Infiltrating endometriosis of the urinary tract: Mechanisms of growth and progression. Clinical, morphological, and immunohistochemical examinations

Khachatryan A.M., Kogan E.A., Chuprynin V.D., Paramonova N.B., Adamyan L.V., Khilkevich E.G., Yazykova O.I.

Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia; I.M. Sechenov First Moscow State Medical University; Moscow State University of Medicine and Dentistry
Objective: to reveal the clinical, morphological, and immunohistochemical features of infiltrating endometriosis of the urinary tract, as well as the role of cells with the signs of stemness in its pathogenesis.
Subjects and methods. The investigation enrolled 62 patients who had been examined and treated at the V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology for infiltrating endometriosis involving the urinary tract in the period February 2010 to May 2015. The patients were divided into two groups. Group 1 consisted of patients with infiltrating endometriosis of the urinary tract who had sought medical advice for this disease for the first time. Group 2 included patients with infiltrating endometriosis of the urinary tract who had been previously treated for endometriosis. A control group (Group 3) was made up for immunohistochemical examination.
Groups 1 and 2 patients underwent physical examination and all necessary clinical, laboratory, and instrumental studies (ultrasonography, magnetic resonance imaging, computed tomography, coloscopy, and cystoscopy) for specifying the diagnosis and preparing for surgical treatment. The latter was performed in 61 patients; 1 patient was discharged home prior to surgery due to family circumstances. The normal endometrium during the proliferative phase, which had been taken from 10 women (surrogate mothers), was examined in the control group (Group 3). Histological examination was performed in 61 patients. Immunohistochemical examination was done in 25 patients: 5 from Group 1, 10 from Group 2, and in 10 from the control group.
Results. In recurrent endometriosis of the urinary tract, the intestine was more commonly involved in the endometrioid process. In Group 2, double endometrioid infiltrations of various intestinal portions were also encountered in the same patient. Morphological examination showed that the endometrioid foci possessed the properties of active foci. The recurrent foci more frequently displayed cystically transformed glands with polypoid proliferations of the epithelium and fibrosis of the adjacent tissues. Studying the results of immunohistochemical reactions discovered the specific features of the expression of epithelial and mesenchymal differentiation markers (CKWw, Cld3, and Vimentin), and those of stemness markers (PTEN, CD15, ALDH1, Musashi, and SOX2) in the endometrioid heterotopies and autologous endometrium.
Conclusion. The endometrioid heterotopies differ from the autologous endometrium not only in their structure, but also in the degree of maturity of cells and their molecular arrangement according to Vimentin-у, Musashi, ALDH1, CD15, and SOX2. The endometrioid heterotopies have higher expression of the stemness markers, suggesting their relative immaturity, which manifests itself as higher active proliferation and infiltrative growth.

Keywords

endometriosis of the urinary tract
immunohistochemical examination
expression of stemness markers in the endometrioid foci
epithelial-mesenchymal transformation

Эндометриоз – генетически обусловленное, хроническое, дисгормональное, иммунозависимое заболевание с разрастанием ткани, аналогичной по морфологическому строению и функции эндометрию, за пределами слизистой оболочки матки.

Поражение мочевыделительной системы эндометриозом встречается редко и составляет 1–2% из всех случаев эндометриоза [1]. Чаще всего поражается мочевой пузырь (84%), поражение мочеточников составляет 10%, причем левый мочеточник поражается чаще, чем правый [2], почки – 4%, а уретра поражается в 2% наблюдений. По литературным данным за последние годы увеличилась частота заболеваемости (0,3–12%).

В патогенезе эндометриоза мочевыводящиx путей авторы обсуждают все 4 основныx патогенетическиx теории развития эндометриоза: эмбриональная теория [3, 4] миграционная или метастатическая [5], трансплантационная (ретроградная менструация) [6, 7] и ятрогенная теория [4, 8]. В последние годы возобновлены исследования по изучению роли стволовых клеток эндометрия в возникновении эктопических эндометриоидных очагов [9]. Для детекции стволовых клеток эндометрия и эндометриоидных очагов авторы использовали разные маркеры, Oct-4 [10], мРНК Oct4 [11], Musashi-1 [12], Bcl-2, CD117 и CD34 [13], CD13 и CD9 [14]. Данных по содержанию в эндометрии и эндометриальных гетеротопиях одних из основных маркеров стволовости ALDH1 и CD15 в доступной литературе нами не найдено. Кроме того, остаются дискуссионными механизмы роста эндометриоидных гетеротопий и участие в них эпителиально-мезенхимальной трансдифференцировки.

Цель исследования: выявить клинико-морфологические и иммуногистохимические особенности, а также роль клеток с признаками стволовости в патогенезе инфильтративного эндометриоза мочевыводящих путей.

Материал и методы исследования

В исследование были включены 62 пациентки, проходивших обследование и лечение в НЦАГиП им. В.И. Кулакова по поводу инфильтративного эндометриоза с поражением мочевыводящих путей в период с февраля 2010 по май 2015 г.

Пациентки были разделены на две группы. I группу составили пациентки с инфильтративным эндометриозом мочевыводящих путей, обратившиеся впервые по поводу заболевания. II группу составили пациентки с инфильтративным эндометриозом мочевыводящих путей, которые ранее получали лечение по поводу эндометриоза. Для иммуногистохимического исследования создана контрольная группа (III).

Пациентки I и II группы проходили физикальное обследование, были проведены все необходимые клинико-лабораторные и инструментальные исследования (ультразвуковое исследование, магнитно-резонансная томография, компъютерная томография, колоноскопия, цистоскопия) для уточнения диагноза и подготовки к оперативному лечению.

Хирургическое лечение проведено у 61 пациентки, 1 пациентка была выписана домой накануне оперативного лечения по семейным обстоятельствам. Предоперационная подготовка, вид анестезии и послеоперационное ведение пациенток проведено в соответствии с планируемым и проведенным объемом оперативного лечения.

В контрольной группе (III) исследовали здоровый эндометрий в стадии пролиферации, взятый у 10 женщин (суррогатных матерей).

На гистологическое исследование были направлены все интраоперационно иссеченные ткани, резецированные части органов или удаленные органы.

Для данного исследования использовали соскобы эндометрия, взятые у пациенток с эндометриозом мочевыводящих путей, резецированные части или иссеченные участки стенок мочевого пузыря, резецированные отделы мочеточников и эндометриоидные инфильтраты, прилегающие и сдавливающие мочеточники. Гистологическое исследование проведено у 61 пациентки. Диагноз «эндометриоз» был подтвержден у всех больных.

Гистологическое исследование проведено у 61 пациентки с фиксацией материала в 10% забуференном формалине по общепринятой методике с окраской гематоксилином и эозином.

Иммуногистоxимическое исследование проведено у 25 пациенток: у 5 из I группы, у 10 из II группы и у 10 в контрольной группе.

Иммуногистохимическое исследование проводили на депарафинированных срезах толщиной 4–5 мкм по общепринятым протоколам (DAKO protocols).

Иммуногистоxимическое исследование проведено у 25 пациенток: у 5 из I группы, у 10 из II группы и у 10 в контрольной группе по общепринятым протоколам (DAKO protocols), с помощью моноклональных антител выявляли Cytokeratinw – polyclonal rabbit antibody, 1:500, Dako, Claudin 3 – polyclonal rabbit antibody, RTU, Thermo Scientific. Vimentin – monoclonal mouse antibody ( clone V9), RTU, Dako, CD15 – monoclonal mouse antibody ( clone MMA), 1:50, Cell Marque., Aldh1A1 – rabbit monoclonal antibody (clone EP1933Y), 1:400, GeneTex, Musashi1 – rabbit monoclonal antibody (clone EP1302), 1:200, GeneTex, SOX2 – rabbit monoclonal antibody ( clone SP76), 1:100, Cell Marque, PTEN – monoclonal mouse antibody (clone 6H2.1), 1:100, Dako. В качестве вторичных антител и агентов для детекции ставили положительные и отрицательные контрольные реакции.

Результаты иммуногистохимической реакции оценивали полуколичественным методом в баллах по общепринятой методике: отсутствие иммуноокрашенных клеток (-) – 0 баллов; менее 5% иммуноокрашенных клеток (+) – 0,5 балла, менее 20% (+) – 2 балла; от 20 до 40% (++) – 4 балла; более 40% (+++) – 6 баллов.

Для достоверности полученных результатов иммуногистоxимическиx исследований использовалась контрольная группа, в которой исследовали здоровый эндометрий в фазе пролиферации. Для статистической оценки результатов использовался метод Манна–Уитни.

Результаты исследования

Возраст пациенток в обеих группах находился в пределах от 23 до 50 лет, средний возраст составил 35±1 год. Большинство пациенток были репродуктивного возраста – 93,5%; 6,5% – перименопаузального возраста.

Из 62 пациенток, участвующих в исследовании, у 29 (47%) был диагностирован эндометриоз мочевого пузыря, 20 (32%) поражение мочеточников и у 13 (21%) сочетанное поражение мочевого пузыря и мочеточников. Эндометриоидное поражение других отделов мочевыделительной системы (уретры, почек и верхней трети мочеточников) в данной группе не диагностировано.

Урологические симптомы отмечали 23 пациентки (37,1%) из 62. Из них 9 (39,1%) отмечали появление или усиление урологических симптомов до и во время менструации. В I группе количество пациенток с урологическими жалобами составило 8 (34,8%) а во II группе – 15 (38,4%). Самыми частыми предъявляемыми урологическими жалобами являлись учащенное мочеиспускание – 9 (39,1%), болезненное мочеиспускание – 8 (35%), затрудненное мочеиспускание – 4 (17,4%) и циститы в анамнезе – 5 (21,7%). Боли в нижних отделах живота с иррадиацией в поясничную область и в спину предъявляли 4 (17,4%) пациентки при поражении мочеточников. В 62,9% заболевание протекало без урологическиx симптомов.

С помощью нефросцинтиграфии и компъютерной томографии у 6 пациенток была диагностирована потеря почечной функции, по 3 пациентки в каждой группе.

По результатам инструментальных методов исследования и интраоперационно в сочетании с поражением органов мочевыводящих путей было выявлено эндометриоидное поражение органов малого таза и брюшной полости. Данные приведены в таблице.

Из приведенной таблицы можно увидеть, что во II группе проксимальные отделы кишечника чаше вовлекаются в эндометриоидный процесс. Поражение тонкой кишки во II группе был диагностировано у 5 пациенток, а в I группе – всего у 1. Также можно отметить, что во II группе встречались двойные эндометриоидные инфильтраты разных отделов кишечника у одной и той же пациентки.

В результате изучения анамнестическиx данных установлено, что промежуток между рецидивами у пациенток II группы, вне зависимости была ли проведена гормональная терапия в послеоперационном периоде или нет, составил от 3 месяцев до 3 лет. У некоторыx больныx выявлены многократные рецидивы (от 2 до 4). При этом при каждом следующем рецидиве в эндометриоидный процесс вовлекалось все больше органов малого таза и брюшной полости, с нарушением их функции.

Морфологическое исследование: эндометриоидные гетеротопии локализовались в стенке мочевого пузыря, мочеточников (рис. 1), около мочеточниковой жировой клетчатке и прорастали в просветы мочевого пузыря и мочеточников, а также периневрально и периваскулярно распространялись до крестцовых сплетений и подвздошных костей. Очаги обладали свойствами активных очагов, описанных нами ранее [15]. В I группе (n=22) у 9 (41%) эпителий очагов был пролиферативного типа, в 4 (18%) наблюдениях обнаружен периваскулярный рост эндометриоидного инфильтрата. Во II группе кистозные трансформации выявлены у 12 (30,7%) пациентов, пролиферативная форма эпителия у 15 (38,4%) и у 12 (30,7%) – гиперпластическая форма эпителия. В 4 (10,2%) наблюдениях обнаружен периневральный рост инфильтрата с разрушением ганглиев. У 8 (20,5%) пациентов в очагах эндометриоза обнаружены признаки воспаления (рис. 1).

Иммуногистохимическое исследование

При изучении результатов иммуногистохимических реакций обнаружены особенности экспрессии маркеров стволовости (PTEN,CD15, ALDH1, Musashi, SOX2) в эндометриоидных гетеротопиях и в аутологичном эндометрии (рис. 2).

В обеих группах отмечена частичная потеря PTEN в очагах эндометриоза с гиперпластическими изменениями эпителия и аутологичном эндометрии по сравнению с контрольной группой (р<0,05) (рис. 2 А,Б; рис. 3). Aldh A1 и SOX2 в эндометриоидных гетеротопиях была достоверна выше по сравнению с аутологичным эндометрием в обеих группах (р<0,05). Экспрессия обоих маркеров была более выражена во II группе. В контрольной группе экспрессии SOX2 и Aldh A1 не выявлено (р<0,05) (рис. 2 В, Г; рис. 3). Экспрессия CD15 выявлена только в эпителиальных компонентах очагов эндометриоза и аутологичного эндометрия I и II группы и не выявлена в контрольном эндометрии. Во II группе экспрессия была более выражена (р<0,05). Экспрессия Musashi была обнаружена во всех III группах. Наиболее выраженная экспрессия выявлена в очагах эндометриоза у пациенток из II группы (р<0,05) (рис. 2 Д, Е; рис. 3).

При изучении результатов иммуногистохимических реакций обнаружены особенности экспрессии маркеров эпителиальной и мезенхимальной дифференцировки (CKW, Cld3, Виментин) в эндометриоидных гетеротопиях и аутологичном эндометрии. Виментин обладал более высокой экспрессией у пациенток с эндометриозом по сравнению с контрольной группой (р<0,001), которая выявлялась как в ткани эндометрия, так и очагах эндометриоза (рис. 3). Экспрессия CKW определялась только в эпителиальных клетках; по количественным показателям в I, II и контрольной группе не отличалась и оценивалась на 6 баллов (рис. 3). При статистической обработке различий между группами не обнаружено (p>0,05). В очагах эндометриоза в I и во II группах преобладало цитоплазматическое окрашивание Клаудин 3. Напротив, в эндометрии уровень апикального окрашивания был доминирующим и наиболее выраженным в группе контроля. Это может свидетельствовать о роли эпителиально-мезенхимальной трансформации в формировании агрессивных свойств очагов эндометриоза, так как эпителиально-мезенхимальная трансформация способствует инфильтративному росту (рис. 2 Ж, З; рис. 3).

Обсуждение

Обобщая данные по изучению маркеров стволовости в клетках очагов эндометриоидных гетеротопий и аутологичном эндометрии следует отметить следующие особенности: во-первых, эпителиальный компонент очагов эндометриоза достоверно более сильно экспрессирует маркеры стволовости CD15, ALDH1, Musashi, SOX2 , особенно в рецидивных случаях; во-вторых, эпителиальный компонент очагов эндометриоза частично теряет экспрессию PTEN. Полученные данные могут свидетельствовать об участии стволовых эндометриоидных клеток (или стволовых клеток другого происхождения) и в формировании очагов эндометриоза и в его инфильтративном росте, а частичная потеря PTEN аналогична тому, что наблюдается при атипической гиперплазии эндометрия и эндометриальной интраэпителиальной неоплазии. Полученные нами данные подтверждаются наблюдениями Song и соавторов (2014) которые изучили транскрипцию фактора плюрипотентности SOX2 NANOG (Nanog homeobox) и OCT4 у женщин репродуктивного возраста с и без эндометриоза яичников. Исследование показало, что в эндометрии у женщин с эндометриозом яичников экспрессия указанных маркеров была значительно выше, чем в эндометрии у женщин без эндометриоза. Кроме того, было выявлено, что в очагах эндометриоза экспрессия данных маркеров значительно превышала показатели эутопического эндометрия [16].

Резюмируя данные по изучению маркеров клеточной дифференцировки в очагах эндометриоидных гетеротопий и в аутологичном эндометрии необходимо подчеркнуть следующие особенности: во-первых эпителиальный компонент очагов эндометриоза достоверно более сильно экспрессирует маркер мезенхимальной дифференцировки – виментин, особенно в рецидивных случаях (клетки – гибриды экспрессирующие маркеры и мезенхимальной и эпителиальной дифференцировки); во-вторых, эпителиальный компонент очагов эндометриоза частично теряет в области межклеточных контактов клаудин 3; в-третьих, патологическая экспрессия виментина и клаудина 3 обнаруживается и в аутологичном эндометрии пациенток с эндометриозом.

Заключение

Эндометриоидные гетеротопии отличаются от аутологичного эндометрия не только структурой, но и степенью зрелости клеток и их молекулярной организацией по виментину, Musashi, ALDH1,CD15 и SOX2. Эндометриоидные гетеротопии обладают более высокой экспрессией маркеров стволовости, что свидетельствует о их относительной незрелости, которая выражается более активной пролиферацией и инфильтративным ростом.

Повышенная экспрессия виментина во II группе в эндометриоидных очагах свидетельствует о возможности эпителиально-мезенхимальной трансформации и обеспечивает инвазивный рост очагов. Потеря апикальной части клаудина 3 в очагаx эндометриоза обеспечивает легкую диссеминацию активныx эндометриоидныx частиц. Потеря PTEN в эндометриоидныx очагаx, особенно I группы, свидетельствует о снижении апоптоза в эндометриоидной ткани и также способствует активной пролиферации. Повышенная экспрессия CKW – еще одно свидетельство активного пролиферативного процесса.

Таким образом, полученные результаты иммуногистохимического исследования полностью объясняют морфологические особенности и клиническую картину эндометриоза мочевыводящих органов.

Supplementary Materials

  1. Table. Endometriotic lesions, combined with endometriosis of the urinary tract
  2. Fig. 1. Urogenital endometriosis with foci in peri-uretral tissue. H & E stain
  3. Fig. 2. Urogenital endometriosis with foci in peri-uretral tissue. Immunoperoxidase reaction with DAB
  4. Fig. 3. The expression of markers of epithelial and mesenchymal differentiation in endometrioid heterotopias and autologous endometrium

References

1. Donnez J., Spada F., Squifflet J., Nisolle M. Bladder endometriosis must be considered as bladder adenomyosis. Fertil. Steril. 2000; 74(6): 1175-81.

2. Vercellini P., Pisacreta A., Pesole A., Vincentini S., Stellato G., Crosignani E. Is ureteral endometriosis an asymmetric disease? BJOG. 2000; 107(4): 559-61.

3. Vercellini P., Frontino G., Pisacreta A., De Giorgi O., Cattaneo M., Crosignani P.G. The pathogenesis of bladder detrusor endometriosis. Am. J. Obstet. Gynecol. 2002; 187(3): 538-42.

4. Donnez J., Van Langendonckt A., Casanas-Roux F., Van Gossum J.P., Pirard C., Jadoul P. et al. Current thinking on the pathogenesis of endometriosis. Gynecol. Obstet. Invest. 2002; 54(Suppl.): 52-62.

5. Vercellini P., Meschia M., De Giorgi O., Panazza S., Cortesi I., Crosignani P.G. Bladder detrusor endometriosis: clinical and pathogenetic implications. J. Urol. 1996; 155(1): 84-6.

6. Chapron C., Chopin N., Borghese B., Foulot H., Dousset B., Vacher-Lavenu M.C. et al. Deeply infiltrating endometriosis: pathogenetic implications of the anatomical distribution. Hum. Reprod. 2006; 21(7): 1839-45.

7. Blumenkrantz M.J., Gallagher N., Bashore R.A., Tenckhoff H. Retrograde menstruation in women undergoing chronic peritoneal dialysis. Obstet. Gynecol. 1981; 57(5): 667-70.

8. Gajda M., Tyloch J., Tyloch F., Skok Z., Sujkowska R., Krakowiak J. Endometriosis of the urinary bladder. Int. Urol. Nephrol. 1999; 31(1): 39-44.

9. Sassona I.E., Taylora H.S. Stem cells and the pathogenesis of endometriosis. Ann. N. Y. Acad. Sci. 2008; 1127: 106-15.

10. Matthai C., Horvat R., Noe M., Nagele F., Radjabi A., van Trotsenburg M. et al. Oct-4 expression in human endometrium. Mol. Hum. Reprod. 2006; 12(1): 7-10.

11. Bentz E.K., Kenning M., Schneeberger C., Kolbus A., Huber J.C., Hefler L.A., Tempfer C.B. OCT-4 expression in follicular and luteal phase endometrium: a pilot study. Reprod. Biol. Endocrinol. 2010; 8: 38. doi: 10.1186/1477-7827-8-38.

12. Götte M., Wolf M., Staebler A., Buchweitz O., Kelsch R., Schüring A.N., Kiesel L. Increased expression of the adult stem cell marker Musashi-1 in endometriosis and endometrial carcinoma. J. Pathol. 2008; 215(3): 317-29. doi: 10.1002/path.2364.

13. Cho N.H., Park Y.K., Kim Y.T., Yang H., Kim S.K. Lifetime expression of stem cell markers in the uterine endometrium. Fertil Steril. 2004; 81(2): 403-7.

14. Kato K., Yoshimoto M., Kato K., Adachi S., Yamayoshi A., Arima T. et al. Characterization of side-population cells in human normal endometrium. Hum. Reprod. 2007; 22(5): 1214-23.

15. Kogan E.A., Paramonova N.B., Demura T.A., Fayzulina N.M., Ovakimyan A.S., Adamyan L.V. Morphological substrate and pathogenetic mechanisms of pelvic pain syndrome, endometriosis. Arhiv patologii. 2014; 76(6): 37-46. (in Russian)

16. Song Y., Xiao L., Fu J., Huang W., Wang Q., Zhang X., Yang S. Increased expression of the pluripotency markers sex-determining region Y-box 2 and Nanog homeobox in ovarian endometriosis. Reprod. Biol. Endocrinol. 2014; 12: 42.

Received 22.01.2016

Accepted 27.01.2016

About the Authors

Khachatryan Anna Martunovna, Postgraduate Student, Department of Obstetrics, Gynecology, Perinatology, and Reproductology, Faculty for Postgraduate Professional Training of Physicians, I.M. Sechenov First Moscow State Medical University. E-mail: a_hachatryan@oparina4.ru
Kogan Evgenia A., MD, Professor, Head of the 1st patology department, Research Center of Obstetrics, Gynecology and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina str. 4. Tel.: +74954382377. E-mail: koganevg@gmail.com, e_kogan@oparina4.ru
Chuprynin Vladimir Dmitrievich, PhD, Head of the Department of General Surgery, Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina Str. 4. Tel.: +74954383575. E-mail: v_chuprynin@oparina4.ru
Paramonova Nina B., Ph.D., researher of the 1st anatomopathological department, Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin Str. 4. Tel.: +74984382377. E-mail: e_kogan@oparina4.ru
Adamyan Leila V., Academician of the Russian Academy of Sciences, MD, PhD, Professor, Honored Master of Science of the Russian Federation, Head Specialist in Obstetrics and Gynecology of Ministry of Healthcare and Social Development of Russia, Head of the Department of Surgical Gynecology of Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of the Russian Federation, Head of the Department of Reproductive Medicine and Surgery, Faculty of Postgraduate Education, Moscow State University of Medicine and Dentistry. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparin Str. 4. Tel.: +74954384068. E-mail: l_adamyan@oparina4.ru
Khilkevich Elena Grigorevna, leading researcher of General Surgery, Academician V.I. Kulakov Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, professor of Department of Obstetrics, Gynecology, Perinatology and Reproductive of I.M. Sechenov First Moscow State Medical University. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina Str. 4. Tel.: +74954387783. E-mail: e_khilkevich@oparina4.ru
Yazykova Olga Igorevna, Undergraduate of the medical faculty of Moscow State University of Medicine and Dentistry. 127473, Russia, Moscow, Delegatskaya str. 20/1. Tel.: +79167195407. E-mail: olushka-92@mail.ru

For citations: Khachatryan A.M., Kogan E.A., Chuprynin V.D., Paramonova N.B., Adamyan L.V., Khilkevich E.G., Yazykova O.I. Infiltrating endometriosis of the urinary tract: Mechanisms of growth and progression. Clinical, morphological, and immunohistochemical examinations. Akusherstvo i ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2016; (6): 78-86. (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.6.78-86

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.