Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia, Moscow 117997, Ac. Oparina str. 4, Russia
Objective. To carry out a systematic analysis of the data available in the current literature on the role of the vitamin K-dependent protein periostin in the outcomes of an assisted reproductive technology (ART) program.
Material and methods. The review includes the data of foreign and Russian articles found in Pubmed on this topic.
Results. Investigations conducted in recent years provide evidence that periostin exerts an effect on some important steps in the implantation process. Due to a wide range of its functions, periostin is expressed in various organs and tissues. The follicular fluid and serum level of periostin can be correlated with oocyte quality indicators, embryo development, and pregnancy and live birth rates. The paper gives the data of an investigation of the vitamin K-dependent protein periostin as a non-invasive marker to predict oocyte and embryo qualities and pregnancy onset rates.
Conclusion. The investigations performed confirm that the use of periostin is promising and relevant in predicting the effectiveness of an ART program.
assisted reproductive technology
infertility
periostin (POSTN)
in vitro fertilization
vitamin K
mRNA expression
embryo implantation
Ежегодно примерно у 70 млн супружеских пар в мире диагностируется бесплодие [1]. Повышение результативности вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) невозможно без изучения механизмов регуляции имплантации.
Имплантация эмбриона представляет комплекс молекулярных и клеточных взаимодействий, регулируемых пара- и аутокринными факторами [2, 3]. Наступление беременности во многом зависит от двух составляющих – функционально полноценного эмбриона и рецептивности эндометрия [4]. Среди всех доступных методов лечения бесплодия ВРТ имеют самые высокие показатели наступления беременности и рождения живых детей. Стимуляция овуляции при проведении программы экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) проводится с целью получения большого количества ооцитов, для того чтобы снизить риск неудачи ЭКО путем выбора наиболее приемлемого эмбриона для переноса [5].
По данным J. Gunbi и соавт. (2010) [6], только треть циклов ВРТ приводит к развитию беременности и около четверти – к рождению ребенка. Известно, что успех проведения ЭКО во многом определяется качеством ооцита и выбором эмбриона с высоким имплантационным потенциалом [5]. В настоящее время оценка эмбрионов в основном основывается на морфологических критериях, однако точность такого метода отбора эмбрионов остается недостаточно высокой, хотя его использование и привело к значительному повышению результативности программ ЭКО [7].
Исследование состава и биохимических свойств фолликулярной жидкости, качества ооцита и последующего эмбриона является важным элементом в прогнозировании исхода ЭКО.
В последние годы отмечается рост альтернативных неинвазивных методов анализа качества ооцитов, эмбрионов и маркеров имплантации. В качестве материала в таких методиках могут выступать сыворотка крови, фолликулярная жидкость, эндометрий, мазок из цервикального канала, трофэктодерма бластоцисты и др. Среди широкого спектра биохимических маркеров, определяемых в этих материалах, в последнее время особое внимание исследователей привлекает белок периостин [8]. Для успешной имплантации необходим диалог между эндометрием и эмбрионом, поэтому определение новых биомаркеров, которые тесно связаны с этим взаимодействием, может способствовать улучшению исходов программ ВРТ [9].
Периостин
Периостин (POSTN), также известный как остеобласт-специфический фактор 2, относится к семейству белков внеклеточного матрикса и выступает в качестве лиганда интегринов (молекулы межклеточной адгезии), участвует в адгезии и миграции клеток [8]. Периостин является витамин К-зависимым белком. Витамин К обеспечивает карбоксилирование остатков глютаминовой кислоты, входящих в состав некоторых белков. В результате они превращаются в остатки γ-карбоксилглютаминовой кислоты (Gla-радикалы) и приобретают способность связывать кальций. Белки, для активации которых требуется такое карбоксилирование, называются «витамин К-зависимыми» [10].
Для нормального функционирования организму требуется небольшое количество витамина К. Это связано с тем, что молекула данного вещества после использования (то есть после карбоксилирования К-зависимого белка) может быть восстановлена специальным ферментом – витамин К-эпоксид редуктазой. Этот фермент превращает витамин К из неактивной формы (2,3-эпоксид витамин К) в активную (витамин К гидрохинолон), которая принимает участие в карбоксилировании витамин К-зависимых протеинов крови [11]. Степень активности этого фермента обусловлена генетически: чем она выше, тем меньше человек зависит от содержания витамина К в пище. Одной из причин дефицита активированного витамина К является изменение в гене VKORC1, приводящее к снижению синтеза фермента [12]. В настоящее время работу гена, регулирующего выработку витамин К-эпоксид редуктазы, можно оценить, проведя соответствующий генетический анализ. Изменение концентрации периостина может быть связано с полиморфизмом гена VKORC1.
Периостин является секретируемым белком внеклеточного матрикса, который впервые был получен из остеобластов мыши MC3T3-E1 [13]. Белок в первую очередь экспрессируется в соединительных тканях, что играет роль в формировании структуры костей, зубов, хрящей и сердца [14–18]. Периостин также часто связывают с сердечно-сосудистыми и онкологическими заболеваниями, включая рак толстой кишки, яичника, немелкоклеточный рак легких, рак молочной железы, нейробластому.
Периостин связывается с αvβ3, αvβ5 и α6β4 рецепторами интегрина через FAS-1 домены [16, 19]. В частности, взаимодействие периостина с αV-рецепторами приводит к миграции гладкомышечных клеток сосудов in vitro [20]. Экспрессия периостина в гладкомышечных клетках может быть активирована фактором, связанным с сосудистым повреждением, таким как тромбоцитарный фактор роста ВВ, фактор роста фибропластов 1 и 2, трансформирующий ростовый фактор β1 и ангиотензин II [21, 22]. Данные литературы указывают на то, что периостин, способствуя миграции гладкомышечных клеток при сосудистых повреждениях, участвует в развитии различных новообразований.
Периостин определяется прежде всего в мезенхимальных клетках соединительной ткани, включая сухожилия, клапаны сердца и др. [23]. Также периостин можно определять в фолликулярной жидкости, сыворотке крови, эндометрии и др. По концентрации периостина в фолликулярной жидкости можно прогнозировать качество ооцита, далее бластоцисты, а также ее потенциал к имплантации. Таким образом, периостин является значимым биологическим маркером, связанным с процессами репродукции [8].
В связи с широким спектром выполняемых функций периостин эксперсиируется в различных органах и тканях.
Роль периостина в различных органах и тканях
История изучения периостина за последнее десятилетие началась в кардиологии. Периостин первоначально изучался в контексте коронарного синдрома как белок, появляющийся при восстановлении миокарда после повреждения [24].
Чрезмерная экспрессия периостина наблюдалась в строме первичной опухоли и на месте метастазов при различных видах рака [25, 26]. Повышение уровня периостина определяется при опухолевых заболеваниях почек и пищевода, сопровождающихся активацией фибробластов [16], при колоректальном раке, мелкоклеточном раке легкого, при развитии активных фибропластических процессов легочной ткани [27], при раке молочной железы; особенно высокие уровни наблюдались при метастазировании в кости [28]. Было доказано, что инвазивным опухолевым клеткам требуется запустить экспрессию периостина во вторичном органе-мишени для начала процесса колонизации [29]. По последним данным, ученые из медицинской школы университета Бостона установили, что белок периостин, который выделяют клетки трижды негативного рака молочной железы, активирует сигнальные пути к раковым стволовым клеткам, иными словами, способствует их развитию и росту, создавая вокруг них локальную благоприятную микросреду. Периостин действует через определенный рецептор интегрина – белка, связанного с процессами метастазирования. В ходе эксперимента поочередно нарушали работу рецепторов к периостину и интегрину. В результате количество раковых стволовых клеток значительно снизилось, они потеряли способность к формированию опухоли. Результаты данного исследования свидетельствуют, что периостин можно уверенно называть новым биомаркером трижды негативного рака молочной железы или терапевтической мишенью, данные о которой помогут создать новые препараты таргетной терапии [30].
При миеломной болезни периостин участвует в ремоделировании костей с участием фибробластов [31]. В дыхательных путях периостин секретируется фибробластами и эпителиальными клетками, а его секреция возрастает за счет интерлейкинов 4 и 13 [32].
Уровень периостина повышается в тканях кожи вокруг операционной раны совместно с повышением сосудисто-эндотелиального фактора роста и ангиопоэтина 1 [33] в восстановительную фазу после перенесенного инфаркта миокарда [24]. Регенерация ран зависит от многочисленных факторов, включая инфекционные, воспалительные процессы, механический стресс от чрезмерной окклюзионной нагрузки, напряжения от соседних мягких тканей и хирургических процедур [34]. Периостин играет ключевую роль в развитии соединительной ткани, обеспечивающей фиксацию зуба. Периостин связывается с коллагеном 1-го типа и регулирует образование фибрилл. Из-за сложной взаимосвязи мягких и твердых тканей периодонт у человека имеет очень ограниченную способность к возобновлению [34, 35].
Периостин участвует в поддержании гомеостаза и возобновлении периодонта [36]. В практической медицине его часто используют для создания новых тканей периодонта [36–38].
При системном склерозе уровень периостина пропорционален тяжести поражения кожи, активации миофибробластов и эндотелиоцитов кожи [39]. Уровень периостина коррелирует с выраженностью фиброза почечной паренхимы и уровнями сывороточного креатинина, ренального кровотока и протеинурии при хронической болезни почек у людей в эксперименте [40].
У женщин выявлены высокие уровни сывороточного периостина при беременности, что связано с разрастанием дедуциальной ткани и трофобластов эндометрия [9].
Периостин как маркер эффективности ВРТ
Экспрессия мРНК периостина в сыворотке крови, фолликулярной жидкости значимо коррелирует с качеством бластоцисты. Согласно данным авторов, по уровню периостина и морфологическими критериями можно прогнозировать наступление беременности более точно, чем учитывая только морфологические критерии [8]. Таким образом, периостин может быть использован в качестве дополнительного инновационного неинвазивного маркера для прогнозирования результатов экстракорпорального оплодотворения (ЭКО).
Взаимодействие эмбриона и эндометрия представляет собой важный фактор для успешной имплантации и достижения беременности [41]. Несколько внеклеточных матриксных белков, такие как ламинин, фибронектин и остеопонтин, были определены как ключевые регуляторы этого взаимодействия. Недавние экспериментальные данные продемонстрировали, что секретируемый белок периостин, принадлежащий семейству внеклеточных матриксных белков, может играть центральную роль в регулировании взаимосвязи эмбриона с эндометрием. Особенно важно то, что экспрессия периостина способна прогнозировать качество ооцитов, эмбрионов, частоту инплантации и исход беременности в естественных циклах [42–44].
По данным литературы известно, что механизм колонизации раковых клеток идентичен с механизмом имплантации. [45]. В связи с решающей ролью периостина в метастатических процессах можно предположить, что этот белок может оказывать влияние на некоторые важные этапы процессов имплантации. В эндометрии человека присутствие белка периостина как в стромальных, так и эпителиальных клетках находится под влиянием менструального цикла и беременности [46]. Обзор литературы показал, что концентрация периостина в эндометрии человека и мыши достигает максимального уровня в первую фазу менструального цикла [16, 47], когда наблюдается также повышенная экспрессия интегрина. Периостин может активировать дифференцировку эндометрия для имплантации. Экспериментальные данные на животных продемонстрировали, что периостин может запускать децидуализацию эндометрия, прикрепление и/или миграцию трофобластических клеток [46, 48].
Стимуляция яичников может оказывать негативное влияние на восприимчивость эндометрия и качество ооцита/эмбриона по сравнению с естественными циклами. Изучение экспрессии периостина в сыворотке крови, эндометрии и промывных водах бластоцисты/эмбриона может представлять собой новый метод для исследования воздействия гонадотропина на восприимчивость эндометрия и качество эмбриона во время оплодотворения in vitro [9].
Заключение
Изучая данные литературы, можно сделать следующие выводы: периостин является одним из факторов, благоприятно влияющих на наступление беременности, но в настоящее время роль белка периостина в исходах программ ВРТ остается не до конца изученной, что требует дальнейших исследований. В конечном итоге определение нового неинвазивного маркера качества ооцитов, эмбрионов и имплантации может представлять собой ключ к повышению эффективности стимулируемых циклов.
1. Pfydey S., Shetty A., Hamilton M., Bhattacharya S., Maheshwary A. Obstetric and perinatal outcomes in singleton pregnancies resulting from IVF/ICSI: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod.Update. 2012; 18(5): 485-503.
2. Kalinina Ye.A., Ebzeyeva M.V., Kuzmichev L.N. Experience with mild superovulation regimens used in ovarian hyperstimulation syndrome risk group patients. Obstetrics and Gynecology/Akusherstvo i ginecologiya. 2010; 6: 60-4. (in Russian)
3. Kogan E.A., Kalinina E.A., Kuzmichev L.N., Duzheva E.V. Immunohistochemical study of endometrium in ART programs. Vestnik RUDN. 2009; 6: 98-104. (in Russian)
4. Kuzmichev L.N., Smolnikova V.Yu., Kalinina Ye.A., Dyuzheva Ye. V. The principles of complex evaluation and preparation of the endometrium in patients of assisted reproductive technology programs. Obstetrics and Gynecology/Akusherstvo i ginecologiya. 2010; (5): 32-6. (in Russian)
5. Smolnikova V.Yu., Kalinina E.A., Krasnoshchoka O.E., Donnikov A.E., Burmenskaya O.E., Trofimov D.Yu., Sukhikh G.T. Possibilities for noninvasive oocyte and embryo evaluation when implementing assisted reproductive technology programs for follicular-fluid growth factor mRNA expression. Obstetrics and Gynecology/Akusherstvo i ginecologiya. 2014; 9: 36-43. (in Russian)
6. Gunby J., Daya S. Assisted reproductive technologies (ART) in Canada: 2002 results from the Canadian ART Register. Fertil. Steril. 2006; 86(5): 1356-64.
7. Bromer J.G., Seli E. Assessment of embryo viability in assisted reproductive technology shortcomings of current approaches and the emerging role of metabolomics. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2008; 20(3): 234-41.
8. Di Cello A., Rania E., Di Sanzo M., Alviggi E., Rienzi L., Morelli M., Zullo F. Periostin a new non-invasive parameter in addition to the morphologic criteria for evaluating oocyte/blastocyst quality and its impact on endometrial receptivity. Costanzo Department of Experimental and Clinical Medicine. Catanzaro, Italy; 2015.
9. Morelli M., Misaggi R., Di Cello A., Zuccala V., Costanzo F., Zullo F., Quaresima B. Tissue expression and serum levels of periostin during pregnancy: a new biomarker of embryo-endometrial cross talk at implantation. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2014; 175: 140-4.
10. Coutu D.L., Wu J.H., Monette A., Rivard G.E., Blostein M.D., Galipeau J. Periostin, a member of a novel family of vitamin K-dependent proteins, is expressed by mesenchymal stromal cells. J. Biol. Chem. 2008; 283(26): 17991-8001.
11. Ferron M., Lacombe J., Germain A., Oury F., Karsenty G. GGCX and VKORC1 inhibit osteocalcin endocrine functions. J. Cell Biol. 2015; 208(6): 761-76.
12. Okano T. A New norizon in vitamin K research. Yakugaku Zasshi. 2016; 136(8): 1141-59.
13. Takeshita S., Kikuno R., Tezuka K., Amann E. Osteoblastspecific factor 2: cloning of a putative bone adhesion protein with homology with the insect protein fasciclin I. Biochem. J. 1993; 294(Pt 1): 271-8.
14. Snider P., Hinton R.B., Moreno-Rodriguez R.A., Wang J., Rogers R., Lindsley A. et al. Periostin is required for maturation and extracellular matrix stabilization of noncardiomyocyte lineages of the heart. Circ. Res. 2008; 102(7): 752-60.
15. Bao S., Ouyang G., Bai X., Huang Z., Ma C., Liu M. et al. Periostin potently promotes metastatic growth of colon cancer by augmenting cell survival via the Akt/PKB pathway. Cancer Cell. 2004; 5(4): 329-39.
16. Gillan L., Matei D., Fishman D.A., Gerbin C.S., Karlan B.Y., Chang D.D. Periostin secreted by epithelial ovarian carcinoma is a ligand for alpha(V)beta(3) and alpha(V)beta(5) integrins and promotes cell motility. Cancer Res. 2002; 62(18): 5358-64.
17. Shao R., Bao S., Bai X., Blanchette C., Anderson R.M., Dang T. et al. Acquired expression of periostin by human breast cancers promotes tumor angiogenesis through up-regulation of vascular endothelial growth factor receptor 2 expression. Mol. Cell. Biol. 2004; 24(9): 3992-4003.
18. Sasaki H., Dai M., Auclair D., Fukai I., Kiriyama M., Yamakawa Y. et al. Serum level of the periostin, a homologue of an insect cell adhesion molecule, as a prognostic marker in nonsmall cell lung carcinomas. Cancer. 2001; 92(4): 843-8.
19. Baril P., Gangeswaran R., Mahon P.C., Caulee K., Kocher H.M., Harada T. et al. Periostin promotes invasiveness and resistance of pancreatic cancer cells to hypoxia-induced cell death: role of the beta4 integrin and PI3k pathway. Oncogene. 2007; 26(14): 2082-94.
20. Li G., Jin R., Norris R.A. Periostin mediates vascular smooth muscle cell migration through the integrins alphavbeta3 and alphavbeta5 and focal adhesion kinase (FAK) pathway. Atherosclerosis. 2010; 208(2): 358-65.
21. Li P., Oparil S., Feng W., Chen Y.F. Hypoxia-responsive growth factors upregulate periostin and osteopontin expression via distinct signaling pathways in rat pulmonary arterial smooth muscle cells. J. Appl. Physiol. 2004; 97(4): 1550-8.
22. Li G., Oparil S., Sanders J.M., Zhang L., Dai M., Chen L.B. et al. Phosphatidylinositol-3-kinase signaling mediates vascular smooth muscle cell expression of periostin in vivo and in vitro. Atherosclerosis. 2006; 188(2): 292-300.
23. Panduwawala C.P., Zhan X., Dissanayaka1 W.L., Samaranayake L.P., Jin L., Zhang C. In vivo periodontal tissue regeneration by periodontal ligament stem cells and endothelial cells in threedimensional cell sheet constructs. J. Periodontal Res. 2017; 52(3): 408-18.
24. Kong P., Christia P., Saxena A., Su Y., Frangogiannis N.G. Lack of specificity of Fibroblast Specific Protein (FSP) 1 in cardiac remodeling and fibrosis. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2013; 305(9): H1363-72.
25. Morra L., Moch H. Periostin expression and epithelial–mesenchymal transition in cancer: a review and an update. Virchows Arch. 2011; 459(5): 465-75.
26. Kudo Y., Siriwardena B.S., Hatano H., Ogawa I., Takata T. Periostin: novel diagnostic and therapeutic target for cancer. Histol. Histopathol. 2007; 22(10): 1167-74.
27. Soltermann A. Epithelial-mesenchymal transition in non-small cell lung cancer. Pathologe. 2012; 33(Suppl. 2): 311-7.
28. Mamazhanov Z.K. Metastatic breast cancer (prognosis and treatment results): author's abstract. Diss. ... cand. med. sciences. Bishkek; 2007. (in Russian)
29. Malanchi I., Santamaria-Martínez A., Susanto E., Peng H., Lehr H.A., Delaloye J.F., Huelsken J. Interactions between cancer stem cells and their niche govern metastatic colonization. Nature. 2011; 481(7379): 85-9.
30. Wang Z., Xiong S., Mao Y., Chen M., Ma X., Zhou X. et al. Periostin promotes immunosuppressive premetastatic niche formation to facilitate breast tumour metastasis. J. Pathol. 2016; 239(4): 484-95.
31. Hamilton RG., MacGlashan D.W. Jr., Saini S.S. IgE antibody-specific activity in human allergic disease. Immunol. Res. 2010; 47(1-3): 273-84.
32. Suzaki I., Kawano S., Komiya K., Tanabe T., Akaba T., Asano K. et al. Inhibition of IL-13-induced periostin in airway epithelium attenuates cellular protein expression of MUC5AC. Respirology. 2017; 22(1): 93-100.
33. Hou J.J., Nie F.F., Li B.L., Zhao X., Qin Z.L., Ma Y.G., Li J.N. The expressions of periostin and the related factors during healing process of full-thickness cutaneous wound in rat. Zhongguo Wei Zhong Bing JiJiu Yi Xue. 2012;24(6): 334-7.
34. Polimeni G., Xiropaidis A.V., Wikesjo U.M. Biology and principles of periodontal wound healing/regeneration. Periodontol 2000. 2006; 41: 30-47.
35. Grzesik W.J., Narayanan A.S. Cementum and periodontal wound healing and regeneration. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 2002; 13(6): 474-84.
36. Romanos G.E., Asnani K.P., Hingorani D., Deshmukh V.L. PERIOSTIN: role in formation and maintenance of dental tissues. J. Cell. Physiol. 2014; 229(1): 1-5.
37. Rios H.F., Ma D., Xie Y., Giannobile W.V., Bonewald L.F., Conway S.J., Feng J.Q. Periostin is essential for the integrity and function of the periodontal ligament during occlusal loading in mice. J.. Periodontol. 2008;79(8): 1480-90.
38. Kruzynska-Frejtag A., Wang J., Maeda M., Rogers R., Krug E., Hoffman S. et al. Periostin is expressed within the developing teeth at the sites of epithelial-mesenchymal interaction. Dev. Dyn. 2004; 229(4): 857-68.
39. Yamaguchi Y., Ono J., Masuoka M., Ohta S., Izuhara K., Ikezawa Z. et al. Serum periostin levels are correlated with progressive skin sclerosis in patients with systemic sclerosis. Br. J. Dermatol. 2013; 168(4): 717-25.
40. Guerrot D., Dussaule J.C., Mael-Ainin M., Xu-Dubois Y.C., Rondeau E., Chatziantoniou C., Placier S. Identification of periostin as a critical marker of progression/reversal of hypertensive nephropathy. PLoS One. 2012; 7(3): e31974.
41. Achache H., Revel A. Endometrial receptivity markers, the journey to successful embryo implantation. Hum. Reprod. Update. 2006; 12(6): 731-46.
42. Acosta A.A., Elberger L., Borghi M., Calamera J.C., Chemes H., Doncel G.F. et al. Endometrial dating and determination of the window of implantation in healthy fertile women. Fertil. Steril. 2000; 73(4): 788-98.
43. Lessey B.A., Ilesanmi A.O., Lessey M.A., Riben M., Harris J.E., Chwalisz K. Luminal and glandular endometrial epithelium express integrins differentially throughout the menstrual cycle: implications for implantation, contraception, and infertility. Am. J. Reprod. Immunol. Microbiol. 1996; 35(3): 195-204.
44. DeLoia J.A., Krasnow J.S., Brekosky J., Babaknia A., Julian J., Carson D.D. Regional specialization of the cell membrane-associated, polymorphic mucin (MUC1) in human uterine epithelia. Hum. Reprod. 1998; 13(10): 2902-9.
45. Ng Y.H., Zhu H., Leung P.C. Twist modulates human trophoblastic cell invasion via regulation of N-cadherin. Endocrinology. 2012; 153(2): 925-36.
46. Hiroi H., Momoeda M., Nakazawa F., Koizumi M., Tsutsumi R., Hosokawa Y. et al. Expression and regulation of periostin/OSF-2 gene in rat uterus and human endometrium. Endocr. J. 2008; 55(1): 183-9.
47. Rios H., Koushik S.V., Wang H., Wang J., Zhou H.M., Lindsley A. et al. Periostin null mice exhibit dwarfism, incisor enamel defects, and an early-onset periodontal disease-like phenotype. Mol. Cell. Biol. 2005; 25(24): 11131-44.
48. Kabir-Salmani M., Shiokawa S., Akimoto Y., Sakai K., Nagamatsu S., Sakai K. et al. Alphavbeta3 integrin signaling pathway is involved in insulin-like growth factor I-stimulated human extravillous trophoblast cell migration. Endocrinology. 2003; 144(4): 1620-30.
Received 26.08.2016
Accepted 02.09.2016
Khechumyan Lusine Robertovna, graduate student of department of assisted reproductive technology in treatment of infertility, Research Center of Obstetrics,
Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina 4. Tel.: +74954382501. E-mail:
khechumyan_l@mail.ru
Kalinina Elena Anatolievna, MD, Associate Professor, The chief of department of assisted reproductive technology in treatment of infertility, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina 4. Tel.: +74954381341. E-mail:
e_kalinina@oparina4.ru
Donnikov Andrew Evgenievich, PhD, Senior Researcher of molecul-genetical laboratory, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology,
Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina 4. Tel.: +74954381341. E-mail:
a_donnikov@oparina4.ru
Kulakova Elena Vladimirovna, PhD, Senior Researcher of department of assisted reproductive technology in treatment of infertility, Research Center of Obstetrics, Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina 4. Tel.: +74954381341. E-mail:
evkulakova@mail.ru
Ibragimova Espet Omarbekovna, graduate student of department of assisted reproductive technology in treatment of infertility, Research Center of Obstetrics,
Gynecology, and Perinatology, Ministry of Health of Russia. 117997, Russia, Moscow, Ac. Oparina 4. Tel.: +74954382501. E-mail:
Espet2007@yandex.ru
For citations: Khechumyan L.R., Kalinina E.A., Donnikov A.E., Kulakova E.V.,
Ibragimova E.O. Role of the vitamin K-dependent protein periostin in predicting
the effectiveness of an assisted reproductive technology program.
Akusherstvo i Ginekologiya/Obstetrics and Gynecology. 2017; (7): 28-32. (in Russian)
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.7.28-32