коже вульвы, слизистой оболочке вульвы, в ОК для каждой пациентки. На основании полученных средних значений вычисляли средние значения параметра D для каждой временнóй точки у пациенток всей группы.

Флуоресцентный контраст (К ) ОК на фоне окружающей нормальной ткани определяли по отношению усредненной (по всей группе пациенток) величины параметра D для ОК, к таковой в нормальной ткани [13].

Статистические расчеты производились с помощью пакета «Analysis Tool Pack», Statistica v. 7.0. Для каждого количественного параметра были определены: среднее значение (М), среднеквадратичное отклонение (δ), стандартная ошибка среднего (m), медиана (Ме), 95% доверительный интервал. Для отображения разброса значений и других характеристик переменных использованы коробчатые диаграммы [5].

Результаты исследования и обсуждение

При возбуждении в области 407 нм спектры аутофлуоресценции тканей вульвы, измеренные до приема аласенса, были близки по форме и характеризовались широкой полосой излучения с максимумом в районе 480–500 нм. Данные спектры являются результатом наложения спектров флуоресценции отдельных эндогенных флуорофоров, флуоресценция которых возбуждается излучением с данной длиной волны. К ним относятся элементы соединительной ткани коллаген и эластин, различные виды флавинов – элементов дыхательной цепи, а также порфирины. Последние, как известно, участвуют
в биосинтезе гема в клетках или являются продуктами биосинтеза сапрофитной или патогенной микрофлоры при бактериальной инфекции [7]. Необходимо отметить, что ни у одной из пациенток данной группы в спектрах аутофлуоресценции исследуемых тканей до приема аласенса не было выявлено характеристических пиков флуоресценции эндогенных порфиринов в красной области спектра. Величина диагностического параметра D составляла 0,1–0,2 отн. ед.

На рис. 1 (см. на вклейке) представлены типичные спектры лазер-индуцированной флуоресценции, измеренные у отдельной пациентки через 1 ч после перорального приема аласенса, в которых на фоне широкой полосы излучения аутофлуоресценции появляется характерный пик флуоресценции протопорфирина IX в красной области спектра с максимумами на 635 нм. Наличие этого пика свидетельствует о начале процесса индукции эндогенного протопорфирина IX. Величина диагностического параметра D возрастет до 0,5 в спектрах здоровой слизистой оболочки и до 0,7 в спектрах ОК.

На (рис 2, см. на вклейке) представлены типичные спектры флуоресценции, измеренные у той же пациентки через 5 ч после приема аласенса. Можно видеть, что интенсивность индуцированной флуоресценции в красной области спектра значительно возрастает во всех исследованных тканях, причем наибольшая интенсивность протопорфирина IX регистрируется в спектрах ОК.

Величина диагностического параметра D возрастет до 0,6 в спектрах здоровой кожи и до 4,4 в
спектрах слизистой оболочки вульвы. В спектрах, измеренных в участках ОК, величина параметра D возрастет наиболее значительно до 11,9.

Результаты оценки кинетики накопления ФС в тканях вульвы у всех пациенток группы представлены на рисунке 3.

Как видно на данном рисунке, накопление протопорфирина IX в слизистой оболочке и ОК вульвы значительно возрастет через 3 ч после перорального приема и в последующие 4 ч меняется незначительно (фаза плато). Через 7 ч в этих тканях регистрируется второй пик накопления протопорфирина IX. Что касается кожи вульвы, максимум накопления протопорфирина IX достигается через 3 ч после приема аласенса и сохраняется на этом уровне в течение всего срока наблюдения.

На рис. 3 (см. на вклейке) показаны результаты оценки величины возникающего флуоресцентного контраста (К ) ОК относительно нормальной слизистой оболочки и кожи вульвы.

Можно видеть, что максимальный флуоресцентный контраст (К =2) относительно слизистой оболочки вульвы достигается уже через 2 ч после приема аласенса и остается на этом уровне во все сроки наблюдений. Относительно кожи вульвы флуоресцентный контраст значительно выше во все сроки наблюдений и достигает максимальных значений через 4 ч (К =8) и 7 ч (К =10) после приема аласенса.

Изучение накопления 5-АЛК-индуцированного протопорфирина IX в ОК вульвы впервые проведено в работе M.K. Fehr и соавт. после местного нанесения 5-АЛК (в виде 2,5% мази и 20% крема) [15]. С помощью флуоресцентного анализа изображений in vivo была показана повышенная индукция ФС как в ОК, так и в невидимых глазом латентных очагах. Максимальный флуоресцентный контраст между ОК и близлежащей нормальной тканью достигался через 3 ч после наложения 2,5% крема 5-АЛК. Максимальная интенсивность флуоресценции протопорфирина IX регистрировалась через 2–3 ч, при этом ее интенсивность в эпидермисе была в 2 раза выше, чем в сосочковом слое дермы. Также было показано, что утолщенный поверхностный слой эпидермиса препятствует проникновению 5-АЛК,
в то время как 5-АЛК легко проникает в неороговевший многослойный плоский эпителий и
индуцирует выработку в нем протопорфирина IX. Авторы заключили, что ФДТ кератинизированных кондилом вульвы может быть неэффективной при местном использовании мази 5-АЛК.

Позднее в работе Stefanaki и соавт. [18] было показано, что максимум накопления 5-АЛК-индуцированного протопорфирина IX в ОК вульвы достигается через 6 ч после нанесения 20% мази 5-АЛК и сохраняется в течение последующих 5 ч.

Результаты, полученные в данной работе, показывают, что после перорального приема аласенса
во всех тканях вульвы индуцируется протопорфирин IX. Накопление ФС в кожных покровах подтверждается временнeми фототоксическими реакциями, которые наблюдались у 23% пациенток в виде гиперемии кожных покровов при воздействии солнечного света [3]. Накопление ФС в ОК достигает максимальных значений через 3 ч, сохраняется на этом уровне в течение 3 ч и затем незначительно возрастает через 7 ч после приема. Изучение флуоресцентного контраста ОК
относительно окружающих нормальных тканей показало, что он возникает уже через 2 ч после
приема и сохраняется во все последующие сроки наблюдения. Это свидетельствует о повышенном
накоплении 5-АЛК-индуцированного протопорфирина IX в ОК и позволяет сделать вывод о
возможности ФД данной патологии при пероральном приеме 5-АЛК. Оптимальным сроком для проведения ФД является интервал от 3 до 7 ч после приема, когда величина флуоресцентного
контраста достигает максимальных значений и патологические очаги могут быть визуализированы на фоне окружающих нормальных тканей по характерному свечению в красной области спектра. В то же время, имеющиеся различия в содержании ФС позволяют сделать вывод о возможности проведения в указанные сроки ФДТ с минимальным повреждением окружающих нормальных тканей.

Таким образом, в данной работе показана принципиальная возможность и выявлены оптимальные сроки проведения ФД и ФДТ ОК вульвы при пероральном приеме препарата аласенс.

References

1. Apolihina I.A. Papillomavirusnaja infekcija genitalij u zhenwin – M., GJeOTAR-Media, 2002.
2. Denisova E.D., Apolihina I.A., Bulgakova N.N. Fluorescentnaja diagnostika i fotodinamicheskaja terapija: vozmozhnosti primenenija pri zabolevanijah nizhnih otdelov genital'nogo trakta // Akush. i gin. – 2010. – № 3. – S. 17–21.
3. Denisova E.D. Fluorescentnaja diagnostika i fotodinamicheskaja terapija ostrokonechnyh kondilom vul'vy: Avtoref. dis. ... kand. med. nauk. – M., 2011.
4. Krasnovskij A.A. Fotodinamicheskoe dejstvie i singlentnyj kislorod // Biofizika. – 2004. – T. 9, № 2. – S. 305–321.
5. Metodologija i tehnologii sovremennogo analiza dannyh / Pod red. V.P. Borovikova. – 2-e izd. – M.: Gorjachaja linija – Telekom, 2008.
6. Rogovskaja S.I. Papillomavirusnaja infekcija nizhnego otdela genitalij: klinika, diagnostika, lechenie: Avtoref. dis. ... d-ra med. nauk. – M., 2003.
7. Rusakov I.G., Sokolov V.V., Bulgakova N.N. i dr. Fluorescentnye metody diagnostiki i poverhnostnyj rak mochevogo puzyrja: sovremennoe sostojanie problemy // Urologija. – 2008. – № 3. – S. 67–71.
8. Sokolov V.V., Chissov V.I., Filonenko E.V. i dr. Fluorescentnaja diagnostika nachal'nogo central'nogo raka legkogo // Pul'monologija. – 2005. – № 1. – S. 107–116.
9. Sokolov V.V., Jakubovskaja R.I., Luk'janec E.A. Fotodinamicheskaja terapija: istorija razvitija i sostojanie problemy // Hirurg. – 2008. – № 5. – S. 15–21.
10. Suhin D.G. Razrabotka metodiki prolongirovannoj fotodinamicheskoj terapii: Avtoref. dis. ... kand. med. nauk. – M., 2004.
11. Chulkova E.I. Fluorescentnaja diagnostika i fotodinamicheskaja terapija fonovyh i predrakovyh zabolevanij vul'vy s primeneniem 20% mazi Alasens: Avtoref. dis. … kand. med. nauk. – M., 2007.
12. Jagudaev D.M., Bulgakova N.N., Sorokatyj A.E. i dr. Fluorescentnoe detektirovanie fotosensibilizatora fotoditazina v adenome predstatel'noj zhelezy cheloveka // Urologija. – 2006. – № 2. – S. 20–23.
13. Bulgakova N.N., Kazachkina N.I., Sokolov V.V. et al. Local fluorescence spectroscopy and detection of malignancies using laser excitation at various wavelengths // Laser Phys. – 2006. – Vol. 16, № 5. – P. 889–895.
14. Bulgakova N., Ulijanov R., Vereschagina K. et al. In vivo local fluorescence spectroscopy in PDD of superficial bladder cancer // Med. Laser Appl. – 2009. – Vol. 24. – P. 247–255.
15. Fehr M.K., Chapman C.F., Krasieva T. et al. Selective photosensitizer distribution in vulvar condyloma acuminatum after topical application of 5-aminolevulinic acid // Am. J. Obstet. Gynecol. – 1996. – Vol. 174, № 3. – R. 951–957.
16. Liu Y.X., Zheng H.Y, Liu X.R. 5-aminolaevulinic acid-photodynamic therapy for the treatment of cervical condylomata acuminata // Chin. Med. Sci. J. – 2009. – Vol. 24, № 3. – R. 151–155.
17. Löning M., Diddens H., Friedrich M. et al. Fluorescence diagnosis and photodynamic therapy with 5-aminolevulinic acid induced protoporphyrin IX in gynecology: an overview // Zbl. Gynäkol. – 2006. – Bd. 128, № 6. – S. 311–317.
18. Stefanaki I.M., Georgiou S., Themelis G.S. et al. In vivo fluorescence kinetics and photodynamic therapy in condylomata acuminate // Br. J. Dermatol. – 2003. – Vol. 149, № 5. – R. 972–976.
19. Wang X.L., Wang H.W., Huang Z. et al. Study of protoporphyrin IX (PpIX) pharmacokinetics after topical application of 5-aminolevulinic acid in urethral condylomata acuminata // Photochem. Photobiol. – 2007. – Vol. 83, № 5. – R. 1069–1073.

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.